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    DC-CIK細(xì)胞誘導(dǎo)宮頸癌細(xì)胞凋亡的研究

    2018-07-13 14:13:00韋瑋陳心秋
    關(guān)鍵詞:共培養(yǎng)存活率宮頸癌

    韋瑋,陳心秋

    (1.廣西省柳州市工人醫(yī)院 婦產(chǎn)科,廣西 柳州 545005;2.廣西醫(yī)科大學(xué)附屬腫瘤醫(yī)院婦瘤科,廣西 南寧 530021)

    宮頸癌在女性生殖器官類癌癥中占首位,宮頸癌的治愈率低,死亡率高,發(fā)病率呈年輕化[1-3]。樹突狀細(xì)胞(dendritic cells,DC)-細(xì)胞因子激活的殺傷細(xì)胞(cytokine induced killer,CIK)混合生物免疫療法作為腫瘤生物治療中最成熟、應(yīng)用最廣的治療方法,能激活患者自身的免疫系統(tǒng)辨別和殺傷腫瘤細(xì)胞,可改善患者的生活質(zhì)量,延長生存期[4-6]。本文從分子機(jī)制探討DC-CIK細(xì)胞對宮頸癌細(xì)胞(Hela)殺傷及凋亡的影響。

    1 材料與方法

    1.1 主要試劑

    肝素鈉(美國Sigma公司),標(biāo)準(zhǔn)胎牛血清(美國 Gibco公司),1640培養(yǎng)液(美國Gibco公司),二甲基亞砜(dimethyl sulphoxide,DMSO)(美國Sigma公司),CCK-8、RNA 提 取試劑盒及RNA逆轉(zhuǎn)錄試劑盒(美國Invitrogen公司),Annexin V/PI凋亡檢測試劑盒,粒細(xì)胞巨噬細(xì)胞刺激因子(granulocyte-macrophage colony stimulating factor,GM-CSF)、干擾素-γ(Interferonγ,IFN-γ)、白介素-2(Interleukin-2,IL-2)、白介素-1α(Interleukin-1α,IL-1α)、白介素-4(Interleukin-4,IL-4)、腫瘤壞死因子-α(tumor necrosis factor-α,TNF-α)及CD3單克隆抗體(北京同立海源公司),CD8-PE、CD40-FITC、CD3-PITC、CD8-PerCP及CD56-PE抗體(美國Abcam公司),甘油醛-3-磷酸脫氫酶(glyceraldehyde-3-phosphate dehydrogenase,GAPDH)、Bcl-2、Bax及 c-myc引物(上海生工生物工程股份有限公司)。

    1.2 方法

    1.2.1Hela細(xì)胞的培養(yǎng)Hela細(xì)胞購于中國科學(xué)院上海細(xì)胞庫,于10%胎牛血清和1%抗生素的1640培養(yǎng)基,37℃、5%二氧化碳CO2、95%相對濕度培養(yǎng)箱中培養(yǎng)。

    1.2.2CIK細(xì)胞的培養(yǎng)選取2015年9月于廣西省柳州市工人醫(yī)院婦科、腫瘤科未做任何治療的宮頸癌患者58例。每位患者取靜脈血80 ml,加肝素鈉200μl。取50 ml淋巴細(xì)胞分離液,分裝10支離心管,每管加8 ml血液,3 000 r/min離心20 min。離心后吸每管上層血清至50 ml離心管,吸取中間層細(xì)胞至另一個(gè)50 ml離心管中,補(bǔ)加生理鹽水至50 ml,計(jì)數(shù)并離心(5 000 r/min離心5 min)。取5×107個(gè)細(xì)胞用于DC細(xì)胞的培養(yǎng),剩余細(xì)胞用于CIK細(xì)胞的培養(yǎng),計(jì)作第0天,加入IFN-γ(1 000 u/ml)、腺嘌呤核苷三磷酸和20%自體血清。第1天補(bǔ)加IL-2(300 u/ml)、IL-1α(100 u/ml)及CD3單克隆抗體(50 ng/ml),之后根據(jù)細(xì)胞的數(shù)量補(bǔ)加培養(yǎng)基進(jìn)行擴(kuò)增。第7天與DC細(xì)胞共培養(yǎng)。

    1.2.3DC細(xì)胞的培養(yǎng)DC細(xì)胞的鋪板密度為5×107個(gè)/ml,鋪6孔板,2 ml/孔,計(jì)作第0天,加入 GM-CSF(1 000 u/ml)和 IL-4(500 u/ml),第 3 天補(bǔ)加DC培養(yǎng)液2 ml,第5天加入抗原,第6天加入TNF-α(500 u/ml)。

