外源蔗糖對(duì)紫背天葵采后品質(zhì)及葉綠體的影響

謝意通，張飛，石潔，馮莉，姜麗

外源蔗糖對(duì)紫背天葵采后品質(zhì)及葉綠體的影響

謝意通，張飛，石潔，馮莉，姜麗*

南京農(nóng)業(yè)大學(xué)食品科技學(xué)院，南京 210095

【背景】紫背天葵采后生理代謝活躍，加上對(duì)低溫敏感，采后往往貯藏于略低于室溫的黑暗環(huán)境中，但紫背天葵長(zhǎng)期黑暗貯藏，會(huì)出現(xiàn)采后糖饑餓，影響紫背天葵的品質(zhì)。黑暗貯藏也會(huì)抑制光合過(guò)程，導(dǎo)致光合同化產(chǎn)物減少，加劇采后糖饑餓，而蔗糖是植物體內(nèi)光合產(chǎn)物運(yùn)輸?shù)闹饕问??！灸康摹垦芯坎珊笸庠凑崽翘幚韺?duì)紫背天葵采后品質(zhì)、蔗糖代謝及葉綠體的影響，探討蔗糖處理延緩采后衰老的相關(guān)機(jī)制?！痉椒ā吭诤Y選出最佳蔗糖處理濃度的基礎(chǔ)上，檢測(cè)紫背天葵貯藏期間淀粉、可溶性糖、還原糖、可溶性蛋白和葉綠素含量，研究蔗糖處理對(duì)紫背天葵采后品質(zhì)的影響；檢測(cè)貯藏期間蔗糖、果糖、葡萄糖含量和蔗糖代謝相關(guān)酶活性如淀粉酶（Amylase）、蔗糖磷酸合成酶（SPS）、蔗糖酸性水解酶（AI）、蔗糖合成酶（SS-s）和蔗糖分解酶（SS-c），研究蔗糖處理對(duì)紫背天葵蔗糖代謝的影響；利用透射電子顯微鏡觀測(cè)葉綠體超微結(jié)構(gòu)在貯藏期間的變化，檢測(cè)貯藏期間葉綠體脂氧合酶（LOX）活性、丙二醛含量（MDA）、最大光化學(xué)效率（Fv/Fm）和實(shí)際光化學(xué)效率（QY），研究蔗糖處理對(duì)葉綠體生理和功能的影響。在生化水平和亞細(xì)胞水平上探究采后蔗糖處理對(duì)紫背天葵的影響?！窘Y(jié)果】前期的蔗糖濃度篩選發(fā)現(xiàn)，12%的蔗糖保鮮效果最佳，尤其在貯藏后期，12%蔗糖處理組與對(duì)照組相比，呼吸強(qiáng)度降低39%、失重率降低7.8%、腐爛率降低15.87%。進(jìn)一步研究發(fā)現(xiàn)，在貯藏后期，處理組與對(duì)照組相比，蔗糖含量比為1.82、淀粉含量比為1.10、可溶性糖含量比為1.11、可溶性蛋白含量比為2.20和葉綠素含量比為1.23，蔗糖處理顯著延緩了糖類物質(zhì)和含氮物質(zhì)的降解。蔗糖處理顯著抑制SPS、AI和Amylase活性的上升，說(shuō)明蔗糖處理抑制了紫背天葵的蔗糖代謝，從而減少了蔗糖和淀粉的分解。后期對(duì)紫背天葵葉綠體生理功能研究發(fā)現(xiàn)，貯藏結(jié)束時(shí)，處理組與對(duì)照組相比，有效維持了葉綠體結(jié)構(gòu)完整性、葉綠體脂氧合酶活性降低53.13%、葉綠體丙二醛含量降低33.33%、最大和實(shí)際光化學(xué)效率分別是對(duì)照組的1.35倍和1.97倍，說(shuō)明蔗糖處理顯著延緩葉綠體衰老。進(jìn)一步分析發(fā)現(xiàn)，紫背天葵葉綠體功能與淀粉和可溶性糖含量顯著正相關(guān)，表明糖饑餓引起的碳源匱乏會(huì)影響葉綠體功能?！窘Y(jié)論】蔗糖處理通過(guò)降低紫背天葵采后呼吸強(qiáng)度、失重率和腐爛率、調(diào)控蔗糖代謝、降低葉綠體膜脂氧化程度和維持葉綠體結(jié)構(gòu)完整，抑制了紫背天葵采后品質(zhì)劣變，從而延緩了紫背天葵衰老。

蔗糖代謝；葉綠體；糖饑餓；紫背天葵；保鮮

0 引言

【研究意義】紫背天葵（D.C），又名觀音菜、沖繩菠菜等，性喜溫[1]。紫背天葵是一種藥食同源的高檔蔬菜，富含營(yíng)養(yǎng)物質(zhì)，具有很高的食用以及研究?jī)r(jià)值。由于紫背天葵采后的代謝旺盛，極易失水萎蔫和腐爛，因此保鮮極為需要。紫背天葵在采后階段，為了減少?gòu)?qiáng)光帶來(lái)的蒸騰效應(yīng)和抑制呼吸作用，往往貯藏于弱光或黑暗環(huán)境，但長(zhǎng)期處于黑暗環(huán)境，其自身糖類物質(zhì)逐漸匱乏而發(fā)生糖饑餓，會(huì)引起其他物質(zhì)如蛋白質(zhì)、葉綠素的分解周轉(zhuǎn)，從而加速衰老[2-3]。因此，研究紫背天葵采后糖饑餓影響品質(zhì)變化的規(guī)律以及探索延緩采后糖饑餓的保鮮方法具有積極的意義?！厩叭搜芯窟M(jìn)展】近些年，關(guān)于紫背天葵采后生理和保鮮的研究愈來(lái)愈多，如紫外線C（UV-C）照射[4]、1-甲基環(huán)丙烯（1-methylcyclopropene，1-MCP）[5]和一氧化氮（NO）熏蒸[6]以及納米包裝氣調(diào)等[7]，但都沒(méi)有與采后糖饑餓的結(jié)合研究。目前，關(guān)于采后糖饑餓引發(fā)衰老的相關(guān)研究還鮮有報(bào)道，國(guó)內(nèi)外對(duì)糖饑餓的相關(guān)研究主要集中在動(dòng)植物的生長(zhǎng)發(fā)育階段[8-9]和細(xì)胞水平[10]。植物中糖饑餓的誘導(dǎo)因素主要有弱光、極端溫度、干旱以及澇害等非生物脅迫[11-12]。這些脅迫的共同特點(diǎn)是破壞葉綠體，即通過(guò)破壞光合功能，影響糖類物質(zhì)的生成，進(jìn)而誘發(fā)細(xì)胞自噬相關(guān)基因（）和衰老基因（）的表達(dá)，調(diào)控周轉(zhuǎn)葉綠體內(nèi)的含氮物質(zhì)（如葉綠素和蛋白質(zhì)等）來(lái)響應(yīng)機(jī)體內(nèi)的低碳環(huán)境[13]。Izumi等[14]研究發(fā)現(xiàn)水稻葉片在黑暗處理后，葉綠體自噬周轉(zhuǎn)過(guò)程和碳源狀態(tài)高度相關(guān)，而不是氮源狀態(tài)，揭示葉綠體的自噬周轉(zhuǎn)是由碳源匱乏誘導(dǎo)。IZUMI等[15]后續(xù)研究發(fā)現(xiàn)外源添加蔗糖可以減少黑暗環(huán)境中自噬小泡的生成，證實(shí)在碳源匱乏狀態(tài)下添加外源蔗糖可以抑制葉綠體自噬，暗示蔗糖對(duì)延緩糖饑餓有一定作用。姚笛[16]通過(guò)研究不同可溶性糖浸泡青花菜，發(fā)現(xiàn)蔗糖處理可以減緩青花菜葉綠素以及營(yíng)養(yǎng)物質(zhì)的降解?！颈狙芯壳腥朦c(diǎn)】蔗糖往往被當(dāng)作營(yíng)養(yǎng)液應(yīng)用于花卉的扦插培養(yǎng)，而用于農(nóng)產(chǎn)品采后保鮮的研究較少，外源碳源如蔗糖的處理是否可以延緩蔬菜采后衰老以及維持采后貯藏較高的碳源狀態(tài)還鮮有研究。【擬解決的關(guān)鍵問(wèn)題】在采后利用蔗糖處理紫背天葵，研究蔗糖處理影響紫背天葵采后生理代謝和品質(zhì)變化的規(guī)律，探討蔗糖是否對(duì)紫背天葵采后衰老有抑制作用，為生產(chǎn)實(shí)踐中的保鮮提供新方向。

