程剛 李東鵬 張華鵬 劉華 孫峰 梁海 李龍海
結(jié)直腸癌(colorectal cancer,CRC)是全球消化系統(tǒng)最常見的癌癥之一,發(fā)病率和死亡率居前列[1]。2015年中國的一項調(diào)查報告顯示,CRC 患者和死亡人數(shù)分別為37.63 萬人和19.1 萬人,其次是胃癌、肝癌和食道癌[2]。目前,CRC 的發(fā)病機制尚未完全闡明,主流觀點認為與基因或表觀遺傳不穩(wěn)定、飲食習(xí)慣、接觸化學(xué)致癌物質(zhì)、腫瘤血管生成等因素有關(guān)[3]。CXCL7 是一種中性粒細胞激活趨化因子,主要來源于外周血小板,其通常被認為與調(diào)節(jié)糖酵解、有絲分裂和前列腺素合成等有關(guān)。近年來國外研究報道了CXCL7 與CRC 患者預(yù)后相關(guān),可作為CRC 的診斷生物標(biāo)志物[4-5],然而關(guān)于CXCL7 在CRC 的發(fā)生與發(fā)展中的作用機制卻鮮有研究。本研究通過一系列實驗來評估分泌性趨化因子對CRC 腫瘤微環(huán)境的影響,探究趨化因子CXCL7 對CRC 細胞增殖、轉(zhuǎn)移及侵襲的影響與血管生成的關(guān)系,旨在闡明CXCL7 促進CRC發(fā)展的分子機制。
1.1.1 實驗細胞與試劑
人CRC 細胞系SW620(美國ATCC 公司);NCM460 正常細胞株(美國ATCC 公司);慢病毒載體LV5(EF-1aF/GFP&Puro)(蘇州吉瑪基因科技有限公司);胎牛血清(批號1658396,Hyclone 公司);人臍靜脈內(nèi)皮細胞(批號HUVEC001,澳賽爾斯生物技術(shù)有限公司);Transwell 小室(康寧公司);Matrigel 膠(美國BD 公司);PBS(批號20140918,北京索萊寶科技有限公司);細胞周期測定試劑盒(美國BD 公司);胰蛋白酶(北京索萊寶科技有限公司);凋亡測定試劑盒(Beyotime 公司);ECL 試劑盒(美國Millipore 公司);ELISA 試劑盒(武漢賽培生物科技有限公司)
1.1.2 實驗儀器與設(shè)備
酶標(biāo)儀(VICTOR X5,美國Perkinelmer 公司);BX53MRF-S 顯微鏡(日本Olympus 公司);垂直電泳儀(北京六一生物科技有限公司);CO2培養(yǎng)箱(型號MIR-162-PC/MIR-262-PC,日本松下公司);流式細胞儀(美國貝克曼公司)
1.2.1 細胞培養(yǎng)
取對數(shù)期生長的CRC 細胞在培養(yǎng)基中進行傳代培養(yǎng),并添加10%胎牛血清、100 μg/mL 的鏈霉素100 μL。所有細胞均置于飽和濕度、37℃的5%CO2培養(yǎng)箱中孵育。
1.2.2 CXCL7 穩(wěn)轉(zhuǎn)株的構(gòu)建
通過qPCR 及ELISA 法檢測CRC 細胞株的表達情況,挑選出高低表達細胞株,對高表達細胞株進行敲降(Knock down),低表達細胞株行過表達(Over expression)處理??寺∥稽c:NotI BamHI,借助慢病毒載體轉(zhuǎn)染細胞株構(gòu)建穩(wěn)定過表達以及敲降細胞株。
1.2.3 CXCL7 對CRC 細胞增殖能力的影響
使用CCK-8、EdU 染色和平板克隆形成實驗測定CXCL7 對CRC 細胞增殖能力的影響。
1.2.4 CXCL7 對CRC 細胞周期和凋亡作用
收集CXCL7 過表達及敲降的穩(wěn)轉(zhuǎn)株,PBS 洗滌,75%乙醇固定后,PBS 繼續(xù)漂洗1~2 次,使用細胞周期測定試劑盒,流式細胞儀測定各管細胞周期分布情況。同樣使用不含ETDA 的胰蛋白酶消化處理細胞,經(jīng)固定與漂洗后,使用凋亡測定試劑盒,流式細胞儀測定細胞凋亡情況。
1.2.5 Transwell 腫瘤細胞侵襲實驗
Transwell 小室上層加入CXCL7+NC 組細胞,下層加入血清培養(yǎng)液,中間加入膠。4%多聚甲醛固定10 min,1%結(jié)晶紫染色30 mim,鏡下觀察并拍照,100 倍光鏡下隨機選取5 個視野進行計數(shù),平均值作為計算結(jié)果并進行比較。
1.2.6 趨化因子CXCL7 對臍靜脈內(nèi)皮細胞血管形成實驗
96 孔板放置于-20℃預(yù)冷,每孔以50 μL Matrigel 膠包被,置于37℃中孵育30 min,使膠凝固;胰酶消化對數(shù)生長期的臍靜脈內(nèi)皮細胞,用人LoVo 細胞培養(yǎng)上清液重懸后計數(shù),細胞接種于Matrigel 膠包被的96 孔板,每孔接種100 μL 中細胞數(shù)4 000 個。培養(yǎng)板置于細胞培養(yǎng)箱中培養(yǎng),6 h 后加入Calcein-AM/PBS 溶液,37℃避光孵育30 min,PBS 洗滌2 次,熒光顯微鏡下觀察并拍照計數(shù)管腔形成數(shù)目。
