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    分枝桿菌液體培養(yǎng)和微孔板法分枝桿菌藥敏實驗在結(jié)核感染中的應(yīng)用*

    2022-12-05 08:02:16劉金花羅一鈞彭海英劉平慶
    實用中西醫(yī)結(jié)合臨床 2022年16期
    關(guān)鍵詞:耐藥檢測

    劉金花 羅一鈞 彭海英 劉平慶

    (江西省贛州市第五人民醫(yī)院檢驗科 贛州 341000)

    作為臨床常見感染性疾病,結(jié)核分枝桿菌潛伏感染(結(jié)核感染)主要指的是機(jī)體受到結(jié)核分枝桿菌感染所致的一系列臨床綜合征,為進(jìn)一步明確是否存在結(jié)核病,需要配合細(xì)菌學(xué)、影像學(xué)檢查等[1]。臨床強(qiáng)調(diào)對于合并結(jié)核感染患者應(yīng)積極進(jìn)行藥物治療,促進(jìn)癥狀緩解。近年來隨著結(jié)核分枝桿菌耐藥的增加,為結(jié)核感染防治也增加了一定的難度[2]。痰培養(yǎng)是臨床診斷結(jié)核感染的金標(biāo)準(zhǔn),但傳統(tǒng)固體羅氏培養(yǎng)及藥敏試驗周期長,不利于早期診斷與治療,因此尋找一種快捷、有效的診斷方式尤為重要。分枝桿菌液體培養(yǎng)較傳統(tǒng)固體羅氏培養(yǎng)所用時間短,且無須進(jìn)行磨菌可直接對接藥敏試驗,具有較高的安全性[3~4]。微孔板法即微量肉湯稀釋法能夠測定藥物最低抑菌濃度(MIC),為治療藥物選擇及劑量確定提供參考[5]。為探究其在結(jié)核感染中的應(yīng)用價值,本研究收集60 例我院結(jié)核感染患者痰標(biāo)本病例進(jìn)行研究?,F(xiàn)報道如下:

    1 資料與方法

    1.1 一般資料 選取我院2021 年6~8 月收治的60例肺結(jié)核門診疑似和確診后復(fù)發(fā)結(jié)核感染患者為研究對象,采集患者痰標(biāo)本,其中34 例為疑似新發(fā)患者,26 例為已經(jīng)確診后復(fù)診患者,性別分布男33例、女 27 例;年齡 18~79 歲,平均年齡 51.6 歲;體質(zhì)量指數(shù)(BMI)18~27 kg/m2,平均 BMI(23.36±3.24)kg/m2。入組標(biāo)準(zhǔn):結(jié)核感染診斷參照《WS196-2017 結(jié)核病分類》標(biāo)準(zhǔn)[6]者;年齡≥18 歲者;均在醫(yī)院接受痰培養(yǎng)等相關(guān)檢測者;患者交流無障礙,可配合本研究者。

    1.2 方法

    1.2.1 試劑與儀器 痰消化緩沖液(2%NaOH,0.05 M 檸檬酸鈉)100 ml/瓶,2 瓶;N-乙酰 -L-半胱氨酸(NALC)0.5 g/管,2 管。每管 NALC 溶于一瓶痰消化緩沖液,完全溶解后使用(溶解后24~36 h 內(nèi)使用)。10 倍磷酸鹽緩沖液濃縮液pH 6.8,50 ml 10 倍磷酸鹽緩沖液濃縮液與450 ml 0.9%無菌生理鹽水混合后使用。恒溫培養(yǎng)箱;生物安全柜;高壓消毒鍋;帶濾芯滅菌洗頭;移液器;BD BACTEC MGIT960;50 ml 離心管離心機(jī);96 孔帶蓋 U 型板;OADC;7H9肉湯;阿米卡星;利福平;異煙肼;左氧氟沙星;液體培養(yǎng)管;固體羅氏培養(yǎng)基藥敏管;酸性固體羅氏培養(yǎng)基。

