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    DEHP與DBP聯(lián)合染毒對(duì)雌性大鼠糖代謝的影響

    2022-03-17 08:22:46李麗萍張亞娟德小明劉賀榮楊惠芳
    關(guān)鍵詞:染毒胰島空腹

    郭 琛,李麗萍,張亞娟,李 玲,德小明,劉賀榮,楊惠芳

    (寧夏醫(yī)科大學(xué)公共衛(wèi)生與管理學(xué)院,銀川 750004)

    2型糖尿?。╰ype 2 diabetes mellitus,T2DM)的發(fā)病率逐年上升,據(jù)國(guó)際糖尿病聯(lián)盟(the international diabetes federation,IDF)數(shù)據(jù)顯示,我國(guó)是全球糖尿病患者數(shù)量最多的國(guó)家[1]。作為一種內(nèi)分泌干擾物—鄰苯二甲酸酯類物質(zhì)(phthalic acid esters,PAEs),又名增塑劑[2-3],常作為添加劑添加到食品包裝材料、兒童玩具等各種材料中,其主要作用是增加材料的可塑性和柔韌性[4]。鄰苯二甲酸二(2-乙基己基)酯(di-2-ethylhexyl phthalate,DEHP)的使用量約占我國(guó)PAEs總使用量的50%,是使用量最高的一種增塑劑,其次是鄰苯二甲酸二丁酯(di-n-butyl phthalate,DBP)[5-6]。研究表明[7-8],PAEs有干擾內(nèi)分泌系統(tǒng)環(huán)境雌激素的效應(yīng),糖尿病雖與遺傳和生活方式有關(guān),但環(huán)境內(nèi)分泌干擾物的作用也不容忽視。研究[9-10]發(fā)現(xiàn),PAEs對(duì)生殖異常、性別分化、神經(jīng)發(fā)育和腫瘤等的發(fā)生有一定的影響,近年來PAEs對(duì)胰島素抵抗、T2DM等慢性糖代謝紊亂疾病的研究成為熱點(diǎn)。

    在糖尿病發(fā)生發(fā)展過程中胰島β細(xì)胞損傷和胰島素抵抗發(fā)揮著重要作用[11],有研究[12]表明,氧化應(yīng)激導(dǎo)致胰島β細(xì)胞凋亡是胰島β細(xì)胞功能受損的主要原因,而長(zhǎng)期低劑量暴露于PAEs可誘發(fā)體內(nèi)過氧化物的聚集而引起損傷[13]。流行病學(xué)調(diào)查表明[14],PAEs與胰島素抵抗、T2DM間有一定的相關(guān)性,但有關(guān)實(shí)驗(yàn)研究相對(duì)較少,且人類在暴露過程中并非單一介質(zhì)暴露。為此本研究采用DEHP、DBP以及二者聯(lián)合染毒,觀察對(duì)大鼠胰腺組織中凋亡蛋白的影響,以探討DEHP、DBP以及二者聯(lián)合染毒對(duì)T2DM的作用及其機(jī)制。

    1 資料與方法

    1.1 主要試劑與儀器

    DEHP、DBP(國(guó)藥集團(tuán)化學(xué)試劑有限公司),玉米油(金龍魚),血糖儀、血糖試紙(艾科靈睿,中國(guó)),大鼠胰島素ELISA測(cè)定試劑盒(武漢伊萊瑞特生物科技有限公司,中國(guó)),超氧化物歧化酶(super oxide dismutase,SOD)、丙二醛(malondialdehyde,MDA)測(cè)試盒(南京建成生物工程研究所,中國(guó)),Bax、Bcl-2、Caspase 9、Caspase 3兔抗大鼠一抗(Proteintech,美國(guó)),GAPDH內(nèi)參(Bioss,中國(guó)),二抗山羊抗兔(中杉金橋,中國(guó)),聚偏二氟乙烯(PVDF)膜(Invitrogen,美國(guó)),酶標(biāo)儀(Bio-Rad,美國(guó))。

