柯娜,郝志云,王建清,甄慧敏,羅玉柱,胡江,劉秀,李少斌,趙志東,黃兆春,梁維煒,王繼卿
miR-221靶向抑制綿羊乳腺上皮細胞活力和增殖
甘肅農(nóng)業(yè)大學動物科學技術(shù)學院/甘肅省草食動物生物技術(shù)重點實驗室/甘肅省牛羊基因改良工程實驗室,蘭州 730070
【背景】MicroRNAs(miRNA)是一類小RNA分子(18—23nt),廣泛參與了家畜乳腺發(fā)育和泌乳性能的調(diào)控。項目組前期在小尾寒羊上應(yīng)用RNA-Seq研究發(fā)現(xiàn),miR-221在空懷期乳腺組織中的表達量是泌乳期的3.6倍,但是尚不清楚miR-221對綿羊乳腺發(fā)育的調(diào)控機制?!灸康摹刻接憁iR-221是否通過靶向基因抑制綿羊乳腺上皮細胞的活力和增殖數(shù)量,為揭示miR-221對綿羊泌乳性能的分子調(diào)控機理提供理論參考。【方法】采集小尾寒羊乳腺、心臟、肝臟、腎臟、脾臟、肺臟、背最長肌和卵巢等8個組織樣本,采用實時熒光定量PCR(reverse transcription-quantitative PCR, RT-qPCR)技術(shù),構(gòu)建miR-221在綿羊8個組織中的表達譜。采用細胞轉(zhuǎn)染、CCK-8和Edu等方法,研究miR-221對綿羊乳腺上皮細胞活力和增殖的影響。利用miRDB和miRanda數(shù)據(jù)庫,預測miR-221的靶基因,結(jié)合功能富集分析,確定目標靶基因,構(gòu)建靶基因的野生型和突變型載體,進而用雙熒光素酶報告實驗,驗證miR-221與預測靶基因間的靶向關(guān)系。分析過表達和沉默miR-221對靶基因及其信號通路下游功能基因的影響?!窘Y(jié)果】RT-qPCR結(jié)果表明,miR-221在綿羊乳腺等8個組織中均表達,其中在肺臟和脾臟中的表達量最高,在背最長肌和腎臟中的表達量最低。CCK-8結(jié)果表明,miR-221模擬物抑制了綿羊乳腺上皮細胞的活力(<0.01),而miR-221抑制劑提高了乳腺上皮細胞的活力(<0.05)。Edu試驗發(fā)現(xiàn),miR-221模擬物減少了Edu標記的陽性乳腺上皮細胞數(shù)量(<0.01),而miR-221抑制劑增加了Edu標記的陽性乳腺上皮細胞數(shù)量(<0.01)。雙熒光素酶報告實驗結(jié)果表明,miR-221模擬物抑制了胰島素受體底物1(insulin receptor substrate 1, IRS1)基因3′UTR區(qū)域的雙熒光素酶活性(<0.01),而miR-221抑制劑提高了該基因的活性(<0.05),表明是miR-221的一個靶基因。RT-qPCR結(jié)果進一步發(fā)現(xiàn),過表達miR-221降低了綿羊乳腺上皮細胞中和的表達量(<0.05),沉默miR-221則提高了這2個基因的表達量(<0.05)。過表達或沉默miR-221對乳腺上皮細胞中的表達量沒有顯著影響(>0.05)?!窘Y(jié)論】miR-221通過抑制靶基因的表達量,最終抑制了綿羊乳腺上皮細胞的活力和增殖數(shù)量。
綿羊;miR-221;胰島素受體底物1;乳腺上皮細胞
【研究意義】母羊的泌乳性能主要包括泌乳量,以及蛋白、脂肪、乳糖、全乳固體、非全乳固體含量等乳成分在內(nèi)的多個性狀。泌乳性狀是一類重要的經(jīng)濟性狀,因為它顯著影響了羔羊的繁殖成活率、斷奶前生長速度和發(fā)育程度。腺泡中的乳腺上皮細胞是乳汁合成和分泌的唯一場所,它反復經(jīng)歷了增殖、分化和凋亡這一發(fā)育過程。研究表明,乳腺發(fā)育程度、乳腺上皮細胞數(shù)量及其分泌活性直接決定了母羊的產(chǎn)奶量和乳成分[1-3],它們受到多個功能基因和非編碼RNA的調(diào)控[4-5]?!厩叭搜芯窟M展】MicroRNAs(miRNA)是一類小RNA分子(18—23nt),它們能通過降解或抑制作用,最終降低靶向mRNA的表達量[6-7]。研究發(fā)現(xiàn),miRNAs通過參與乳腺發(fā)育[8]、上皮導管生長[9]、上皮祖細胞維持[10]、乳腺上皮細胞的增殖凋亡[11-12]等過程,最終調(diào)控了哺乳動物的泌乳量和乳成分。例如,Chu等[13]在小鼠乳腺上皮細胞中發(fā)現(xiàn),過表達miR-221顯著降低了其中的甘油三酯含量。