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    近端與遠(yuǎn)端胃癌患者胃內(nèi)微生態(tài)結(jié)構(gòu)和多樣性差異的對比研究

    2022-09-19 12:31:46白艷麗鄭玉峰田笑笑
    實(shí)用癌癥雜志 2022年9期
    關(guān)鍵詞:桿菌屬菌門遠(yuǎn)端

    白艷麗 鄭玉峰 田笑笑

    胃癌為常見惡性疾病。隨著人們的生活水平的提高,該病的發(fā)病率與死亡率呈上升趨勢,嚴(yán)重威脅人們生命健康[1]。日本胃癌協(xié)會根據(jù)胃彎大小的分點(diǎn)連線,將胃癌分為近端胃癌、中段胃癌、遠(yuǎn)端胃癌,其中近端與遠(yuǎn)端胃癌更常見[2]。多數(shù)胃癌的發(fā)生由多因素導(dǎo)致,如環(huán)境、基因、吸煙、不良飲食習(xí)慣等飲食。但隨著基因擴(kuò)增測序技術(shù)的發(fā)展,大量研究表明胃內(nèi)微生態(tài)與胃癌的發(fā)生發(fā)展關(guān)系密切[3]。為此,分析近端、遠(yuǎn)端胃癌患者的胃內(nèi)微生態(tài)結(jié)構(gòu)與多樣性的特征,探尋近端、遠(yuǎn)端胃癌患者胃內(nèi)微生態(tài)特異菌種,為臨床治療提供參考信息,現(xiàn)報(bào)告如下。

    1 資料與方法

    1.1 一般資料

    選擇2019年7月至2019年12月經(jīng)我院收治的胃癌患者83例,其近端胃癌患者55例,遠(yuǎn)端胃癌患者28例。本文經(jīng)醫(yī)學(xué)倫理委員會批準(zhǔn)開展。納入標(biāo)準(zhǔn):①符合中華消化雜志《中國早期胃癌篩查流程專家共識意見(草案2017年,上海)》中相關(guān)胃癌診斷標(biāo)準(zhǔn),且經(jīng)病理學(xué)證實(shí)為近端、遠(yuǎn)端胃癌者[4];②無消化系統(tǒng)疾病或相關(guān)胃癌癥狀史;③無心血管、內(nèi)分泌、呼吸道等系統(tǒng)性疾病者;④入組前30 d內(nèi)未服用抑酸、微生態(tài)制劑、抗生素等藥物者;⑤患者在知曉研究目的的情況下,自愿加入本研究,簽署同意書。排除標(biāo)準(zhǔn):①呼氣試驗(yàn)結(jié)果顯示為幽門螺旋桿菌感染為陽性者;②有家族腫瘤史。55例近端胃癌患者中,男性39例,女性16例;年齡54~68歲,平均(60.21±6.79)歲;28例遠(yuǎn)端胃癌患者中,男性20例,女性8例;年齡51~66歲,平均(57.23±7.65)歲;兩組患者一般資料(性別、年齡等)比較無顯著差異(P>0.05),有可比性。

    1.2 方法

    1.2.1 采集樣本及處理 取樣前囑咐患者行胃鏡檢查前8 h禁飲禁食,早晨不可刷牙。將胃鏡頭完全置入胃內(nèi),用150 mL無菌生理鹽水沖洗胃壁,再將沖洗液全部吸入無菌吸引瓶內(nèi),取出吸引瓶,放入冰盒內(nèi),將收集好樣本送于實(shí)驗(yàn)室,將樣本在生物安全柜中分為3部分,并做標(biāo)記,將其中2份放入冰箱中保存?zhèn)溆茫硪环荽?。采用差速離心和超濾法將樣本細(xì)胞與細(xì)菌分離。將50 mL無菌離心管裝滿樣本混勻,用4 ℃低溫低速離心機(jī),離心10 min,除沉淀,在生物安全柜內(nèi)將上清液移入新50 mL離心管內(nèi),將上清液在5 μm無菌濾膜上濾過,僅留濾液,再將濾液濾過0.22 μm無菌濾膜,保留濾膜,濾膜上有富集的樣本細(xì)菌,于生物安全柜內(nèi),用剪刀將處理好后的濾膜剪碎為0.25 cm2碎片,裝入無菌培養(yǎng)皿中,便于樣本微生物提取DNA。