1 材料與方法

試驗(yàn)于2020—2021年在南京農(nóng)業(yè)大學(xué)食品科技學(xué)院進(jìn)行。

1.1 材料與試劑

1.1.1 材料 紫背天葵，商品成熟度，于2020年11月采摘于蘇州潤(rùn)匯農(nóng)業(yè)基地，要求生理相近、無(wú)機(jī)械損傷和蟲害，當(dāng)天冰溫運(yùn)回實(shí)驗(yàn)室。

1.1.2 試劑 5尿苷二磷酸鈉鹽（UDP）、果糖6磷酸二鈉（F-6-P）、尿苷二磷酸葡萄糖（UDPG）均為生物試劑，源葉生物科技有限公司；蔗糖、果糖以及葡萄糖為色譜純，源葉生物科技有限公司；浸泡用蔗糖以及其余所有試劑均為國(guó)產(chǎn)分析純，壽德試驗(yàn)器材有限公司。

1.1.3 儀器與設(shè)備 Alpha1860A紫外可見分光光度計(jì)，上海譜元有限公司；IMAGINGPAM葉綠素?zé)晒鈾z測(cè)儀，德國(guó)WALZ公司；Hitachi H7650透射電子顯微鏡，日本日立公司；島津LC-20A高效液相ELSD檢測(cè)系統(tǒng)（HPLCELSD），日本Shimadzu公司；H1750R臺(tái)式高速冷凍離心機(jī)，湖南湘儀實(shí)驗(yàn)室儀器開發(fā)有限公司；FE30電導(dǎo)率儀，梅特勒托利多儀器有限公司。

1.2 方法

1.2.1 不同蔗糖濃度處理方法 將新鮮的紫背天葵分別用0（蒸餾水）、4%、8%、12%和16%的蔗糖濃度進(jìn)行浸泡處理，具體處理方式如下：將30株（約300 g）生理相近的植株作為一捆（底部預(yù)留3 cm左右的基部用于浸泡），分別浸泡于50 mL不同濃度蔗糖溶液中，用5號(hào)自封袋作為處理容器，輕柔扎緊袋口，于40 L泡沫箱暗置密封12 h，箱內(nèi)放置0.1% KOH用于吸收CO2。處理完成后隨機(jī)選取4捆分裝于8 L左右的黑色PE塑料袋（用牙簽在塑料袋表面均勻戳20個(gè)小洞）并挽口，每個(gè)處理各3袋，黑暗貯藏于（20±2）℃、濕度（90±5）%環(huán)境下，分別于第-1、0、1、3、5和7天取樣（其中-1天指采摘樣品當(dāng)天，0 d代表蔗糖處理完當(dāng)天，如無(wú)特殊說(shuō)明，本研究指標(biāo)測(cè)定所用材料均為第0、1、3、5和7天取樣樣品），選取去除頂部幼芽后由上往下數(shù)第3、4片葉作為研究材料。

1.2.2 蔗糖濃度的篩選 在第0、1、3和5天分別測(cè)定樣品的呼吸速率[17]、失重率采用差重法、相對(duì)電導(dǎo)率[18]、腐爛率[19]，用于評(píng)價(jià)不同濃度蔗糖的處理效果，選出最佳處理濃度后，用該濃度進(jìn)行后續(xù)的研究。

1.2.3 相關(guān)糖類物質(zhì)與可溶性蛋白的檢測(cè) 淀粉采用酸水解法；可溶性糖采用蒽酮比色法；還原糖采用3, 5二硝基水楊酸法；可溶性蛋白采用考馬斯亮藍(lán)染色法；以上4個(gè)方法均參考曹建康等[20]方法。

葡萄糖、果糖和蔗糖參考高效液相色譜法[21]并稍作修改。1 g樣品用4 mL 80%乙醇50℃ 100 W超聲提取50 min，再80℃水浴1 h，冷卻至室溫后4℃、12 000×離心20 min，收集上清，過(guò)0.45 μm濾膜備用。色譜條件為：流動(dòng)相為70%乙腈，色譜柱為ZORBAX Carbohydrate（4.6 mm×250 mm，5 μm），柱溫為35℃；檢測(cè)條件：檢測(cè)器為ELSD，流速為1 mL?min-1，進(jìn)樣量為20 μL，氮?dú)鈮毫?50 kPa，漂移管溫度為50℃。

1.2.4 蔗糖代謝相關(guān)酶檢測(cè) 取2 g樣品，加入5 mL 100 mmol?L-1Tris（pH 7.2）提取緩沖液（含2 mmol?L-1EDTA、5 mmol?L-1MgCl2、5 mmol?L-1DTT、2%（v/v）乙二醇、0.2%（w/v）BSA和2%（w/v）PVP）渦旋混勻，于4℃下提取10 min，10 000×、4℃離心20 min。收集上清液，用100倍體積上清液的透析液（含1 mmol?L-1EDTA、2.5 mmol?L-1MgCl2、1 mmol?L-1DTT和1%（v/v）乙二醇）于4℃透析24 h，期間多次更換透析液。透析后的提取液保存于4℃，用于酶活性檢測(cè)，其中蔗糖磷酸合成酶（sucrosephosphate synthase，SPS）、蔗糖酸性轉(zhuǎn)化酶（acid invertase，AI）、蔗糖合成酶（sucrose synthase，包括合成方向SS-S和分解方向SS-C）的活性采用WU等[22]的方法，用葡萄糖作標(biāo)準(zhǔn)曲線，總酶活定義為每mg可溶性蛋白單位時(shí)間生成或消耗的葡萄糖含量（mg），單位為U?mg-1protein?？偟矸勖福ˋmylase）采用高俊鳳[23]的方法，其中總淀粉酶活性定義為每mg可溶性蛋白單位時(shí)間水解淀粉生成麥芽糖含量（mg），單位為U?mg-1protein，可溶性蛋白含量檢測(cè)方法與1.2.3一致。

1.2.5 葉綠體膜脂氧化

1.2.5.1 葉綠體提取 參考AUSTIN等[24]研究并稍作修改，取3 g樣品，加入10 mL預(yù)冷的緩沖液A（50 mmol?L-1Tris（pH 3.6），內(nèi)含25 mmol?L-1EDTANa2、1.25 mol?L-1NaCl、0.25 mol?L-1Vc、1.5%（w/v）PVP），振蕩，4℃靜置10 min，渦旋，400目尼龍布過(guò)濾，用玻棒擰干，用5 mL緩沖液A沖洗濾渣，再次擰干，500×、4℃離心5 min，收集上清，用緩沖液定容至10 mL，3 000×、4℃離心10 min，棄上清。加入10 mL緩沖液B（50 mmol?L-1Tris（pH 8.0），內(nèi)含25 mmol?L-1EDTANa2、1.25 mol?L-1NaCl、2.5 mmol?L-1DTT、0.1% BSA）振蕩，靜置5 min，渦旋，2 000×、4℃離心10 min，棄上清，再加10 mL緩沖液B重復(fù)操作。加入10 mL緩沖液C（50 mmol?L-1Tris（pH 8.0），內(nèi)含0.25 mol?L-1NaCl、20 mmol?L-1EDTANa2）振蕩，靜置5 min，渦旋，3 000×、4℃離心10 min，棄上清，再加3 mL緩沖液C重復(fù)操作，棄上清，最后用3 mL緩沖液C將葉綠體沉淀重懸后低溫保存。