    1.2.4DC-CIK細(xì)胞的培養(yǎng)第8天用巴氏管收集鋪板密度1×107個(gè)/ml的DC細(xì)胞與1×109數(shù)量級的CIK細(xì)胞混合共培養(yǎng),據(jù)細(xì)胞的數(shù)量補(bǔ)加培養(yǎng)基進(jìn)行擴(kuò)增,培養(yǎng)的DC-CIK于第10天做微生物檢測,培養(yǎng)第14天用于實(shí)驗(yàn)。

    1.2.5DC細(xì)胞表型檢測收集5×106個(gè)/ml的DC細(xì)胞,懸于5 ml磷酸鹽緩沖溶液(phosphate buffer saline,PBS),1 000 r/min離心10 min,洗去血清,以PBS調(diào)濃度至1×106個(gè)/ml,1.5 EP管分裝,分別加入20μl CD8-PE、CD40-FITC,均為鼠抗人單抗,以相應(yīng)同型抗體為對照,4℃標(biāo)記30 min,3 ml PBS 1 000 r/min離心10 min,沖洗2次,最后以PBS重懸調(diào)濃度至1×106個(gè)/ml,用流式細(xì)胞儀(FACSria,美國BD公司)檢測。

    1.2.6CIK細(xì)胞表型檢測收集鋪板密度5×106個(gè)/ml的CIK細(xì)胞,懸于5 ml PBS,1 000 r/min離心10 min,洗去血清,以PBS調(diào)濃度至1×106個(gè)/ml,1.5 EP管分裝,分別加入20μl CD3-PITC、CD8-PerCP及CD56-PE一抗,4℃孵育30 min后,PBS洗滌細(xì)胞,1 000 r/min離心10 min,沖洗2次,用PBS重懸細(xì)胞調(diào)濃度至1×106個(gè)/ml,用流式細(xì)胞儀檢測。

    1.2.7CCK-8選取生長狀態(tài)良好的對數(shù)生長期Hela細(xì)胞,胰酶消化細(xì)胞后,接種于96孔板,接種細(xì)胞濃度為5×104個(gè)/(100μl·孔),將96孔板放入37℃、5%CO2飽和濕度的細(xì)胞培養(yǎng)箱中,細(xì)胞貼壁培養(yǎng)過夜。分別將100μl 1640完全培養(yǎng)基、培養(yǎng)至第5天的 DC 細(xì)胞 [l×105個(gè) /(100μl·孔)]、第 7天的CIK細(xì)胞[l×105個(gè)/(100μl·孔)]和聯(lián)合培養(yǎng)生長 3 d的 CIK-DC 細(xì)胞 [l×105個(gè) /(100 ul·孔)]接種于鋪有靶細(xì)胞的96孔板,即實(shí)驗(yàn)分組為Hela組、Hela+DC組、Hela+CIK組及Hela+CIK-DC組。培養(yǎng)箱內(nèi)繼續(xù)培養(yǎng)24 h,拿出孔板加入CCK-8試劑20μl/孔,培養(yǎng)箱內(nèi)孵育2 h,用酶標(biāo)儀(SpectraMax M4,美國Molecular Devices公司)在450 nm處檢測每孔光密度(optical delnsity,OD)值,取3個(gè)平行復(fù)孔的平均值。

    1.2.8逆轉(zhuǎn)錄聚合酶鏈反應(yīng)(reverse transcriptionpolymerase chain reaction,RT-PCR)按照 RNA 提取試劑盒說明書提取Hela細(xì)胞、CIK細(xì)胞和DC-CIK共培養(yǎng)24 h Hela細(xì)胞的RNA,并檢測RNA含量。樣品OD260/OD280比值在1.8~2.0,純度較好。逆轉(zhuǎn)錄反應(yīng)體系 :2×TS Reaction Mix(10μl),TransScript RT/RI Enzyme Mix(1μl),Anchored Oligo(dT)18(1μl),Total RNA(500μg),RNase-free Water to 20μl(美國賽默飛世爾科技公司)。PCR反應(yīng)條件:94℃預(yù)變性5 min,94℃變性30 s,58℃退火30 s,72℃延伸45 s,共30個(gè)循環(huán)后,72℃再延伸1 min。瓊脂糖凝膠電泳檢測目的RNA表達(dá)。采用凝膠成像系統(tǒng)(SA-1000,美國Alpha Innotech公司)進(jìn)行拍照并分析。GAPDH上游引物:5-GAAGGTGAAGGTCGGAGTC-3,下游引物:5-GAAGATGGTGATGGGATTTC-3;c-myc上 游引物:5-CAGGACTGTATGTGGAGCGGTTTC-3,下游引 物:5-TGCTGTCGTTGAGCGGGTAG-3;Bax上 游引物:5-GTGCACCAAGGTGCCGGAAC-3,下游引物:5-TCAGCCCATCTTCTTCCAGA-3;Bcl-2上游引物:5-CGACGACTTCTCCCGCCGCTACCGC-3,下游引物:5-CCGCATGCTGGGGCCGTACAGTTCC-3。

