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    螯合–緩沖營養(yǎng)液培養(yǎng)條件下添加外源鋅對小麥幼苗生長和TaZIPs基因表達(dá)的影響

    2022-04-13 07:29:34李廣鑫睢福慶劉紅恩秦世玉楊艷征
    關(guān)鍵詞:營養(yǎng)液根部根系

    李廣鑫,趙 鵬,睢福慶,劉紅恩,秦世玉,段 然,楊艷征,王 云,李 暢

    (河南農(nóng)業(yè)大學(xué)資源與環(huán)境學(xué)院/河南省土壤污染修復(fù)重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室,河南鄭州 450002)

    鋅(Zn)是動植物所必需的微量營養(yǎng)元素,在生長發(fā)育、生殖遺傳等生理過程中能夠激活促進(jìn)與生長和代謝相關(guān)的酶,并產(chǎn)生在DNA復(fù)制和轉(zhuǎn)錄中發(fā)揮重要作用的含鋅金屬蛋白,從而控制相關(guān)基因的表達(dá)[1–2]。鋅通常以二價(jià)離子的形式被植物所吸收,外源供鋅可以有效提高作物的產(chǎn)量和鋅含量[3–4]。鋅缺乏和鋅過量的生理范圍較窄,一般莖葉中的鋅含量在 10~100 mg/kg,當(dāng)超過 300 mg/kg 時,鋅的毒害作用較為明顯[5–6]。Broadley等[6]研究發(fā)現(xiàn)小麥中的鋅濃度會隨鋅供應(yīng)的增加而顯著提高,過多的鋅致使大量的重金屬離子進(jìn)入植物的原始平衡系統(tǒng),導(dǎo)致代謝紊亂。侯雷平等[7]研究發(fā)現(xiàn)缺鋅或高鋅均會導(dǎo)致番茄葉片的葉綠素含量下降,而適量供鋅可促進(jìn)植株根系伸長,根系活力增強(qiáng);同時還可提高劍麻葉片葉綠素含量,增強(qiáng)光合作用,促進(jìn)碳水化合物的合成和代謝[8]。

    研究表明,植物本身為獲得適當(dāng)?shù)匿\營養(yǎng)也進(jìn)化出了復(fù)雜的感知和響應(yīng)機(jī)制[9],如調(diào)節(jié)根對鋅的吸收,以減輕鋅有效性的變化[10]。植物體內(nèi)的Zn2+平衡與鋅轉(zhuǎn)運(yùn)蛋白基因家族密不可分,而ZIP轉(zhuǎn)運(yùn)蛋白被認(rèn)為是植物適應(yīng)土壤中鋅有效性低和變化的關(guān)鍵基因[11–12]。植物的生長發(fā)育過程受到基因表達(dá)方式的嚴(yán)格調(diào)控。某些基因在植物生長的各個階段持續(xù)表達(dá),其基因表達(dá)水平幾乎不受外界環(huán)境的影響,這類基因表達(dá)稱為組成型表達(dá);與之相對的是一些基因表達(dá)極易受環(huán)境變化的影響,在特定的環(huán)境信號刺激下,這些基因被激活,基因表達(dá)產(chǎn)物增加,這種表達(dá)方式稱為誘導(dǎo)性表達(dá)。有報(bào)道稱,在中國春小麥(Triticum dicoccoides-nudigl)中,TaZIP3、TaZIP6、TaZIP7、TaZIP9和TaZIP13基因的表達(dá)受缺鋅誘導(dǎo)(也稱誘導(dǎo)性表達(dá))[13],這些基因的表達(dá)在一定程度上均會對作物的鋅肥利用率產(chǎn)生影響,但關(guān)于其受鋅影響的變化和作用機(jī)制尚不十分明確。

    因此,本試驗(yàn)通過采用螯合–緩沖營養(yǎng)液培養(yǎng)來模擬土壤缺鋅環(huán)境,研究不同供鋅水平對小麥的生長、光合作用、離子平衡以及ZIP轉(zhuǎn)運(yùn)蛋白基因表達(dá)的影響,從生理和分子水平上揭示小麥植株體內(nèi)鋅離子平衡的作用機(jī)制,以期為農(nóng)業(yè)生產(chǎn)中鋅肥的平衡施用提供理論支撐。