    1.2 實(shí)驗(yàn)動(dòng)物

    選擇40只健康清潔級(jí)SD雌性大鼠,3周齡,體質(zhì)量50~70 g,由寧夏醫(yī)科大學(xué)實(shí)驗(yàn)動(dòng)物中心提供,動(dòng)物合格證號(hào):SCXK(寧)2015-0001。飼養(yǎng)房間溫度為(22±3)℃,相對(duì)濕度(60±5)%,通風(fēng)良好,24 h晝夜循環(huán)光照條件下飼養(yǎng),自由飲水、進(jìn)食。

    1.3 分組與處理

    將大鼠隨機(jī)分為4組,分別為對(duì)照(玉米油)組、DEHP染毒組(1/40 LD50,750 mg·kg-1)、DBP染毒組(1/40 LD50,500 mg·kg-1)和DEHP+DBP(750+500)mg·kg-1染毒組(聯(lián)合染毒組),每組10只。將DEHP和DBP溶于玉米油,配制成所需濃度的溶液。每天根據(jù)大鼠的體質(zhì)量計(jì)算大鼠的給藥劑量,采用灌胃方式染毒,1次/d,每周5 d,連續(xù)染毒8周,之后觀察和測(cè)定相關(guān)指標(biāo)。

    1.4 觀察指標(biāo)

    1.4.1 大鼠一般狀況、體質(zhì)量 于染毒期間,每周稱量大鼠體質(zhì)量1次,并觀察大鼠毛發(fā)、皮膚、精神狀態(tài)以及行為方面有無變化。

    1.4.2 器官系數(shù)的測(cè)定[15]于末次染毒過夜禁食12 h后先稱大鼠體質(zhì)量,后使用10%水合氯醛腹腔注射麻醉大鼠,心尖取血后處死,將血液樣本置于低溫離心機(jī)中離心15 min(3 500 r·min-1)后取上清,保存于-80℃待測(cè);同時(shí)取出胰腺,將其放在生理鹽水中沖洗,在濾紙上拭干后稱量濕重。器官系數(shù)(%)=器官質(zhì)量/體質(zhì)量×100%。

    1.4.3 大鼠空腹血糖、胰島素水平測(cè)定、胰島素抵抗指數(shù)(homeostasis model assessment of insulin resistance,HOMA-IR)和敏感指數(shù)計(jì)算 大鼠末次染毒后禁食(不禁水)至少12 h將大鼠剪尾,用血糖儀檢測(cè)大鼠空腹血糖;采用ELISA法檢測(cè)大鼠血清空腹胰島素水平,嚴(yán)格按照試劑盒規(guī)范進(jìn)行。并計(jì)算穩(wěn)態(tài)模型HOMA-IR和胰島素敏感指數(shù)(insulin sensitivity index,ISI)[16]。HOMA-IR=空腹胰島素(mIU·L-1)×[空腹血糖(mmol·L-1)/22.5]。ISI=1/Ln[空腹胰島素(mU·L-1)×空腹血糖(mmol·L-1)]。

    1.4.4 血清SOD活力和MDA含量測(cè)定 采用SOD、MDA試劑盒測(cè)定大鼠血清中SOD活力和MDA含量,嚴(yán)格按照說明書步驟進(jìn)行操作。

    1.4.5 Western blot法測(cè)定胰腺組織中Bax、Bcl-2、Caspase 9、Caspase 3蛋白表達(dá)水平 取約100 mg胰腺組織,置于冰上加入1 mL的組織裂解液勻漿,12 000 r·min-1,4℃離心10 min取上清,BCA法測(cè)定蛋白含量,根據(jù)不同分子質(zhì)量選擇相應(yīng)濃度的SDS-PAGE凝膠,80 V穩(wěn)定電壓電泳(蛋白上樣量為60μg),轉(zhuǎn)膜條件采用0.22μm PVDF膜濕轉(zhuǎn),5%的脫脂牛奶(TBST溶液配制)封閉1.5 h后敷上不同濃度的一抗,4℃過夜,漂洗液清洗3次,二抗(1∶2 000)封閉1.5 h,漂洗液洗滌3次后在避光的條件下曝光,掃描圖像后用Image J軟件計(jì)算各條帶的吸光度值。

