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    外源H2O2引發(fā)對(duì)燕麥種胚線粒體AsA-GSH循環(huán)的影響

    2022-09-29 11:23:00李紅玉王雅聰夏方山李尹琳王聰聰董寬虎
    草地學(xué)報(bào) 2022年9期
    關(guān)鍵詞:種子活力燕麥外源

    李紅玉, 王雅聰, 夏方山, 李尹琳, 王聰聰, 王 勃, 董寬虎

    (1.山西農(nóng)業(yè)大學(xué)科研管理部, 山西 太谷 030801; 2.山西農(nóng)業(yè)大學(xué)草業(yè)學(xué)院, 山西 太谷 030801; 3.中國(guó)農(nóng)業(yè)大學(xué)草業(yè)科學(xué)與技術(shù)學(xué)院,北京 100193)

    草種業(yè)是關(guān)系國(guó)家穩(wěn)定發(fā)展的戰(zhàn)略性和基礎(chǔ)性產(chǎn)業(yè),是促進(jìn)草牧業(yè)長(zhǎng)期高質(zhì)量發(fā)展和保障國(guó)家生態(tài)安全的根本所在[1-2],而種子是植物種質(zhì)資源有效保存的重要載體,也是其創(chuàng)新利用的重要原材料[3],其質(zhì)量好壞是決定我國(guó)草種業(yè)發(fā)展水平高低的關(guān)鍵因素[4]。然而,種子從發(fā)育形成至貯藏結(jié)束的整個(gè)過程一直進(jìn)行著各種有氧代謝反應(yīng),并產(chǎn)生眾多對(duì)其種胚細(xì)胞有害的活性氧(Reactive oxygen species,ROS)自由基[5],從而導(dǎo)致種子活力在生理成熟期最高,其后會(huì)在貯藏過程中逐漸下降,乃至完全喪失[5-7]。H2O2被認(rèn)為是動(dòng)植物體內(nèi)調(diào)節(jié)ROS代謝反應(yīng)的動(dòng)態(tài)核心位點(diǎn),其含量升高是導(dǎo)致貯藏植物種子活力降低的直接決定因素[8-9]。同時(shí),H2O2還具有維持植物細(xì)胞穩(wěn)態(tài)的作用,是調(diào)節(jié)植物生長(zhǎng)發(fā)育的重要小分子信號(hào)物質(zhì)之一,不僅能促進(jìn)植物種子的萌發(fā)及其幼苗生長(zhǎng),還能提高植物苗期的抗逆能力[10]。研究發(fā)現(xiàn),H2O2對(duì)植物種子萌發(fā)和幼苗生長(zhǎng)的影響與其濃度、處理時(shí)間及植物種類(品種)均具有密切關(guān)系,且低濃度會(huì)表現(xiàn)出促進(jìn)作用,而高濃度則表現(xiàn)出抑制作用[11-13],但其具體的作用機(jī)制還不清楚[14],同時(shí)種子活力喪失的內(nèi)在機(jī)理也不完全清晰[15]。因此,利用引發(fā)技術(shù)來探究外源H2O2如何影響植物種子活力具有重要意義。

