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    CRISPRi 技術沉默MRP1 基因表達增強A549/DDP 細胞對TSN 的敏感性

    2022-08-12 09:13:10孟令雪郭旭孫新迪沈洋張偉偉楊清竹邵淑麗
    高師理科學刊 2022年7期
    關鍵詞:敏感性試劑盒載體

    孟令雪,郭旭,孫新迪,沈洋,張偉偉,2,楊清竹,2,邵淑麗,2

    (齊齊哈爾大學 1.生命科學與農(nóng)林學院,2.抗性基因工程與寒地生物多樣性保護黑龍江省重點實驗室,黑龍江 齊齊哈爾 161006)

    肺癌是最常見的癌癥類型之一.2020 年,全球約有1 930 萬例新癌癥病例,1 000 萬例癌癥死亡病例.肺癌的新發(fā)病例排第二位(11.4%),約有180 萬人因肺癌死亡(18%),其是癌癥死亡的主要因素[1].在肺癌治療中,化學療法被認為是所有階段的重要治療手段[2],但不可避免癌細胞出現(xiàn)耐藥性,進而導致化療失敗.多藥耐藥(MDR)常見的機制是癌細胞中ATP 結合盒(ABC)外排轉(zhuǎn)運蛋白的過表達.多藥耐藥相關蛋白1(MRP1)是第一個被發(fā)現(xiàn)的ABCC 亞家族轉(zhuǎn)運蛋白,也被稱為ABCC1[3],它是一個在人體組織中廣泛表達的谷胱甘肽轉(zhuǎn)運泵,通過將GSH 和化療藥物一同泵出細胞外發(fā)揮了保護細胞的作用[4-5].已有研究證實,MRP1的過表達會導致肺癌[6]、上皮性卵巢癌[7]、乳腺癌[8]、原發(fā)性神經(jīng)母細胞瘤[9]等腫瘤細胞產(chǎn)生耐藥性,進而影響患者的化療效果.因此,干擾MRP1的表達是逆轉(zhuǎn)癌細胞耐藥性的關鍵環(huán)節(jié).

    成簇的規(guī)則間隔短回文重復序列(CRISPR)-Cas(CRISPR 相關蛋白)是一種原核適應性免疫系統(tǒng),只存在于細菌及古生菌中,在真核生物及病毒中未發(fā)現(xiàn).目前使用最廣泛的是可用于編輯人類基因組的釀膿鏈球菌Ⅱ型CRISPR/Cas9[10].CRISPRi 工具采用滅活的Cas9(dCas9),其上的2 個核酸酶域發(fā)生突變,會與DNA 結合,但不具有DNA 切割活性.因此,該方法可以抑制基因轉(zhuǎn)錄,導致基因沉默[11].目前,應用CRISPRi 技術逆轉(zhuǎn)腫瘤細胞多藥耐藥的研究已經(jīng)逐漸深入[12].

    本研究利用CRISPRi 技術構建MRP1干擾表達載體,沉默A549/DDP 細胞內(nèi)MRP1基因的表達,檢測其對川楝素敏感性的變化,為肺癌耐藥性逆轉(zhuǎn)提供理論依據(jù).

    1 材料與方法

    1.1 材料與試劑

    人肺癌A549 細胞株,人肺癌順鉑耐藥株A549/DDP 細胞(北京腫瘤生物中心);川楝素(南通飛宇生物科技有限公司);RPMI-1640 培養(yǎng)基干粉(Gibico 公司);胎牛血清(以色列Biological Iudustries);質(zhì)粒pSPgRNA(Genscript 公司(Scotch Plams USA),由實驗室前期保存);E.coliDH5α,質(zhì)??焖傩×刻崛≡噭┖?,UNIQ-10 柱式總RNA 提取試劑盒,M-MuLV 第一鏈cDNA 合成試劑盒,全蛋白提取試劑盒,DNA Marker(1Kb),蛋白Marker,吖啶橙,EDTA(上海生工生物工程股份有限公司);Power SYBR?Green PCR Master Mix 試劑盒(Bioteke Corporation);MRP1,β-actin一抗,羊二抗(美國LI-COR 公司).

    1.2 實驗方法

    1.2.1 CRISPRi 技術構建MRP1干擾表達載體 根據(jù)靶點預測網(wǎng)站(http://zifit.partners.org///www.ZiFiT/CSquare9Nuclease.aspx)對MRP1基因啟動子區(qū)進行靶位點預測,結合轉(zhuǎn)錄因子預測軟件(http:genomatix.de/en/index.html)預測的MRP1啟動子上節(jié)能結合的轉(zhuǎn)錄因子確定3 個CRISPRi 干擾位點(見表1),每個片段的5′加BbsⅠ酶切位點序列送sangon 合成.

