王慧 馬藝文 喬正浩 常彥彩 術(shù)琨 丁海萍 聶永心 潘光堂
(1.四川農(nóng)業(yè)大學(xué)玉米研究所,成都 611130;2.通化市農(nóng)業(yè)科學(xué)研究院,通化 135007;3.山東農(nóng)業(yè)大學(xué)作物生物學(xué)國家重點實驗室,泰安 271018)
交替氧化酶(alternative oxidase,AOX)廣泛存在于真菌、原生生物以及高等植物中[1],1987年首次從枯苞(Sauromatum guttatum)中分離出AOX,隨后在擬南芥、煙草、黃瓜、葡萄、玉米、大豆、水稻等多個物種中均發(fā)現(xiàn)了AOX基因,且以家族形式存在[2]。系統(tǒng)發(fā)育分析表明,AOX屬于二鐵羧酸氧化酶,來源于一種原始氧化還原酶,該酶能夠清除地球生命發(fā)生早期處于高度還原狀態(tài)的大氣中氧氣[3],隨著長時期的共生進化,演化為線粒體中的AOX 酶[4-7]。
前人研究表明,AOX參與了植物線粒體內(nèi)膜呼吸鏈中的抗氰呼吸途徑,具有抗氰化物活性,因此又被稱為抗氰氧化酶[8]。AOX不僅在維持植物正常生長代謝速率和代謝平衡中發(fā)揮了重要作用[9],而且還在抑制自由基產(chǎn)生,植物抵御逆境脅迫中發(fā)揮著重要作用[10]。Wanniarachchi等[11]分別對水稻和大麥進行鹽脅迫和干旱脅迫處理后,AOX1a和AOX1d表達水平顯著增強。Wang等[12]對擬南芥進行低溫脅迫處理后,AOX1a和AOX1c的表達量顯著增加。Panda等[13]對煙草進行鋁脅迫處理后,發(fā)現(xiàn)AOX在鋁脅迫耐受中起關(guān)鍵作用,具有增強呼吸能力、減少線粒體氧化應(yīng)激負擔(dān)和提高煙草細胞生長的能力。此外,在鎘、鉻環(huán)境下,煙草、槐葉萍[14]和擬南芥[15]中AOX的轉(zhuǎn)錄和翻譯水平同樣均有所提高。Liao等[16]將番茄葉片接種煙草花葉病毒(TMV)后,SlAOX1a的轉(zhuǎn)錄水平顯著增強,提高了對TMV的抵御能力。大量研究報道均證實了在植物體受到干旱、鹽堿、溫度、光照、重金屬等非生物脅迫時,AOX在響應(yīng)這些逆境脅迫中發(fā)揮了重要作用[11,17-23]。
為了進一步探究AOX的生理功能及其基因家族的基本特征,本研究針對玉米(Zea mays)、水稻(Oryza sativa)、擬南芥(Arabidopsis thaliana)、二穗短柄草(Brachypodium distachyon)、番茄(Solanum lycopersicum)、馬鈴薯(Solanum tuberosum)、高粱(Sorghum bicolor)和大豆(Glycine max)8個物種,利用生物信息手段,開展了AOX基因家族的進化、基因結(jié)構(gòu)、保守基序、順式作用元件和功能注釋等系列分析工作。玉米(Zea mays L.)是重要的糧食、飼料、能源和工業(yè)原料作物,同時也是當(dāng)今世界上種植面積最大的禾谷類作物,在保障我國國民經(jīng)濟發(fā)展和國家糧食安全中發(fā)揮了不可估量的作用[24]。目前關(guān)于玉米中AOX基因家族的生理功能鮮有報道,因此,本研究開展了玉米與其他7個物種AOX基因家族的共線性分析,同時對玉米自交系B73苗期進行了高溫、低溫、干旱、鹽堿脅迫處理,擬通過對玉米AOX基因家族表達模式的分析,為進一步挖掘AOX基因家族在玉米應(yīng)對非生物脅迫中的功能解析提供參考依據(jù)。
選取玉米自交系B73為供試材料,種子經(jīng)消毒后置于裝有營養(yǎng)土的苗缽中,在晝夜溫度為28℃/25℃,光暗周期為 14 h /10 h,相對濕度為70%的人工氣候培養(yǎng)箱中培養(yǎng)至三葉一心期時進行干旱(20% PEG6000溶液)、鹽堿(200 mmol/L NaCl+25 mmol/L Na2CO3)、高溫(40℃)、低溫(4℃)分別處理0、2、4、6、12和24 h。采集對照組與所有處理組根、莖、葉(均為3次重復(fù)),液氮速凍后,轉(zhuǎn)移至-80℃冰箱保存?zhèn)溆谩?/p>
