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    高內(nèi)涵無熒光標(biāo)記活細(xì)胞成像技術(shù)的建立及應(yīng)用

    2022-10-21 12:19:18劉雙雙洪曉黎邱淑兵
    科學(xué)技術(shù)創(chuàng)新 2022年27期
    關(guān)鍵詞:定量化物鏡孔板

    楊 晨,劉雙雙,洪曉黎,畢 超,邱淑兵

    (1.浙江大學(xué)醫(yī)學(xué)院附屬口腔醫(yī)院·浙江大學(xué)口腔醫(yī)學(xué)院·浙江省口腔疾病臨床醫(yī)學(xué)研究中心·浙江省口腔生物醫(yī)學(xué)研究重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室·浙江大學(xué)癌癥研究院,浙江 杭州 310000;2.浙江大學(xué)醫(yī)學(xué)院公共技術(shù)平臺,浙江 杭州 310058)

    目前高內(nèi)涵篩選技術(shù)作為一種成熟的自動顯微成像技術(shù),將高通量自動成像和分析結(jié)合起來,來獲得單細(xì)胞水平的多參數(shù)定量化數(shù)據(jù),涉及腫瘤治療[1]、藥物篩選[2]、毒理學(xué)[3]、細(xì)胞表型研究[4]、細(xì)胞信號通路研究[5]、活細(xì)胞生物學(xué)功能研究[6]等。隨著單細(xì)胞水平研究的不斷深入,高內(nèi)涵成像以其自身具備的高通量自動成像、數(shù)據(jù)信息量大、智能化的定量化分析等優(yōu)勢,越來越受到各位研究人員的認(rèn)可。DPC 可對無熒光染色的活細(xì)胞樣品成像,在保證細(xì)胞結(jié)構(gòu)和功能的完整性同時(shí),通過單次試驗(yàn)就可以獲得大量的細(xì)胞學(xué)數(shù)據(jù)。本文將就高內(nèi)涵成像的DPC 模塊展開介紹與成像方法詳細(xì)分享,主要包括實(shí)驗(yàn)前樣本的準(zhǔn)備、成像參數(shù)的設(shè)置與成像過程中的注意事項(xiàng)以及實(shí)驗(yàn)數(shù)據(jù)的定量化分析等方面,旨在為從事細(xì)胞增殖和遷移等研究的學(xué)者們提供一種高效的實(shí)驗(yàn)方法與技術(shù)手段。

    1 DPC 成像前的準(zhǔn)備

    1.1 細(xì)胞準(zhǔn)備要求

    細(xì)胞不需要進(jìn)行任何的熒光染色,單層的貼壁細(xì)胞且狀態(tài)好,細(xì)胞匯合率在60%~80%左右比較合適。懸浮細(xì)胞樣品,可將微孔板進(jìn)行包被,或采用低速離心的辦法制備樣品。本文分享的案例[7]是人結(jié)腸癌細(xì)胞HCT116 和LoVo,分為control 和miR-30b-5p 兩組,按照2×104個(gè)細(xì)胞/孔的密度接種到96 孔板,匯合度在80%,滿足高內(nèi)涵DPC 成像的條件。

    1.2 微孔板選擇

    實(shí)驗(yàn)選擇的是PS(聚苯乙烯)材質(zhì)的96 微孔板(Corning 3599),可以滿足DPC 成像的需要。另外,也可以選擇Perkin Elmer 開發(fā)的專用96 微孔板(CellCarrier Ultra microplates)或者Special Optics 96孔板(貨號Corning 3603,美國)等。該板的底部比PS孔板的底部薄,透明的底部能降低背景熒光,成像效果會更好。

    1.3 成像模式的選擇

    成像模式選擇的是寬場模式,長時(shí)間高強(qiáng)度曝光會對細(xì)胞造成光毒性,所以活細(xì)胞成像也更適合使用寬場成像模式,而且應(yīng)該選擇盡量低的激發(fā)能量和較短的曝光時(shí)間。

    1.4 物鏡選擇

    普通多孔板適合于20 X 物鏡及以下鏡頭,不需要觀察共聚焦亞細(xì)胞結(jié)構(gòu)或紋理分布,一般選擇10 X 物鏡拍攝,視野大,拍攝時(shí)間相對短。