    1.2.9Annexin V/PI雙染取處于對數(shù)生長期的Hela細(xì)胞,消化重懸細(xì)胞后接種于6孔板中,按5×104個(gè)/ml的密度培養(yǎng)于2 ml 1640培養(yǎng)液中。待細(xì)胞貼壁后加入培養(yǎng)的DC-CIK細(xì)胞1×106個(gè)培養(yǎng)24 h。倒掉懸浮的DC-CIK細(xì)胞,胰蛋白酶適宜時(shí)間消化細(xì)胞后加入1640培養(yǎng)液(10% PBS)終止消化并離心收集細(xì)胞。用PBS洗滌細(xì)胞反復(fù)離心(2 000 r/min離心5 min)2次,離心后重懸細(xì)胞計(jì)數(shù),實(shí)驗(yàn)需5×105個(gè)細(xì)胞。每管按順序依次加入500μl的Binding Buffer,5μl Annexin V-FITC 和 5μl PI渦旋混勻后。室溫下避光反應(yīng)15 min。用流式細(xì)胞儀檢測。

    1.3 統(tǒng)計(jì)學(xué)方法

    數(shù)據(jù)分析采用SPSS 17.O統(tǒng)計(jì)軟件。計(jì)數(shù)資料以例表示,組間比較用χ2檢驗(yàn);計(jì)量資料以均數(shù)±標(biāo)準(zhǔn)差(±s)表示,用t檢驗(yàn)或方差分析,兩兩比較用LSD-t檢驗(yàn),P<0.05為差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。

    2 結(jié)果

    2.1 DC、CIK細(xì)胞的形態(tài)學(xué)觀察

    外周血中分離出的單個(gè)核細(xì)胞貼壁2 h,細(xì)胞呈圓形并貼壁,加入IL-4和GM-CSF后細(xì)胞形態(tài)不規(guī)則,懸浮細(xì)胞增多,細(xì)胞表面有毛刺樣突起生成,且細(xì)胞體積變大后開始懸浮生長,分布均勻,具有典型的樹突狀突起。顯微鏡下可見單個(gè)核細(xì)胞在細(xì)胞因子的刺激下,細(xì)胞體積開始增加,細(xì)胞核逐漸變大,培養(yǎng)至第5天的CIK細(xì)胞集落開始聚集生長,后逐漸成簇狀克隆生長。見圖1。

    2.2 DC細(xì)胞的CD8、CD40的陽性表達(dá)

    流式細(xì)胞儀檢測DC細(xì)胞第0和7天時(shí)的細(xì)胞表面分子CD8和CD40,第0天時(shí)CD8的陽性表達(dá)率為1.59%,CD40的陽性表達(dá)率為2.54%。相對于第0天,第7天時(shí)CD8的陽性表達(dá)率為21.62%,CD40的陽性表達(dá)率為76.67%。第0與7天的CD8與CD40陽性表達(dá)率比較,差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(χ2=19.555和11.833,均P=0.000),第7天時(shí)CD8和CD40的陽性表達(dá)率升高。見圖2。

    2.3 CIK細(xì)胞的CD3、CD8及CD58的陽性表達(dá)

    流式細(xì)胞儀檢測CIK細(xì)胞第0和14天時(shí)的細(xì)胞表面分子CD3、CD8及CD56,第0天時(shí)CD3的陽性表達(dá)率為37.06%,CD8的陽性表達(dá)率為26.36%,CD56的陽性表達(dá)率為14.29%。第14天時(shí)CD3的陽性表達(dá)率為86.85%,CD8的陽性表達(dá)率為82.69%,CD56的陽性表達(dá)率為47.65%。第0與14天的CD3、CD8及CD56陽性表達(dá)率比較,差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(χ2=52.113、63.985和 26.028,均P=0.000),第14天時(shí)CIK細(xì)胞的細(xì)胞表面分子CD3、CD8和CD56陽性表達(dá)率升高。見圖3。