    1.5 統(tǒng)計(jì)學(xué)方法

    采用SPSS 24.0統(tǒng)計(jì)學(xué)軟件進(jìn)行數(shù)據(jù)分析,計(jì)量資料用均數(shù)±標(biāo)準(zhǔn)差(±s)表示,組間比較采用單因素方差分析,兩兩比較采用LSD-t法。P≤0.05為差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。

    2 結(jié)果

    2.1 DEHP、DBP及聯(lián)合染毒對(duì)大鼠一般情況的影響

    隨著實(shí)驗(yàn)的進(jìn)行,三組染毒組大鼠被毛無光澤、個(gè)別有少量脫毛現(xiàn)象,并在灌胃過程中出現(xiàn)煩躁抵觸現(xiàn)象。

    2.2 DEHP、DBP及聯(lián)合染毒對(duì)大鼠體質(zhì)量的影響

    各組大鼠體質(zhì)量隨染毒時(shí)間的延長(zhǎng)而增加,不同時(shí)間各組大鼠體質(zhì)量差異均無統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P均>0.05),見圖1。

    圖1 DEHP、DBP及聯(lián)合染毒對(duì)大鼠體質(zhì)量的影響

    2.3 DEHP、DBP及聯(lián)合染毒對(duì)大鼠胰腺質(zhì)量及器官系數(shù)的影響

    與對(duì)照組比較,DEHP、DBP單獨(dú)染毒及DEHP+DBP聯(lián)合染毒組雌性大鼠胰腺的質(zhì)量和器官系數(shù)差異均無統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P均>0.05),見表1。

    表1 DEHP、DBP及聯(lián)合染毒對(duì)大鼠胰腺質(zhì)量及其器官系數(shù)的影響(±s)

    表1 DEHP、DBP及聯(lián)合染毒對(duì)大鼠胰腺質(zhì)量及其器官系數(shù)的影響(±s)

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    2.4 DEHP、DBP及聯(lián)合染毒對(duì)大鼠空腹血糖、胰島素水平、HOMA-IR、ISI指標(biāo)的影響

    染毒第8周末,各組大鼠空腹血糖差異均無統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P均>0.05)。胰島素水平、HOMA-IR和ISI各組差異均有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P均<0.05);與對(duì)照組相比,聯(lián)合染毒組血清胰島素濃度升高,HOMA-IR增加,ISI降低(P均<0.05),見表2。

    表2 各組大鼠空腹血糖、胰島素水平、HOMA-IR、ISI的比較(±s)

    表2 各組大鼠空腹血糖、胰島素水平、HOMA-IR、ISI的比較(±s)

    與對(duì)照組相比*P<0.05。

    組別 n 空腹血糖/(mmol·L-1) 胰島素/(mIU·L-1) HOMA-IR ISI對(duì)照組 10 4.51±0.62 38.23±12.63 8.01±2.00 -2.01±0.26 DEHP組 10 4.82±0.41 38.92±5.40 8.42±1.73 -2.11±0.20聯(lián)合染毒組 10 5.00±0.39 74.48±24.61* 16.05±5.38* -2.79±0.35*DBP組 10 4.66±0.32 38.62±19.63 8.26±4.71 -2.05±0.44 F值 1.408 5.887 6.880 6.447 P值 0.271 0.005 0.003 0.003

    2.5 DEHP、DBP及聯(lián)合染毒對(duì)大鼠血清中SOD活力和MDA含量的影響

    染毒8周后,與對(duì)照組相比,DEHP、DBP單獨(dú)染毒和聯(lián)合染毒組大鼠血清SOD活力下降、MDA含量升高(P均<0.05),見圖2。

    圖2 DEHP、DBP及聯(lián)合染毒對(duì)雌性大鼠血漿氧化損傷指標(biāo)的影響(n=10,±s)

    2.6 DEHP、DBP及聯(lián)合染毒對(duì)大鼠胰腺組織中凋亡蛋白表達(dá)的影響

    染毒8周后,與對(duì)照組相比,DEHP、DBP單獨(dú)染毒和聯(lián)合染毒組均使Bax、Caspase 9、Caspase 3蛋白表達(dá)水平增加,Bcl-2蛋白表達(dá)水平及Bcl-2/Bax的比值下降(P均<0.05),見圖3。

