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    大豆異黃酮通過NF-κB p65信號通路抑制Aβ1-42誘導(dǎo)的海馬神經(jīng)元炎癥和凋亡

    2022-06-08 03:36:32邵曉潔管文婕洪占梅呂東來張旭東
    中國藥理學(xué)通報 2022年6期
    關(guān)鍵詞:貨號存活率海馬

    邵曉潔,管文婕,洪占梅,陳 明,王 凡,呂東來,3,張旭東

    (1. 中國人民解放軍聯(lián)勤保障部隊第九〇一醫(yī)院藥劑科,安徽 合肥 230031;2.安徽醫(yī)科大學(xué)基礎(chǔ)醫(yī)學(xué)院藥理學(xué)教研室,安徽 合肥 230032;3. 陸軍軍醫(yī)大學(xué)西南癌癥中心,重慶 400038)

    1 材料與方法

    1.1 材料

    1.1.1動物 SPF級,♂,新生24 h SD大鼠,體質(zhì)量(6.02 ± 0.01)g,購買于上海斯萊克實驗動物有限公司,SCXK(滬)2018-0002,飼養(yǎng)于安徽醫(yī)科大學(xué)實驗動物學(xué)部,SYXK(皖)2020-0019。

    1.1.2藥物與試劑 大豆異黃酮(華北制藥股份有限公司,批號:060104);Aβ1-42[翌圣生物科技(上海)股份有限公司,貨號:20602ES03];DMEM/F12培養(yǎng)基(Gibco公司,貨號:C11330500BT);胎牛血清(fetal bovine serum,F(xiàn)BS)(上?;鄯f生物科技有限公司,貨號:FB15015);二甲基亞砜(dimethyl sulfoxide,DMSO,濟南世紀(jì)通達(dá)化工有限公司,貨號:CAS67-68-5 ) MTT檢測試劑盒(上海生工生物工程有限公司,貨號:E606334);Annexin V-FITC/PI凋亡檢測試劑盒(北京索萊寶科技有限公司,貨號:CA1020);BCA蛋白濃度測定試劑盒(上海碧云天生物技術(shù),貨號:P0012S);顯影定影試劑盒(上海碧云天生物技術(shù),貨號:P0019);山羊抗兔(上海碧云天生物技術(shù),貨號:A0408);山羊抗小鼠(上海碧云天生物技術(shù),貨號:A0412);一抗稀釋液(上海碧云天生物技術(shù),貨號:P0256);二抗稀釋液(上海碧云天生物技術(shù),貨號:P0258);環(huán)氧合酶-2(cyclooxygenase-2,COX-2)一抗(Cell Signaling Technology,貨號;4842);TNF-ɑ一抗(Cell Signaling Technology,貨號;8643);IκBα一抗(Santa Cruz Biotechnology,貨號:sc-52900);p-IκBα一抗(Santa Cruz Biotechnology,貨號:sc-8404);NF-κB p65一抗(Santa Cruz Biotechnology,貨號:sc-8008);p-NF-κB p65一抗(Santa Cruz Biotechnology,貨號:sc-398442);cleaved-caspase-3一抗(Cell Signaling Technology,貨號:9664);Bcl-2一抗(Cell Signaling Technology,貨號:15071);β-actin一抗(上海碧云天生物技術(shù),貨號:AF5001)。

    1.1.3主要儀器 TWK-FST32型組織勻漿儀(武漢泰普拓科技有限公司);Micro17R型高速冷凍離心機(離心半徑:6 cm)、FC型全自動多功能酶標(biāo)檢測儀[賽默飛世爾科技(中國)有限公司];GPJ9-TS100-F型倒置熒光顯微鏡(日本Nikon公司);1658033型電泳儀、ChemiDoc XRS+成像系統(tǒng)(美國Bio-Rad公司)。