    2.4 DC-CIK細(xì)胞對Hela細(xì)胞存活率的影響

    Hela組、Hela+DC組、Hela+CIK組、Hela+DC-CIK組的細(xì)胞存活率比較,經(jīng)方差分析,差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05)。進(jìn)一步兩兩比較,經(jīng)LSD-t檢驗(yàn),Hela+DC組與Hela組細(xì)胞存活率比較,差異無統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P>0.05),說明DC細(xì)胞不具有腫瘤細(xì)胞殺傷能力;Hela+CIK組與Hela組細(xì)胞存活率比較,差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(t=22.504,P=0.002),Hela+CIK組比Hela組下降39.72%;Hela+DC-CIK組與Hela組細(xì)胞存活率比較,差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(t=34.045,P=0.001),Hela+DC-CIK組比Hela組下降58.40%。見附表和圖4。

    圖1 顯微鏡下觀察DC、CIK細(xì)胞的形態(tài)(×100)

    圖2 流式細(xì)胞儀檢測DC細(xì)胞表面分子CD8和CD40的表達(dá)

    2.5 DC-CIK細(xì)胞對Hela細(xì)胞凋亡的影響

    Hela組凋亡率為(5.9±3.8)%,與Hela組相比,Hela+DC-CIK組凋亡增加了4.12倍,其凋亡率為(22.0±3.8)%,兩組比較,差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(t=7.851,P=0.001)。見附表和圖5。

    2.6 DC-CIK細(xì)胞對Hela細(xì)胞Bax/Bcl-2 mRNA比值的影響

    Hela組、Hela+DC組、Hela+CIK組、Hela+DCCIK組的Bax/Bcl-2 mRNA比值比較,經(jīng)方差分析,差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05)。進(jìn)一步兩兩比較,經(jīng)LSD-t檢驗(yàn),Hela+DC-CIK組與Hela組的Bax/Bcl-2 mRNA比值比較,差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(t=8.314,P=0.010)。Hela+DC-CIK 組為 Hela組的(3.49±0.08)倍。見附表和圖6。

    2.7 DC-CIK細(xì)胞對Hela細(xì)胞c-myc mRNA表達(dá)水平的影響

    Hela組、Hela+DC組、Hela+CIK組、Hela+DCCIK組的c-myc mRNA水平比較,經(jīng)方差分析,差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05)。Hela+CIK組、Hela+DCCIK組與Hela組相比c-myc mRNA表達(dá)升高,但Hela+DC-CIK組升高更明顯。Hela+DC-CIK組與Hela組c-myc mRNA水平比較,差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(t=22.079,P=0.000),Hela+DC-CIK組增加了60.72%。見附表和圖7。

    圖3 CIK細(xì)胞表面分子CD3、CD8和CD56的表達(dá)

    附表 4組細(xì)胞各試驗(yàn)指標(biāo)比較

    圖4 DC-CIK細(xì)胞對Hela細(xì)胞存活率的影響

    圖5 DC-CIK細(xì)胞對Hela細(xì)胞凋亡的影響

    圖6 DC-CIK細(xì)胞對Hela細(xì)胞Bax/Bcl-2 mRNA比值的影響

    圖7 DC-CIK細(xì)胞對Hela細(xì)胞c-myc mRNA表達(dá)水平的影響

    3 討論

    DC細(xì)胞是機(jī)體內(nèi)具有提呈抗原作用的細(xì)胞,成熟的DC細(xì)胞表面具有豐富的抗原呈遞分子,DC細(xì)胞具有激活T淋巴細(xì)胞免疫應(yīng)答和抵制腫瘤細(xì)胞免疫逃逸機(jī)制的作用。CIK細(xì)胞分泌的抗體與腫瘤細(xì)胞表面分子結(jié)合,具有較強(qiáng)的殺傷腫瘤細(xì)胞的能力,同時(shí)具有自然殺傷細(xì)胞的非主要組織相容性復(fù)合體限制性殺瘤優(yōu)點(diǎn)和T淋巴細(xì)胞強(qiáng)大的抗瘤活性,CIK細(xì)胞在體外經(jīng)因子誘導(dǎo),擴(kuò)大培養(yǎng)后回輸?shù)桨┌Y患者體內(nèi),顯著提高其免疫活性,也明顯增強(qiáng)其抗腫瘤效果。DC細(xì)胞和CIK細(xì)胞分別通過不同因子的誘導(dǎo)后共培養(yǎng),獲得的DC-CIK細(xì)胞兼顧DC細(xì)胞的抗原遞呈能力和CIK細(xì)胞殺瘤能力,發(fā)揮高效的抗腫瘤作用。