    1 材料與方法

    1.1 供試材料和試驗(yàn)設(shè)計(jì)

    供試小麥品種為‘百農(nóng)207’。試驗(yàn)選取顆粒飽滿、大小一致的種子,在10% NaClO溶液中浸泡消毒5 min,用自來水沖洗干凈后,再用蒸餾水和去離子水各清洗3次后,在去離子水中浸泡24 h,將吸脹后的種子放置在濕潤的棉紗上進(jìn)行催芽。供試營養(yǎng)液為螯合–緩沖營養(yǎng)液[14],其基本配方為:1.5 mmol/L KNO3、0.6 mmol/L NH4H2PO4、0.25 mmol/L MgSO4·7H2O、1.0 mmol/L Ca(NO3)2·4H2O、2.56 mmol/L MES (pH 為 6.1)、20 μmol/L EDTA-Fe、12.5 μmol/L H3BO3、3.0 μmol/L MnSO4、0.1 μmol/L H2MoO4、0.1 μmol/L NiSO4、2.8 μmol/L CuSO4·5H2O、50 μmol/L K3-HEDTA,營養(yǎng)液 pH 為 6.1。

    試驗(yàn)共設(shè)置5個營養(yǎng)液供Zn水平:0、0.05、0.25、1.0、2.5 mg/L,相當(dāng)于 Zn 0、0.76、3.82、15.30、38.23 μmol/L,以 ZnSO4?7H2O 形式加入,各處理營養(yǎng)液要保持pH一致(通過NaOH和HCl調(diào)節(jié)pH)。選擇長勢一致的幼苗移栽到含有2 L螯合-緩沖營養(yǎng)液的黑色塑料容器中,每個塑料容器中種植10棵小麥苗。試驗(yàn)在溫濕可控的人工光照培養(yǎng)室中進(jìn)行,溫度為25℃±5℃,濕度75%±1%,光照/黑暗時間分別為14 h/10 h。待幼苗長至一葉一心時,首先使用1/4和1/2的螯合-緩沖營養(yǎng)液分別培養(yǎng)3天后,再選擇全營養(yǎng)液進(jìn)行培養(yǎng),同時進(jìn)行供鋅處理,每個處理重復(fù)4次,每3天更換1次營養(yǎng)液。在配制鋅溶液時,要求ZnSO4?7H2O與等物質(zhì)的量的K3-HEDTA混合平衡后使用。

    試驗(yàn)在鋅處理3周后收獲取樣,采集測定小麥植株長度、生物量、光合參數(shù)、鋅鐵等金屬離子含量等指標(biāo),部分樣品經(jīng)液氮冷凍后保存于-80℃超低溫冰箱中。選擇0、0.25、2.5 mg/L供鋅處理下的小麥幼苗進(jìn)行基因表達(dá)分析。

    1.2 測定指標(biāo)與方法

    1.2.1 根系形態(tài)及幼苗生長 處理14天時,每個處理隨機(jī)選取 4 株完整的小麥植株,采用根系掃描儀 (V700PHOTO, Epson, Japan)和數(shù)據(jù)分析軟件 Win RHI-ZO Version 2009 PRO (Regent Instruments,Quebec City, Canada)分別對根系總長 (RL)、根系表面積(RSA)、根體積(RV)和平均根直徑(RAD)進(jìn)行掃描分析,測定根系形態(tài)。

    在供鋅處理21天時,用刻度尺測量幼苗莖基部至頂端葉尖的長度,即為株高,根尖到幼苗莖基部的長度即為根長。將小麥植株在105℃下殺青30 min,70℃下烘干至恒重后,地上部和根部分開稱重。

    1.2.2 光合參數(shù) 處理14天時,選取小麥幼苗完全展開的倒二葉,用便攜式光合測定系統(tǒng)(LI-6400XT, USA)測定葉片面積,根據(jù)葉面積換算得出小麥葉片的凈光合速率(Pn)、氣孔導(dǎo)度(Gs)、胞間CO2濃度(Ci)和蒸騰速率(Tr)。

    1.2.3 微量元素含量 將小麥地上部和根部粉碎后,采用 HNO3∶HClO4(87∶13,V/V)混酸提取,石墨消解爐 (EHD36,Lab Tech Ltd, USA)消解,原子吸收分光光度法 (ZEEnit 700;Analytik. Jena AG,Germany)測定小麥Zn、Cu、Fe、Mn含量。