相反,抑制miR-221顯著增加了甘油三酯的含量。包黎娟等[14]發(fā)現(xiàn)miR-92a促進了奶山羊乳腺上皮細胞的凋亡,抑制了它們的增殖。王褚悅等[15]發(fā)現(xiàn)miR-142-3p抑制了研究也表明,在不同的乳腺發(fā)育時期或者品種間,綿羊miRNAs的表達豐度也不同。Wang等[16]發(fā)現(xiàn)與泌乳高峰期的母羊相比,空懷期乳腺組織中的8個miRNAs呈上調(diào)表達,15個miRNAs呈下調(diào)表達,這些miRNAs通過靶向PI3K-Akt-mTOR和Wnt等信號通路,最終參與了乳腺發(fā)育和調(diào)控。在具有不同泌乳性能的綿羊品種之間,乳腺組織中的18個miRNAs呈現(xiàn)出差異表達,它們的靶基因富集在MAPK、mTOR等一些與乳腺發(fā)育、乳蛋白和乳脂合成相關(guān)的信號通路上[17]。【本研究切入點】項目組前期以空懷期和泌乳期小尾寒羊為研究對象,采集它們的乳腺組織,用small RNA測序發(fā)現(xiàn),miRNA-221是這兩個時期乳腺組織中的差異表達miRNAs之一,它在空懷期的表達量是泌乳期的3.6倍[16],但其生物學功能和作用途徑還有待深入研究?!緮M解決的關(guān)鍵問題】在構(gòu)建綿羊乳腺等8個組織中miR-221表達譜的基礎(chǔ)上,檢測其對乳腺上皮細胞活力和增殖的影響,驗證miR-221與預測靶基因之間的靶向關(guān)系,分析過表達和沉默miR-221對靶基因及信號通路下游重要功能基因的影響,以期為揭示miR-221對綿羊泌乳性能的分子調(diào)控機理提供理論參考。
2018年9月,在甘肅省天??h松山鎮(zhèn)金子河綿羊繁育公司,選擇同一飼養(yǎng)管理條件下、3歲左右、第4胎、處于泌乳高峰期(產(chǎn)后21 d)和空懷期(產(chǎn)后100 d)的小尾寒羊母羊各3只(共6只),采集血液和組織樣本。將5 mL頸靜脈血液采集至真空抗凝采血管中,用于提取DNA,擴增靶基因的3′UTR區(qū)域;屠宰后采集乳腺,以及心臟、肝臟、腎臟、脾臟、肺臟、背最長肌和卵巢等8個組織樣本,用于提取各組織的總RNA。小尾寒羊乳腺上皮細胞為項目組前期培養(yǎng)的第4代傳代細胞,HEK293T細胞為項目組保存的細胞[3]。以下試驗于2019年9月至2020年10月在甘肅農(nóng)業(yè)大學動物科學技術(shù)學院甘肅省草食動物生物技術(shù)重點實驗室(蘭州,甘肅)完成。
參照王建清[3]建立的方法,提取8個組織中的總RNA,經(jīng)質(zhì)檢后反轉(zhuǎn)錄生成mRNA和miRNA的cDNA。
設(shè)計miRNA特異性引物(序列見表1),以U6[3]和18sRNA[18]作為管家基因,進行RT-qPCR,用2-△△Ct法計算miR-221在乳腺等8個組織中的表達量。RT- qPCR反應(yīng)體系和程序參照王建清[3]描述的方法進行。
表1 引物序列
將凍存的乳腺上皮細胞置于37℃水浴鍋中,待其徹底解凍后,立即加入1 mL細胞培養(yǎng)基,然后將混合液移至含有5 mL培養(yǎng)基的離心管中。在1 000 r/min下離心5 min棄去上清液,獲取細胞沉淀,再加入適量的新鮮培養(yǎng)基,輕柔混勻,將混合液轉(zhuǎn)移至培養(yǎng)器皿中,之后根據(jù)王建清[3]描述的方法在24孔培養(yǎng)板上培養(yǎng)細胞。待這些細胞生長至70%—80%時,用INVI DNA & RNA轉(zhuǎn)染試劑(Invigentech,美國),將50 nmol·L-1的miR-221模擬物(mimic)(Ⅰ組)、相應(yīng)對照組miR-221 mimic-NC(Ⅱ組),以及100 nmol·L-1的抑制劑(inhibitor)(Ⅲ組)和miR-221 inhibitor- NC(Ⅳ組)分別轉(zhuǎn)染至乳腺上皮細胞中,每組設(shè)置6個生物學重復。
對于其中3個生物學重復,轉(zhuǎn)染46 h后,加入30 μL CCK-8試劑(碧云天, 北京),37°C培養(yǎng)2 h,用酶標儀器在450 nm波長下檢測上清液的光密度值。