    1.2 方法

    1.2.1大鼠海馬神經(jīng)元原代培養(yǎng)與鑒定 新生24 h大鼠采用酒精消毒、斷頭處理,并在無菌條件下取出大腦并分離海馬組織;海馬組織剪碎并加入0.25%的胰蛋白酶消化30 min;加入DEME/F12培養(yǎng)基終止消化,將細(xì)胞懸液放置離心機內(nèi),設(shè)置轉(zhuǎn)速度1 200 r·min-1離心5 min,靜置2 min后吸去上清液,加入新鮮的細(xì)胞培養(yǎng)基吹打并將其懸液過200目篩網(wǎng)進(jìn)行過濾,調(diào)整好細(xì)胞濃度并接種至經(jīng)過L-多聚賴氨酸處理后6孔板內(nèi),放置于37 ℃,5% CO2細(xì)胞培養(yǎng)箱內(nèi)常規(guī)培養(yǎng)48 h;加入5 g·L-1阿糖胞苷抑制非神經(jīng)細(xì)胞活性。期間每3 d對原細(xì)胞培養(yǎng)基進(jìn)行1/2體積更換。海馬神經(jīng)元培養(yǎng)10 d,采用免疫熒光染色法鑒定神經(jīng)元,神經(jīng)元神經(jīng)絲蛋白(NF)2000抗體結(jié)合山羊抗兔免疫熒光二抗熒光染色鑒定。

    1.2.2海馬神經(jīng)元分組與給藥處理 實驗分為對照組(Control)、Aβ1-42處理組、SI低、中、高給藥濃度組。其中Cotrol組與含有10% FBS的DMEM/F12培養(yǎng)基共培養(yǎng)48 h;Aβ1-42處理組海馬神經(jīng)元加入30 μmol·L-1的Aβ1-42處理48 h;SI低、中、高劑量組(SI-L、SI-M、SI-H)海馬神經(jīng)元首先分別加入終濃度10、20和40 mg·L-1的SI預(yù)處理2 h,然后加入30 μmol·L-1的Aβ1-42處理48 h。

    1.2.3MTT檢測海馬神經(jīng)元存活率 大鼠海馬神經(jīng)元原代細(xì)胞按照96孔板密度為:1×107·L-1密度接種,按照實驗分組進(jìn)行對應(yīng)處理,培養(yǎng)48 h,每組設(shè)置6個復(fù)孔,重復(fù)實驗3次,每孔加入MTT溶液10 μL(5 g·L-1)繼續(xù)培養(yǎng)4 h,終止培養(yǎng),棄去細(xì)胞上清,每孔加入150 μL的DMSO震蕩10 min,使得充分溶解,酶標(biāo)儀設(shè)定波長為570 nm檢測各孔的吸光度值,以光密度(optical density,OD)值反映海馬神經(jīng)元活力。海馬神經(jīng)元存活率/%=各處理組細(xì)胞OD/對照組OD值×100%。

    智慧商圈系統(tǒng)中商圈客流分析的核心是對商圈的靜態(tài)數(shù)據(jù)和動態(tài)數(shù)據(jù)進(jìn)行分析,分析的維度決定分析的價值??土鞣治霾粌H僅是獲取總客流量,還需根據(jù)各區(qū)域、各樓層的客流分布、變化情況和成交率[1],通過正確的數(shù)據(jù)清洗和分析,利用專業(yè)的可視化分析工具得出對商圈有較高價值的數(shù)據(jù)結(jié)果。

    1.2.4TUNEL染色檢測海馬神經(jīng)元凋亡率 海馬神經(jīng)元按照1×107·L-1密度接種于12孔板內(nèi),按照TUNEL染色檢測試劑盒進(jìn)行海馬神經(jīng)元凋亡檢測。于200倍光學(xué)顯微鏡下隨機性選取3個視野觀察各組海馬神經(jīng)元凋亡情況。TUNEL陽性細(xì)胞(凋亡細(xì)胞)染色呈棕色。海馬神經(jīng)元凋亡率/%=TUNEL陽性細(xì)胞數(shù)目/總細(xì)胞數(shù)目×100%。