1.2.7 血管內(nèi)皮生長因子(VEGF)、血管內(nèi)皮生長因子受體(VEGF-R)表達水平測定
ELISA 試劑盒測量培養(yǎng)上清VEGF 水平,Western blot 檢測血管內(nèi)皮生長因子受體(VEGF-R)表達水平。
采用SPSS 17.0 統(tǒng)計學(xué)軟件進行統(tǒng)計學(xué)處理,計量資料采用()表示,多組間比較采用單因素方差分析,兩組間比較采用SNK-q檢驗。以P<0.05 表示差異有統(tǒng)計學(xué)意義。
48、72 h 各組吸光度比較:CXCL7 干擾組>NC 組>空白對照組,差異有統(tǒng)計學(xué)意義(P<0.05)。見表1。
表1 各組不同時間點吸光度值比較(±s)Table 1 Comparison of cell proliferation rates in each group at each time point(±s)
表1 各組不同時間點吸光度值比較(±s)Table 1 Comparison of cell proliferation rates in each group at each time point(±s)
注:與空白對照組比較,aP<0.05;與NC 組比較,bP<0.05。
72 h 1.41±0.12ab 1.13±0.11a 1.01±0.13 17.475<0.001組別CXCL7 干擾組NC 組空白對照組F 值P 值n6 6 6 0 h 0.25±0.02 0.24±0.01 0.25±0.01 1.000 0.391 24 h 0.34±0.02 0.32±0.02 0.31±0.03 2.471 0.118 48 h 0.82±0.10ab 0.69±0.08a 0.62±0.09 7.567 0.005
遷移細胞數(shù)比較:CXCL7 干擾組(1021.14±106.55)個>空白對照組(348.36±48.64)個>NC 組(331.98±46.81)個,差異有統(tǒng)計學(xué)意義(P<0.05)。見圖1。
圖1 各組Transwell 細胞遷移實驗結(jié)果(1%結(jié)晶紫染色,×100)Figure 1 Transwell cell migration test results in each group(1% crystal violet stain,×100)
侵襲進入下室的細胞數(shù)比較:CXCL7 干擾組(103.21±15.33)個>空白對照組(28.54±8.17 個>NC組(24.65±8.36)個,差異有統(tǒng)計學(xué)意義(P<0.05)。
處理CRC 細胞6 h 后,結(jié)果顯示空白對照組和NC 組僅有少量小管形成,而CXCL7 干擾組卻形成了大量網(wǎng)狀結(jié)構(gòu)的小管。管腔形成數(shù)目:CXCL7 干擾組>NC 組>空白對照組,差異有統(tǒng)計學(xué)意義(P<0.05)。見表2、圖2。
表2 各組管腔形成數(shù)目比較(±s)Table 2 Comparison of the number of formed lumen in each group(±s)
表2 各組管腔形成數(shù)目比較(±s)Table 2 Comparison of the number of formed lumen in each group(±s)
注:與空白對照組比較,aP<0.05;與NC 組比較,bP<0.05。
組別CXCL7 干擾組NC 組空白對照組F 值P 值n6 6 6管腔數(shù)(個)28.14±3.22ab 15.89±2.16a 4.47±1.10 155.272<0.001
圖2 各組臍靜脈內(nèi)皮細胞血管形成實驗結(jié)果Figure 2 Experimental results of umbilical vein endothelial cells angiogenesis in each group
VEGF 水平及VEGF-R 陽性表達率:CXCL7 干擾組>NC 組,差異有統(tǒng)計學(xué)意義(P<0.05)。見表3。
表3 各組VEGF 水平及VEGF-R 陽性表達率比較(±s)Table 3 Comparison of VEGF levels and VEGF-R positive expression rates in each group(±s)