    1.5 儀器要求

    高內(nèi)涵細(xì)胞成像與分析系統(tǒng)需要配備溫度和CO2控制模塊(Temperature and CO2,TCO),能夠提供活細(xì)胞長時(shí)間培養(yǎng)所需的溫度和二氧化碳,本文使用儀器型號為Operetta(Perkin Elmer,美國)。細(xì)胞對環(huán)境要求高,需要至少提前半小時(shí)開啟TCO。

    1.6 數(shù)據(jù)分析

    使用儀器自帶的Harmony 4.1 軟件,可以自行創(chuàng)建分析算法,也可以使用儀器的自學(xué)習(xí)功能,訓(xùn)練軟件自動識別特定細(xì)胞,對細(xì)胞進(jìn)行分組,并進(jìn)行運(yùn)動軌跡、位移、方向、速度等多種參數(shù)分析,實(shí)現(xiàn)分析結(jié)果的可視化。

    2 DPC 成像技術(shù)的建立

    利用Operetta 的TCO 模塊提供細(xì)胞長時(shí)間培養(yǎng)所需的溫度和二氧化碳,將96 孔板放置在活細(xì)胞工作站,在10 X 物鏡下使用DPC 成像功能進(jìn)行拍攝觀察細(xì)胞的遷移情況。分享案例中成像使用的是Time series 即時(shí)間序列,拍攝條件設(shè)置如下:Emission:50%,Time:12 ms,Height:-2 μm,Mode:High contrast,Interval:25 min,38 個(gè)時(shí)間點(diǎn),總共拍攝時(shí)長近16 h。

    3 實(shí)驗(yàn)結(jié)果與數(shù)據(jù)分析

    3.1 成像結(jié)果

    圖1 是利用DPC 成像技術(shù)得到的人結(jié)腸癌細(xì)胞HCT116 和LoVo,control 和miR-30b-5p 兩組共四組細(xì)胞的成像數(shù)據(jù)(圖片為任意選取,僅作結(jié)果展示),可以獲取到所有選定孔內(nèi)選定視野內(nèi)每個(gè)細(xì)胞在T0-T37 共38 個(gè)時(shí)間點(diǎn),近16 h 拍攝時(shí)長的實(shí)驗(yàn)數(shù)據(jù),獲得的成像圖像信噪比高,有利于下一步正確識別細(xì)胞進(jìn)行圖像分割。

    圖1 四組細(xì)胞DPC 成像示例圖

    3.2 整個(gè)實(shí)驗(yàn)的流程圖建立

    對整個(gè)實(shí)驗(yàn)前期準(zhǔn)備、實(shí)驗(yàn)開展以及數(shù)據(jù)分析做了流程的梳理,見圖2。在樣品準(zhǔn)備階段,細(xì)胞狀態(tài)良好且貼壁,匯合度在80%左右。在樣品成像階段,一般在10 X 物鏡下,選取寬場模式,設(shè)置好低曝光成像條件,拍攝時(shí)間序列,獲得高質(zhì)量的圖像數(shù)據(jù)。在數(shù)據(jù)分析階段,可以正確識別細(xì)胞,做好圖像分割,最終實(shí)現(xiàn)實(shí)驗(yàn)數(shù)據(jù)的可視化。

    圖2 高內(nèi)涵活細(xì)胞追蹤成像和分析的流程圖

    3.3 分析算法的建立

    拍攝結(jié)束后,利用高內(nèi)涵強(qiáng)大的Image Analysis即數(shù)據(jù)分析功能,追蹤到每個(gè)細(xì)胞,并建立數(shù)據(jù)分析的流程圖,見圖3。

    圖3 Image Analysis 的流程圖

    可以清晰地看出,依次經(jīng)過Find cells、Track objects、Calculate Intesity Properites、Calculate Morphology Properites、Calculate Kinetic Properites 和 Calculate Track Properites 共六步的分析,可以獲得細(xì)胞的各類參數(shù),包括移動速度(Current Speed)、移動步徑(Current Step)、在X 軸 上 的 移 動 距 離(Current Displacement X(μm))、在Y 軸上的移動距離(Current Displacement Y(μm))等。