1.2.1 AOX基因家族的鑒定 通過Ensembl Plant數(shù)據(jù)庫(http://plants.ensembl.org/index.html)查找玉米、水稻、擬南芥、二穗短柄草、番茄、馬鈴薯、高梁和大豆的蛋白序列、CDS、genome、GFF、cDNA、GTF文件。從Pfam數(shù)據(jù)庫(http://pfam.xfam.org/)內(nèi)下載植物AOX基因家族的HMM模型(PF0178)后,通過Hmmsearch鑒定各個物種中AOX基因家族的成員,將搜索閾值設(shè)為E < 1e-5,篩選出具有AOX結(jié)構(gòu)域的蛋白序列。利用植物轉(zhuǎn)錄因子數(shù)據(jù)庫 PlantTFDB(http://planttfdb.gao-lab.org/)、HMMER v.3.2.1(https://www.ebi.ac.uk/Tools/hmmer/search/hmmscan)和Pfam數(shù)據(jù)庫進一步驗證蛋白序列,整合上述結(jié)果,進而得到8個物種中鑒定到的非冗余蛋白序列。利用ProtParam(https://web.expasy.org/protparam/)估算AOX蛋白序列的分子量(Mw)、理論等電點(pI)、GRAVY、不穩(wěn)定性指數(shù)(II)。同時,將獲得的序列提交至CELLO網(wǎng)絡(luò)服務(wù)器(http://cello.life.nctu.edu.tw/)進行AOX蛋白的亞細胞定位預(yù)測。
1.2.2 多序列比對和系統(tǒng)發(fā)育分析 使用ClustalX v.1.83(默認參數(shù))對玉米、水稻、擬南芥、二穗短柄草、番茄、馬鈴薯、高梁和大豆8個物種AOX蛋白序列進行多重序列比較,利用MEGA X將比對后的序列構(gòu)建無根系統(tǒng)進化樹,根據(jù)進化關(guān)系對系統(tǒng)進化樹進行分組。
1.2.3 基因結(jié)構(gòu)和保守基序分析 從基因組注釋文件中獲取玉米、水稻、擬南芥、二穗短柄草、番茄、馬鈴薯、高梁和大豆8個物種AOX基因內(nèi)含子-外顯子結(jié)構(gòu),遞交到基因結(jié)構(gòu)顯示服務(wù)器GSDS(http://gsds.cbi.pku.edu.cn/),并對所獲得的結(jié)果進行統(tǒng)計分析。利用在線網(wǎng)絡(luò)服務(wù)器MEME(http://memesuite.org/tools/meme)識別AOX蛋白中所包含的保守基序(設(shè)置:最佳的motif 8,motif長度6-50,其它參數(shù)默認)。
1.2.4 共線性分析 不同物種基因之間的共線性分析,可以為研究物種進化關(guān)系提供參考依據(jù)。利用MCScanX鑒定玉米與其它7個物種(水稻、擬南芥、二穗短柄草、番茄、馬鈴薯、高梁、大豆)之間AOX的同源基因,同時利用Circos0.67工具可視化玉米與上述物種AOX基因之間的共線性關(guān)系。利用PAML軟件包的codeml程序計算Ka/Ks比值,Ka/Ks≤ 1表示純化選擇作用,Ka/Ks > 1表示正向選擇。進化時間計算公式為T =(Ks/2λ)×10-6Mya,(λ =6.5×10-9)。