1.2.6 葉綠體超微結(jié)構(gòu) 參考吳正鋒等[26]方法，選取第-1、3、5和7天的葉片，在葉片主葉脈兩側(cè)用刀片切取大小為4 mm×2 mm的組織塊，浸入2.5%（v/v）戊二醛溶液中，4℃初固定24 h以上，然后采用1%（w/v）的鋨酸溶液增加固定，用0.1 mol?L-1的磷酸緩沖液反復(fù)洗滌多次，固定后的樣品用梯度乙醇丙醇脫水（丙酮洗滌脫水），最后包埋在Spur環(huán)氧樹脂中。在超微切片機(jī)上切下超薄切片，用2.5%（w/v）乙酸鈾酰染色，隨后用檸檬酸染色后固定到銅網(wǎng)上，最后用透射電子顯微鏡以80 kV的加速電壓觀察、拍照。

1.2.7 葉綠素?zé)晒?參考田雨等[27]方法，采用IMAGINGPAM葉綠素?zé)晒鈾z測(cè)儀測(cè)定第-1、0、1、3、5和7天葉片的葉綠素?zé)晒鈪?shù)，每片葉片選取7個(gè)點(diǎn)，每個(gè)處理取20片獨(dú)立的葉片。葉片暗處理30 min后，測(cè)定葉片的初始熒光（F0）和最大熒光（Fm），計(jì)算最大光化學(xué)效率（FmF0）/Fm，即Fv/Fm。接著打開光化光，待熒光值穩(wěn)定后，測(cè)定葉片的穩(wěn)態(tài)熒光（Fs），最后打開飽和脈沖光，測(cè)定光適應(yīng)下的最大熒光產(chǎn)量（Fm'），計(jì)算實(shí)際光化學(xué)效率QY=（Fm'-Fs）/Fm'。

1.3 數(shù)據(jù)統(tǒng)計(jì)分析

所有試驗(yàn)均為3個(gè)生物學(xué)重復(fù)，利用SPSS 22.0進(jìn)行單因素方差分析和t檢驗(yàn)顯著性檢驗(yàn)以及pearson相關(guān)性分析，測(cè)定結(jié)果用Mean±SD表示，同一時(shí)間組間差異顯著性通過(guò)字母標(biāo)示法標(biāo)示，不同字母表示差異顯著（＜0.05），并使用SigmaPlot 11.0作圖。

2 結(jié)果

2.1 不同濃度蔗糖處理紫背天葵的效果

經(jīng)過(guò)蔗糖處理后，紫背天葵在貯藏后期的呼吸強(qiáng)度都出現(xiàn)了上升。與對(duì)照對(duì)比，除了16%蔗糖處理，其他濃度的處理都先上升后下再上升，前期上升的原因可能是蔗糖為紫背天葵提供了外源碳源。其中12%的蔗糖處理后期上升最緩慢。16%的蔗糖處理使紫背天葵在前期的呼吸速率下降，后期則上升。

不同濃度蔗糖處理中，12%的蔗糖在貯藏后期保持紫背天葵水分的效果最好，但在前3 d天貯藏期間各處理間沒(méi)有顯著差異。與對(duì)照相比，各濃度的蔗糖處理都會(huì)使紫背天葵的細(xì)胞滲透率增加，但增加的程度并不與濃度成正相關(guān)，其中4%和16%蔗糖處理組的相對(duì)電導(dǎo)率增加程度最明顯，可能是低濃度和高濃度的蔗糖處理使紫背天葵處于脅迫狀態(tài)，誘發(fā)體內(nèi)膜脂的氧化。在各濃度處理中，12%的蔗糖處理可以明顯降低紫背天葵在貯藏期間的腐爛率（圖1）。綜上，12%蔗糖處理具有更好的保鮮作用，因此以該濃度開展下一步研究。

不同小寫字母代表顯著差異（P＜0.05）。下同 Different lowercase letters indicate significant difference (P＜0.05).The same as below

2.2 蔗糖處理對(duì)紫背天葵淀粉、可溶性糖、還原糖和可溶性蛋白含量的影響

蔗糖處理可顯著延緩可溶性糖、淀粉和可溶性蛋白含量在貯藏期間的下降（圖2）。對(duì)照組的可溶性糖含量和還原糖含量在處理當(dāng)天到第1天的下降速度顯著大于蔗糖處理組，表明紫背天葵在早期暗貯藏期間消耗的儲(chǔ)備物質(zhì)較多，到了第3天略有上升，可能是由于淀粉的水解產(chǎn)生了較多的小分子可溶性糖。在貯藏的第3天和第5天，對(duì)照組的還原糖含量顯著高于蔗糖處理組，第7天時(shí)處理組的還原糖含量高于對(duì)照組。貯藏期間可溶性蛋白的變化可以反映蛋白質(zhì)的降解情況，從而可衡量機(jī)體的衰老程度[29]，對(duì)照組的可溶性蛋白含量在貯藏期間都低于蔗糖處理組，特別是貯藏后期，暗示對(duì)照組在貯藏期間由于碳源匱乏，加速了蛋白的分解利用。在貯藏第7天，處理組與對(duì)照組相比，淀粉含量比為1.09倍，可溶性糖含量比為1.1倍，還原糖含量比為1.8，可溶性蛋白含量比為2.2倍，因此，蔗糖處理可以顯著抑制紫背天葵糖類物質(zhì)和可溶性蛋白的降解。

2.3 蔗糖處理對(duì)紫背天葵蔗糖代謝的影響

2.3.1 對(duì)蔗糖合成的影響 SPS和SS-S作為蔗糖的主要合成酶，影響蔗糖的合成與代謝[30]。對(duì)照組的SPS活性在貯藏期間都高于蔗糖處理組，呈上升趨勢(shì)，而處理組在貯藏期間保持較為穩(wěn)定的活性（圖3）。處理組與對(duì)照組的SS-S活性在貯藏前期基本不變，而到貯藏后期，處理組與對(duì)照組均上升。在貯藏前3 d，SPS活性與蔗糖含量呈顯著正相關(guān)（=0.824，=0.044＜0.05），SS-S活性與蔗糖含量無(wú)顯著相關(guān)性（=0.258，=0.622＞0.05）；到了貯藏后期，SPS活性與蔗糖含量呈負(fù)相關(guān)（=-0.475，=0.341＞0.05），SS-S活性與蔗糖含量也呈負(fù)相關(guān)（=-0.437，=0.387＞0.05），但相關(guān)性均不顯著，暗示紫背天葵蔗糖含量在貯藏前期主要由SPS正調(diào)控，在貯藏后期則由SPS和SS-S共同負(fù)調(diào)控。淀粉酶（Amylase）將淀粉水解成小分子的糖類，進(jìn)而生成蔗糖的合成前體物質(zhì)如UDPG和F-6-P，對(duì)照組的淀粉酶活性在貯藏后期，顯著高于處理組，淀粉酶活性與蔗糖含量呈顯著負(fù)相關(guān)（=-0.816，=0.038＜0.05），暗示處理組的紫背天葵在吸收外源蔗糖后，可以在貯藏后期保持較穩(wěn)定的蔗糖含量，從而抑制淀粉酶活性。