    3.4 批量數(shù)據(jù)的結(jié)果分析

    分析算法建好之后,進(jìn)一步利用Evaluation 模塊,對整板數(shù)據(jù)進(jìn)行批量運(yùn)算,得到所有拍攝孔的數(shù)據(jù)。其中,如圖4 分享的案例數(shù)據(jù),其中橫軸為Current Displacement X(μm),縱軸為Current Displacement Y(μm),表明細(xì)胞分別在X 和Y 軸上的移動距離。也可以根據(jù)實(shí)驗(yàn)分組和處理不同,進(jìn)一步繪制柱狀圖,進(jìn)行組間差異的比較,更為直觀。

    圖4 四組細(xì)胞的移動距離示例圖[7]

    4 結(jié)論

    本文分享的案例研究[7]采用96 孔板接種細(xì)胞,不需要做任何的熒光標(biāo)記,以無標(biāo)記貼壁活細(xì)胞為成像對象,統(tǒng)計(jì)視野內(nèi)每個(gè)活細(xì)胞的遷移情況。研究中采用的數(shù)據(jù)分析方法,用時(shí)可以控制在2 h 以內(nèi),與傳統(tǒng)的MTT 和CCK-8 方法相比較,實(shí)驗(yàn)時(shí)間明顯減少、實(shí)驗(yàn)效率顯著提高、通量高、可追蹤、數(shù)據(jù)代表性好,分析得到的定量化數(shù)據(jù)更有說服力。MTT 和CCK-8的檢測方法一般通過酶標(biāo)儀測定樣本的吸光度,沒辦法直接觀察到細(xì)胞的生長情況,也不能做到定量化分析[8,9]。

    圖像分割是數(shù)據(jù)分析的重要步驟,如果分析軟件不能很好地分割識別出每一個(gè)細(xì)胞或者要分析的個(gè)體,得到的分析結(jié)果也是不夠準(zhǔn)確的[10]。這就對成像的樣品提出了一定的要求,細(xì)胞需要為單層的貼壁細(xì)胞且狀態(tài)好,細(xì)胞匯合率在80%左右比較合適。細(xì)胞生長過快或者過密,可適當(dāng)降低接種密度,可在50%~80%范圍之間摸索。如果遇到確實(shí)特殊的細(xì)胞樣品,細(xì)胞本身就很容易結(jié)團(tuán),能做的只有盡量優(yōu)化成像條件,找到適合視野內(nèi)所有細(xì)胞分割的條件。所以,樣品制備的質(zhì)量,關(guān)系著數(shù)據(jù)分析的結(jié)果好壞,至關(guān)重要。

    選擇合適的微孔板是高內(nèi)涵實(shí)驗(yàn)成功的重要因素。常規(guī)微孔板底材質(zhì)為玻璃、聚丙乙烯(PE)、烯烴(CO),對于絕大部分實(shí)驗(yàn)來說,建議使用TC-Treated PS 或CO板,TC-Treated PS 板以及CO 板都能夠粘附蛋白,從而促進(jìn)細(xì)胞的貼壁。玻璃底板的透光度更好,但是不適合細(xì)胞培養(yǎng),如果需要使用一般可以通過包被不同的生物分子來提高細(xì)胞的貼壁以及改善細(xì)胞的生長特性。微孔板的厚度是影響透光性以及成像質(zhì)量的重要因素。板底厚度在250 μm 以上的,需要長工作距離鏡頭,并且需要調(diào)整矯正環(huán),不推薦板底厚度大于1 mm 的微孔板。如需要觀察共聚焦亞細(xì)胞結(jié)構(gòu)或紋理分布,必須用推薦薄底板。

    DPC 成像,對細(xì)胞無干預(yù),能最大限度保證細(xì)胞狀態(tài),利用近紅外波長檢測,最大限度地降低了光毒性和光損傷,所以特別適合長時(shí)間動態(tài)觀察。DPC 成像具有通量高、樣本制備方便、數(shù)據(jù)分析簡便等明顯優(yōu)勢,相信能夠?yàn)殚_展活細(xì)胞相關(guān)研究的科研工作者們提供技術(shù)借鑒。

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