1.2.5 順式作用元件和miRNA靶位點預(yù)測 在玉米、水稻、擬南芥、二穗短柄草、番茄、馬鈴薯、高梁和大豆8個物種的基因組文件中獲得轉(zhuǎn)錄起始位點上游1.5 kb序列,遞交到PlantCARE數(shù)據(jù)庫(http://bioinformatics.psb.ugent.be/webtools/plantcare/html/)開展順式作用元件的鑒定工作。將8個物種AOX的cDNA序列提交至psRNATarget(http://plant grn.noble.org/psRNATarget/),搜索miRbase中所有的玉米miRNA,進而識別候選miRNA靶標。
1.2.6 AOX蛋白質(zhì)的GO注釋分析 將玉米、水稻、擬南芥、二穗短柄草、番茄、馬鈴薯、高梁和大豆8個物種中的AOX蛋白序列提交至KOBAS數(shù)據(jù)庫(http://kobas.cbi.pku.edu.cn/kobas3/?t=1),進行AOX蛋白的GO(gene ontology)注釋分析,整合預(yù)測后獲得的GO號一一對應(yīng)到AOX基因中。將每個基因獲得的GO號提交至在線WEGO(https://wego.genomics.cn/),使用默認參數(shù)對AOX基因GO注釋分析進行可視化。
1.2.7 非生物脅迫條件下玉米AOX基因家族的表達分析 RNA的提取和cDNA的合成分別采用東盛生物核酸純化試劑盒、康為世紀反轉(zhuǎn)錄試劑盒,并嚴格按照說明書進行操作完成。定量引物通過NCBI網(wǎng)站設(shè)計后,由青島擎科生物技術(shù)有限公司合成(表1)。以玉米18S基因作為內(nèi)參,通過熒光定量PCR分析玉米AOX基因家族在4種脅迫處理中的表達情況。采用艾科瑞生物的SYBR?GREEN Pro Taq HS預(yù)混型qPCR試劑盒(含ROX)進行熒光定量PCR擴增,擴增反應(yīng)使用山東農(nóng)業(yè)大學(xué)作物生物學(xué)國家重點實驗室ABI Quantitative PCRQ6-1熒光定量PCR儀。獲得定量數(shù)據(jù)后,使用Excel、Prism軟件和R-pheatmap包進行數(shù)據(jù)分析和作圖。
表1 引物序列Table1 Prime Sequence
本研究在8個物種中共鑒定出35條編碼AOX蛋白保守結(jié)構(gòu)域的基因,其中在玉米、水稻、擬南芥、二穗短柄草、番茄、馬鈴薯、高粱和大豆中分別鑒定到4、4、5、5、3、6、4和4個AOX基因。8個物種中AOX蛋白的理化性質(zhì)分析結(jié)果如表2所示,玉米、水稻、擬南芥、二穗短柄草、番茄、馬鈴薯、高粱和大豆的AOX基因分別主要分布在2號、2號和4號、3號、5號、8號、8號、6號、8號染色體上,具有成簇分布的特征。在這8個物種中,AOX蛋白的大小變異范圍為174-753 aa,平均長度為353 aa。AOX蛋白的分子質(zhì)量變異范圍為19.68-85.44 kD,等電點pI值介于5.44-9.49。GRAVY值介于-0.38-0.02,除StAOX_PGSC0003DMT400019710之外,其他AOX蛋白具有負重力值,表明AOX蛋白具有親水特性。通過對AOX蛋白的亞細胞定位預(yù)測,發(fā)現(xiàn)有24個AOX主要在細胞質(zhì)中表達,占總數(shù)的68.57%,其余11個AOX基因在周質(zhì)空間表達。
表2 8個物種AOX基因家族的鑒定及理化性質(zhì)Table 2 Identification and characteristic features of AOX gene family in eight species
將本研究鑒定到的35個AOX蛋白序列以鄰接法構(gòu)建無根系統(tǒng)進化樹,根據(jù)系統(tǒng)進化關(guān)系,35個AOX蛋白可劃分為5個亞家族(圖1)。不同亞家族包含的AOX蛋白數(shù)量變化很大,D亞家族擁有最多數(shù)目的AOX(10個),其次是E亞家族(8個),而C家族僅有3個蛋白質(zhì),是最小的亞家族。每個分支都包含至少2個物種AOX蛋白,表明這些物種的AOX蛋白是由共同祖先進化而來,并且在每個物種中都能夠獨立擴張。玉米的AOX基因主要分布在A、B亞家族,且這兩個亞家族中包含水稻、二穗短柄草、高粱的AOX基因,表明玉米與水稻、二穗短柄草和高粱有較近的親緣關(guān)系。