    1.2.2 DNA提取 用Mo-BIO Power-Soil DNA isolation kit試劑盒提前DNA。將處理后的濾膜碎片用無菌鑷子放入PowerBead Tubes中混勻,在65 ℃條件下10 min金屬浴后渦旋PowerBead Tubes 2 min;再將70 μL Solution C1加入PowerBead Tubes中,充分混勻后,再渦旋振蕩15 min。將PowerBead Tubes室溫高速離心30 s,移500 μL上清液至2 mL收集管內(nèi),并加入250 μL Solution C2,振蕩5 s后,在4 ℃條件下孵育5 min,離心1 min,取600 μL上清液于收集管內(nèi),加入200 μL Solution C3,振蕩5 s后,在4 ℃條件下孵育5 min,離心2 min,取約740 μL上清液至2 ml收集管內(nèi);加1200 μL Solution C4,振蕩5 s后;將670 μL上述混合液移至Spin Filter中,室溫高速離心1min,去除流過液,DNA結(jié)合于柱上;再重復(fù)3次DNA上柱步驟,則混合液所有DNA上柱;加500 μL Solution C5至SpinFilter內(nèi),離心1 min,去除流過液,再空離心2 min,完全分離SolutionC5;將Spin Filter 置入1.5 mL DNA LoBind tube 上,將30 μL UltraPure DNase/RNase-free ditlledl water加入到SpinFilter白色濾膜中心,孵育2 min后離心1 min,DNA樣本洗脫于DNA Lo-Bind tube 溶液內(nèi)備用。將提取的1 μL樣本基因組DNA經(jīng)Qubit dsDNA HS Assay kits試劑盒處理后,采用Qubit熒光定量儀檢測其濃度;再取樣本DNA 3 μL,使用0.8%瓊脂糖凝膠電泳,25 min,檢驗(yàn)提取DNA的完整性。

    1.2.3 基因擴(kuò)增 將16S rRNA基因V3-V4可變區(qū)視為PCR擴(kuò)增靶標(biāo)。引物:338F(5'-ACTCCTACGGGAGGCAGCAG-3')和806R (5'-GGACTACHVGGGTWTCTAAT-3')。反應(yīng)體系(30 μL):PCR MasterMix 15 μL;Primer 3 μL;DNA 10 μL;ddH2O 2 μL。反應(yīng)程序?yàn)?95 ℃預(yù)變性3 min;95 ℃變性30 s;55 ℃退火30 s;72 ℃延伸45 s;執(zhí)行27個循環(huán),72 ℃維持10 min。

    1.2.4 高通測序和生信分析 用Qubit 2.0 DNA Assay Kit對處理后的DNA進(jìn)行定量的PCR擴(kuò)增,按1∶1混合體積上機(jī)開展測序。在核酸多聚酶作用下對產(chǎn)物突出端修為鈍端。將3'端腺苷酰作用后的DNA片段與PE頭相連。連接后的產(chǎn)物經(jīng)核酸純化柱、瓊脂電泳進(jìn)行分離,并取其適中段,用illumina 二代測序系統(tǒng)對兩端有連接頭的DNA段經(jīng)10循環(huán)PCR開展富集,組成為300~400 bp插入小片段庫,再完成后續(xù)上機(jī)測序操作。利用系統(tǒng)將圖像轉(zhuǎn)換成數(shù)據(jù),并識別分析。在Miseq序列標(biāo)記上標(biāo)簽、引物、接頭。用軟件對引物接頭序列進(jìn)行去除后,根據(jù)具有重疊關(guān)系的PE序列特性,把成雙序列拼為一條完整序列,再對拼接后的序列進(jìn)行識別、區(qū)分樣本數(shù)據(jù),再將得到的數(shù)據(jù)進(jìn)行質(zhì)控過濾留其有效數(shù)據(jù)。在PCR反應(yīng)過程中,一些不完整的擴(kuò)增產(chǎn)物經(jīng)循環(huán)擴(kuò)增,與序列相近的同源板一同退火,繼續(xù)延伸得更雜合DNA片段稱為“嵌合體”;同時會產(chǎn)生非特異性擴(kuò)增序列。為此,用USEARCH軟件剔除非特異性序列,并校正測序,檢測嵌合體。刪除嵌合體后序列可用BLAST法與參考數(shù)據(jù)庫中有代表性序列對比。剔除低于閾值的靶區(qū)外序列。

    操作分類單元(operational taxonomic units,OTUs),將所有序列聚類后,按照序列與序列的相似性分為不同OTUs。并將相似性閾值設(shè)為97%進(jìn)行分化。用Bergey分類法將菌群分為界、門、綱、目、科、屬水平。

    1.2.5 多樣性分析 微生物多樣性通過單樣本多樣性分析完成,其中常用方法包括Alpha多樣性,α-多樣性,用兩者對菌落中物種的豐富度與多樣性進(jìn)行分析。校正OTU數(shù)目,評估菌落的豐富度指數(shù)(包括Chaol、ACE指數(shù))與多樣性指數(shù)(包括Shannon、Simpson指數(shù))。再用QIIME軟件內(nèi)的PCoA作圖,分析樣本見差距。