對于另外3個生物學重復,轉(zhuǎn)染44 h后加入100 μL Edu試劑,37℃培養(yǎng)4 h,用CellLight? Edu試劑盒(碧云天, 北京)標記增殖細胞,最后用IX73熒光倒置顯微鏡(Olympus,日本)拍照,并計算Edu陽性細胞的數(shù)量。
用miRDB和miRanda數(shù)據(jù)庫預測miR-221的靶基因,并將預測結(jié)果取交集。隨后,對靶基因進行GO和KEGG代謝通路分析,在調(diào)控乳汁生成、乳蛋白和乳脂合成的重要通路上,選擇其中一個靶基因用于后續(xù)試驗。
1.7.13′UTR區(qū)域雙熒光素酶載體構(gòu)建 用綿羊基因組DNA擴增靶基因-胰島素受體底物1(Insulin Receptor Substrate 1,)的3′UTR區(qū)域(引物見表1),將純化后的擴增產(chǎn)物連接至pmiR-RB-Report?載體上,構(gòu)建野生型載體。用Fast mutagenesis Kit V2突變試劑盒(諾唯贊, 南京),將靶基因與miR-221結(jié)合的序列突變?yōu)槠浠パa序列,以阻止兩者的結(jié)合,最終構(gòu)建突變型載體。用Sanger測序驗證兩種載體的正確性。
1.7.2 miR-221靶基因的驗證 在細胞培養(yǎng)板中接種復蘇后的HEK293T細胞,待細胞匯聚程度達到培養(yǎng)板面積的70%—80%時,將Ⅰ、Ⅱ、Ⅲ和Ⅳ組分別與100ng野生型和突變型載體質(zhì)粒共轉(zhuǎn)染至HEK293T細胞中,之后用雙熒光素酶報告基因E1960試劑盒(Promega, 美國)和多功能酶標儀Varioskan LUX(Thermo Lifetech, 美國)測定海參酶與螢火蟲酶活性。
將Ⅰ、Ⅱ、Ⅲ和Ⅳ組轉(zhuǎn)染至綿羊乳腺上皮細胞中,轉(zhuǎn)染成功后提取細胞中的RNA。選擇所在信號通路PI3K-AKT-mTOR和MAPK的下游重要基因-胰島素樣生長因子1受體(Insulin-like Growth Factor 1 Receptor,)和磷酸肌醇-3-激酶調(diào)節(jié)亞基1(Phosphoinositide-3-Kinase Regulatory Subunit 1,),以作為內(nèi)參基因,用2-△△Ct法計算它們的表達量。
RT-qPCR結(jié)果表明,miR-221在綿羊8個組織中均表達,并表現(xiàn)出明顯的組織特異性。其表達量由高到低依次為肺臟>脾臟>卵巢>心臟>肝臟>乳腺>背最長?。灸I臟(圖1-A)。
miR-221的表達也表現(xiàn)出明顯的時序性。在綿羊乳腺組織中,它在空懷期的相對表達量(3.956 ± 0.14)是泌乳期(2.077 ± 0.12)的1.9倍(<0.01)(圖1-B)。
CCK-8試驗發(fā)現(xiàn),miR-221 模擬物抑制了綿羊乳腺上皮細胞的活力(<0.01),而miR-221抑制劑提高了乳腺上皮細胞的活力(<0.05)(圖2-A)。
Edu檢測發(fā)現(xiàn),與對照組相比,將miR-221模擬物轉(zhuǎn)染進乳腺上皮細胞后,Edu標記的陽性乳腺上皮細胞數(shù)量明顯減少;在乳腺上皮細胞中轉(zhuǎn)染miR-221抑制劑以后,Edu標記的陽性細胞數(shù)量顯著增多(圖2-B)。
2.3.1 雙熒光素酶載體的測序驗證 構(gòu)建的雙熒光素酶載體經(jīng)酶切后,用瓊脂糖凝膠電泳檢測顯示,外源基因已成功連接到載體上,并且外源基因的片段大小基本與目的片段一致(圖3-A)。測序進一步證實,野生型雙熒光素酶載體中存在與miR-221相結(jié)合的的種子序列(圖3-B),而突變型雙熒光素酶載體中不存在與miR-221相結(jié)合的序列(圖3-C),這表明野生型和突變型雙熒光素酶載體已被成功構(gòu)建。
2.3.2 預測靶基因的雙熒光素酶實驗驗證 雙熒光素酶實驗結(jié)果表明,在野生型雙熒光素酶載體中,miR-221模擬物降低了的雙熒光素酶活性(<0.01),而miR-221抑制劑提高了該基因的雙熒光素酶活性(0.05, 圖4-A)。但是在突變型雙熒光素酶載體中,miR-221模擬物或抑制劑對基因的雙熒光素酶活性均無顯著影響(>0.05, 圖4-B)。上述結(jié)果表明,是miR-221的一個靶基因。
a、b、c和d等字母表示差異顯著(P<0.05)。**表示P<0.01,*表示P<0.05。下同