    線粒體不僅是動(dòng)植物細(xì)胞重要的記憶基礎(chǔ),還是其能量合成及物質(zhì)代謝的中心部位[16-17],也是維持種子活力及萌發(fā)等生命活動(dòng)的動(dòng)力之源。線粒體被認(rèn)為是種子細(xì)胞內(nèi)ROS產(chǎn)生的主要來源,也是ROS攻擊的首要目標(biāo),因而其結(jié)構(gòu)及呼吸功能會(huì)不可避免地發(fā)生紊亂[18-19]。研究老芒麥(Elymussibiricus)[15-16]、大豆(Glycinemax)[20]、燕麥(Avenasativa)[21-22]、水稻(Oryzasativa)[23]及榆樹(Ulmuspumila)[24]等植物種子的活力喪失均發(fā)現(xiàn),線粒體H2O2的大量增加導(dǎo)致了線粒體數(shù)量明顯減少、內(nèi)外膜模糊、嵴消失、基質(zhì)變稀等問題,其細(xì)胞色素氧化酶和蘋果酸脫氫酶等線粒體功能標(biāo)志酶活性也降低,使其呼吸供能能力受阻。經(jīng)修復(fù)后的老化種子線粒體結(jié)構(gòu)會(huì)變得完整清晰,其細(xì)胞色素氧化酶和蘋果酸脫氫酶活性也會(huì)得到明顯改善[9]。種胚線粒體內(nèi)抗壞血酸-谷胱甘肽(Ascorbic acid-glutathione,AsA-GSH)循環(huán)是種子線粒體內(nèi)清除ROS的主要途徑[16,21],其抗氧化能力強(qiáng)弱直接決定了植物種子活力水平的高低,種胚線粒體AsA-GSH循環(huán)的抗氧化能力越強(qiáng),其種子活力水平則越高,種胚線粒體AsA-GSH循環(huán)的抗氧化能力越弱,其種子活力水平則越低[9,20]。然而,外源H2O2處理對(duì)種子萌發(fā)及幼苗生長(zhǎng)的研究已在黃瓜(Cucumissativus)[11]、小白菜(Brassicachinensis)[12]、花生(Arachishypogaea)[13]、燕麥[14]等植物中有報(bào)道,但種胚線粒體AsA-GSH循環(huán)如何變化至今尚未見報(bào)道,因而H2O2調(diào)控種子萌發(fā)及幼苗生長(zhǎng)的內(nèi)在機(jī)理仍不清楚。因此,本試驗(yàn)采用引發(fā)技術(shù)來探討外源H2O2對(duì)燕麥種胚線粒體AsA-GSH循環(huán)抗氧化能力的影響規(guī)律,以期為H2O2調(diào)控植物種子活力變化的內(nèi)在機(jī)制提供參考依據(jù)。

    1 材料與方法

    1.1 供試種子來源

    供試燕麥種子品種為‘太陽神’,2018年3月于北京正道農(nóng)業(yè)股份有限公司購買,初始發(fā)芽率98%左右,獲取后于-20℃條件貯藏至2019年3月開展試驗(yàn)。

    1.2 外源H2O2引發(fā)處理

    將燕麥種子含水量參照文獻(xiàn)[25]的方法調(diào)整至10%(鮮重基礎(chǔ))左右,將其分為每份約10 g,然后在室溫黑暗條件下用200 mL濃度分別為0 mol·L-1,0.96 mol·L-1,1.92 mol·L-1,3.84 mol·L-1和7.68 mol·L-1的H2O2浸泡0 h(CK),6 h,12 h和18 h后,蒸餾水快速洗3次,并用干凈濾紙吸掉種皮表面的水分,最后室溫、黑暗環(huán)境中風(fēng)干2 d,含水量約10%(鮮重基礎(chǔ))時(shí)密封,并保存于4℃下備用。每個(gè)處理重復(fù)4次。

    1.3 線粒體的提取與純化

    線粒體的提取與純化參照Yin等[26]的方法進(jìn)行,剝?nèi)∥? h的燕麥完整種胚200個(gè),并置于預(yù)冷的冰浴研缽內(nèi),研磨前加入提前預(yù)冷的線粒體提取液20 mL,研磨約5 min后用4層紗布進(jìn)行過濾,之后經(jīng)反復(fù)離心和洗滌后獲得線粒體的懸浮液,將懸浮液再用1∶2的Percoll梯度分離液純化。所有試驗(yàn)過程均要在1℃~4℃條件下進(jìn)行,純化后的線在中間體放置于4℃?zhèn)溆?,且每次提取的線粒體最多保存1 d。

    1.4 測(cè)定指標(biāo)及方法

    超氧化物歧化酶(Superoxide dismutase,SOD)活性參考Rao和Sresty[27]的方法測(cè)定,抗壞血酸過氧化物酶(Ascorbate peroxidase,APX)、脫氫抗壞血酸還原酶(Dehydroascorbate reductase,DHAR)活性均參考Nakano和Asada[28]的方法測(cè)定,單脫氫抗壞血酸還原酶(Monodehydroasorbate reductase,MDHAR)活性參考Arrigoni等[29]的方法測(cè)定,谷胱甘肽還原酶(Glutathione reductase,GR)活性參考Esterbauer和Grill[30]的方法測(cè)定,可溶性蛋白和H2O2含量均使用南京建成生物工程研究所生產(chǎn)的試劑盒進(jìn)行測(cè)定,丙二醛(Malondialdehyde,MDA)含量則參考Bailly等[31]的方法測(cè)定。所有指標(biāo)測(cè)定過程中均采用1 mL反應(yīng)體系加入10 μL純化線粒體勻漿(含蛋白約20 μg)。