    1.2.5Western blot檢測海馬神經(jīng)元相關(guān)蛋白表達(dá) 海馬神經(jīng)元加入細(xì)胞裂解液后于冰上裂解40 min;4 ℃,12 000 r·min-1,離心10 min,吸取細(xì)胞上清液;BCA法測定各組海馬神經(jīng)元蛋白質(zhì)濃度;上樣(按照每孔上樣量30 μg計算得出上樣體積);凝膠電泳(80 V,30 min后120 V,60 min);濕轉(zhuǎn)法轉(zhuǎn)膜90 min;5%脫脂牛奶室溫封閉2 h;分別加COX-2一抗(1 ∶1 000)、TNF-ɑ一抗(1 ∶1 000)、IκBα一抗(1 ∶1 000)、p-IκBα一抗(1 ∶1 000)、NF-κB p65一抗(1 ∶1000)、p-NF-κB p65一抗(1 ∶1 000)及β-actin抗體(1 ∶2 000),4 ℃孵育過夜;加對應(yīng)的山羊抗兔二抗或者山羊抗鼠二抗(1 ∶5 000),室溫孵育1~2 h;加吐溫20磷酸鹽緩沖溶液洗滌3次,每次5 min,加入顯影液,顯影并拍照。以目的蛋白條帶灰度值與β-actin條帶灰度值的比值反映目的蛋白的相對表達(dá)量。

    2 結(jié)果

    2.1 原代海馬神經(jīng)元培養(yǎng)與鑒定光學(xué)顯微鏡下觀察海馬神經(jīng)元生長情況。10 d可見海馬神經(jīng)元之間的突起形成網(wǎng)狀,胞體呈錐體狀和紡錘狀,伴有長軸突和樹突形成。熒光顯微鏡下觀察神經(jīng)元NF200染色呈紅色,細(xì)胞核染色呈藍(lán)色,大約90%以上呈NF200陽性,表明原代海馬神經(jīng)元培養(yǎng)與鑒定獲得成功(Fig 1)。

    Fig 1 Culture and identification of primary hippocampal neurons (200×)

    2.2 各組海馬神經(jīng)元存活率情況MTT檢測顯示,與Control組相比,Model組海馬神經(jīng)元存活率明顯降低(P<0.01)。與Model組相比,SI-L、SI-M、SI-H組海馬神經(jīng)元存活率明顯升高(P<0.05或P<0.01)(Fig 2)。

    Fig 2 Comparison of survival rate of

    2.3 SI對Aβ1-42誘導(dǎo)海馬神經(jīng)元炎癥因子表達(dá)的影響Western blot檢測海馬神經(jīng)元COX-2和TNF-ɑ蛋白表達(dá)水平。結(jié)果顯示,與Control相比,Model組細(xì)胞TNF-ɑ和COX-2蛋白表達(dá)明顯升高(P<0.05或P<0.01)。與Model組相比,SI-H組細(xì)胞TNF-ɑ和COX-2蛋白表達(dá)明顯降低(P<0.05或P<0.01)(Fig 3)。

    Fig 3 The expression levels of TNF-ɑ andCOX-2 in hippocampal neurons n=3)

    2.4 SI對Aβ1-42誘導(dǎo)海馬神經(jīng)元凋亡的影響TUNEL染色檢測海馬神經(jīng)元凋亡情況。結(jié)果顯示,與Control組相比,Model組海馬神經(jīng)元凋亡率明顯增加(P<0.01)。與Model組相比,SI-M、SI-H組海馬神經(jīng)元凋亡率明顯降低(P<0.05或P<0.01)(Fig 4)。進(jìn)一步Western blot檢測海馬神經(jīng)元凋亡相關(guān)蛋白表達(dá),結(jié)果顯示,與Control組相比,Model組cleaved-caspase-3蛋白表達(dá)明顯升高,Bcl-2蛋白表達(dá)明顯降低(P<0.01)。與Model組相比,SI-L、SI-M、SI-H組cleaved-caspase-3蛋白表達(dá)降低,Bcl-2蛋白表達(dá)升高(P<0.05或P<0.01)(Fig 5)。