A:miR-221 mimic、mimic-NC、inhibitor和inhibitor-NC轉(zhuǎn)染到乳腺上皮細胞48 h后,用CCK8實驗檢測細胞活性的結(jié)果;B:miR-221 mimic、mimic-NC、inhibitor和inhibitor-NC轉(zhuǎn)染到乳腺上皮細胞48h后,用Edu實驗分析細胞增殖的結(jié)果
A圖中泳道1和B圖為野生型雙熒光素酶載體的鑒定結(jié)果;A圖中泳道2和C圖為突變型雙熒光素酶載體的鑒定結(jié)果;M:Marker
圖4 在野生型(A)和突變型(B)雙熒光素酶載體中,miR-221對IRS1基因雙熒光素酶活性的影響
在綿羊乳腺上皮細胞中轉(zhuǎn)染miR-221模擬物后,和基因的表達量顯著降低(<0.05);轉(zhuǎn)染miR-221抑制劑后,和基因的表達量顯著升高(<0.05)(圖5)。但是,miR-221模擬物和抑制劑對乳腺上皮細胞中的表達量沒有顯著影響(>0.05,圖5)。
miRNAs是真核生物中保守性較強的一類小分子RNAs,它們不編碼蛋白質(zhì),但能降低靶基因的表達量。研究發(fā)現(xiàn),這類RNAs在家畜乳腺生長發(fā)育、泌乳量和乳成分方面發(fā)揮了重要調(diào)控作用。項目組前期研究表明,miRNA-221調(diào)控了小尾寒羊空懷期和泌乳期的乳腺組織發(fā)育[16],但并未深入研究其分子機理。本研究構(gòu)建了miR-221在綿羊8個組織中的表達譜,通過靶基因驗證以及對乳腺上皮細胞的影響,研究了它的分子生物學功能和作用途徑。
圖5 miR-221對重要功能基因表達量的影響
RT-qPCR結(jié)果表明,miR-221在綿羊乳腺等8個組織中均表達,在脾臟和肺臟中的表達量最高,在背最長肌和腎臟中的表達量最低(圖1-A)。這表明miR-221在上述8個組織的生長發(fā)育過程中均發(fā)揮了重要作用。目前關(guān)于miR-221的研究多集中在人類腫瘤領(lǐng)域,例如,帥維等[19]研究表明,miR-221在人類肺臟組織中高度表達。Ogawa等[20]發(fā)現(xiàn)miR-221在人類肝臟組織中表達。但是,它在家畜不同組織中的表達情況未見報道。
項目組前期應(yīng)用small RNA測序發(fā)現(xiàn),miR-221在空懷期小尾寒羊乳腺組織中的表達量是泌乳期的3.6倍[16],這與本研究用RT-qPCR方法取得的結(jié)果相一致(圖1-B)。然而,由于small RNA測序和RT-qPCR是衡量RNA表達量的兩種不同方法,它們在計算方法和原理等方面截然不同,因此兩者間的研究結(jié)果存在一定差異。研究表明,乳腺發(fā)育時期不同,它的形態(tài)結(jié)構(gòu)和功能也不同。在哺乳動物的空懷期,乳腺上皮細胞的數(shù)量最少、活力最低。而在泌乳早期,乳腺上皮細胞活力、乳腺肺泡數(shù)量和大小都處于持續(xù)增加狀態(tài)[21]。本研究中,miR-221在乳腺不同時期的差異表達說明,它抑制了綿羊乳腺上皮細胞的活力和增殖,后續(xù)的CCK-8和Edu試驗也印證了這一點。初美強[22]在小鼠乳腺組織中也發(fā)現(xiàn),miR-221在非泌乳期的表達量高于泌乳高峰期,這與本研究結(jié)果相一致。另外,本研究發(fā)現(xiàn)miR-221在泌乳期乳腺中下調(diào)表達,由于該時期是乳腺合成乳蛋白和乳脂、分泌乳汁的重要時期,這也說明miR-221抑制了綿羊乳成分的合成與乳汁的分泌。
CCK-8和Edu試驗表明,miR-221抑制了綿羊乳腺上皮細胞的活力(圖2-A),并降低了Edu標記的陽性細胞數(shù)量(圖2-B)。前人研究表明,乳腺上皮細胞的活力和數(shù)量顯著影響了哺乳動物的泌乳量和乳成分含量[23],即乳腺上皮細胞活力越大,數(shù)量越多,則哺乳動物的泌乳能力越強,乳蛋白和乳脂等成分的含量越高。這進一步表明miR-221能抑制乳汁合成,以及乳中蛋白質(zhì)、脂肪等成分的含量。陸黎敏等[24]用透射電鏡發(fā)現(xiàn),抑制miR-221后,小鼠乳腺上皮細胞上的內(nèi)質(zhì)網(wǎng)等細胞器的數(shù)目明顯增多,腺泡體積也在增大。由于乳汁中蛋白質(zhì)、脂類等營養(yǎng)成分在內(nèi)質(zhì)網(wǎng)上合成[25],因此這也證實了miR-221能抑制小鼠乳蛋白質(zhì)、乳脂和乳糖的生成過程。Jiao等[26]也發(fā)現(xiàn),miR-221抑制了奶牛乳腺上皮細胞的增殖。除此之外,miR-221還能通過靶向雌激素受體α(estrogen receptor α, ERα)去抑制人類乳腺癌細胞的增殖[27]。