圖2 蔗糖處理對(duì)貯藏期間紫背天葵淀粉（A）、可溶性糖（B）、還原糖（C）和可溶性蛋白（D）含量的影響

圖3 蔗糖處理對(duì)紫背天葵蔗糖合成的影響

2.3.2 對(duì)蔗糖分解的影響 蔗糖的水解酶主要有SSC和AI，對(duì)碳源的轉(zhuǎn)運(yùn)、分配利用和糖信號(hào)轉(zhuǎn)導(dǎo)有重要作用[31]。對(duì)照組和處理組的SSC活性在貯藏期間沒(méi)有顯著差異，到了貯藏后期，處理組和對(duì)照組的SSC活性稍微上升。蔗糖處理組的AI活性在貯藏第1天上升，第3天開始下降，貯藏后期活性緩慢上升；而對(duì)照組與處理組完全相反，對(duì)照組的AI活性在貯藏前期基本不變，到貯藏后期活性顯著上升（圖4）。葡萄糖與果糖含量在貯藏期間的變化趨勢(shì)基本一致，在貯藏前3 d，果糖含量與SS-C活性呈顯著正性相關(guān)（=0.852，=0.031＜0.05），與AI活性無(wú)顯著正相關(guān)性（=0.728，=0.101＞0.05）。但在貯藏后期，果糖含量與AI活性高度相關(guān)（=0.973，=0.027＜0.05），而與SS-C活性無(wú)顯著相關(guān)性（=-0.494，=0.506＞0.05）。暗示蔗糖的分解由SS-C和AI共同負(fù)責(zé)，兩者的主導(dǎo)作用與貯藏時(shí)期有關(guān)。

圖4 蔗糖處理對(duì)紫背天葵蔗糖分解的影響

2.4 蔗糖處理對(duì)紫背天葵葉綠體膜脂氧化和超微結(jié)構(gòu)的影響

2.4.1 葉綠體膜脂氧化 MDA是膜脂氧化的產(chǎn)物，其含量可以評(píng)價(jià)細(xì)胞的膜脂氧化程度[32]。由圖5可知，對(duì)照組和處理組的葉綠體MDA含量在貯藏期間都先上升后下降再緩慢上升，對(duì)照組葉綠體的MDA含量在貯藏期間均高于處理組，表明對(duì)照組的葉綠體在貯藏期間發(fā)生的膜脂氧化程度顯著高于處理組。LOX作為膜脂氧化的關(guān)鍵酶，和果蔬采后衰老具有密切關(guān)系。對(duì)照組的LOX活性在貯藏期間均高于處理組，且貯藏期間的活性變化與MDA含量變化極顯著相關(guān)，相關(guān)系數(shù)=0.81（＜0.01），表明葉綠體的膜脂氧化主要由LOX引起。說(shuō)明對(duì)照組葉綠體的膜脂氧化高于處理組，證實(shí)蔗糖處理可以抑制葉綠體LOX活性，從而降低葉綠體的膜脂氧化程度。

圖5 紫背天葵葉綠體貯藏期間MDA（A）含量和LOX（B）活性變化

2.4.2 葉綠體超微結(jié)構(gòu) 處理前，紫背天葵的細(xì)胞壁清晰可見，細(xì)胞膜厚實(shí)光滑，葉綠體呈細(xì)長(zhǎng)狀，類囊體膜清晰分明，噬餓顆粒和胞質(zhì)雜質(zhì)少。第3天時(shí)，對(duì)照組細(xì)胞出現(xiàn)了明顯的質(zhì)壁分離現(xiàn)象，基粒片層開始出現(xiàn)分離，胞質(zhì)中雜質(zhì)增加，而蔗糖處理則未出現(xiàn)質(zhì)壁分離現(xiàn)象，胞質(zhì)雜質(zhì)增加不明顯。第5天時(shí)，對(duì)照組的細(xì)胞膜出現(xiàn)褶皺并發(fā)生了斷裂，細(xì)胞膜變薄，葉綠體的膜結(jié)構(gòu)變得模糊，葉綠體形狀開始由細(xì)長(zhǎng)狀變?yōu)闄E圓狀，胞質(zhì)雜質(zhì)與第3天相比變化不明顯，而處理組的細(xì)胞膜未出現(xiàn)斷裂現(xiàn)象，葉綠體膜結(jié)構(gòu)完整，噬餓顆粒稍微增多，胞質(zhì)雜質(zhì)變化仍舊不明顯。到貯藏第7天時(shí)，對(duì)照組的細(xì)胞膜已經(jīng)完全破裂，葉綠體出現(xiàn)空腔并開始崩解，胞質(zhì)雜質(zhì)明顯增多，葉綠體形狀變?yōu)榍驙?；而處理組中葉綠體未出現(xiàn)明顯的崩解，但基粒片層發(fā)生卷曲，膜結(jié)構(gòu)變薄和模糊，胞質(zhì)雜質(zhì)開始增多。以上證實(shí)了蔗糖處理可以延緩葉綠體結(jié)構(gòu)的改變和葉綠體的崩解（圖6）。

2.4.3 葉綠體功能與葉綠素?zé)晒?實(shí)際光化學(xué)效率和最大光化學(xué)效率可以反映植物光合能力的強(qiáng)弱，從而表征葉綠體的能力，研究紫背天葵在貯藏期間葉片光化學(xué)效率的變化，可以反映植株在貯藏期間的衰老程度。從圖7可見，蔗糖處理可以顯著抑制紫背天葵在貯藏期間光合能力的下降，維持紫背天葵葉綠體的正常功能，證實(shí)蔗糖處理可以延緩紫背天葵葉綠體的衰老。紫背天葵總?cè)~綠素含量的變化趨勢(shì)與實(shí)際光化學(xué)效率變化基本一致，兩者具有顯著正相關(guān)（=0.911，=0.002＜0.01），證實(shí)葉綠體的光化學(xué)效率變化與葉綠素降解有關(guān)。NPQ表征葉綠素分子在捕獲光能后以熱能形式耗散多余光能部分，可以表征葉綠素含量和光合效率。從NPQ貯藏變化圖中可以看出，蔗糖處理可以顯著抑制貯藏期間耗散熱能的增加，保持較高的光化學(xué)效率，進(jìn)而表征了葉綠體較好的生理功能。

2.4.4 葉綠體生理功能與脂氧合酶相關(guān)性分析 葉綠體實(shí)際光化學(xué)效率與淀粉、可溶性糖、還原糖、可溶性蛋白和葉綠素等物質(zhì)具有顯著或極顯著的正相關(guān)性，而與蔗糖單個(gè)小分子物質(zhì)不相關(guān)。葉綠體LOX則與實(shí)際光化學(xué)效率相反，LOX與蔗糖小分子物質(zhì)顯著負(fù)相關(guān)（表1）。因此，12%蔗糖處理紫背天葵可以顯著維持貯藏期間淀粉、可溶性糖、還原糖、可溶性蛋白和葉綠素等物質(zhì)的含量，進(jìn)而維持葉綠體的生理功能，同時(shí)為紫背天葵提供外源蔗糖，在貯藏后期保持了較高的蔗糖含量，這對(duì)延緩葉綠體LOX活性的升高可能有一定的作用。

圖A為-1 d的葉綠體超微結(jié)構(gòu)，B、D、F分別為對(duì)照組3、5和7 d葉綠體超微結(jié)構(gòu)；C、E、G分別為處理組3、5和7 d葉綠體超微結(jié)構(gòu)。CP：葉綠體；CM：細(xì)胞膜；W：細(xì)胞壁；S：淀粉粒；O：噬鋨顆粒；GL：基粒片層；VS：基粒片層囊泡化