    2 結(jié)果

    2.1 兩組樣本α-多樣性參數(shù)比較

    兩組樣本經(jīng)過濾后平均共獲得序列30256條,用于構(gòu)建OTUs,取得分類Tags數(shù)平均為24201條。兩組患者總數(shù) Tags、分類單元tags、Total OTUS數(shù)目、Species OTUS數(shù)目、Genus OTUS數(shù)目、Species Chao 1、Genus Chao 1、Species Shannon指數(shù)均無顯著差異(P>0.05),近端胃癌組Genus Shannon指數(shù)水平高于遠(yuǎn)端胃癌組(P<0.05),見表1。

    表1 兩組樣本α-多樣性參數(shù)比較

    2.2 胃癌患者胃內(nèi)相關(guān)細(xì)菌群落分類水平分析

    近端胃癌組胃內(nèi)相對豐度前8位菌門依次為:變形菌門為57.10%,泉古菌門為14.27%,擬桿菌門為8.29%,厚壁菌門為7.86%,放線菌門為5.29%,疣微菌門為3.00%,酸桿菌門為2.25%,芽單胞菌門為0.86%。遠(yuǎn)端胃癌組胃內(nèi)相對豐度前8位菌門依次為:變形菌門為56.42%,泉古菌門為14.11%,擬桿菌門為8.12%,厚壁菌門為7.79%,放線菌門為5.24%,疣微菌門為3.03%,酸桿菌門為2.27%,芽單胞菌門為0.84%。再分析近、遠(yuǎn)端胃癌組樣本胃內(nèi)相關(guān)細(xì)菌群落門水平構(gòu)成情況,基于相對豐度在前10位的菌門,構(gòu)建了樣本門水平的物種相對豐度柱形圖,兩組胃內(nèi)細(xì)菌群落中,變形菌門豐度比例最高。分析近、遠(yuǎn)端胃癌患者胃內(nèi)細(xì)菌群落在屬水平的構(gòu)成情況,近端胃癌豐度較高的菌屬依次為:不動桿菌屬占5.22%,斯瓦尼菌屬占3.74%,普里沃菌屬占2.43%,嗜鹽菌屬占1.78%,擬桿菌屬占1.61%,乳桿菌屬占1.52%,韋榮球菌占1.23%,螺桿菌屬占1.24%,棒桿菌屬占0.75%;遠(yuǎn)端胃癌:不動桿菌屬占5.34%,斯瓦尼菌屬占3.73%,普里沃菌屬占2.41%,嗜鹽菌屬占1.75%,擬桿菌屬占1.63%,乳桿菌屬占1.50%,韋榮球菌占1.24%,螺桿菌屬占1.25%,棒桿菌屬占0.81%;兩組胃內(nèi)細(xì)菌屬水平相對豐度無明顯差異。

    2.3 兩組樣本細(xì)菌群落PCoA分析

    近端、遠(yuǎn)端胃癌組胃內(nèi)相關(guān)細(xì)菌群落構(gòu)成的PCoA分析顯示,橫坐標(biāo)PC1變化率解釋為12.83%,縱坐標(biāo)PC2變化率解釋為8.01%;經(jīng)PCoA分析無法將近端、遠(yuǎn)端胃癌組相關(guān)細(xì)菌群落結(jié)構(gòu)有效區(qū)分,見圖1。

    圖1 近端、遠(yuǎn)端胃癌組患者胃內(nèi)細(xì)菌群落結(jié)構(gòu)的PCoA分析

    3 討論

    3.1 本研究意義

    近年來,隨著胃內(nèi)幽門螺旋桿菌和其他螺桿菌屬的發(fā)現(xiàn),及隨后進(jìn)行一系列人體與胃內(nèi)幽門螺旋桿菌的深入研究證實(shí),人體內(nèi)胃內(nèi)環(huán)境與腸道環(huán)境具有較強(qiáng)的相似性,均有特殊微生物生存環(huán)境[5]。目前多數(shù)研究對胃內(nèi)菌群分析,并證實(shí)機(jī)體胃內(nèi)除幽門螺旋桿菌外,還有其他大量復(fù)雜的菌群結(jié)構(gòu)存在[6]。胃癌的發(fā)生發(fā)展是由多因素共同作用下導(dǎo)致,如遺傳、環(huán)境因素等。近端、遠(yuǎn)端胃癌患者胃內(nèi)真實(shí)的菌群構(gòu)成情況并不清楚。此外,目前對近端、遠(yuǎn)端胃癌的系統(tǒng)性研究較少見,多集中于口腔、胃內(nèi)微生物對胃癌的影響。目前已有研究在正常人群與胃癌患者的胃內(nèi)微生物進(jìn)行分析證實(shí),胃癌患者與正常受試者胃內(nèi)菌落結(jié)構(gòu)、多樣性均有明顯差異[7]。表明,胃癌患者胃內(nèi)菌群結(jié)果與多樣性正發(fā)生改變,且與病情發(fā)展有關(guān)[8]。故本研究設(shè)計(jì)本課題,通過16SrDNA高通量測序和生物信息學(xué)分析方法分析近端、遠(yuǎn)端胃癌患者胃內(nèi)微生物群落構(gòu)成和多樣性差異。