雙熒光素酶實驗表明,miR-221模擬物抑制了的雙熒光素酶活性(<0.01),而miR-221抑制劑則提高了它的雙熒光素酶活性(圖4-A;<0.05),這表明是miR-221的一個靶基因,這種靶向關(guān)系在其他家畜的乳腺上皮細胞中已得到了證實。例如,焦蓓蕾[28]在奶牛乳腺上皮細胞中也發(fā)現(xiàn)是miR-221的一個靶基因。除了以外,前人在奶牛、奶山羊和小鼠乳腺中發(fā)現(xiàn),[26]、和[22]也是miR-221的靶基因。這些研究也證實了一個miRNA可以同時調(diào)節(jié)多個靶基因的表達量,從而實現(xiàn)它的轉(zhuǎn)錄后調(diào)控功能。RT-qPCR試驗進一步發(fā)現(xiàn),miR-221模擬物抑制了靶基因的表達量,而miR-221抑制劑提高了靶基因的表達量(圖5)。這與焦蓓蕾[28]在奶牛上的研究結(jié)果一致,他們用RT-qPCR和Western Blot技術(shù)發(fā)現(xiàn),miR-221模擬物抑制了和在mRNA和蛋白質(zhì)層面的表達量,而miR-221抑制劑提高了它們的表達量。
研究表明,通過兩種途徑促進乳汁分泌和乳蛋白的合成。首先,IRS1是IGF1R和胰島素受體(Insulin Receptor, IR)的停泊蛋白,也是IGF1參與乳腺發(fā)育和泌乳調(diào)控的關(guān)鍵蛋白。IR是一種酪氨酸激酶,當與胰島素(Insulin, INS)結(jié)合時會發(fā)生快速的自身磷酸化,并促使IRS1等細胞內(nèi)蛋白質(zhì)底物發(fā)生磷酸化[29]。磷酸化后的IRS1激活了PI3K-Akt-mTOR信號通路,提高了乳腺上皮細胞的活力和增殖,最終促進了乳汁和乳蛋白的合成[30]。其次,IRS1還可以通過抑制ATP酶的活性來激活蛋白激酶C,最終引起了INS的釋放[31]。研究表明,INS能促進牛和小鼠乳腺上皮細胞的增殖,以及葉酸受體(Folate receptor alpha,)和甲基四氫葉酸還原酶(Methylenetetrahydrofolate reductase,)等相關(guān)乳汁蛋白基因的表達[32-33],最終促進了乳汁分泌和乳蛋白合成。
本研究發(fā)現(xiàn),除了以外,miR-221也抑制了基因的表達(圖5)。研究表明,在小鼠乳腺中敲除后,小鼠泌乳性能顯著下降[34]。這表明能促進小鼠泌乳。雖然目前尚未報道在家畜乳腺上皮細胞中的生物學作用,但在人類醫(yī)學中發(fā)現(xiàn),可以介導胃癌細胞的增殖、遷移和侵襲[35]。因此推測,也可以調(diào)節(jié)乳腺上皮細胞的增殖能力,從而參與乳汁合成過程,但這還需要進一步研究確認。
miR-221在綿羊中的表達具有組織特異性,是它的一個靶基因。miR-221能夠抑制綿羊乳腺上皮細胞的活力和增殖,降低和的表達量。研究工作為進一步闡明miR-221調(diào)控綿羊泌乳性能的分子機理提供了研究基礎(chǔ)。
[1] 孫海云. 外源重組Wnt3a蛋白對體外培養(yǎng)的奶牛乳腺上皮細胞數(shù)量及分泌活性影響的研究[D]. 保定: 河北農(nóng)業(yè)大學, 2014.
SUN H Y. Effects of exogenous recombinant Wnt3a protein on cell number and secretion activity in cuitured bovine mammary epithelial cells[D]. Baoding: Hebei Agricultural University, 2014. (in Chinese)
[2] 孟凱. Wnt信號通路激活劑BIO在山羊乳腺上皮細胞形成腺泡樣結(jié)構(gòu)中的調(diào)控作用[D]. 楊凌: 西北農(nóng)林科技大學, 2015.