    1.5 數(shù)據(jù)分析

    試驗(yàn)數(shù)據(jù)整理和作圖采用軟件Excel 2010進(jìn)行,多重比較則采用Duncan’s法利用SPSS 21.0軟件進(jìn)行,結(jié)果以“平均值±標(biāo)準(zhǔn)誤”表示。

    2 結(jié)果與分析

    2.1 外源H2O2引發(fā)下燕麥種胚線粒體H2O2和MDA含量的變化

    由圖1可知,引發(fā)6 h~18 h時(shí),燕麥種胚線粒體H2O2和MDA含量均隨著H2O2引發(fā)濃度的增加而上升,并均在7.68 mol·L-1顯著高于其他H2O2引發(fā)濃度(P<0.05);引發(fā)12 h和18 h的燕麥種胚線粒體H2O2和MDA含量在各個(gè)濃度之間存在顯著變化(P<0.05)。H2O2引發(fā)濃度為0 mol·L-1時(shí),燕麥種胚線粒體H2O2含量隨引發(fā)時(shí)間延長(zhǎng)無顯著變化,而其MDA含量在引發(fā)18 h時(shí)則顯著(P<0.05)高于CK;濃度為0.96 mol·L-1時(shí),燕麥種胚線粒體H2O2和MDA含量均顯著高于CK(P<0.05),其H2O2和MDA含量在引發(fā)6 h和12 h間均無顯著變化,其H2O2在引發(fā)12 h和18 h間也無顯著變化,而其MDA含量則在引發(fā)18 h時(shí)顯著高于引發(fā)12 h(P<0.05);濃度為3.84 mol·L-1和7.68 mol·L-1時(shí),燕麥種胚線粒體H2O2和MDA含量均在各個(gè)引發(fā)時(shí)間之間存在顯著差異(P<0.05)。

    圖1 外源H2O2引發(fā)下燕麥種胚線粒體H2O2(A)和MDA(B)含量變化Fig.1 Changes of H2O2 (A) and MDA (B) contents in embryonic mitochondria of oat seeds after exogenous H2O2priming注:不同大寫字母代表相同引發(fā)時(shí)間下各濃度間差異顯著(P<0.05);不同小寫字母表示相同的濃度下各引發(fā)時(shí)間之間差異顯著(P<0.05)。下圖同Note:Different capital letters mean significant differences at the 0.05 level among different concentrations at same priming time;Different small letters mean significant differences at the 0.05 level among different priming time with same concentrations. The same as below

    2.2 外源H2O2引發(fā)下燕麥種胚線粒體SOD活性的變化

    引發(fā)6 h~18 h時(shí),燕麥種胚線粒體SOD活性會(huì)隨H2O2濃度增加呈先升后降的趨勢(shì)(圖2);引發(fā)6 h和12 h時(shí),其SOD活性均在1.92 mol·L-1時(shí)顯著高于其他濃度(P<0.05);引發(fā)6 h時(shí),濃度為0.96 mol·L-1~7.68 mol·L-1H2O2引發(fā)的燕麥種胚線粒體SOD活性均顯著高于濃度為0 mol·L-1時(shí)(P<0.05);引發(fā)12 h時(shí),濃度為0.96 mol·L-1~3.84 mol·L-1H2O2引發(fā)的燕麥種胚線粒體SOD活性顯著高于H2O2引發(fā)濃度為0 mol·L-1時(shí)(P<0.05);引發(fā)18 h時(shí),燕麥種胚線粒體SOD活性在H2O2濃度為0.96 mol·L-1時(shí)顯著高于其他H2O2引發(fā)濃度(P<0.05),而H2O2引發(fā)濃度為7.68 mol·L-1時(shí)則顯著低于濃度為0 mol·L-1時(shí)(P<0.05)。H2O2濃度為0 mol·L-1時(shí),燕麥種胚線粒體SOD活性隨引發(fā)時(shí)間的延長(zhǎng)無顯著變化;H2O2濃度為0.96 mol·L-1時(shí),燕麥種胚線粒體SOD活性隨引發(fā)時(shí)間的延長(zhǎng)呈上升趨勢(shì),均顯著高于CK(P<0.05),并在引發(fā)18 h時(shí)顯著高于其他引發(fā)時(shí)間(P<0.05);H2O2濃度為1.92 mol·L-1時(shí),燕麥種胚線粒體SOD活性隨引發(fā)時(shí)間的延長(zhǎng)呈先上升后下降的趨勢(shì),均顯著高于CK(P<0.05),并在引發(fā)6 h和12 h時(shí)顯著高于引發(fā)18 h(P<0.05);H2O2濃度為3.84 mol·L-1和7.68 mol·L-1時(shí),燕麥種胚線粒體SOD活性均隨引發(fā)時(shí)間的延長(zhǎng)呈下降趨勢(shì),但在濃度為3.84 mol·L-1時(shí)引發(fā)6 h~18 h均顯著高于CK(P<0.05),而濃度為7.68 mol·L-1時(shí)引發(fā)18 h則顯著低于CK(P<0.05)。