    圖3 DEHP、DBP及聯(lián)合染毒對(duì)大鼠胰腺組織中凋亡蛋白表達(dá)的影響(n=3,±s)

    3 討論

    研究發(fā)現(xiàn),環(huán)境內(nèi)分泌干擾物對(duì)人類健康造成多種危害,并且多數(shù)情況以多種物質(zhì)混合的形式接觸[17],而作為最常見的內(nèi)分泌干擾物的DEHP和DBP與代謝紊亂有關(guān)[18]。本次實(shí)驗(yàn)結(jié)果表明,DEHP、DBP以及聯(lián)合染毒對(duì)雌性大鼠體質(zhì)量增長(zhǎng)、胰腺組織的質(zhì)量和器官系數(shù)沒有影響,提示在此劑量下和染毒期間內(nèi)DEHP、DBP以及聯(lián)合染毒對(duì)雌性大鼠體質(zhì)量增長(zhǎng)和胰腺組織無明顯作用。T2DM主要表現(xiàn)為胰島素抵抗和胰島β細(xì)胞功能受損。本次研究結(jié)果顯示,兩種藥物聯(lián)合染毒后,胰島素濃度、HOMA-IR增加,ISI降低,提示DEHP和DBP聯(lián)合染毒可能會(huì)引起雌性大鼠發(fā)生胰島素抵抗。研究[19]表明,在引起糖尿病的過程中起決定作用的是胰島β細(xì)胞功能受損。氧化應(yīng)激對(duì)于誘導(dǎo)β細(xì)胞功能異常至關(guān)重要。Tanaka等[20]研究表明,分離人胰島和胰島β細(xì)胞暴露于高葡萄糖濃度會(huì)導(dǎo)致細(xì)胞內(nèi)過氧化物水平升高。正常細(xì)胞內(nèi)的促氧化物和抗氧化物維持在平衡狀態(tài),有研究[21-22]表明DEHP、DBP可打破機(jī)體內(nèi)氧化-抗氧化的平衡機(jī)制,進(jìn)而使機(jī)體進(jìn)入氧化應(yīng)激狀態(tài)。研究[22]發(fā)現(xiàn),DEHP和DBP可誘發(fā)機(jī)體脂質(zhì)過氧化水平增強(qiáng),氧化應(yīng)激水平增高,從而對(duì)機(jī)體造成危害。本次實(shí)驗(yàn)結(jié)果表明,DEHP、DBP單獨(dú)染毒與兩者藥物聯(lián)合染毒均可使SOD活力降低、MDA含量增加。

    細(xì)胞凋亡是由多基因調(diào)控的,在生理或病理情況下細(xì)胞程序性死亡[23]。研究[24]表明在線粒體凋亡途徑上促凋亡蛋白(如Bax等)和抗凋亡蛋白(Bcl-2等)發(fā)揮著重要作用,而Bcl-2/Bax稱為“凋亡開關(guān)”,決定細(xì)胞是否進(jìn)入凋亡狀態(tài)[25]。參與細(xì)胞凋亡的Caspase家族是一組存在于細(xì)胞質(zhì)中的特異性半胱氨酸蛋白酶,其中凋亡的啟動(dòng)者是Caspase 9,凋亡的主要執(zhí)行者是Caspase 3[26]。本次實(shí)驗(yàn)結(jié)果表明DEHP、DBP單獨(dú)染毒與兩者藥物聯(lián)合染毒可使Bax、Caspase 9、Caspase 3蛋白表達(dá)增加,Bcl-2蛋白表達(dá)下降,Bcl-2/Bax比值下降。

    綜上所述,DEHP、DBP兩種藥物聯(lián)合染毒可能降低SOD活力、增加MDA的含量使胰島β細(xì)胞氧化應(yīng)激水平增加,誘導(dǎo)胰島β細(xì)胞凋亡。但此結(jié)論還需通過后續(xù)實(shí)驗(yàn)進(jìn)一步的研究來加以證實(shí)。

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