    目前,DC-CIK細(xì)胞在其他癌癥的治療中已經(jīng)取得較滿意的效果。DC細(xì)胞與CIK細(xì)胞共培養(yǎng)后可有效抑制裸鼠肺腺癌移植瘤組織中血管內(nèi)皮生長因子、基質(zhì)金屬蛋白酶及Bcl-2的表達(dá),從而抑制裸鼠肺腺癌移植瘤的生長[7]。DC-CIK免疫細(xì)胞治療可以提高固體癌的化療療效以及降低其副作用。在非小細(xì)胞肺癌的治療中,與單純化療相比,DC-CIK聯(lián)合化療治療晚期非小細(xì)胞肺癌不僅安全有效還可以提高緩解率,延長生存期,改善患者的生活質(zhì)量[8]。臨床上DC-CIK對惡性黑色素瘤、乳腺癌、胃癌、腸癌及食管癌患者有較好的臨床療效,并能有效增強(qiáng)患者的免疫功能,改善患者的生活質(zhì)量,提高生存期[9-12]。因此,本研究通過生物學(xué)實(shí)驗(yàn)探討DC-CIK細(xì)胞對宮頸癌細(xì)胞Hela存活率及凋亡的影響,為臨床上DC-CIK細(xì)胞治療宮頸癌提供理論依據(jù)。

    本研究發(fā)現(xiàn),DC-CIK細(xì)胞與Hela細(xì)胞共培養(yǎng)后,Hela細(xì)胞的存活率下降,經(jīng)Annexin V-FITC/PI雙染流式細(xì)胞儀檢測后DC-CIK共培養(yǎng)的Hela細(xì)胞凋亡和壞死細(xì)胞百分比增加。研究表明乳腺癌干細(xì)胞抗原負(fù)載的DC與CIK細(xì)胞作用后誘乳腺癌細(xì)胞凋亡,其發(fā)生機(jī)制與Bcl-2蛋白超家族蛋白表達(dá)有關(guān)[13]。因此本文進(jìn)一步檢測了DC-CIK細(xì)胞與Hela細(xì)胞共培養(yǎng)后Hela細(xì)胞促凋亡蛋白Bax和抗凋亡蛋白Bcl-2的變化,結(jié)果表明Bax蛋白的mRNA水平升高,而Bcl-2蛋白的mRNA水平降低。c-myc基因是一種可異位基因,也是一種可調(diào)節(jié)基因。c-myc基因作為癌基因具有雙重作用,不僅參與細(xì)胞增殖還參與細(xì)胞凋亡,c-myc基因與正調(diào)節(jié)的生長因子協(xié)同促進(jìn)細(xì)胞增殖,而與具有負(fù)調(diào)控的生長抑制基因如Fas、Fasl及Bas結(jié)合后可加速細(xì)胞凋亡,在癌癥的發(fā)生發(fā)展中發(fā)揮重要的作用[14]。宮頸癌細(xì)胞中c-myc基因高表達(dá),因此本文進(jìn)一步檢測DC-CIK細(xì)胞與Hela細(xì)胞共培養(yǎng)后Hela細(xì)胞中c-myc基因的影響,RT-PCR結(jié)果表明DC-CIK與Hela細(xì)胞共培養(yǎng)后Hela細(xì)胞內(nèi)c-myc mRNA水平增加60.72%。本研究表明DC-CIK可通過提高Hela細(xì)胞Bax/Bcl-2的比值和c-myc的表達(dá)誘導(dǎo)Hela細(xì)胞凋亡,這只是DC-CIK細(xì)胞誘導(dǎo)Hela細(xì)胞凋亡的1個(gè)機(jī)制,DC-CIK細(xì)胞也可能通過釋放其他因子來殺傷Hela細(xì)胞,或者通過其他信號通路誘導(dǎo)Hela細(xì)胞凋亡,其還有待進(jìn)一步研究探索。

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