圖1 8個物種AOX基因的系統(tǒng)進化樹Fig.1 Phylogenetic analysis of AOX in eight species
外顯子-內(nèi)含子結(jié)構(gòu)變異是研究基因家族進化的重要依據(jù)。本研究35個AOX基因的外顯子數(shù)目為1-13個,外顯子長度介于22-677 bp,平均長度為258.74 bp。內(nèi)含子長度變化顯著高于外顯子,介于46-5 874 bp,平均長度為375.07 bp。E亞家族外顯子平均數(shù)目最多,4.85個外顯子;其次是D亞家族,平均含有4.8個外顯子。D亞家族是最大的亞家族,外顯子數(shù)目變異范圍大,擁有較高豐度的內(nèi)含子數(shù)目,同時其基因結(jié)構(gòu)比其它亞家族更為復(fù)雜。在系統(tǒng)進化樹中,位于相同亞家族的成員具有相似的外顯子-內(nèi)含子結(jié)構(gòu)(圖2)。
由35個AOX蛋白保守結(jié)構(gòu)域鑒定結(jié)果(圖2)表明,共預(yù)測到了8個基序,其中基序1、2、3在35個AOX蛋白質(zhì)中均預(yù)測到,基序1和基序8分別位于N端和C端。聚集在同一個亞家族中的AOX蛋白更有可能具有相同的基序組成,表明相同亞家族的成員具有相似的進化歷程和生物學(xué)功能。
圖2 AOX基因家族的系統(tǒng)進化關(guān)系、基因結(jié)構(gòu)和保守基序分析Fig.2 Phylogenetic relationship,gene structure,and conserved motifs analysis of AOX
玉米與其它7個物種AOX基因的共線性關(guān)系分析結(jié)果(圖3)表明,玉米與擬南芥、水稻、高梁、二穗短柄草、番茄、大豆、馬鈴薯的AOX同源基因分別為1、3、4、4、1、2、2個。Ka/Ks表示非同義替換位點替換次數(shù)(Ka)與同義替換位點替換次數(shù)(Ks)的比值,可以推斷基因發(fā)生復(fù)制的時間和受到的進化壓力。所有同源基因比對的Ka/Ks的值均小于1,表明AOX基因在進化過程中受到強烈的純化選擇壓力(表3)。
表3 玉米AOX和其他7個物種之間直系同源AOX蛋白的Ka / KsTable 3 Ka/Ks for orthologous AOX proteins between Z.mays and other seven species
圖3 玉米與其他物種AOX基因的共線性分析Fig.3 Collinearity of AOX genes between maize and other species
本研究順式作用元件鑒定結(jié)果如圖4所示,在35個AOX基因中鑒定到1 215個調(diào)控元件與晝夜節(jié)律相關(guān),其中大量順式作用元件與植物生長調(diào)控、不同組織和時期的特異性表達、激素響應(yīng)、光響應(yīng)和非生物脅迫響應(yīng)等相關(guān)。本研究共鑒定到43個功能性順式調(diào)控元件,其中參與細胞周期調(diào)控的MSA-like調(diào)控元件僅在2個基因中發(fā)現(xiàn)。在多數(shù)AOX基因中發(fā)現(xiàn)ABRE(響應(yīng)ABA,27個基因)、CGTCA-motif(響應(yīng) MeJA,28個基因)、TGACG-motif(響應(yīng)MeJA,28個基因)和G-box(響應(yīng)光,6個基因)等作用元件。此外,還發(fā)現(xiàn)了多個響應(yīng)脅迫的調(diào)控因子:在35個AOX基因中鑒定到62個傷口響應(yīng)相關(guān)的WUN-motif,7個AOX基因中鑒定到9個響應(yīng)低溫脅迫的LTR調(diào)控元件,16個AOX基因中鑒定到20個與干旱脅迫相關(guān)的MBS作用元件。通過順式作用元件鑒定發(fā)現(xiàn),AOX基因在調(diào)控多種應(yīng)激響應(yīng)和信號轉(zhuǎn)導(dǎo)過程中具有潛在功能。