表1 紫背天葵實(shí)際光化學(xué)效率、LOX活性與相關(guān)糖類物質(zhì)、可溶性蛋白和葉綠素含量的相關(guān)性

**表示具有極顯著相關(guān)性（＜0.01）；*表示具有顯著相關(guān)性（＜0.05）

** represent extremely significant correlation (＜0.01), * represent extremely significant correlation (＜0.05)

3 討論

在采后貯藏期間，紫背天葵采前所積累的營(yíng)養(yǎng)物質(zhì)逐漸消耗殆盡，加上葉綠體光合作用被抑制，組織細(xì)胞長(zhǎng)期處于糖饑餓逆境中，細(xì)胞衰老的進(jìn)程加快。

3.1 蔗糖延緩紫背天葵采后品質(zhì)劣變

12%蔗糖處理在貯藏前期的呼吸強(qiáng)度高于對(duì)照，但在貯藏后期顯著抑制呼吸強(qiáng)度的上升，特別是貯藏結(jié)束時(shí)，處理組的呼吸強(qiáng)度只有對(duì)照組的61%，這可能是貯藏前期蔗糖處理為紫背天葵提供了足夠的能量，從而使呼吸強(qiáng)度上升；也可能是蔗糖參與了信號(hào)轉(zhuǎn)導(dǎo)，讓機(jī)體啟動(dòng)了抗逆的前期準(zhǔn)備以適應(yīng)逆境脅迫，從而在貯藏后期保持較低的呼吸強(qiáng)度，減少了貯藏后期紫背天葵糖類物質(zhì)的消耗。在貯藏后期，處理組與對(duì)照組相比，淀粉含量、可溶性糖含量、還原糖含量、蔗糖含量和可溶性蛋白含量等保留明顯高于對(duì)照組，該結(jié)果與姜麗等[33]植酸處理結(jié)果相近，特別是糖類物質(zhì)，蔗糖處理的效果要優(yōu)于植酸。ARAúJO等[34]認(rèn)為，植株在糖饑餓狀態(tài)下，蛋白質(zhì)可被降解成游離氨基酸作為糖類物質(zhì)的替代物。ONO等[35]通過(guò)基質(zhì)靶向熒光蛋白和熒光蛋白標(biāo)記葉綠體蛋白，證實(shí)葉綠體蛋白的降解可通過(guò)一種包含小體（RCB）轉(zhuǎn)運(yùn)到液泡中進(jìn)行，該過(guò)程主要由調(diào)控[36]。當(dāng)受損的葉綠體越多，葉綠體自噬過(guò)程被激活，相應(yīng)的表達(dá)水平提高，以精準(zhǔn)地調(diào)控受損葉綠體的清除[37]，加速氮素的周轉(zhuǎn)利用。對(duì)照組在貯藏期間，由于糖類物質(zhì)消耗過(guò)快，紫背天葵的糖饑餓加重，加上葉綠體結(jié)構(gòu)受損比處理組嚴(yán)重，導(dǎo)致對(duì)照組的氮素周轉(zhuǎn)利用加劇，因此，非糖物質(zhì)如蛋白質(zhì)和葉綠素的降解更快，從而加速紫背天葵品質(zhì)劣變。蔗糖處理可顯著延緩含碳和含氮物質(zhì)的消耗，從而抑制了紫背天葵的衰老，但蔗糖參與碳源的分配調(diào)控機(jī)制以及碳源與氮源之間的轉(zhuǎn)導(dǎo)調(diào)控模式還有待研究。

圖7 蔗糖處理對(duì)紫背天葵最大光化學(xué)效率（A）和實(shí)際光化學(xué)效率QY（B）、非光化學(xué)淬滅NPQ（C）以及總?cè)~綠素含量（D）的影響

Fig.7 The effects of sucrose treatment on the maximum photochemical efficiency (A), QY (B), the change of NPQ (C) and Chlorophyll content (D) ofduring storage

3.2 外源蔗糖處理調(diào)控蔗糖代謝

蔗糖作為大多數(shù)光合作物同化產(chǎn)物的主要運(yùn)輸和卸載形式，對(duì)植物的能量代謝具有重要影響，同時(shí)也是橋接淀粉和己糖的重要代謝樞紐[31]。本研究結(jié)果表明，貯藏前期SPS活性與蔗糖含量呈顯著正相關(guān)，但在貯藏后期呈負(fù)相關(guān)，暗示紫背天葵在蔗糖充足的環(huán)境下，SPS是蔗糖合成的正向調(diào)控酶，而在蔗糖消耗殆盡時(shí)，蔗糖的合成則由SPS和SS-S共同負(fù)調(diào)控，該結(jié)果與田夢(mèng)瑤等[38]的研究不完全一致。處理組在貯藏期間的蔗糖合成酶均顯著低于對(duì)照組，可能是蔗糖處理為紫背天葵提供外源蔗糖，從而抑制了蔗糖合成酶的活性。BALIBREA等[39]發(fā)現(xiàn)胞質(zhì)轉(zhuǎn)化酶基因（）的過(guò)表達(dá)可以調(diào)控轉(zhuǎn)化酶活性的升高和延緩葉片的衰老。貯藏前期，對(duì)照組保持了較高的SPS活性和較低的AI活性，處理組則相反，暗示在蔗糖充足的情況下，上調(diào)了AI活性同時(shí)抑制了SPS活性，為抗逆做好了物質(zhì)上的準(zhǔn)備，以延緩衰老進(jìn)程。而對(duì)照組在貯藏第5天的AI活性顯著高于處理組，暗示對(duì)照組為了延緩衰老，在貯藏后期的逆境誘導(dǎo)下才上調(diào)了AI活性，這也解釋了為什么貯藏前期蔗糖的分解主要與SS-C活性高度相關(guān)，而在貯藏后期與AI活性高度相關(guān)。應(yīng)對(duì)糖饑餓逆境，12%蔗糖處理組和對(duì)照組對(duì)SPS與AI兩種截然不同的調(diào)控，暗示SPS和AI可能是響應(yīng)糖饑餓的關(guān)鍵酶，SS-S和SS-C可能主要負(fù)責(zé)平衡蔗糖正常的基礎(chǔ)代謝，并非參與逆境響應(yīng)的關(guān)鍵酶。BISWAL等[40]通過(guò)糖受體證實(shí)了蔗糖參與植株抗逆信號(hào)的轉(zhuǎn)導(dǎo)，因此，推測(cè)蔗糖也可能參與紫背天葵糖饑餓的信號(hào)轉(zhuǎn)導(dǎo)，但具體是調(diào)控上游基因表達(dá)還是調(diào)控SPS和AI的活性還不清楚，后續(xù)可深入研究蔗糖參與紫背天葵糖饑餓的轉(zhuǎn)導(dǎo)模式。鑒于蔗糖處理對(duì)紫背天葵響應(yīng)采后糖饑餓有積極作用，因此后續(xù)還可探究采前蔗糖處理的實(shí)際效果與可行性。