    圖2 外源H2O2引發(fā)下燕麥種胚線粒體SOD活性變化Fig.2 Changes of SOD activities in embryonic mitochondria of oat seeds under exogenous H2O2priming

    2.3 外源H2O2引發(fā)下燕麥種胚線粒體APX活性的變化

    引發(fā)6 h~18 h時(shí),燕麥種胚線粒體APX活性會(huì)隨H2O2濃度增加呈先升后降的趨勢(shì)(圖3);引發(fā)6 h時(shí),燕麥種胚線粒體APX活性在H2O2濃度為3.84 mol·L-1時(shí)顯著高于其他H2O2引發(fā)濃度(P<0.05),在濃度為7.68 mol·L-1時(shí)顯著低于濃度為0 mol·L-1時(shí)(P<0.05);引發(fā)12 h時(shí),燕麥種胚線粒體APX活性在H2O2引發(fā)濃度為0.96 mol·L-1~3.84 mol·L-1時(shí)顯著高于H2O2引發(fā)濃度為0 mol·L-1時(shí)(P<0.05),且H2O2引發(fā)濃度為1.92 mol·L-1時(shí)顯著高于其他H2O2引發(fā)濃度(P<0.05),H2O2引發(fā)濃度為7.68 mol·L-1時(shí)則顯著低于H2O2引發(fā)濃度為0 mol·L-1時(shí)(P<0.05);引發(fā)18 h時(shí),燕麥種胚線粒體APX活性在H2O2濃度為0.96 mol·L-1時(shí)顯著高于其他H2O2引發(fā)濃度(P<0.05),H2O2引發(fā)濃度為3.84 mol·L-1和7.68 mol·L-1時(shí)則顯著低于濃度為0 mol·L-1時(shí)(P<0.05)。H2O2濃度為0 mol·L-1時(shí),燕麥種胚線粒體APX活性在引發(fā)6 h~18 h后均顯著高于CK(P<0.05);H2O2引發(fā)濃度為0.96 mol·L-1時(shí),燕麥種胚線粒體APX活性隨引發(fā)時(shí)間的延長(zhǎng)而顯著上升(P<0.05),在引發(fā)18 h時(shí)顯著高于其他引發(fā)時(shí)間(P<0.05);H2O2引發(fā)濃度為1.92 mol·L-1時(shí),燕麥種胚線粒體APX活性隨引發(fā)時(shí)間的延長(zhǎng)呈先上升后下降的趨勢(shì),且均顯著高于CK(P<0.05),并在引發(fā)12 h時(shí)顯著高于其他引發(fā)時(shí)間(P<0.05);H2O2引發(fā)濃度為3.84 mol·L-1和7.68 mol·L-1時(shí),燕麥種胚線粒體APX活性均隨引發(fā)時(shí)間的延長(zhǎng)呈下降趨勢(shì),但在濃度為3.84 mol·L-1時(shí)引發(fā)6 h和12 h均顯著高于CK(P<0.05),引發(fā)18 h時(shí)則顯著低于CK(P<0.05),而濃度為7.68 mol·L-1時(shí)引發(fā)6 h~18 h時(shí)均顯著低于CK(P<0.05)。

    圖3 外源H2O2引發(fā)下燕麥種胚線粒體APX活性變化Fig.3 Changes of APX activities in embryonic mitochondria of oat seeds under exogenous H2O2priming