    1.2.4 RNA 提取及實(shí)時熒光定量 PCR (qRT-PCR)用Trizol試劑(Invitrogen, USA)提取小麥根部和地上部的總RNA,去除基因組DNA后,使用 M-MLV逆轉(zhuǎn)錄酶(Fermentas,USA)和dT18寡核苷酸引物將 RNA 反轉(zhuǎn)錄為 cDNA。使用 ABI Quant Studio 3 實(shí)時熒光 PCR 系統(tǒng)和 SYBR Green Kit (Takara)進(jìn)行實(shí)時 qRT-PCR。PCR 條件為預(yù)變性 95℃ 30 s,40 個循環(huán) 95℃ 10 s,60℃ 30 s,融解曲線 95℃ 15 s,60℃60 s,95℃ 15 s。3 個生物重復(fù)被用于轉(zhuǎn)錄分析,每個cDNA 樣本進(jìn)行了3次技術(shù)重復(fù)。相關(guān)基因的引物序列見表1。

    表1 引物序列與相關(guān)信息Table 1 Sequences and related information of primers used in this study

    1.3 數(shù)據(jù)統(tǒng)計(jì)與分析

    所有試驗(yàn)均采用完全隨機(jī)設(shè)計(jì),重復(fù)4次。試驗(yàn)數(shù)據(jù)使用Microsoft Excel進(jìn)行統(tǒng)計(jì),采用SPSS 22.0 (Chicago, USA)軟件進(jìn)行方差分析和差異顯著性分析,采用單因素方差分析(one-way ANOVA)和LSD法進(jìn)行多重比較(P<0.05),使用Sigmaplot 10.0作圖。

    2 結(jié)果與分析

    2.1 不同供鋅水平對小麥幼苗生長的影響

    由圖1可知,隨著供鋅濃度的增加,小麥幼苗的根長和株高呈先升后降的趨勢,以Zn0.05處理的小麥幼苗的根長和株高最大,分別為46.18和35.47 cm,是Zn0處理的1.24和1.22倍;隨著供鋅濃度的進(jìn)一步增加,小麥幼苗的根長和株高呈下降趨勢,但仍高于Zn0處理,其中,Zn0.05與Zn0.25處理的根長無顯著性差異。

    圖1 不同供鋅水平下小麥幼苗的生長情況Fig. 1 Growth of wheat seedlings under different Zn levels

    2.2 不同供鋅水平對小麥幼苗生物量的影響

    由圖2可知,無論供鋅水平如何,小麥幼苗的地上部干重均高于根部。小麥幼苗的干重在Zn0.05處理時達(dá)到最大,隨著供鋅濃度的進(jìn)一步增加,呈下降的趨勢。與Zn0處理相比,供鋅后(Zn0.05、Zn0.25、Zn1.0、Zn2.5)的小麥幼苗根部干重分別提高了35.91%、20.19%、–1.05%、–13.89%,地上部干重分別提高了34.39%、16.66%、–2.55%、–8.08%。隨著供鋅濃度的進(jìn)一步提高,小麥幼苗干重呈下降趨勢,且對根部干重影響較大。缺鋅(Zn0)和高鋅(Zn1.0、Zn2.5)處理下小麥幼苗的生物量較Zn0.05處理下降了25.6%~31.6%??梢姡R?guī)供鋅濃度(0.05、0.25 mg/L)可以顯著促進(jìn)小麥幼苗的生物量累積,而高鋅則會顯著抑制小麥的生長發(fā)育,這與鋅對小麥幼苗根長和株高的影響基本一致。

    圖2 不同供鋅水平下小麥幼苗的生物量Fig. 2 Biomass of wheat seedlings under different Zn levels

    2.3 不同供鋅水平對小麥幼苗根系形態(tài)的影響

    如表2所示,小麥幼苗的根部總根長、表面積、體積和平均直徑均隨著供鋅水平的提高呈先增后降的趨勢,小麥幼苗的總根長在Zn1.0處理最大,根表面積、根體積、根平均直徑均在Zn0.25處理下達(dá)到最大。常規(guī)鋅(Zn0.05、Zn0.25)處理下根系形態(tài)指標(biāo)較Zn0處理增加了0.30%~27.0%。而Zn0以及Zn2.5處理下根系形態(tài)指標(biāo)較Zn0.25處理下降了1.3%~21.2%,顯著抑制了幼苗的根系形態(tài)發(fā)育,影響到了地上部的生長。