3.3 蔗糖延緩葉綠體衰老

根據(jù)表1的相關(guān)性分析，葉綠體的衰老和多種物質(zhì)的消耗高度相關(guān)，暗示大量物質(zhì)的消耗是引起葉綠體崩解周轉(zhuǎn)的主要原因。葉綠體作為葉片氮含量最高（富含二磷酸核酮糖羧化酶和葉綠素）的細(xì)胞器[41]，是細(xì)胞氮素周轉(zhuǎn)利用的首選對(duì)象[42]。目前關(guān)于葉綠體的周轉(zhuǎn)降解途徑主要有兩種，一種是通過(guò)液泡中的蛋白水解酶[43]，另一種是葉綠體自身水解酶和液泡中的蛋白水解酶共同參與作用[44]。有研究證明葉綠體蛋白的降解與葉綠體數(shù)量上的減少在時(shí)空上并不同步[45]，暗示葉綠體的崩解機(jī)制比較復(fù)雜。在糖饑餓逐漸加劇下，貯藏后期對(duì)照組的葉綠體崩解程度顯著高于處理組，且葉綠體LOX與蔗糖具有顯著負(fù)相關(guān)，暗示葉綠體的膜脂氧化可能與蔗糖的減少有關(guān)。趙曉幗等[46]與胡月等[47]研究發(fā)現(xiàn)蔗糖處理可以維持研究材料較高的過(guò)氧化物酶、超氧陰離子歧化酶和抗壞血酸過(guò)氧化物酶的活性，從而提高機(jī)體的抗氧化能力，說(shuō)明蔗糖對(duì)降低膜脂氧化具有潛在的作用。在LOX與葉綠體實(shí)際光化學(xué)效率的相關(guān)性分析中發(fā)現(xiàn)，LOX與實(shí)際光化學(xué)效率并無(wú)顯著的相關(guān)性，暗示葉綠體衰老并非由單個(gè)因素誘導(dǎo)，葉綠體的膜脂氧化可能只是其中的一個(gè)誘導(dǎo)因子[48]。蔗糖可通過(guò)抑制糖類物質(zhì)、含氮物質(zhì)的消耗與降低膜脂氧化來(lái)延緩葉綠體衰老，但蔗糖具體是如何參與調(diào)控的分子機(jī)制還有待研究。

根據(jù)以上的分析，簡(jiǎn)單繪制了蔗糖處理延緩紫背天葵采后糖饑餓的機(jī)制，如圖8所示。

紅色/綠色表示蔗糖處理組與對(duì)照組相比，酶活性或者物質(zhì)含量顯著高于/低于對(duì)照組，白色代表處理組與對(duì)照組無(wú)顯著差異（P＜0.05）；虛線表示具體調(diào)控的方式或參與的形式還不確定

4 結(jié)論

蔗糖處理通過(guò)降低紫背天葵貯藏期間的呼吸強(qiáng)度、失重率和腐爛率，抑制蔗糖代謝，降低葉綠體膜脂氧化程度，維持葉綠體功能與結(jié)構(gòu)完整性，延緩了紫背天葵采后品質(zhì)的劣變和葉綠體衰老，減緩了采后糖饑餓對(duì)紫背天葵的影響。

[1] QIU X L, GUO Y X, ZHANG Q F.Chemical profile and antioxidant activity ofDC.ethanolic extract.International Journal of Food Properties, 2018, 21(1): 407-415.doi: 10.1080/10942912.2018.1424199.

[2] BUCKNER B, JANICK-BUCKNER D, GRAY J, JOHAL G S.Cell-death mechanisms in maize.Trends in Plant Science, 1998, 3(6): 218-223.doi: 10.1016/S1360-1385(98)01254-0.

[3] BLEECKER A B, PATTERSON S E.Last exit: senescence, abscission, and meristem arrest in.The Plant Cell, 1997, 9(7): 1169-1179.doi: 10.1105/tpc.9.7.1169.

[4] 施衡樂(lè), 吳偉杰, 郜海燕, 韓延超, 陳杭君, 劉瑞玲.短波紫外線處理對(duì)紫背天葵采后貯藏品質(zhì)的影響.核農(nóng)學(xué)報(bào), 2018, 32(7): 1377-1383.

SHI H L, WU W J, GAO H Y, HAN Y C, CHEN H J, LIU R L.Effect of UV-C treatment on post-harvest storage quality of.Journal of Nuclear Agricultural Sciences, 2018, 32(7): 1377-1383.(in Chinese)

[5] 張飛, 石潔, 謝意通, 姜麗.1-甲基環(huán)丙烯處理對(duì)采后紫背天葵抗氧化系統(tǒng)的影響.食品科學(xué), 2022, 43(1): 164-170.doi: 10.7506/ spkx1002-6630-20201219-222.

ZHANG F, SHI J, XIE Y T, JIANG L.Effect of 1-methylcyclopropene treatment on the antioxidant system ofDC.Food Science, 2022, 43(1): 164-170.doi: 10.7506/spkx1002-6630-20201219- 222.(in Chinese)

[6] 許昕.紫背天葵銅/鋅超氧化物歧化酶基因克隆和采后處理對(duì)其表達(dá)的影響[D].南京: 南京農(nóng)業(yè)大學(xué), 2017: 65.

XU X.Copper/zinc supperoxide dismutase gene cloning ofD.C and its expression after various postharvest treatments [D].Nanjing: Nanjing Agricultural University, 2017: 65.(in Chinese)

[7] JIANG L, FENG L, HOU T Y, YU Z F.Establishment of a mathematical model for treatment ofDC.by nano-packaging in combination with controlled atmosphere.Food Science, 2014, 35(16): 238-243.(in Chinese)

[8] VICKY B W, TANIA P, ELIZABETH H, EMILY B, OK L P, GIL N H, LIN J F, SHU-HSING W, JODI S, KIMITSUNE I, LEAVER C J.Comparative transcriptome analysis reveals significant differences in gene expression and signalling pathways between developmental and dark/starvation-induced senescence in.The Plant Journal: for Cell and Molecular Biology, 2005, 42(4): 567-585.

[9] BAENA-GONZáLEZ E, ROLLAND F, THEVELEIN J M, SHEEN J.A central integrator of transcription networks in plant stress and energy signalling.Nature, 2007, 448(7156): 938-942.doi: 10.1038/ nature06069.

[10] YU S M.Cellular and genetic responses of plants to sugar Starvation1.Plant Physiology, 1999, 121(3): 687-693.doi: 10.1104/pp.121.3.687.

[11] BAENA-GONZáLEZ E, SHEEN J.Convergent energy and stress signaling.Trends in Plant Science, 2008, 13(9): 474-482.doi: 10.1016/j.tplants.2008.06.006.

[12] MCDOWELL N, POCKMAN W T, ALLEN C D, BRESHEARS D D, COBB N, KOLB T, PLAUT J, SPERRY J, WEST A, WILLIAMS D G, YEPEZ E A.Mechanisms of plant survival and mortality during drought: why do some plants survive while others succumb to drought? The New Phytologist, 2008, 178(4): 719-739.doi: 10.1111/j.1469- 8137.2008.02436.x.

[13] IZUMI M, NAKAMURA S, LI N.Autophagic turnover of chloroplasts: Its roles and regulatory mechanisms in response to sugar starvation.Frontiers in Plant Science, 2019, 10: 280.doi: 10.3389/ fpls.2019.00280.

[14] IZUMI M, WADA S, MAKINO A, ISHIDA H.The autophagic degradation of chloroplasts via rubisco-containing bodies is specifically linked to leaf carbon status but not nitrogen status in.Plant Physiology, 2010, 154(3): 1196-1209.doi: 10.1104/pp.110.158519.

[15] IZUMI M, HIDEMA J, WADA S, KONDO E, KURUSU T, KUCHITSU K, MAKINO A, ISHIDA H.Establishment of monitoring methods for autophagy in rice reveals autophagic recycling of chloroplasts and root plastids during energy limitation.Plant Physiology, 2015, 167(4): 1307-1320.doi: 10.1104/pp.114.254078.

[16] 姚迪.光照和可溶性糖處理對(duì)青花菜保鮮效果及其機(jī)理研究[D].南京: 南京農(nóng)業(yè)大學(xué), 2013: 53.

YAO D.Effects of light and soluble sugar treatments on quality maintenance and mechanism in postharvest broccoli florets [D].Nanjing: Nanjing Agricultural University, 2013: 53.(in Chinese)

[17] 任亞梅.獼猴桃果實(shí)葉綠素代謝及生理特性研究[D].楊凌: 西北農(nóng)林科技大學(xué), 2009.

REN Y M.Study on chlorophyll metabolism and physiology characteristics of kiwifruit [D].Yangling: Northwest A & F University, 2009.(in Chinese)

[18] SITBON F, HENNION S, LITTLE C H A, SUNDBERG B.Enhanced ethylene production and peroxidase activity in IAA-overproducing transgenic tobacco plants is associated with increased lignin content and altered lignin composition.Plant Science, 1999, 141(2): 165-173.doi: 10.1016/S0168-9452(98)00236-2.