圖4 AOX基因啟動子區(qū)域順式調(diào)節(jié)元件分析Fig.4 Characterization of cis-acting regulatory elements in the promoter region of these identified AOX genes
miRNA是一類內(nèi)源性非編碼RNA,大小為21-25個核苷酸,它們通過引導(dǎo)靶標mRNA的裂解或抑制mRNA翻譯,在轉(zhuǎn)錄后控制基因表達。本研究miRNA靶位點預(yù)測結(jié)果如表4所示,共發(fā)現(xiàn)11對miRNA-AOX相互作用組合,其中涉及到8個miRNA靶向作用的11個AOX基因。在11對相互作用模式中,其中有4個miRNA通過裂解轉(zhuǎn)錄使AOX基因沉默、7個miRNA通過抑制mRNA翻譯靶向作用于AOX蛋白。
表4 psRNATarget在線工具鑒定靶向作用AOX基因的假定miRNATable 4 List of putative miRNAs targeted AOX genes identified by psRNATarget online tool
GO(gene ontology)具有包括細胞成分(cellular component)、生物過程(biological process)以及分子功能(molecular function)在內(nèi)的3個相對獨立部分,可以實現(xiàn)與基因相關(guān)的數(shù)據(jù)庫轉(zhuǎn)化、挖掘與整合。本研究共注釋到45個GO號,利用WEGO對AOX基因進行GO注釋分析結(jié)果如圖5所示,所有AOX蛋白參與植物細胞器、細胞膜、其它亞細胞結(jié)構(gòu)的構(gòu)成以及參與催化細胞內(nèi)代謝、細胞分裂和細胞凋亡過程;一部分AOX蛋白參與信號轉(zhuǎn)導(dǎo)、生物學(xué)調(diào)控、響應(yīng)逆境脅迫等途徑;只有極少數(shù)AOX蛋白參與植物生長發(fā)育和細胞分化過程。
圖5 AOX基因本體論(GO)注釋分析Fig.5 Gene ontology(GO)annotation analysis of AOX
在低溫、高溫、干旱、鹽堿脅迫條件下,玉米AOX基因家族在B73根、莖和葉片部位的qRTPCR分析結(jié)果如圖6所示,玉米AOX家族成員在不同的脅迫處理下呈現(xiàn)不同的表達特征。在低溫處理條件下,Zm00001d002434在葉片中呈現(xiàn)下調(diào)表達趨勢,但在根中呈現(xiàn)先下調(diào)表達,隨后顯著上調(diào)表達趨勢,處理后24 h時表達量最高;在高溫處理條件下,Zm00001d002434、Zm00001d002436在葉片中處理的5個時期均呈現(xiàn)上調(diào)表達,并且Zm00001d002436在葉片中表達水平較高。在干旱處理條件下,Zm00001d002434在葉片和莖中5個時期均呈現(xiàn)下調(diào)表達,在根部處理后12 h、24 h顯著上調(diào)表達;Zm00001d017727在根部處理后12 h、24 h顯著上調(diào)表達;Zm00001d002436表達水平不受干旱處理影響。在鹽堿處理條件下,Zm00001d017727在處理后6 h的葉片、處理后4 h的莖和處理后4 h、12 h的根中分別顯著上調(diào)表達;Zm00001d002434、Zm00001d002435在處理后12 h的根部顯著上調(diào)表達。研究結(jié)果表明玉米AOX基因家族在抵抗非生物脅迫中具有重要作用。