    3.2 近端與遠(yuǎn)端胃癌患者胃內(nèi)微生態(tài)結(jié)構(gòu)與多樣性分析

    采用16SrDNA高通量測序進(jìn)行胃內(nèi)相關(guān)細(xì)菌群落的高通量測序,質(zhì)控所得數(shù)據(jù),對合格序列行OTUs注釋與樣本間α多樣性分析,總得來說,胃內(nèi)共有鑒定多個菌門的細(xì)菌種系型[9]。α多樣性分析結(jié)果顯示,兩組患者總數(shù) Tags、分類單元tags、OTUS數(shù)目、 Chao 1、Species Shannon指數(shù)均無顯著差異,近端胃癌組Genus Shannon指數(shù)水平高于遠(yuǎn)端胃癌組(P<0.05);表明近端、遠(yuǎn)端胃癌組患者菌群總數(shù)、種類多樣性無明顯差異,且具有較高的豐富度[10]。近端胃癌組相對豐度大于1%細(xì)菌門共7種,包括變形菌門為57.10%,泉古菌門為14.27%,擬桿菌門為8.29%,厚壁菌門為7.86%,放線菌門為5.29%,疣微菌門為3.00%,酸桿菌門為2.25%。遠(yuǎn)端胃癌組相對豐度大于1%細(xì)菌門共7種,包括變形菌門為56.42%,泉古菌門為14.11%,擬桿菌門為8.12%,厚壁菌門為7.79%,放線菌門為5.24%,疣微菌門為3.03%,酸桿菌門為2.27%。兩組相對豐度大于1%細(xì)菌門均為共同擁有菌。此外對兩組患者胃內(nèi)菌落屬水平相對豐度分析,顯示相對豐度前5位為近端胃癌組:不動桿菌屬占5.22%,斯瓦尼菌屬占3.74%,普里沃菌屬占2.43%,嗜鹽菌屬占1.78%,擬桿菌屬占1.61%。遠(yuǎn)端胃癌:不動桿菌屬占5.34%,斯瓦尼菌屬占3.73%,普里沃菌屬占2.41%,嗜鹽菌屬占1.75%,擬桿菌屬占1.63%。兩組胃內(nèi)細(xì)菌屬水平相對豐度無明顯差異。本研究對胃內(nèi)細(xì)菌種屬的分類后發(fā)現(xiàn)患者胃內(nèi)有大量細(xì)菌種型無法歸類于目前已知細(xì)菌序列,對于這些未知細(xì)菌種屬的生物學(xué)特性與臨床作用目前尚不清楚。此外,近端胃癌與遠(yuǎn)端胃癌者胃內(nèi)菌群測序結(jié)果總體對比,胃內(nèi)菌落在物種門、屬等水平相對豐度值無顯著差異。有研究對不同地域、種族的人群胃內(nèi)菌群進(jìn)行分析,顯示胃內(nèi)菌群構(gòu)成極其相似,其中分別77.4%、79.8%的克隆片段可共享的[11]。還有學(xué)者對10例胃癌患者胃內(nèi)菌群構(gòu)成行多態(tài)技術(shù)與16SrDNA測序技術(shù)聯(lián)合分析,認(rèn)為胃癌患者與消化不良胃黏膜正?;颊呶竷?nèi)菌群構(gòu)成比較結(jié)果顯示,其無明顯差異[12]。我們利用PCoA聚類分析方法對近端、遠(yuǎn)端胃癌患者胃內(nèi)總體細(xì)菌群落進(jìn)行比對分析后顯示兩組間的胃內(nèi)細(xì)菌群落構(gòu)成和多樣性較相似。進(jìn)一步說明近端、遠(yuǎn)端胃內(nèi)菌群構(gòu)成和多樣性相似。

    研究為樣本量小的單中心研究,需進(jìn)一步擴(kuò)大樣本量證實(shí)本研究結(jié)論。

    綜上所述,近端與遠(yuǎn)端胃癌患者胃內(nèi)微生態(tài)結(jié)構(gòu)和多樣性無顯著差異,且據(jù)有較高相似。

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