    表2 不同供鋅水平下小麥幼苗的根系形態(tài)Table 2 Root morphology of wheat seedlings under different Zn levels

    2.4 不同供鋅水平對小麥幼苗鋅含量和鋅累積量的影響

    由圖3可知,小麥幼苗的鋅含量和鋅累積量均隨供鋅水平的升高而增加。Zn0.05、Zn0.25、Zn1.0、Zn2.5處理的小麥幼苗根部的鋅含量較Zn0處理分別增加了125.01%、138.32%、533.99%、1047.97%,地上部分別增加了170.54%、226.27%、491.26%、656.44 %;同樣,根部鋅累積量較Zn0處理分別增加了213.40%、188.34%、538.59%、1015.01%,地上部分別增加了219.08%、280.40%、474.14%、614.39 %。小麥幼苗鋅含量和鋅累積量均表現(xiàn)為根部>地上部。

    圖3 不同供鋅水平下小麥幼苗各器官的鋅含量和鋅累積量Fig. 3 Zn content and accumulation in the roots and shoots of wheat seedlings under different Zn levels

    小麥幼苗體內(nèi)的鋅轉(zhuǎn)運(yùn)系數(shù)在Zn0.25處理下最高,為Zn0處理的1.37倍(圖4)。高鋅(Zn1.0、Zn2.5)處理下,轉(zhuǎn)運(yùn)能力顯著低于常規(guī)供鋅(Zn0.05、Zn0.25)處理,緩解了對地上部的毒害作用。

    圖4 不同供鋅水平下小麥幼苗體內(nèi)的鋅轉(zhuǎn)運(yùn)系數(shù)Fig. 4 Zn translocation factor in wheat seedlings under different Zn levels

    2.5 不同供鋅水平對小麥幼苗體內(nèi)Cu、Fe、Mn吸收的影響

    如圖5所示,小麥幼苗體內(nèi)的Cu、Fe、Mn含量顯著受到供鋅濃度的影響。Zn0處理下小麥體內(nèi)的Cu、Fe、Mn吸收最高,隨著供鋅濃度的增加,Cu、Fe、Mn吸收呈下降趨勢。小麥幼苗根部的Mn吸收較Zn0處理降低了19.13%~49.14%,地上部降低了6.70%~18.92%;根部Fe吸收降低了50.49%~78.66%,地上部降低了14.32%~34.01%;根部Cu吸收降低了34.21%~44.33%,地上部降低了19.80%~32.12%??梢姡谛←溣酌绲捏w內(nèi),金屬離子Cu、Fe、Mn與Zn之間存在著拮抗作用,且Zn對Fe的拮抗能力顯著強(qiáng)于對Cu和Mn。

    圖5 不同供鋅水平下小麥幼苗根部和地上部Cu、Fe、Mn吸收量Fig. 5 Cu, Fe, and Mn uptake in roots and shoots of wheat seedlings under different Zn levels

    Zn含量與Cu、Fe、Mn含量之間存在負(fù)相關(guān)關(guān)系(表3)。根系Zn含量與Cu、Fe、Mn含量的相關(guān)系數(shù)(r)分別為–0.73、–0.74、–0.79,均達(dá)到0.05水平,而地上部之間的相關(guān)系數(shù)分別為–0.66、–0.81、–0.85,與Cu含量之間的相關(guān)性不顯著,而與Fe和Mn的負(fù)相關(guān)性達(dá)到0.01水平。這些結(jié)果進(jìn)一步證明了在小麥幼苗體內(nèi)Zn與某些金屬離子之間存在著拮抗機(jī)制。

    表3 不同供鋅水平下小麥根部和地上部鋅與銅、鐵、錳含量之間的相關(guān)性分析Table 3 Correlation of Cu, Fe, and Mn content with Zn content in the root and shoot of wheat seedlings