MENG K. The effect of Wnt activator-bio on the formation of acinar-like structure of goat mammary epithelial cells[D]. Yangling: Northwest A&F University, 2015. (in Chinese)
[3] 王建清. 小尾寒羊miR-221和miR-329b-3p功能研究及其與基因的靶向關(guān)系驗證[D]. 蘭州: 甘肅農(nóng)業(yè)大學, 2020.
WANG J Q. Study on the Function of miR-221 and miR-329b-3p and verification of their targeted relationship with
[4] 李學忠. 過表達lncRNA H19對奶牛乳腺上皮細胞生物學特性和功能的影響及作用機制[D]. 楊凌: 西北農(nóng)林科技大學, 2018.
LI X Z. The mechanism and effects of of lncRNA H19 overexpression on biological characteristics and functions of bovine mammary epithelial cells[D]. Yangling: Northwest A&F University, 2018. (in Chinese)
[5] LU P, LI L, WANG F, GU Y. Effects of long non‐coding RNA HOST2 on cell migration and invasion by regulating MicroRNA let‐7b in breast cancer. Journal of Cellular Biochemistry, 2017, 119(6): 4570-4580.
[6] AMBROS V. The functions of animal microRNAs. Nature, 2004, 431(7006): 350-355.
[7] HUANG Y, SHEN X, ZOU Q, WANG S, TANG S, ZHANG G. Biological functions of microRNAs: a review. Journal of Physiology and Biochemistry, 2011, 67(1): 129-139.
[8] WANG X, ZHANG L, JIN J, XIA A, WANG C, CUI Y, QU B, LI Q, SHENG C. Comparative transcriptome analysis to investigate the potential role of miRNAs in milk protein/fat quality. Scientific Reports, 2018, 8(1): 6250.
[9] UCAR A, VAFAIZADEH V, JARRY H, FIEDLER J, KLEMMT P A B, THUM T, GRONER B, CHOWDHURY K. miR-212 and miR-132 are required for epithelial stromal interactions necessary for mouse mammary gland development. Nature Genetics, 2010, 42(12): 1101-1108.
[10] IBARRA I, ERLICH Y, MUTHUSWAMY S K, SACHIDANANDAM R, HANNON G J. A role for microRNAs in maintenance of mouse mammary epithelial progenitor cells. Genes & Development, 2007, 21(24): 3238-3243.
[11] LI D, XIE X, WANG J, BIAN Y, LI Q, GAO X, WANG C. miR-486 Regulates Lactation and Targets the PTEN Gene in Cow Mammary Glands. PLoS One, 2015, 10(3): e0118284.
[12] CUI W, LI Q, FENG L, DING W. miR-126-3p regulates progesterone receptors and involves development and lactation of mouse mammary gland. Molecular and Cellular Biochemistry, 2011, 355(1-2): 17-25.
[13] Chu M, ZHAO Y, YU S, HAO Y, ZHANG P, FENG Y, ZHANG H, MA D, LIU J, CHENG M, LI L, SHEN W, GAO H, LI L, MIN L. MicroRNA-221 may be involved in lipid metabolism in mammary epithelial cells. International Journal of Biochemistry and Cell Biology, 2018, 97: 118-127.
[14] 包黎娟, 劉育含, 馬毅, 安小鵬, 張月, 張夢, 王建剛, 堵斌, 李廣, 曹斌云. miR-92a對奶山羊乳腺上皮細胞增殖及凋亡的調(diào)控分析. 畜牧獸醫(yī)學報, 2020, 51(01): 137-149.
BAO L J, LIU Y H, MA Y, AN X P, ZHANG Y, ZHANG M, WANG J G, DU B, LI G, CAO B Y. The Regulatory of miR-92a on proliferation and apoptosis of dairy goat mammary epithelial cells. Chinese Journal of Animal and Veterinary Sciences, 2020, 51(01): 137-149. (in Chinese)
[15] 王褚悅, 王春梅, 邵麗, 張莉, 林葉, 崔英俊, 高學軍, 李慶章. miR-142-3p對奶山羊乳腺上皮細胞泌乳功能的影響. 中國畜牧獸醫(yī), 2015, 42(07): 1823-1829.
WANG C Y, WANG C M, SHAO L, ZHANG L, LIN Y, CUI Y J, GAO X J, LI Q Z. Effect of miR-142-3p on lactation function in dairy goat mammary epithelial cells. China Animal Husbandry & Veterinary Medicine, 2015, 42(07): 1823-1829. (in Chinese)
[16] WANG J, HAO Z, HU J, LIU X, LI S, WANG J, SHEN J, SONG Y, KE N, LUO Y. Small RNA deep sequencing reveals the expressions of microRNAs in ovine mammary gland development at peak-lactation and during the non-lactating period. Genomics, 2021, 113(1-2): 637-646.