    表1 靶向MRP1 啟動子的3 個CRISPRi 干擾位點

    1.2.2 細胞培養(yǎng) 在37 ℃,5% CO2與飽和濕度環(huán)境下的細胞培養(yǎng)箱中,用含10%胎牛血清的RPMI-1640培養(yǎng)基培養(yǎng)人肺癌A549 和A549/DDP 細胞,根據(jù)細胞生長狀態(tài)進行傳代及后續(xù)處理,并收集細胞樣品用于實驗.

    1.2.3 qRT-PCR 檢測MRP1mRNA 的表達 收集各組細胞,使用Trizol 法提取總RNA,用TOYOBO 反轉(zhuǎn)錄試劑盒將RNA 反轉(zhuǎn)錄為cDNA,以cDNA 為模板,用TAKARA 熒光定量試劑盒進行qRT-PCR,反應體系為:5 μL 染料、2.5 μL 水、上下游引物共1 μL,cDNA 1.5 μL.選用GAPDH為內(nèi)參,上游引物序列為:5′-CAATGACCCCTTCATTGACC-3′,下游引物序列為:5′-GACAAGCTTCCCGTTCTCAG-3′.MRP1上游引物序列為:5′-GGGGTCCTCATTATCTTCTGG-3′,下游引物序列為:5′-TGGTCTCAGGGTAGGGGTTAG-3′.所得結果以2-△△Ct方法計算mRNA 相對表達量.

    1.2.4 Western blot 檢測MRP1 蛋白表達 將細胞接種到6 孔板中,待細胞生長到對數(shù)期,將干擾載體轉(zhuǎn)染進細胞中培養(yǎng)48 h,RIPA 裂解液提取總蛋白,SDS-PAGE 電泳后將蛋白樣電轉(zhuǎn)移至PVDF 膜上,5%脫脂奶封閉1.5 h,MRP1 一抗(均按1∶500 進行稀釋)4 ℃孵育過夜,PBST 洗膜3 次,兔二抗(1∶1 000稀釋)室溫避光孵育1 h,PBST 洗膜3 次,用Odyssey IR 成像儀避光掃描蛋白條帶,數(shù)據(jù)使用ImageJ 進行分析處理.

    1.2.5 MTT 法檢測細胞藥物敏感性 收集A549/DDP、轉(zhuǎn)染無關對照組及sgRNA-MRP1-2 組48 h 后的細胞,用完全培養(yǎng)液將收集到的細胞制成單細胞懸液并計數(shù),按照每孔5×105個的密度接種到96 孔板中,分別加入濃度為0,20,40,60,80,100 nmol/L 的川楝素作用24 h,在每孔中加入20 μL 5 mg/mL 的MTT繼續(xù)培養(yǎng)4 h,每孔加入180 μL DMSO,輕輕晃動后,靜置15 min.在單波長570 nm 處測定光吸收值,計算各藥物濃度下的細胞存活率,確定IC50值.細胞存活率(%)=實驗組吸光度值/對照組吸光度值×100%.

    1.2.6 激光共聚焦檢測人肺癌A549/DDP 細胞凋亡 取對數(shù)生長期的細胞,傳代至裝有蓋玻片的6 孔板中,細胞數(shù)達到一定量時,采用PEI 轉(zhuǎn)染法轉(zhuǎn)染Scrambled 及sgRNA-MRP1-2 重組載體48 h 后,加入終濃度為60 nmol/L 的川楝素繼續(xù)培養(yǎng)48 h.再用1 mL 預冷PBS 洗滌細胞,用1 mL 甲醇固定30 min,滴加200 μL吖啶橙,使吖啶橙覆蓋所有細胞,用鑷子將玻片取出,倒扣在處理干凈的載玻片上,用藍色光激發(fā),激光共聚焦顯微鏡下觀察細胞形態(tài)并拍照.

    1.2.7 統(tǒng)計學處理 實驗數(shù)據(jù)以均數(shù)±標準差(ˉx±s)表示,用SPSS 25 軟件分析,采用Graphpad Prism 5軟件作圖.使用student t 檢驗進行組間比較.

    2 結果與分析

    2.1 CRISPRi 技術構建MRP1 干擾載體

    根據(jù)MRP1基因啟動子序列,設計合成3 對CRISPRi 片段,定向克隆到pSPgRNA 載體上,重組載體測序結果見圖1.由圖1 可見,重組干擾載體序列與預期完全一致,3 種靶向MRP1干擾表達載體構建成功.

    圖1 MRP1 基因重組質(zhì)粒測序圖譜

    2.2 qRT-PCR 和Western Blot 檢測干擾載體對MRP1 基因表達的影響

    轉(zhuǎn)染干擾載體后,細胞中MRP1基因的表達見圖2~3.與A549/DDP 細胞相比,各重組載體轉(zhuǎn)染組細胞中MRP1基因的mRNA 和蛋白表達水平均顯著降低(P<0.05).其中轉(zhuǎn)染sgRNA-MRP1-2 重組質(zhì)粒的細胞沉默效果最顯著,MRP1mRNA 和蛋白的表達水平分別降低了59.3%,42.4%(P<0.05).