    1.2.2 標(biāo)本處理與檢測 指導(dǎo)患者分別于清晨、晚間以及即時接受痰標(biāo)本采集,將3 次獲得的痰標(biāo)本進(jìn)行涂片染色處理,根據(jù)痰標(biāo)本的黏稠程度,加不同體積的2%NALC-NaOH 消化液入前處理管中,膿痰、渾濁的痰需加3 倍體積的消化液,稀薄痰則加等量消化液。旋緊容器螺旋蓋。接通渦旋振蕩器電源,在生物安全柜內(nèi),將處理管在渦旋振蕩器上振蕩50 s 左右,直至標(biāo)本充分液化。將前處理管置于試管架內(nèi),室溫靜置15 min,偶爾用手輕輕地?fù)u動,加入pH 6.8 的 PBS(0.067 mol/L)緩沖液至 40 ml 標(biāo)記的刻度,混勻。設(shè)定制冷溫度,3 000×g離心15 min,將上清液倒入防噴濺的、含有消毒劑的容器中,用20 ml注射器向每一個處理試管中的沉淀物加入磷酸緩沖液1.0 ml,形成混懸液。

    1.2.3 傳統(tǒng)固體羅氏培養(yǎng) 吸取處理后的標(biāo)本混懸液接種時,第一滴液體接種至固體培養(yǎng)基斜面中部,第二滴接種到培養(yǎng)基上部,每支培養(yǎng)基接種0.10~0.15 ml(約2 滴),輕輕轉(zhuǎn)動并放低培養(yǎng)管底部,使菌液均勻鋪于斜面,斜面水平向上放36±1℃恒溫培養(yǎng)箱內(nèi)培養(yǎng)。每一標(biāo)本同時接種2 支。接種后第3、7 天各觀察1 次菌落生長情況。發(fā)現(xiàn)菌落生長者,經(jīng)抗酸染色證實后,可報告快速生長分枝桿菌陽性。此后每周觀察1 次,記錄菌落生長及污染情況。陽性生長物經(jīng)抗酸染色證實后,可報告分枝桿菌生長。滿8 周后未見菌落生長者方可報告培養(yǎng)陰性結(jié)果,必要時可延長。

    1.2.4 分枝桿菌液體培養(yǎng) 采用MGITBD960 全自動儀器法,將0.5 ml 消化離心后沉淀物加入分枝桿菌液體培養(yǎng)專用管中,并加入0.8 ml 雜菌抑菌劑,放入BD960 全自動培養(yǎng)儀,儀器根據(jù)熒光值自動判讀結(jié)果,儀器報陽后,進(jìn)行手工抗酸染色涂片顯微鏡檢查,抗酸桿菌顯紅色,背景顯藍(lán)色。

    1.2.5 微孔板法液體培養(yǎng) 菌株準(zhǔn)備:液體培養(yǎng)陽性物(要求經(jīng)抗酸染色確定為抗酸陽性桿菌同時無雜菌合并,且經(jīng)抗原檢測為MPT64 抗原陽性的培養(yǎng)物),于37℃環(huán)境下培養(yǎng)1~7 d 增菌(菌量足夠藥敏檢測即可不可超過7 d,超過7 d 仍然達(dá)不到要求菌量,則應(yīng)轉(zhuǎn)種新的液體培養(yǎng)管)。接種液的制備:使用一次性無菌滴管從液體培養(yǎng)管底部吸取0.5 ml 含菌量較大的菌液,置于含有1.5 ml 鹽水的磨菌管中,擰緊螺口,用玻璃珠進(jìn)行旋渦震蕩磨菌分散(磨成均勻的細(xì)沙狀)。根據(jù)比濁儀給出菌懸液濁度及參考加入生理鹽水量將菌液調(diào)整至0.5 McFarland。接種:吸取100 μl 菌懸液至自配或者商品化的含有OADC的7H9 藥敏接種培養(yǎng)液中,渦旋振蕩混勻30 s。得到約1×105 CFU/ml 的接種液。采用適合的多通道移液器,向96 孔U 型版板的每個孔中添加100 μl接種液。務(wù)必在30 min 內(nèi)將接種液接種至96 孔U型板中。藥物濃度準(zhǔn)備:將四種藥敏分別調(diào)至原始濃度的8 倍,在進(jìn)行倍比稀釋8 個梯度,MIC 依次為16.000、8.000、4.000、2.000、1.000、0.500、0.250、0.125。再將調(diào)配好的對應(yīng)的藥敏濃度10 μl 添加至微孔板中,最后一孔第12 排第12 孔不添加任何藥敏,只添加菌懸液,作為對照孔。一株菌做四種藥物8 個濃度,由此得出一塊96 孔板可做3 株菌。最后使用密封膜和通明膠帶以正確的方式覆蓋96 孔板,避免褶皺或者歪斜,確保所有孔完全被覆蓋,隨后采用刮板或者滾輪壓實密封膜,以保證足夠的密封性,防止?jié)B漏或者蒸發(fā)導(dǎo)致實驗失敗或者實驗室污染。孵育:接種好的藥敏板置于35~37℃有氧環(huán)境下孵育10 d。在7~10 d 檢查對照孔生長情況,如果10 d 后生長情況不好,再放入孵箱,繼續(xù)孵育11 d。生長表現(xiàn):U 型孔底部出現(xiàn)混濁或者菌落沉積??刹捎孟到y(tǒng)判讀或者肉眼觀察讀取結(jié)果。首先觀察陽性生長對照孔是否有菌生長表現(xiàn),如未見生長,則結(jié)果無效。當(dāng)陽性生長對照孔菌生長良好時,讀取每種藥物的MIC值,MIC 值為生長明顯抑制的最低抗生素濃度。當(dāng)受試菌株對某種藥物的MIC 值大于臨界濃度,則判斷為該受試菌株對該藥物耐藥;當(dāng)受試菌株對某種藥物的MIC 值小于臨界濃度,則判斷為該受試菌株對該藥物敏感。各抗結(jié)核藥物可接受的MIC 范圍見表1。