表3 各組VEGF 水平及VEGF-R 陽性表達率比較(±s)Table 3 Comparison of VEGF levels and VEGF-R positive expression rates in each group(±s)
組別CXCL7 干擾組NC 組t/χ2值P 值VEGF(pg/mL)576.25±84.63 357.47±28.34 15.504<0.001 VEGF-R 陽性表達率(%)90.0(36/40)67.5(27/40)6.050 0.014
近年來國內(nèi)外大量研究發(fā)現(xiàn),一些趨化因子在腫瘤細胞的增殖、遷移、侵襲以及血管形成過程中發(fā)揮重要作用[6-7]。趨化因子是一種8~12 kDa的分泌蛋白,可以調(diào)節(jié)白細胞的遷移,并參與炎癥或傷口組織的修復(fù)等生理和病理過程。根據(jù)N 末端附近保守半胱氨酸的位置,這些小蛋白可分為CXC-、CX3C-、CC- 和XCL 亞組趨化因子[8-9]。CXCL7 屬于ELR+CXC 趨化因子,其功能與其受體CXCR2 結(jié)合,并通過將中性粒細胞聚集到血管損傷部位,影響機體免疫反應(yīng)[10]。目前,CXCL7 已被證明是乳腺癌、肺癌等多種癌癥中重要的腫瘤微環(huán)境調(diào)節(jié)劑,也是癌癥診斷中的潛在生物標(biāo)志物[11]。但關(guān)于CXCL7 在CRC 發(fā)生與發(fā)展中的作用機制研究較為少見。本研究擬在前期工作基礎(chǔ)上,運用分子生物學(xué)手段及動物實驗技術(shù)系統(tǒng)研究CXCL7 對結(jié)直腸癌腫瘤微環(huán)境的影響,以及對結(jié)直腸癌細胞增殖、轉(zhuǎn)移及侵襲的影響,闡明CXCL7 促進結(jié)直腸癌發(fā)展的分子機制。本研究有望在趨化因子調(diào)節(jié)水平為CRC 的診斷及防治提供新的視角和理論依據(jù),并為CRC 的靶向治療和預(yù)后提供重要指導(dǎo)。
本研究發(fā)現(xiàn),在細胞增殖實驗中,細胞培養(yǎng)48 h后,CXCL7 干擾組吸光度明顯高于NC 組與空白對照組,細胞增殖作用明顯增強,Transwell 實驗中CXCL7 干擾組遷移與侵襲細胞數(shù)均多于NC 組與空白對照組,說明CXCL7 具有協(xié)助細胞增殖、遷移與侵襲的作用。血管生成是一個重要的生理過程,在腫瘤的增殖、侵襲和轉(zhuǎn)移中也起著關(guān)鍵作用。血管生成為腫瘤的發(fā)展提供了營養(yǎng)支持,并促進腫瘤的持續(xù)生長。近年來相關(guān)文獻報道[12],血管生成在CRC 復(fù)發(fā)和轉(zhuǎn)移中起重要作用,許多蛋白質(zhì)和信號分子與CRC 細胞中的血管生成有關(guān),包括VEGF 和趨化因子。VEGF 在CRC 腫瘤中高表達并與不良預(yù)后相關(guān)。既往研究專注于CRC 患者血清中的CXCL7,及其在CRC 預(yù)后中的潛在應(yīng)用,然而,CXCL7 和血管生成之間的關(guān)系鮮為研究。近年來,一些研究揭示了趨化因子在調(diào)節(jié)血管生成中的作用,如CCL19 通過下調(diào)CRC 細胞中VEGF-A的表達來抑制血管生成的能力[13]。因此,可將此類研究作為研究CXCL7 在CRC 患者血管生成中作用的基礎(chǔ)進行參考。本研究結(jié)果說明趨化因子CXCL7 可增強小管形成能力,促進腫瘤血管形成。此外,通過選擇VEGF 作為血管生成的標(biāo)志物,發(fā)現(xiàn)CXCL7可增強CRC 細胞中VEGF 的表達。Du 等[14]報道,CXCL7通過激活PI3K/AKT/mTOR 信號通路與腫瘤生長、侵襲、遷移和血管生成有關(guān)。AKT 信號通路存在于人的所有細胞中,參與細胞生長、凋亡、遷移等多種代謝過程[15]。CXCL7 還可以通過與腫瘤血管生成相關(guān)的Ras/Raf/絲裂原活化蛋白激酶(MAPK)信號通路發(fā)揮其作用。CXCL7 可加速腫瘤轉(zhuǎn)移通過調(diào)節(jié)VEGF-R 在CRC 中的表達。因此,CXCL7 可能是通過激活A(yù)KT 等信號通路參與CRC 的發(fā)生與發(fā)展。綜上所述,趨化因子CXCL7 可調(diào)控腫瘤微環(huán)境,促進腫瘤血管形成,進而協(xié)助結(jié)直腸癌細胞的增殖、轉(zhuǎn)移和侵襲。本研究下一階段的研究任務(wù)主要是通過動物實驗探究CXCL7 對裸鼠CRC 細胞成瘤能力的影響。