    2.4 外源H2O2引發(fā)下燕麥種胚線粒體MDHAR活性的變化

    引發(fā)6 h~18 h時(shí),燕麥種胚線粒體MDHAR活性均會(huì)隨H2O2濃度增加呈先升后降的趨勢(shì)(圖4);引發(fā)6 h時(shí),燕麥種胚線粒體MDHAR活性在H2O2濃度為3.84 mol·L-1時(shí)顯著高于其他H2O2引發(fā)濃度(P<0.05),而在濃度為7.68 mol·L-1時(shí)顯著低于濃度為0 mol·L-1時(shí)(P<0.05);引發(fā)12 h和18 h時(shí),燕麥種胚線粒體MDHAR活性均在濃度為0.96 mol·L-1時(shí)顯著高于其他H2O2引發(fā)濃度(P<0.05),H2O2引發(fā)濃度為1.92 mol·L-1~7.68 mol·L-1時(shí)顯著低于濃度為0 mol·L-1時(shí)(P<0.05)。H2O2濃度為0 mol·L-1時(shí),燕麥種胚線粒體MDHAR活性在引發(fā)0 h~18 h時(shí)無顯著變化;H2O2引發(fā)濃度為0.96 mol·L-1時(shí),燕麥種胚線粒體MDHAR活性隨引發(fā)時(shí)間的延長(zhǎng)呈先上升后下降趨勢(shì),在引發(fā)12 h時(shí)顯著高于其他引發(fā)時(shí)間(P<0.05);H2O2引發(fā)濃度為1.92 mol·L-1~7.68 mol·L-1時(shí),燕麥種胚線粒體MDHAR活性隨引發(fā)時(shí)間的延長(zhǎng)而顯著下降(P<0.05),濃度為1.92 mol·L-1和3.84 mol·L-1時(shí)引發(fā)6 h的燕麥種胚線粒體MDHAR活性顯著高于CK(P<0.05),而引發(fā)12 h和18 h的燕麥種胚線粒體MDHAR活性則顯著低于CK(P<0.05),濃度為7.68 mol·L-1時(shí)引發(fā)6 h~18 h的燕麥種胚線粒體MDHAR活性均顯著低于CK(P<0.05)。

    圖4 外源H2O2引發(fā)下燕麥種胚線粒體MDHAR活性變化Fig.4 Changes of MDHAR activities in embryonic mitochondria of oat seeds under exogenous H2O2priming

    2.5 外源H2O2引發(fā)下燕麥種胚線粒體DHAR活性的變化

    引發(fā)6 h~18 h時(shí),燕麥種胚線粒體DHAR活性均會(huì)隨H2O2濃度增加呈先升后降的趨勢(shì)(圖5);引發(fā)6 h時(shí),燕麥種胚線粒體DHAR活性在H2O2濃度為0.96 mol·L-1和1.92 mol·L-1時(shí)顯著高于其他H2O2引發(fā)濃度(P<0.05);引發(fā)12 h時(shí),燕麥種胚線粒體DHAR活性在濃度為0.96 mol·L-1時(shí)顯著高于其他H2O2引發(fā)濃度(P<0.05),H2O2引發(fā)濃度為7.68 mol·L-1時(shí)顯著低于濃度為0 mol·L-1時(shí)(P<0.05);引發(fā)18 h時(shí),燕麥種胚線粒體DHAR活性也在濃度為0.96 mol·L-1時(shí)顯著高于其他H2O2引發(fā)濃度(P<0.05),濃度為3.84 mol·L-1和7.68 mol·L-1時(shí)均顯著低于濃度為0 mol·L-1時(shí)(P<0.05)。H2O2引發(fā)濃度為0 mol·L-1時(shí),燕麥種胚線粒體DHAR活性在引發(fā)18 h時(shí)顯著高于CK(P<0.05);H2O2引發(fā)濃度為0.96 mol·L-1時(shí),燕麥種胚線粒體DHAR活性在引發(fā)6 h~18 h時(shí)均顯著高于CK(P<0.05),并在引發(fā)6 h和12 h時(shí)顯著高于引發(fā)18 h時(shí)(P<0.05);H2O2引發(fā)濃度為1.92 mol·L-1~7.68 mol·L-1時(shí),燕麥種胚線粒體DHAR活性隨引發(fā)時(shí)間的延長(zhǎng)而顯著下降(P<0.05);濃度為1.92 mol·L-1時(shí)引發(fā)6 h~18 h的燕麥種胚線粒體DHAR活性均顯著高于CK(P<0.05),且引發(fā)6 h和12 h時(shí)顯著高于引發(fā)18 h(P<0.05);濃度為3.84 mol·L-1時(shí)引發(fā)6 h和12 h的燕麥種胚線粒體DHAR活性仍顯著高于CK(P<0.05);濃度為7.68 mol·L-1時(shí)引發(fā)6 h的燕麥種胚線粒體DHAR活性顯著高于CK(P<0.05),而引發(fā)12 h和18 h時(shí)均顯著低于CK(P<0.05)。