    表1 各抗結(jié)核藥物可接受的MIC 范圍(μg/ml)

    1.2.6 比例濃度法固體培養(yǎng) 準(zhǔn)備廢棄物容器及消毒液。將一次性使用的含0.5%有效氯或75.0%酒精的消毒紙墊鋪在生物安全柜的臺面上,臨床分離分枝桿菌的新鮮培養(yǎng)物無須傳代即可做藥敏試驗。取上述培養(yǎng)物放無菌玻璃磨菌器底部,震蕩磨菌,加入少量0.9%生理鹽水,靜置15 min,用比濁儀比濁配成1 mg/ml 的菌懸液。在無菌痰瓶中加入生理鹽水, 用接種槍取500 μl 1 mg/ml 的菌懸液稀釋至10~2 mg/ml,接種培養(yǎng)用接種槍分別取100 μl 10~2 mg/ml 菌液,分別接種至含藥和對照培養(yǎng)基的表面,置于37℃環(huán)境下孵育4 周觀察結(jié)果。采用接種環(huán)提取新鮮菌落,保存于磨菌瓶,與麥?zhǔn)媳葷峁苓M(jìn)行比濁處理,將其制作為濃度為1 mg/ml 的菌懸液,經(jīng)過稀釋處理(100 倍),獲得濃度為10~2 mg/ml 的菌液,并進(jìn)行稀釋,使其成為10~4 mg/ml 溶液,得到兩種不同濃度的工作菌液,然后在對應(yīng)的含藥培養(yǎng)基斜面接種。

    1.3 觀察指標(biāo) 所有標(biāo)本分別予以分枝桿菌液體培養(yǎng)與傳統(tǒng)固體羅氏培養(yǎng)法,并采用微孔板法進(jìn)行分枝桿菌藥敏實驗,對比分枝桿菌培養(yǎng)報陽時間、陽性符合率,并分析微孔板法藥敏結(jié)果檢測效能。

    1.4 統(tǒng)計學(xué)方法 將研究獲得的計數(shù)資料、計量資料應(yīng)用SPSS22.0 軟件進(jìn)行統(tǒng)計學(xué)處理,表示方法分別為%、(),同一批患者標(biāo)本用不同方法處理,采用配對設(shè)計方法。P<0.05 表示差異有統(tǒng)計學(xué)意義。