圖6 4種脅迫條件下玉米AOX家族表達分析Fig.6 Expression analysis of AOX family in maize under four stress condition
本研究首次在8個物種的全基因組范圍內(nèi)鑒定了AOX基因家族,利用生物信息學(xué)分析方法,對8個物種的AOX基因家族的基因結(jié)構(gòu)和功能兩個方面開展了一系列研究?;蚪Y(jié)構(gòu)方面,AOX的系統(tǒng)進化、染色體位置、外顯子-內(nèi)含子結(jié)構(gòu)以及保守基序組成等一系列分析結(jié)果驗證了聚類分析結(jié)果的準確性。此外,還發(fā)現(xiàn)AOX基因具有成簇分布的特征,如玉米AOX家族中Zm00001d002434、Zm00001d002435、Zm00001d002436, 大 豆 AOX家族中KRH42153、KRH42154,高粱AOX家族中EES12781、EES12782、EES12783,馬鈴薯AOX家族 中 PGSC0003DMT400019707、PGSC0003DMT40-0019708、PGSC0003DMT400019709、PGSC0003DMT400019710,二穗短柄草AOX家族中KQJ84389、KQ-J84390、KQJ84391等均呈現(xiàn)成簇分布的特征。
基因功能方面:(1)通過啟動子分析鑒定到43種順式作用元件,其中包括器官發(fā)生、激素合成、光以及生物和非生物脅迫響應(yīng)相關(guān)的順式作用元件,表明AOX基因可能在植物生長發(fā)育以及應(yīng)激反應(yīng)中發(fā)揮重要作用。這與前人報道AOX作用廣泛的研究結(jié)果一致[25],本研究利用生物信息手段驗證了前人研究結(jié)果的可靠性。(2)通過miRNA靶位點預(yù)測,鑒定出11個靶向作用于AOX基因的假定miRNA。其中,miR395c通過引導(dǎo)靶標mRNA裂解作用于玉米Zm00001d002435基因。研究表明,在擬南芥中miR395c可以延遲擬南芥種子萌發(fā)[26]。本研究中預(yù)測的miRNA為揭示AOX基因參與控制植物生長發(fā)育以及應(yīng)激反應(yīng)的轉(zhuǎn)錄后調(diào)控網(wǎng)絡(luò)提供寶貴線索。(3)通過AOX基因GO注釋分析驗證了前人報道的AOX作為應(yīng)激蛋白,可以保護線粒體(AOX)免受各種氧化應(yīng)激條件的影響[27-31]。本研究對三葉期玉米幼苗進行了不同的脅迫處理,AOX家族成員在4種脅迫條件下呈現(xiàn)不同的誘導(dǎo)表達特征,暗示它們與逆境脅迫應(yīng)答之間的密切關(guān)系。本研究發(fā)現(xiàn)Zm00001d002434基因在低溫脅迫、Zm00001d002436基因在高溫脅迫、Zm00001d002435基因在干旱脅迫、Zm00001d017727基因在鹽堿脅迫響應(yīng)中較為敏感,這與前人報道并不是所有的AOX基因響應(yīng)所有脅迫反應(yīng)結(jié)果一致[32]。因此,通過基因工程手段提高不同AOX的表達水平,有可能提高植物抵抗不同逆境脅迫的能力。
本研究在玉米、水稻、擬南芥、二穗短柄草、番茄、馬鈴薯、高粱和大豆8個物種的全基因組范圍內(nèi)共鑒定到35個AOX基因,8個物種的AOX基因均具有成簇分布的特征。AOX基因在進化過程中保持了較高的保守性。AOX基因具有參與植物生長發(fā)育,調(diào)控多種應(yīng)激響應(yīng)和信號轉(zhuǎn)導(dǎo)的潛在功能。非生物脅迫下玉米苗期根、莖、葉中AOX基因的表達情況驗證了AOX基因在植物生長發(fā)育以及應(yīng)激反應(yīng)中的重要作用。