[19] 呂恩利, 陸華忠, 楊松夏, 趙俊宏, 田慶立.氣調(diào)運(yùn)輸包裝方式對(duì)荔枝保鮮品質(zhì)的影響.現(xiàn)代食品科技, 2016, 32(4): 156-160, 93.doi:10.13982/j.mfst.1673-9078.2016.4.025.

Lü E L, LU H Z, YANG S X, ZHAO J H, TIAN Q L.Effects of packaging methods on fresh-keeping quality ofduring controlled atmosphere transport.Modern Food Science and Technology, 2016, 32(4): 156-160, 93.doi: 10.13982/j.mfst.1673-9078.2016.4.025.(in Chinese)

[20] 曹建康, 姜微波, 趙玉梅.果蔬采后生理生化實(shí)驗(yàn)指導(dǎo).北京:中國(guó)輕工業(yè)出版社, 2017: 56-78.

CAO J K, JIANG W W, ZHAO Y M.Guidance on postharvest physiological and biochemical experiments of fruits and vegetables.Beijing: China Light Industry Press, 2017: 56-78.(in Chinese)

[21] 潘儼, 孟新濤, 車?guó)P斌, 薛素琳, 張婷, 趙世榮, 廖康.庫(kù)爾勒香梨果實(shí)發(fā)育成熟的糖代謝和呼吸代謝響應(yīng)特征.中國(guó)農(nóng)業(yè)科學(xué), 2016, 49(17): 3391-3412.

PAN Y, MENG X T, CHE F B, XUE S L, ZHANG T, ZHAO S R, LIAO K.Metabolic profiles of sugar metabolism and respiratory metabolism of Korla pear (Yu) throughout fruit development and ripening.Scientia Agricultura Sinica, 2016, 49(17): 3391-3412.(in Chinese)

[22] WU Z F, TU M M, YANG X P, XU J H, YU Z F.Effect of cutting and storage temperature on sucrose and organic acids metabolism in postharvest melon fruit.Postharvest Biology and Technology, 2020, 161(C): 111081.doi: 10.1016/j.postharvbio.2019.111081.

[23] 高俊鳳.植物生理學(xué)實(shí)驗(yàn)指導(dǎo).北京:高等教育出版社, 2006: 188-191.

GAO J F.Experimental guidance of plant physiology.Beijing: Higher Education Press, 2006: 188-191.(in Chinese)

[24] AUSTIN J, WEBBER A N.Photosynthesis inmutants with reduced chloroplast number.Photosynthesis Research, 2005, 85(3): 373-384.doi: 10.1007/s11120-005-7708-x.

[25] SONG L L, YI R X, LUO H B, JIANG L, GU S M, YU Z F.Postharvest 1-methylcyclopropene application delays leaf yellowing of pak choi () by improving chloroplast antioxidant capacity and maintaining chloroplast structural integrity during storage at 20℃.Scientia Horticulturae, 2020, 270: 109466.doi: 10.1016/j.scienta.2020.109466.

[26] 吳正鋒, 孫學(xué)武, 王才斌, 鄭亞萍, 萬(wàn)書波, 劉俊華, 鄭永美, 吳菊香, 馮昊, 于天一.弱光脅迫對(duì)花生功能葉片RuBP羧化酶活性及葉綠體超微結(jié)構(gòu)的影響.植物生態(tài)學(xué)報(bào), 2014, 38(7): 740-748.

WU Z F, SUN X W, WANG C B, ZHENG Y P, WAN S B, LIU J H, ZHENG Y M, WU J X, FENG H, YU T Y.Effects of low light stress on rubisco activity and the ultrastructure of chloroplast in functional leaves of peanut.Chinese Journal of Plant Ecology, 2014, 38(7): 740-748.(in Chinese)

[27] 田雨, 王旭文, 韓煥勇, 羅宏海, 王方永.施氮量對(duì)等行距密植棉花氣體交換和葉綠素?zé)晒馓匦缘挠绊?新疆農(nóng)業(yè)科學(xué), 2020, 57(11): 1987-1997.

TIAN Y, WANG X W, HAN H Y, LUO H H, WANG F Y.Effects of nitrogen application rates on gas exchange and chlorophyll fluorescence parameters of cotton under wide-row spacing with high density.Xinjiang Agricultural Sciences, 2020, 57(11): 1987-1997.(in Chinese)

[28] BüCHERT A M, CIVELLO P M, MARTíNEZ G A.Chlorophyllase versus pheophytinase as candidates for chlorophyll dephytilation during senescence of broccoli.Journal of Plant Physiology, 2011, 168(4): 337-343.doi: 10.1016/j.jplph.2010.07.011.

[29] LESHEM Y Y.Plant senescence processes and free radicals.Free Radical Biology & Medicine, 1988, 5(1): 39-49.doi: 10.1016/0891- 5849(88)90060-3.

[30] DAIE J.Cytosolic fructose-1, 6-bisphosphatase: a key enzyme in the sucrose biosynthetic pathway.Photosynthesis Research, 1993, 38(1): 5-14.doi: 10.1007/BF00015056.

[31] KOCH K.Sucrose metabolism: regulatory mechanisms and pivotal roles in sugar sensing and plant development.Current Opinion in Plant Biology, 2004, 7(3): 235-246.doi: 10.1016/j.pbi.2004.03.014.

[32] CAMPOS P S, QUARTIN V, RAMALHO J C, NUNES M A.Electrolyte leakage and lipid degradation account for cold sensitivity in leaves ofsp plants.Journal of Plant Physiology, 2003, 160(3): 283-292.doi: 10.1078/0176-1617-00833.

[33] 姜麗, 馮莉, 侯田瑩, 郁志芳.植酸處理對(duì)冷藏期間紫背天葵品質(zhì)的影響.食品工業(yè)科技, 2015, 36(7): 336-341.doi: 10.13386/j.issn1002-0306.2015.07.062.

JIANG L, FENG L, HOU T Y, YU Z F.Effect of phytic acid onD.C quality during cold storage.Science and Technology of Food Industry, 2015, 36(7): 336-341.doi: 10.13386/j.issn1002-0306.2015.07.062.(in Chinese)

[34] ARAUJO W L, TOHGE T, ISHIZAKI K, LEAVER C J, FERNIE A R.Protein degradation - an alternative respiratory substrate for stressed plants.Trends in Plant Science, 2011, 16(9): 489-498.

[35] ONO Y, WADA S, IZUMI M, MAKINO A, ISHIDA H.Evidence for contribution of autophagy to rubisco degradation during leaf senescence in.Plant, Cell & Environment, 2013, 36(6): 1147-1159.doi: 10.1111/pce.12049.

[36] HIROYUKI I, KOHKI Y, MASANORI I, DANIEL R, YUICHI Y, AMANE M, YOSHINORI O, HANSON M R, TADAHIKO M.Mobilization of rubisco and stroma-localized fluorescent proteins of chloroplasts to the vacuole by an ATG gene-dependent autophagic process.Plant Physiology, 2008, 148(1): 142-55.doi: 10.1104/pp.108.122770.

[37] NAKAMURA S, IZUMI M.Regulation of chlorophagy during photoinhibition and senescence: Lessons from mitophagy.Plant and Cell Physiology, 2018, 59(6): 1135-1143.doi: 10.1093/pcp/pcy096.

[38] 田夢(mèng)瑤, 周宏勝, 唐婷婷, 張映曈, 凌軍, 羅淑芬, 李鵬霞.外源蔗糖處理對(duì)采后桃果皮色澤形成的影響.食品科學(xué), 2022, 43(1): 177-183.doi: 10.7506/spkx1002-6630-20201112-135.