    2 結(jié)果

    2.1 不同培養(yǎng)方法對分枝桿菌培養(yǎng)報陽時間比較在34 例疑似新發(fā)患者中,采用液體培養(yǎng)法報陽時間為 4~21 d,平均(13.26±5.23)d;傳統(tǒng)固體羅氏培養(yǎng)法報陽時間為 15~36 d,平均(22.73±7.42)d,差異有統(tǒng)計學(xué)意義(t=6.083,P<0.05)。26 例已經(jīng)確診后復(fù)診患者,液體培養(yǎng)法報陽時間為10~31 d,平均(21.35±5.17)d,傳統(tǒng)固體羅氏培養(yǎng)法報陽時間為15~41 d,平均(28.72±8.42)d,差異有統(tǒng)計學(xué)意義(t=3.803,P<0.05)。

    2.2 不同培養(yǎng)法對分枝桿菌陽性檢出率比較 采集60 例患者痰標(biāo)本,分別進(jìn)行不同培養(yǎng)法檢測,結(jié)果顯示液體培養(yǎng)法陽性檢出率為31.67%(19/60);傳統(tǒng)固體羅氏培養(yǎng)法檢測陽性率為15.00%(9/60)。不同培養(yǎng)法總陽性檢出率比較,差異有統(tǒng)計學(xué)意義(χ2=4.658,P<0.05)。見表 2。

    表2 不同培養(yǎng)法對分枝桿菌陽性檢出率比較[%(例/ 例)]

    2.3 微孔板法藥敏法對抗結(jié)核藥物耐藥性檢測結(jié)果 微孔板法藥敏法結(jié)果顯示,利福平耐藥16 個,異煙肼耐藥14 個,阿米卡星耐藥1 個,左氧沙星耐藥2 個。傳統(tǒng)比例法藥敏法利福平耐藥12 個,異煙肼耐藥12 個,阿米卡星耐藥1 個,左氧氟沙星耐藥1 個。微孔板法藥敏法對阿米卡星耐藥檢測特異性高于傳統(tǒng)比例法藥敏法,差異顯著(P<0.05),其他檢測效能比較差異無統(tǒng)計學(xué)意義(P>0.05)。見表3~表5。

    表3 微孔板法藥敏法對抗結(jié)核藥物耐藥性檢測結(jié)果(個)

    表4 傳統(tǒng)比例法藥敏法對抗結(jié)核藥品耐藥性檢測結(jié)果(個)

    表5 微孔板法藥敏法、傳統(tǒng)比例法藥敏法對抗結(jié)核藥品耐藥性檢測效能分析[%(例/ 例)]

    3 討論

    作為臨床常見病,結(jié)核感染常見致病菌為結(jié)核分枝桿菌,發(fā)病率、死亡率高,目前仍是威脅人類健康的公共衛(wèi)生疾病。現(xiàn)有資料顯示全球在結(jié)核感染控制方面仍存在諸多問題,疾病預(yù)防與控制措施相關(guān)資料較缺乏[7~9]。以往研究報道,機(jī)體感染結(jié)核桿菌后是否發(fā)病很大程度上取決于患者抵抗力、結(jié)核桿菌數(shù)量及毒力等[10~11]。隨著卡介苗的接種普及,各種有效抗結(jié)核藥的問世、結(jié)核病的嚴(yán)格管理和隔離,很大程度上控制了結(jié)核的傳染,控制了結(jié)核病的傳染率。及時發(fā)現(xiàn)、及時隔離處理、并進(jìn)行有效抗結(jié)核治療,是抗結(jié)核防治工作的重中之重[12~14]。