    2.6 不同供鋅水平對小麥幼苗葉片光合參數(shù)的影響

    由圖6可知,小麥幼苗的光合參數(shù)隨供鋅濃度的增加呈先增后降的趨勢,且均在Zn0.25處理達(dá)到最大。隨著供Zn濃度的增加,葉片氣孔導(dǎo)度(Gs)和蒸騰速率(Tr)較Zn0處理分別提高了42.86%~58.11%、40.39%~55.40%;常規(guī)供鋅(0.05、0.25 mg/L)水平時,胞間CO2濃度(Ci)和凈光合速率(Pn)較Zn0處理分別提高了3.55%~8.66%、10.07%~15.97%。而高 Zn (1.0、2.5 mg/L)供應(yīng)后,葉片的光合參數(shù) (Gs、Tr、Ci、Pn)較Zn0.25處理分別下降了6.22%~9.64%、5.00%~9.66%、14.07%~16.69%、8.15%~10.51%。由此可知,適量的供鋅濃度有利于提高小麥幼苗的光合能力,促進(jìn)干物質(zhì)重的累積,但并非越高越好。

    圖6 不同供鋅水平下小麥幼苗葉片的光合參數(shù)Fig. 6 Photosynthetic parameter of wheat seedlings under different Zn levels

    2.7 鋅對小麥幼苗體內(nèi)Zn2+平衡關(guān)鍵基因表達(dá)的影響

    根據(jù)小麥相關(guān)生理指標(biāo)結(jié)果的分析,選用0、0.05、2.5 mg/L這3個供鋅濃度測定小麥根部和地上部TaZIP3、TaZIP5、TaZIP6、TaZIP7和TaZIP13的基因表達(dá)量(圖 7)??芍琓aZIP3、TaZIP5、TaZIP7和TaZIP13在根系和地上部的基因表達(dá)量均在Zn0時最高,在Zn2.5時最低,TaZIP7和TaZIP13在地上部的基因表達(dá)趨勢與根系一致,而TaZIP3和TaZIP5在地上部的表達(dá)幾乎不受鋅濃度變化的影響。表明這些基因顯著受缺鋅信號調(diào)控,缺鋅誘導(dǎo)了小麥上調(diào)這些基因的表達(dá)量。TaZIP6在根系中呈組成性表達(dá),其相對表達(dá)量幾乎不受供鋅濃度的影響,而在地上部的相對表達(dá)量則隨供鋅濃度的提高而增加,表明其主要作用與其他幾個基因不同,可能主要參與了鋅的轉(zhuǎn)運(yùn)。

    圖7 不同外源供鋅水平下小麥幼苗根部和地上部Zn2+平衡關(guān)鍵基因的相對表達(dá)量Fig. 7 Relative expression of genes related to Zn2+ homeostasis in the roots and shoots of wheat seedlings under different exogenous Zn supply levels

    3 討論

    鋅的缺乏和過量都會影響植物的生理代謝[15],降低作物幼苗的生長速率和干重[16]。本試驗(yàn)中,無外源鋅處理(Zn0)和高鋅處理(Zn1.0、Zn2.5)下,小麥幼苗生長、根系發(fā)育以及干物質(zhì)重均低于常規(guī)供鋅水平(Zn0.05、Zn0.25)處理,顯示了一定的抑制效果,這與邢飛等[17]、閆志剛等[18]、韓金玲等[19]研究結(jié)果相一致。多項(xiàng)研究表明,施鋅能明顯提高小麥植株中的鋅含量,促進(jìn)鋅在植株中的積累[3–4, 7, 16]。姜麗娜等[20]研究發(fā)現(xiàn),外源鋅供應(yīng)能夠明顯提高小麥幼苗根和芽中的鋅含量和鋅累積量;汪洪等[21]也發(fā)現(xiàn)施鋅提高了玉米植株中的鋅濃度和吸收量,促進(jìn)了鋅向地上部的轉(zhuǎn)運(yùn)。本研究證實(shí)了供鋅可以明顯提高小麥幼苗根部和地上部的鋅含量和鋅累積量,這一結(jié)果與Cherif等[22]在番茄上的研究結(jié)果相一致。同樣,有研究表明,植株地上部的鋅含量通常在10~100 mg/kg,且含量超過300 mg/kg時,作物會出現(xiàn)毒害癥狀[6]。而在本研究中,小麥幼苗地上部鋅含量在高鋅(2.5 mg/L)水平下達(dá)到了364.17 mg/kg,但未表現(xiàn)出明顯的毒害癥狀,這可能與根系作為植物貯藏器官的作用有關(guān)[23],導(dǎo)致大量鋅在根部累積,減輕了地上部的鋅毒害。