TIAN M Y, ZHOU H S, TANG T T, ZHANG Y T, LING J, LUO S F, LI P X.Effect of exogenous sucrose treatment on the peel coloration in postharvest peaches.Food Science, 2022, 43(1): 177-183.doi: 10.7506/spkx1002-6630-20201112-135.(in Chinese)

[39] BALIBREA LARA M E, GONZALEZ GARCIA M C, FATIMA T, EHNEss R, LEE T K, PROELS R, TANNER W, ROITSCH T.Extracellular invertase is an essential component of cytokinin- mediated delay of senescence.The Plant Cell, 2004, 16(5): 1276-1287.doi: 10.1105/tpc.018929.

[40] BISWAL B, PANDEY J K.Loss of photosynthesis signals a metabolic reprogramming to sustain sugar homeostasis during senescence of green leaves: role of cell wall hydrolases.Photosynthetica, 2018, 56(1): 404-410.doi:10.1007/s11099-018-0784-x.

[41] FELLER U, ANDERS I, MAE T.Rubiscolytics: fate of Rubisco after its enzymatic function in a cell is terminated.Journal of Experimental Botany, 2007, 59(7): 1615-1624.doi: 10.1093/jxb/erm242.

[42] TERCé-LAFORGUE T, M?CK G, HIREL B.New insights towards the function of glutamate dehydrogenase revealed during source-sink transition of tobacco () plants grown under different nitrogen regimes.Physiologia Plantarum, 2004, 120(2): 220-228.doi: 10.1111/j.0031-9317.2004.0241.x.

[43] WITTENBACH V A, LIN W, HEBERT R R.Vacuolar localization of proteases and degradation of chloroplasts in mesophyll protoplasts from senescing primary wheat leaves.Plant Physiology, 1982, 69(1): 98-102.doi: 10.1104/pp.69.1.98.

[44] CHIBA A, ISHIDA H, NISHIZAWA N K, MAKINO A, MAE T.Exclusion of ribulose-1, 5-bisphosphate carboxylase/oxygenase from chloroplasts by specific bodies in naturally senescing leaves of wheat.Plant and Cell Physiology, 2003, 44(9): 914-921.doi: 10.1093/pcp/ pcg118.

[45] KRUPINSKA K.Fate and activities of plastids during leaf senescence//WISE R R, HOOBER J K.Structure and Function of Plastids.Aa Dordrecht, Netherlands: Springer, 2006: 433.

[46] 趙曉幗, 朱毅, 羅云波.外源蔗糖對(duì)蘿卜幼苗品質(zhì)及代謝酶活性的影響.食品科學(xué), 2015, 36(9): 7-11.doi: 10.7506/spkx1002-6630- 201509002.

ZHAO X G, ZHU Y, LUO Y B.Effect of exogenous sucrose on quality and metabolic enzyme activities of radish sprouts.Food Science, 2015, 36(9): 7-11.doi: 10.7506/spkx1002-6630-201509002.(in Chinese)

[47] 胡月, 王鴻飛, 董栓泉, 程佑聲, 許鳳, 邵興鋒, 李和生.蔗糖處理對(duì)費(fèi)菜黃酮含量及其抗氧化性的影響.現(xiàn)代食品科技, 2016, 32(1): 250-255.doi: 10.13982/j.mfst.1673-9078.2016.1.039.

HU Y, WANG H F, DONG S Q, CHENG Y S, XU F, SHAO X F, LI H S.Effect of sucrose treatment on flavonoid content and antioxidant activity ofaizoon leaves.Modern Food Science and Technology, 2016, 32(1): 250-255.doi: 10.13982/j.mfst.1673-9078.2016.1.039.(in Chinese)

[48] IZUMI M, ISHIDA H, NAKAMURA S, HIDEMA J.Entire photodamaged chloroplasts are transported to the central vacuole by autophagy.The Plant Cell, 2017, 29(2): 377-394.doi: 10.1105/tpc.16.00637.

Effects of Exogenous Sucrose on the Postharvest Quality and Chloroplast ofD.C

XIE YiTong, ZHANG Fei, SHI Jie, FENG Li, JIANG Li*

College of Food Science and Technology, Nanjing Agricultural University, Nanjing 210095

【Background】The physiological metabolism ofis active after harvest, and it is sensitive to low temperature.After harvest, it is often stored in a dark environment with slightly lower than room temperature.However, the long-term dark storage ofwill lead to sugar starvation, which affects the quality of.The dark storage also inhibits the photosynthetic process, resulting in reduced photosynthetic assimilation products and aggravated postharvest sugar starvation, and sucrose is the main form of photosynthetic product transport in plants.【Objective】The effects of exogenous sucrose treatment on postharvest quality, sucrose metabolism and chloroplast ofwere studied to explore the related mechanism of sucrose treatment on delaying postharvest senescence in this study.【Method】On the basis of screening out the optimal concentration, the contents of starch, soluble sugar, reducing sugar, soluble protein and chlorophyll induring storage were detected to study the effect of sucrose treatment on postharvest quality of.The contents of sucrose, fructose, glucose, and sucrose metabolism related enzyme activities, such as Amylase, SPS, AI, SS-s, and SS-c, were detected during storage, and then the effects of sucrose treatments on sucrose metabolism ofwas studied.The changes of chloroplast ultrastructure during storage were observed by TEM.The activity of LOX, the content of MDA, and the Fv/Fm and QY of chloroplast during storage were detected, then the effects of sucrose treatment on the physiology and function of chloroplast were studied.The effects of postharvest sucrose treatment onwere studied at biochemical and subcellular levels.【Result】The screening of sucrose concentration in the earlier study showed that 12% sucrose had the best preservation effect.Especially in the late storage period, compared with the control (distilled water treatment), the respiratory intensity, weightlessness rate, and decay rate of 12% sucrose treatment decreased by 39%, 7.8%, and 15.87%, respectively.Further study found that in the late storage, compared with the control, the treated sucrose content ratio was 1.82, starch content ratio was 1.10, soluble sugar content ratio was 1.11, soluble protein content ratio was 2.20, and chlorophyll content ratio was 1.23, indicating sucrose treatment significantly delayed the degradation of carbohydrates and nitrogenous substances.Sucrose treatment significantly inhibited the activities of SPS, AI and Amylase, indicating that sucrose treatment inhibited sucrose metabolism, thereby reducing the decomposition of sucrose and starch.In the later study on the physiological functions of chloroplasts of, it was found that at the end of storage, compared with the control, the treatedeffectively maintained the structural integrity of chloroplasts, reduced the activity of chloroplast LOX by 53.13%, and reduced the content of MDA by 33.33%.The Fv/Fm and QY were 1.35 and 1.97 times that of the control, respectively, indicating that sucrose treatment significantly delayed the senescence of chloroplasts.Further analysis showed that chloroplast function was positively correlated with starch and soluble sugar content, indicating that carbon source deficiency caused by sugar starvation could affect chloroplast function.【Conclusion】Sucrose treatment inhibited postharvest quality deterioration and chloroplast senescence ofby reducing respiratory intensity, weightlessness rate and decay rate, regulating sucrose metabolism, reducing the degree of chloroplast membrane lipid oxidation, and maintaining the integrity of chloroplast structure, thereby delaying the senescence of.

sucrose metabolism; chloroplast; sugar starvation;D.C; preservation

2021-07-09；

2021-10-09

國(guó)家自然科學(xué)基金（31301576）、江蘇省高校優(yōu)勢(shì)學(xué)科建設(shè)工程資助項(xiàng)目（PAPD）

謝意通，Tel：18933567483；E-mail：2019108022@njau.edu.cn。通信作者姜麗，Tel：19951682026；E-mail：jiangli@njau.edu.cn

（責(zé)任編輯 趙伶俐）