[17] HAO Z, WANG J, LUO Y, LIU X, LI S, ZHAO M, JIN X, SHEN J, KE N, SONG Y, QIAO L. Deep small RNA-Seq reveals microRNAs expression profiles in lactating mammary gland of 2 sheep breeds with different milk performance. Domestic Animal Endocrinology, 2021, 74: 106561.
[18] LI Z, LIU H, JIN X, LO L, LIU J. Expression profiles of microRNAs from lactating and non-lactating bovine mammary glands and identification of miRNA related to lactation. BMC Genomics, 2012, 13(2): 731.
[19] 帥維, 陳瓊, 王懿春. miR-221在人肺纖維化組織和TGFβ1干預A549細胞中的表達變化. 中國醫(yī)師雜志, 2018, 20(02): 187-190.
SHUAI W, CHEN Q, WANG Y C. Examination of expression of miR-221 in human pulmonary fibrosis tissues and in A549 cells treated with TGFβ1. Journal of Chinese Physician, 2018, 20(02): 187-190. (in Chinese)
[20] OGAWA T, ENOMOTO M, FUJII H, SEKIYA Y, YOSHIZATO K, IKEDA K, KAWADA N. MicroRNA- 221/222 upregulation indicates, the activation of stellate cells and the progression of liver fibrosis. Gut, 2012, 61(11): 1600-1609.
[21] 李慶章. 乳腺發(fā)育與泌乳生物學.北京: 科學出版社, 2009.
LI Q Z. Mammary gland development and lactation biology. Beijing: Science Press, 2009. (in Chinese)
[22] 初美強. MiR-15b, miR-126, miR-221影響乳腺上皮細胞脂類代謝及分子機制探究[D]. 青島: 青島農(nóng)業(yè)大學, 2017.
CHU M Q. MiR-15b, miR-126, miR-221 involved in lipid metabolism in mammary epithelial cells and the underlying mechanism[D]. Qingdao: Qingdao Agricultural University, 2017.(in Chinese)
[23] BOUTINAUD M, GUINARD-FLAMENTA J, JAMMES H. The number and activity of mammary epithelial cells, determining factors for milk production. Reproduction Nutrition Development, 2004, 44(5): 499-508.
[24] 陸黎敏, 李慶章, 王春梅, 李曄, 高學軍. miR-221對小鼠乳腺上皮細胞增殖和泌乳功能的影響. 中國生物化學與分子生物學報, 2009, 25(5): 454-458.
LU L M, LI Q Z, WANG C M, LI Y, GAO X J. Impact of miR-221 on mouse mammary epithelial cells and lactation. Chinese Journal of Biochemistry and Molecular Biology, 2009, 25(5): 454-458. (in Chinese)
[25] KEENAN T W, WINTER S, RACKWITZ H R, HEID H W. Nuclear coactivator protein p100 is present in endoplasmic reticulum and lipid droplets of milk secreting cells. Biochimica et Biophysica Acta, 2000, 1523: 84-90.
[26] JIAO B, ZHANG X, WANG S, WANG L, LUO Z, ZHAO H, KHATIB H, WANG X. MicroRNA-221 regulates proliferation of bovine mammary gland epithelial cells by targeting theandgenes. Journal of Dairy Science, 2018, 102(1): 426-435.
[27] ZHAO J, LIN J, YANG H, KONG W, HE L, MA X, COPPOLA D, CHENG J. MicroRNA-221/222 Negatively regulates estrogen receptor alpha and is associated with tamoxifen resistance in breast cancer. The Journal of Biological Chemistry, 2008, 283(45): 31079-31086.
[28] 焦蓓蕾. MiR-221通過靶向和基因抑制奶牛乳腺上皮細胞增殖的研究[D].楊凌: 西北農(nóng)林科技大學, 2018.
JIAO B L. MiR-221 regulates cell proliferation of bovine mammary epithelial cells by targetingandgenes[D]. Yangling: Northwest A&F University, 2018. (in Chinese)
[29] LAVAN B E, LANE W S, LIENHARD G E. The 60-kDa phosphotyrosine protein in insulin-treated adipocytes is a new member of the insulin receptor substrate family. The Journal of Biological Chemistry, 1997, 272(17): 11439-11443.
[30] R?DLER P D, WEHDE B L, WAGNER K U. Crosstalk between STAT5 activation and PI3K/AKT functions in normal and transformed mammary epithelial cells.Molecular and Cellular Endocrinology, 2017, 451: 31-39.
[31] 舒適, 宋菊敏. 胰島素受體底物-1/-2與胰島素信號轉(zhuǎn)導. 醫(yī)學綜述, 2008, 14(5): 723-725.