    圖5 外源H2O2引發(fā)下燕麥種胚線粒體DHAR活性變化Fig.5 Changes of DHAR activities in embryonic mitochondria of oat seeds under exogenous H2O2priming

    2.6 外源H2O2引發(fā)下燕麥種胚線粒體GR活性的變化

    引發(fā)6 h~18 h時(shí),燕麥種胚線粒體GR活性均會(huì)隨H2O2濃度增加呈先升后降的趨勢(shì)(圖6);引發(fā)6 h時(shí),燕麥種胚線粒體GR活性在H2O2濃度為1.92 mol·L-1時(shí)顯著高于其他H2O2引發(fā)濃度(P<0.05),H2O2引發(fā)濃度為7.68 mol·L-1時(shí)顯著低于濃度為0 mol·L-1時(shí)(P<0.05);引發(fā)12 h時(shí),燕麥種胚線粒體GR活性在濃度為0.96 mol·L-1時(shí)顯著高于其他H2O2引發(fā)濃度(P<0.05),濃度為7.68 mol·L-1時(shí)則顯著低于濃度為0 mol·L-1時(shí)(P<0.05);引發(fā)18 h時(shí),燕麥種胚線粒體GR活性也在濃度為0.96 mol·L-1時(shí)顯著高于其他H2O2引發(fā)濃度(P<0.05),而在濃度為7.68 mol·L-1顯著低于濃度為0 mol·L-1時(shí)(P<0.05)。H2O2引發(fā)濃度為0 mol·L-1時(shí),燕麥種胚線粒體GR活性隨引發(fā)時(shí)間延長(zhǎng)無顯著變化;H2O2引發(fā)濃度為0.96 mol·L-1時(shí),燕麥種胚線粒體GR活性隨引發(fā)時(shí)間延長(zhǎng)呈先上升后下降的趨勢(shì),且均顯著高于CK(P<0.05),并在引發(fā)12 h時(shí)顯著高于引發(fā)6 h和18 h時(shí)(P<0.05);H2O2引發(fā)濃度為1.92 mol·L-1~7.68 mol·L-1時(shí),燕麥種胚線粒體GR活性隨引發(fā)時(shí)間的延長(zhǎng)而顯著下降(P<0.05);濃度為1.92 mol·L-1時(shí)引發(fā)6 h~18 h的燕麥種胚線粒體GR活性均顯著高于CK(P<0.05),且引發(fā)6 h時(shí)顯著高于引發(fā)12 h和18 h(P<0.05);濃度為3.84 mol·L-1時(shí)引發(fā)6 h和12 h的燕麥種胚線粒體GR活性仍顯著高于CK(P<0.05);濃度為7.68 mol·L-1時(shí)引發(fā)6 h~18 h的燕麥種胚線粒體GR活性均顯著低于CK(P<0.05)。

    圖6 外源H2O2引發(fā)下燕麥種胚線粒體GR活性變化Fig.6 Changes of GR activities in embryonic mitochondria of oat seeds under exogenous H2O2priming