    圖2 各組細胞MRP1 mRNA 和蛋白表達情況

    2.3 轉(zhuǎn)染后細胞對藥物敏感性變化的影響

    順鉑對各組細胞的IC50值(見表2)顯示,與A549/DDP 細胞相比,轉(zhuǎn)染sgRNA-MRP1-2 組的IC50顯著降低(P<0.001),無關對照組與A549/DDP 組無顯著差異,表明沉默MRP1基因后細胞對川楝素的敏感性增強.

    表2 各組IC50值

    2.4 激光共聚焦顯微鏡下細胞形態(tài)

    激光共聚焦顯微鏡下觀察細胞形態(tài)(見圖4).由圖4 可見,未轉(zhuǎn)染組與轉(zhuǎn)染無關序列組,細胞均輪廓清晰,且鏡下細胞數(shù)量較多,未出現(xiàn)明顯凋亡特征.轉(zhuǎn)染sgRNA-MRP1-2 組細胞部分發(fā)生破碎、邊緣化,視野下細胞總數(shù)大量減少.

    圖4 TSN 處理48 h 后顯微鏡下細胞形態(tài)變化

    3 結論與討論

    成功構建3 種靶向MRP1干擾表達載體并沉默A549/DDP 細胞中MRP1的基因表達,在60 nmol/L 的川楝素作用下,細胞凋亡程度增加,提高了細胞對川楝素的敏感性.

    腫瘤的發(fā)生率和死亡率逐年上升,大多數(shù)肺癌患者發(fā)現(xiàn)時已是中晚期.除了早期手術之外,化療是腫瘤治療的重要手段,化療效果不理想的主要原因之一是腫瘤細胞的多藥耐藥,腫瘤細胞的多藥耐藥的產(chǎn)生是一個非常復雜且相關因素較多的過程.導致肺癌多藥耐藥的因素中,P 糖蛋白(P-gp)和MRP 蛋白家族如MRP1的高表達是導致肺癌細胞產(chǎn)生多藥耐藥的重要原因之一.這些外排泵蛋白會將藥物泵出細胞外,降低了細胞內(nèi)的藥物濃度,從而使細胞產(chǎn)生耐藥性.如利用RNAi 技術沉默MRP1基因,逆轉(zhuǎn)了肝細胞癌的多藥耐藥[13].因此,調(diào)節(jié)MRP1基因的表達有可能成為逆轉(zhuǎn)癌癥耐藥并提高化療成功率的有效策略之一[14-15].

    CRISPRi 技術基于一個無核酸酶活性的dCas9 蛋白,其失去切割DNA 的活性,但仍保留結合DNA 的能力.當dCas9 被引導到某個基因的轉(zhuǎn)錄起始位點TSS(transcription start site)時,dCas9 能夠物理性地阻礙RNA 聚合酶的通過,由此導致基因沉默,因此相較于RNAi 技術,CRISPRi 技術能抑制指定基因的轉(zhuǎn)錄起始,其擁有比RNAi 更高的干擾效率和更低的脫靶風險,在基因干擾能力上要優(yōu)于傳統(tǒng)RNAi 技術.

    川楝素是從楝樹根皮提取到的一種四環(huán)三萜類化合物[16].川楝素抗腫瘤的研究最早是由G R Pettit從楝科植物中提取的化合物對小鼠P388淋巴細胞白血病細胞系增殖的抑制作用[17].最近的研究發(fā)現(xiàn),川楝素具有廣譜抗腫瘤效果,能抑制多種腫瘤細胞的增殖,如肺癌A549細胞、白血病HL-60細胞和肝癌Hep3B細胞等[18-20].但其作為一種藥物制劑,在作用的同時也會受到細胞耐藥性的影響.本實驗是在沉默MRP1基因的基礎上,再加入60 nmol/L的川楝素作用于細胞,檢測沉默MRP1對人肺癌A549/DDP細胞的藥物敏感性和細胞形態(tài)的影響.結果與對照組相比,轉(zhuǎn)染后加藥組的藥物敏感性顯著增加,激光共聚焦顯微鏡下觀察到細胞由梭形變?yōu)闄E圓形等凋亡現(xiàn)象,說明干擾MRP1基因的表達,可逆轉(zhuǎn)人肺癌耐藥株A549/DDP細胞的耐藥性,有效提升腫瘤細胞的藥物敏感性.本研究結果可為川楝素在腫瘤臨床治療中研發(fā)應用提供實驗依據(jù).

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