    目前,多數(shù)醫(yī)療機(jī)構(gòu)未具備開展結(jié)核分枝桿菌培養(yǎng)的條件,無法進(jìn)行藥敏試驗,部分甚至不能夠滿足結(jié)核分枝桿菌的抗酸染色檢查,在對結(jié)核感染患者予以治療時多依賴臨床表現(xiàn)、影像學(xué)特點等,常用藥物包括利福平、異煙肼、阿米卡星等,基于當(dāng)前嚴(yán)峻的結(jié)核耐藥形勢,依據(jù)經(jīng)驗性治療方案已經(jīng)無法滿足結(jié)核感染的治療需要[15]。且多數(shù)患者由于初治失敗或再次復(fù)發(fā)導(dǎo)致耐藥增加,因此尋找一種準(zhǔn)確、快速的藥敏試驗迫在眉睫[16]。傳統(tǒng)固體羅氏培養(yǎng)法在培養(yǎng)結(jié)核分枝桿菌時耗時長,由于細(xì)菌生長速度慢,往往需要1 個月左右才能夠判斷是否存在細(xì)菌集落,且陽性率低,考慮是因為結(jié)核分枝桿菌多在低氧環(huán)境下產(chǎn)生,肉芽組織細(xì)菌量少,部分手術(shù)患者術(shù)前需行強(qiáng)化抗結(jié)核治療,導(dǎo)致細(xì)菌量減少[17]。比例濃度法是目前應(yīng)用最為廣泛且受臨床信賴的方法,但等待時間長。近年來分枝桿菌液體培養(yǎng)法在臨床得以應(yīng)用,其主要原理如下:MGIT 底部包埋了熒光物質(zhì),當(dāng)管內(nèi)氧含量變化后,熒光物質(zhì)也會隨之發(fā)生反應(yīng),分枝桿菌在MGIT 內(nèi)生長過程中會對氧有一定的消耗,導(dǎo)致管內(nèi)熒光物質(zhì)被激活,從而釋放熒光,經(jīng)過MGIT 熒光讀數(shù)儀能夠直接對結(jié)果進(jìn)行判讀,具有操作簡單、可行性強(qiáng)等優(yōu)勢[18~20]。本研究分枝桿菌液體培養(yǎng)法對疑似新發(fā)病例、復(fù)診患者報陽天數(shù)均短于傳統(tǒng)固體羅氏培養(yǎng)法,且對分枝桿菌總陽性檢出率高于傳統(tǒng)固體羅氏培養(yǎng)法,差異有統(tǒng)計學(xué)意義(P<0.05),體現(xiàn)了液體培養(yǎng)法的優(yōu)勢。不僅如此,液體培養(yǎng)法利用MIC 能夠?qū)λ幬锏臍⒕?、抑菌作用進(jìn)行評估,MIC 值越小提示藥效越強(qiáng)。

    作為藥敏試驗的有效檢測方法,微孔板法在早期耐藥篩查中有著一定的應(yīng)用,其在96 孔板中提前加入被檢測藥物,在板中接種定量菌懸液,不僅操作簡單,而且降低了污染風(fēng)險,能夠?qū)崿F(xiàn)對包含4 種一線、12 種二線在內(nèi)的抗結(jié)核藥物進(jìn)行藥敏檢測,為結(jié)核感染患者早期耐藥篩查提供可靠的參考[21~22]。本研究將比例法固體培養(yǎng)藥敏結(jié)果作為金標(biāo)準(zhǔn),可以發(fā)現(xiàn)微孔板法藥敏法對阿米卡星耐藥檢測特異性高于傳統(tǒng)比例法藥敏法,差異顯著(P<0.05),體現(xiàn)了微孔板法在藥敏實驗中的應(yīng)用優(yōu)勢。以往研究發(fā)現(xiàn),微孔板法能夠檢出低濃度耐藥情況,可為藥物使用劑量的確定提供依據(jù)[23~24]。在檢查過程中存在檢測結(jié)果不一致的情況,考慮與菌株活性有關(guān)。較弱的菌株活性會減慢代謝速度,細(xì)菌生長不充分,對判斷結(jié)果準(zhǔn)確性產(chǎn)生影響[25]。分枝桿菌藥敏閱讀儀的應(yīng)用則能夠促進(jìn)分辨率的提升。

    本研究就分枝桿菌液體培養(yǎng)和微孔板法在藥敏實驗中的價值進(jìn)行了匯報,但病例少、隨訪時間有限,可能有所偏倚,且對于不符合標(biāo)準(zhǔn)未能進(jìn)一步進(jìn)行基因測序,后續(xù)仍需大樣本研究,挖掘其臨床價值,更好地服務(wù)于臨床。綜上所述,分枝桿菌液體培養(yǎng)對結(jié)核感染患者分枝桿菌檢測時間短,陽性檢出率高,利用微孔板法能夠提升分枝桿菌藥敏試驗靈敏度、特異性,且可檢測到最小抑菌濃度,為藥物療效監(jiān)測以及精準(zhǔn)治療提供可靠的參考依據(jù)。

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