    鋅、銅、鐵、錳是植物必需的微量元素,它們在植物體內(nèi)的穩(wěn)態(tài)具有十分重要的作用[24]。本研究中,Zn與Cu、Fe、Mn的吸收在小麥苗期存在著明顯的拮抗作用,隨著施鋅濃度的增加,小麥幼苗體內(nèi)的鋅含量和累積量顯著提高,但Cu、Fe、Mn的吸收顯著減少,以往研究也發(fā)現(xiàn)在大多數(shù)作物中Zn與Cu、Fe、Mn的吸收存在著相互拮抗作用[25–26],而這種拮抗的產(chǎn)生可能是由于Zn和其他金屬離子與氨基酸結(jié)合于同一位點(diǎn)上[27]。高鋅供應(yīng)會干擾植物體內(nèi)其他金屬離子的吸收、轉(zhuǎn)運(yùn)和分配,影響植株體內(nèi)離子的平衡系統(tǒng)[28]。在本研究中,鋅供應(yīng)后,小麥幼苗根部的Mn、Fe、Cu含量較Zn0處理顯著下降,且Fe含量的下降幅度最大。這可能是由于“稀釋效應(yīng)”,施鋅促進(jìn)了干物質(zhì)的大量累積,從而進(jìn)一步導(dǎo)致了其他必需微量營養(yǎng)元素含量的下降[29]。

    光合參數(shù)是植株生長發(fā)育的基礎(chǔ),鋅的缺乏和過量均會破壞葉肉細(xì)胞從而引起光合系統(tǒng)的氧化損傷,導(dǎo)致光合能力下降[30]。光合速率和蒸騰速率是衡量光合作用能力和蒸騰作用強(qiáng)弱的重要指標(biāo),其中,胞間CO2濃度(Ci)直接關(guān)系到光合速率的變化,而氣孔導(dǎo)度(Gs)會直接影響到蒸騰速率。鋅缺乏或鋅過量均會導(dǎo)致植物體內(nèi)碳酸酐酶和羧化酶的活性降低,產(chǎn)生,光氧化傷害加重,導(dǎo)致細(xì)胞內(nèi)CO2濃度下降和葉片氣孔導(dǎo)度降低,引起植物的光合能力下降[31]。本試驗(yàn)中,常規(guī)鋅供應(yīng)后增加了胞間CO2濃度(Ci),提高了光合速率,葉片的氣孔導(dǎo)度(Gs)也有所升高,導(dǎo)致葉片的蒸騰速率提高,這一結(jié)果與杜新民等[32]在小白菜上的研究結(jié)果和Sagardoy等[33]在甜菜上的研究結(jié)果相一致。