    Fig 4 Comparison of apoptotic rate of hippocampal neurons

    Fig 5 The expression levels of cleaved-caspase-3 and Bcl-2 in hippocampal neurons n=3)

    2.5 SI對海馬神經(jīng)元NF-κB p65信號通路相關(guān)蛋白表達(dá)影響Western blot檢測海馬神經(jīng)元NF-κB p65信號通路相關(guān)蛋白表達(dá)。結(jié)果顯示,與Control組相比,Model組p-IκBα、p-NF-κB p65蛋白表達(dá)均明顯升高(P<0.01)。與Model組相比,SI-L、SI-M、SI-H組p-IκBα、p-NF-κB p65蛋白表達(dá)均明顯降低(P<0.05或P<0.01)(Fig 6)。

    Fig 6 The expression of NF-κB p65 signaling pathway proteins in hippocampal neurons

    3 討論

    AD是老年人常見的神經(jīng)退行性疾病,臨床主要表現(xiàn)記憶力損害。AD發(fā)病機制復(fù)雜,主要包括Aβ神經(jīng)病毒學(xué)說、膽堿能神經(jīng)功能抑制、Tau蛋白學(xué)說以及神經(jīng)炎癥機制等[11]。其中Aβ神經(jīng)病毒學(xué)說在AD的發(fā)生、發(fā)展中被廣泛研究,研究學(xué)者認(rèn)為淀粉前體樣蛋白酶切代謝產(chǎn)物Aβ是AD發(fā)病早期發(fā)揮主要誘因[12]。研究發(fā)現(xiàn),Aβ能夠誘導(dǎo)海馬神經(jīng)元炎癥和凋亡,導(dǎo)致神經(jīng)元細(xì)胞丟失[13]。神經(jīng)元細(xì)胞大量丟失是AD典型病理特征之一,海馬神經(jīng)元凋亡則是神經(jīng)元丟失的表現(xiàn)形式。因此,以Aβ誘導(dǎo)海馬神經(jīng)元凋亡為基礎(chǔ),探究AD發(fā)生、發(fā)展中的分子調(diào)節(jié)機制尤為重要。既往研究證實,NF-κB/p65信號傳導(dǎo)在神經(jīng)元炎癥反應(yīng)和凋亡中發(fā)揮重要作用[5]。NF-κB共有5種蛋白組成,靜息狀態(tài)下在細(xì)胞質(zhì)內(nèi)NF-κB與IκBα結(jié)合形成復(fù)合物。當(dāng)IκBα被激活形成p-IκBα后,IκBα?xí)l(fā)生泛素化并降解,從而釋放結(jié)合NF-κB p65。而釋放的NF-κB p65會被進(jìn)一步磷酸化形成p-NF-κB p65,增強其和定位信號,進(jìn)入細(xì)胞核促進(jìn)下游基因表達(dá)[14]。研究顯示Aβ25-35能夠通過激活I(lǐng)κBα/NF-κB通路,誘導(dǎo)海馬神經(jīng)炎癥,增加神經(jīng)元凋亡,進(jìn)而導(dǎo)致海馬神經(jīng)元存活率降低[15]。另外,抑制NF-κB活化能夠明顯降低Aβ誘導(dǎo)的海馬神經(jīng)炎癥和神經(jīng)元凋亡,改善神經(jīng)元細(xì)胞丟失[16]。因此,抑制NF-κB p65信號激活已逐漸成為阻止Aβ誘導(dǎo)海馬神經(jīng)炎癥和神經(jīng)元凋亡的目標(biāo)。SI是一類與神經(jīng)系統(tǒng)疾病密切相關(guān)的異黃酮類化合物總稱。研究發(fā)現(xiàn)SI能夠增加去卵巢大鼠海馬突觸密度,改善海馬功能[17]。另外,研究也證實SI能夠通過調(diào)控AD大鼠海馬組織caspase-3活性,改善AD大鼠學(xué)習(xí)記憶能力[18]。在腦缺血/再灌注損傷大鼠模型,SI能夠通過抑制NF-κB活化降低海馬神經(jīng)炎癥反應(yīng),減少海馬神經(jīng)元凋亡[10]?;谝陨涎芯?,我們推測SI可能通過調(diào)控NF-κB p65信號通路影響AD海馬神經(jīng)炎癥和神經(jīng)元凋亡。為此,本實驗通過體外培養(yǎng)原代海馬神經(jīng)元,觀察SI對Aβ誘導(dǎo)海馬神經(jīng)炎癥和神經(jīng)元凋亡的影響。