    3 討論

    低濃度H2O2是植物細(xì)胞內(nèi)的小分子信號(hào)物質(zhì),可促進(jìn)其抵御各類非生物脅迫,而高濃度H2O2則會(huì)誘導(dǎo)其細(xì)胞程序性死亡[32]。因此,種子活力的喪失主要是以H2O2為代謝核心的ROS過量積累導(dǎo)致抗氧化能力下降所造成的[33-34],這已在燕麥種子老化[21,35]及其活力修復(fù)[3,9,22]研究中得到驗(yàn)證。然而,低濃度H2O2處理促進(jìn)黃瓜[11]、小白菜[12]和花生[13]等植物種子在非生物脅迫下萌發(fā)及幼苗生長(zhǎng)則主要依賴其抗氧化能力的提升。本試驗(yàn)發(fā)現(xiàn),燕麥種胚線粒體H2O2含量雖在低濃度(0.96 mol·L-1)的外源H2O2引發(fā)下顯著(P<0.05)高于CK,但其SOD,APX,MDHAR,DHAR及GR活性也均顯著(P<0.05)高于CK,并維持一個(gè)相對(duì)較高的水平,其MDA含量也維持在相對(duì)較對(duì)的水平,這說明此時(shí)燕麥種胚線粒體AsA-GSH循環(huán)的抗氧化能力仍能夠緩解H2O2含量增加造成的脂質(zhì)過氧化損傷,因而其種子活力水平下降幅度不大[14]。相反,燕麥種胚線粒體SOD,APX,MDHAR,DHAR及GR活性均在高濃度(3.84~7.68 mol·L-1)的外源H2O2引發(fā)下出現(xiàn)顯著(P<0.05)下降,這表明燕麥種胚線粒體AsA-GSH循環(huán)已沒有能力來維持其H2O2的正常水平,因而其H2O2含量會(huì)顯著(P<0.05)增加,且其MDA含量也顯著(P<0.05)升高,并達(dá)到一個(gè)相對(duì)較高的水平,燕麥種子活力水平也大幅地顯著(P<0.05)降低[14]。這說明燕麥種胚線粒體AsA-GSH循環(huán)的抗氧化能力是維持其H2O2平衡、降低其脂質(zhì)過氧化損傷的重要途徑,且低濃度H2O2能夠提高種胚線粒體AsA-GSH循環(huán)的抗氧化能力,而高濃度H2O2則會(huì)降低其抗氧化能力,這與老芒麥[15-16]、大豆[20,36]和燕麥[21]等植物種子老化研究的發(fā)現(xiàn)類似。

    研究發(fā)現(xiàn),外源H2O2濃度高低及其處理時(shí)間長(zhǎng)短均對(duì)植物種子的萌發(fā)及幼苗生長(zhǎng)具有重要影響[14]。本試驗(yàn)中,同一引發(fā)時(shí)間下,燕麥種胚線粒體內(nèi)SOD,APX,MDHAR,DHAR和GR活性均隨著引發(fā)時(shí)間的延長(zhǎng)呈先升后降的趨勢(shì),而其H2O2和MDA含量則隨著引發(fā)時(shí)間的延長(zhǎng)呈上升趨勢(shì),這說明外源H2O2對(duì)燕麥種胚線粒體AsA-GSH循環(huán)抗氧化能力的影響與其引發(fā)時(shí)間有密切關(guān)系。引發(fā)6 h的燕麥種胚線粒體內(nèi)SOD,DHAR和GR活性在濃度為1.92 mol·L-1時(shí)保持最高水平,其APX和MDHAR活性在濃度為3.84 mol·L-1仍保持最高水平,而引發(fā)18 h的燕麥種胚線粒體SOD,APX,MDHAR,DHAR及GR活性均在濃度為0.96 mol·L-1時(shí)才保持最高水平,這說明引發(fā)時(shí)間越短,造成燕麥種胚線粒體AsA-GSH循環(huán)抗氧化能力下降的H2O2濃度就越高,而引發(fā)時(shí)間越長(zhǎng)則相反。因此,外源H2O2引發(fā)的時(shí)間越長(zhǎng)則引起燕麥種子活力顯著(P<0.05)下降的H2O2濃度就越低[14]。

    4 結(jié)論

    外源H2O2引發(fā)造成了燕麥種胚線粒體H2O2和丙二醛含量的升高,而種胚線粒體AsA-GSH循環(huán)對(duì)燕麥種子在外源H2O2引發(fā)下清除H2O2發(fā)揮著重要作用,且其抗氧化能力與外源H2O2的引發(fā)濃度和時(shí)間具有密切關(guān)系,低濃度(<0.96 mol·L-1)外源H2O2引發(fā)時(shí)間越短,其抗氧化酶活性的提升幅度就越小,引發(fā)時(shí)間越長(zhǎng),其抗氧化酶活性的提升幅度就越大;高濃度(>3.84 mol·L-1)外源H2O2引發(fā)時(shí)間越短,其抗氧化酶活性的下降就越慢,而引發(fā)時(shí)間越長(zhǎng),其抗氧化酶活性的下降則越快。

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