    本研究中,小麥對鋅素的缺乏和過量都顯示了一定的反應(yīng)。鋅缺乏條件下,小麥的生長發(fā)育沒有受到明顯地抑制,可能是由于處理的時間較短(21天)以及小麥籽粒中本身含有鋅,對外源鋅的供應(yīng)需求較小。此外,鋅缺乏顯著提高了小麥幼苗體內(nèi)ZIP基因 (TaZIP3、TaZIP5、TaZIP7、TaZIP13)的表達(dá),促進(jìn)了鋅的吸收利用和轉(zhuǎn)運(yùn)(圖7)。目前,在六倍體小麥中共鑒定出了14個TaZIPs基因,而受缺鋅誘導(dǎo)的TaZIPs基因表達(dá)結(jié)果表明ZIP成員可能在鋅的吸收和轉(zhuǎn)運(yùn)中發(fā)揮著重要作用[13]。其中有許多作物中的ZIP轉(zhuǎn)運(yùn)蛋白已經(jīng)被證明參與了植物體內(nèi)的鋅離子平衡,如:水稻[34]、擬南芥[35]、大麥等[36]。ZIP3、ZIP5、ZIP6、ZIP7和ZIP13屬于已經(jīng)被證實(shí)來自擬南芥、水稻和大麥的鋅轉(zhuǎn)運(yùn)ZIP基因系統(tǒng)發(fā)育的主要分支,但在小麥中幾乎還未被研究[13]。在本研究中,TaZIP3、TaZIP5、TaZIP6、TaZIP7和TaZIP13的基因表達(dá)在小麥幼苗的根系和地上部均被檢測到,且缺鋅顯著誘導(dǎo)了TaZIP3、TaZIP5、TaZIP7和TaZIP13在小麥體內(nèi)的高表達(dá),表明這些基因受到缺鋅信號的顯著調(diào)控,其主要功能可能參與植物養(yǎng)分供應(yīng)不足時鋅的吸收過程。有研究發(fā)現(xiàn),在水稻中,OsZIP3在薄壁細(xì)胞和木質(zhì)部轉(zhuǎn)移細(xì)胞中表達(dá),可能負(fù)責(zé)鋅在水稻發(fā)育組織中的優(yōu)先分配[37],而OsZIP4在根和莖中都有表達(dá),可能參與了鋅的轉(zhuǎn)運(yùn)和再分配[38];在大麥中,HvZIP3和HvZIP5的轉(zhuǎn)錄水平受到鋅缺乏所誘導(dǎo)[39];在野生二粒小麥中,TdZIP1(TaZIP3同源)會在缺鋅條件下高度表達(dá)[40]。TaZIP7與AtZIP4、AtZIP9、OsZIP7和OsZIP7a密切相關(guān)[13],其中,AtZIP4在擬南芥的根和莖中都有表達(dá),然而它的表達(dá)沒有逆轉(zhuǎn)鋅在酵母突變體中(ZHY3和DEY1453)的活性[41],而OsZIP7和OsZIP7a在水稻的莖中受到缺鋅誘導(dǎo),可能參與了鋅的轉(zhuǎn)運(yùn)過程[42]。TaZIP13與HvZIP13、OsZIP8屬于最接近的同源基因[13],其中OsZIP8參與水稻中鋅的吸收和分配[43],而HvZIP13可能直接參與大麥中鋅的運(yùn)輸或在低鋅條件下被誘導(dǎo)[44]。本研究中,鋅供應(yīng)降低了TaZIP3、TaZIP5、TaZIP7和TaZIP13在小麥中的表達(dá)量。TaZIP6在根系中呈組成性表達(dá),幾乎不受外界鋅含量變化的影響,而在地上部,其表達(dá)量隨供鋅水平的提高逐漸升高,表明其可能主要參與了鋅的轉(zhuǎn)運(yùn)過程(圖7)。Evens等[13]也發(fā)現(xiàn)TaZIP6和TaZIP13在小麥根系和莖中的表達(dá)模式完全相反。由此可知,TaZIPs基因?qū)τ诰S持小麥植株體內(nèi)鋅離子平衡穩(wěn)態(tài)方面發(fā)揮了關(guān)鍵的作用。結(jié)合供鋅對小麥幼苗各部位離子含量與鋅轉(zhuǎn)運(yùn)系數(shù)的影響,表明植物通過調(diào)控TaZIPs基因的表達(dá)進(jìn)而調(diào)控鋅的吸收以及向地上部的轉(zhuǎn)運(yùn),從而改變了鋅在植株體內(nèi)的分布,保證了植物的正常生長發(fā)育。

    4 結(jié)論

    適量供鋅明顯改善小麥的光合作用、根系形態(tài)以及離子平衡等,從而促進(jìn)小麥的生長發(fā)育,積累更多的干物質(zhì)。缺鋅與過量均會抑制小麥幼苗的生長發(fā)育,但小麥適應(yīng)缺鋅與過量的機(jī)制不完全一致。缺鋅會上調(diào)小麥體內(nèi)鋅離子相關(guān)基因的表達(dá)量來提高對鋅的吸收利用和轉(zhuǎn)運(yùn);鋅過量會減少小麥對Fe、Mn、Cu等微量元素的吸收,以維持小麥體內(nèi)膜內(nèi)外的離子平衡,同時,減少了鋅向地上部的轉(zhuǎn)運(yùn),緩解了鋅的毒害。

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