    本實驗首先通過體外原代海馬神經(jīng)元分離培養(yǎng)與鑒定,結(jié)果顯示10 d可見海馬神經(jīng)元之間的突起形成網(wǎng)狀,胞體呈錐體狀和紡錘狀,伴有長軸突和樹突形成。熒光顯微鏡下觀察神經(jīng)元NF200染色呈紅色,細(xì)胞核染色呈藍(lán)色,表明原代海馬神經(jīng)元培養(yǎng)與鑒定成功。Aβ1-42是常用于AD體外細(xì)胞模型研究。眾多研究已證實Aβ1-42能夠明顯促進(jìn)海馬神經(jīng)元凋亡。為此,本研究以海馬神經(jīng)元終濃度30 μmol·L-1的Aβ1-42處理48 h構(gòu)建體外細(xì)胞模型。結(jié)果顯示,與Control組相比,Model組海馬神經(jīng)元存活率明顯減低,凋亡率明顯升高,表明Aβ1-42誘導(dǎo)海馬神經(jīng)元凋亡模型構(gòu)建成功。為明確SI對Aβ1-42誘導(dǎo)海馬神經(jīng)炎癥和神經(jīng)元凋亡的影響及作用機制。本實驗通過設(shè)置SI-L、SI-M和SI-H濃度,觀察海馬神經(jīng)元存活率、炎癥、凋亡率以及NF-κB信號活化情況。MTT和TUNEL染色檢測顯示,與Model相比,SI-L、SI-M和SI-H組海馬神經(jīng)元存活率明顯升高,凋亡率降低。Western blot檢查顯示,與Control組相比,Model組海馬神經(jīng)元COX-2、TNF-ɑ、p-IκBα、p-NF-κB p65、cleaved-caspase-3蛋白表達(dá)均明顯升高,Bcl-2蛋白表達(dá)明顯降低,表明Aβ1-42能夠通過活化NF-κB p65,誘導(dǎo)海馬神經(jīng)炎癥和神經(jīng)元凋亡。與Model組相比,SI處理后能夠明顯抑制NF-κB p65信號活化,降低COX-2、TNF-ɑ、cleaved-caspase-3表達(dá),促進(jìn)Bcl-2蛋白表達(dá)。以往研究顯示COX-2啟動子含有NF-κB結(jié)合位點。在炎癥激活狀態(tài)下,p-NF-κB與COX-2生成呈正相關(guān)[15]。TNF-α是NF-κB強烈的激活劑,而NF-κB的激活能夠誘導(dǎo)細(xì)胞釋放TNF-α,從而形成一個正反饋NF-κB活化途徑[10]。

    綜上所述,SI能夠抑制Aβ1-42誘導(dǎo)的海馬神經(jīng)炎癥和神經(jīng)元凋亡,其機制與調(diào)控NF-κB p65信號通路相關(guān)。本實驗初次在細(xì)胞層面上證實了SI在海馬神經(jīng)炎癥和神經(jīng)元凋亡中的保護(hù)作用,后續(xù)將在體內(nèi)動物實驗中進(jìn)一步探究SI在AD大鼠海馬神經(jīng)炎癥和神經(jīng)元凋亡中的保護(hù)作用以及NF-κB p65信號的上游調(diào)控機制,以期為AD的SI防治提供更多參考依據(jù)。

    (致謝:感謝安徽醫(yī)科大學(xué)科研中心的老師給予的幫助!)

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