SHU S, SONG J M. Insulin receptor substrate-1/-2 and insulin resistance. Medical Recapitulate, 2008, 14(5): 723-725. (in Chinese)
[32] MENZIES K K, LEFèVRE C, MACMILLAN K L, NICHOLAS K R. Insulin regulates milk protein synthesis at multiple levels in the bovine mammary gland. Functional & Integrative Genomics, 2009, 9(2): 197-217.
[33] MENZIES K K, LEE H J, LEFèVRE C, ORMANDY C J, MACMILLAN K L, NICHOLAS K R. Insulin, a key regulator of hormone responsive milk protein synthesis during lactogenesis in murine mammary explants.Functional & Integrative Genomics, 2010, 10(1): 87-95.
[34] CHEN Q, ZHAO F, REN Y, HAN J, LIU J, LI Y, LIU H. Parenterally delivered methionyl-methionine dipeptide during pregnancy enhances mammogenesis and lactation performance over free methionine by activating PI3K-AKT signaling in methionine- deficient mice. Journal of Nutrition, 2020, 150(5): 1186-1195.
[35] LI Q, TIAN Y, LIANG Y, LI C. CircHIPK3/miR-876-5p/PIK3R1 axis regulates regulation proliferation, migration, invasion, and glutaminolysis in gastric cancer cells. Cancer Cell International, 2020, 20: 391.
The miR-221 Inhibits the Viability and Proliferation of Ovine Mammary Epithelial Cells by Targeting
College of Animal Science and Technology/Gansu Key Laboratory of Herbivorous Animal Biotechnology/Gansu Engineering Lab of Genetic Improvement in Ruminants, Gansu Agricultural University, Lanzhou 730070
【Background】MicroRNAs (miRNA) are a type of small RNAs (18-23 nt) that are widely involved in the regulation of mammogenesis and milk traits in livestock animals. In our previous research, the expression level of miR-221 in non-lactating mammary gland was found to be 3.6-time higher than in mammary gland at lactation period in Small-Tailed Han sheep by using RNA-Seq. However, the regulatory mechanism of miR-221 on ovine mammary gland development is still unclear.【Objective】The aim of this study was to investigate the inhibition of miR-221 on the viability and proliferation of ovine mammary epithelial cells by targeting insulin receptor substrate 1 (IRS1) gene, so as to provide a theoretical reference for revealing the molecular regulation mechanism of miR-221 on ovine lactation performance.【Method】In the study, mammary gland, heart, liver, kidney, spleen, lung,muscle and ovary tissues were collected in Small-Tailed Han sheep, and the expression profiles of miR-221 were constructed in ovine eight tissues by using reverse transcription-quantitative PCR (RT-qPCR). The effects of miR-221 on the viability and proliferation of ovine mammary epithelial cells (OMECs) were investigated by using cell transfection, CCK-8 and Edu assays. The miRDB and miRanda were used to predict the target genes of miR-221. Based on functional enrichment analysis, an investigated target gene was screened. The target relationship between miR-221 and the predicted target gene was investigated by constructing wild-type and mutant-type report vectors for the target gene by using dual luciferase reporter assay. Finally, the effects of over-expressed and silenced miR-221 on expression levels of the target gene and other functional genes in downstream signaling pathways were detected.【Result】The miR-221 was expressed in ovine eight tissues including mammary glands, with the highest expression levels in lung and spleen, and the lowest expression levels inmuscle and kidney. The CCK-8 assay result revealed that miR-221 mimic inhibited the viability of OMECs, whereas miR-221 inhibitor promoted the viability of OMECs. The Edu result found that miR-221 mimic reduced the number of Edu-labeled positive OMECs. On the contrary, miR-221 inhibitor increased the number of Edu-labeled positive OMECs. The result from dual luciferase reporter assays showed that the miR-221 mimics reduced the luciferase activity of the 3′UTR region of, while miR-221 inhibitor increased the luciferase activity. This suggested thatwas a target gene of miR-221. The results from RT-qPCR further found that over-expressed miR-221 reduced expression levels ofand<0.05), while silenced miR-221 enhanced the levels of the two genes in expression (<0.05). No effect onwas found for over-expressed and silenced miR-221 in OMECs (>0.05).【Conclusion】The miR-221 inhibited the viability and proliferation of OMECs by reducingexpression.
sheep; miR-221; insulin receptor substrate1; mammary epithelial cells.
2021-04-09;
2022-03-07
國家自然科學基金(32060746和31860635)、甘肅農(nóng)業(yè)大學青年導師扶持基金(GAU-QDFC-2020-01)、甘肅農(nóng)業(yè)大學伏羲青年英才培育計劃(Gaufx-02Y02)、甘肅省基礎(chǔ)研究創(chuàng)新群體項目(18JR3RA190)
柯娜,E-mail:ken@st.gsau.edu.cn。通信作者王繼卿,E-mail:wangjq@gsau.edu.cn
10.3864/j.issn.0578-1752.2022.10.014
(責任編輯 林鑒非)