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    基于Illumina Hiseq高通量測序分析醬香型白酒大曲曲皮和曲心的細(xì)菌群落差異

    2022-03-10 12:09:20莫禎妮邱樹毅曾祥勇戴怡鳳
    中國釀造 2022年2期
    關(guān)鍵詞:醬香型大曲高通量

    莫禎妮,邱樹毅,曾祥勇*,戴怡鳳

    (1.貴州大學(xué) 釀酒與食品工程學(xué)院,貴州 貴陽 550025;2.貴州大學(xué) 貴州省發(fā)酵與生物制藥重點實驗室,貴州 貴陽 550025)

    醬香型白酒具有“醬香突出、酒體醇厚、空杯留香持久”等特點,在我國白酒行業(yè)中占主導(dǎo)地位,深受廣大消費者的喜愛。大曲是中國醬香型白酒發(fā)酵生產(chǎn)過程中的重要發(fā)酵劑和專用原料,環(huán)境中的各類微生物在適合的條件下,能在其表面和內(nèi)部形成有益的釀酒微生物群系,成為原料中大分子物質(zhì)水解和代謝的必要條件,其產(chǎn)物能直接或間接地構(gòu)成酒中不同香型的獨特風(fēng)味物質(zhì),對中國白酒的品質(zhì)至關(guān)重要[1]。

    大曲中的微生物主要集中在酵母菌、霉菌、細(xì)菌,其中細(xì)菌在高溫大曲中占有90%以上,耐高溫細(xì)菌不僅能產(chǎn)生水解淀粉及蛋白質(zhì)的酶類,還能為白酒生成香味物質(zhì)提供重要前體物質(zhì),是白酒釀造過程中重要的產(chǎn)香功能微生物[2]。傳統(tǒng)分離培養(yǎng)法是直接對微生物進(jìn)行分離和純化。該方法簡單易行,已廣泛應(yīng)用于白酒中微生物的分離。任愛容等[3]采用傳統(tǒng)可培養(yǎng)技術(shù)從醬香白酒大曲和環(huán)境中分離得到1 370株細(xì)菌,并歸屬于5個門、28個屬,其中大曲和環(huán)境分別有18個屬、24個屬,芽孢桿菌屬(Bacillus)、賴氨酸芽孢桿菌屬(Lysinibacillus)、葡萄球菌屬(Staphylococcus)和微球菌屬(Micrococcus)為大曲中的核心可培養(yǎng)細(xì)菌。然而,由于自然環(huán)境中僅有1%~10%的微生物能夠被培養(yǎng),導(dǎo)致無法全面準(zhǔn)確地揭示微生物的群落結(jié)構(gòu)。隨著分子生物學(xué)的發(fā)展,基于聚合酶鏈?zhǔn)椒磻?yīng)(polymerase chain reaction,PCR)和高通量測序等一系列免培養(yǎng)技術(shù)相繼出現(xiàn),該技術(shù)最大特點是無需培養(yǎng),直接對樣品中所有種類的微生物的脫氧核糖核酸(deoxyribonucleic acid,DNA)多樣性進(jìn)行研究,從而揭示微生物群落組成[4]。醬香型白酒大曲微生物群落組成及演替規(guī)律的研究技術(shù)主要包括聚合酶鏈?zhǔn)椒磻?yīng)-變性梯度凝膠電泳(polymerase chain reaction-denaturing gradient gel electrophoresis,PCR-DGGE)技術(shù)、熒光原位雜交技術(shù)(fluorescence in situ hybridization,F(xiàn)ISH)、高通量測序技術(shù)等。譚映月等[5]利用PCR-DGGE技術(shù)從醬香型酒曲中共檢測出10個細(xì)菌屬,發(fā)現(xiàn)了白酒中不曾報道過的如丙酸桿菌屬(Propionibacterium)、棒狀桿菌屬(Corynebacterium)、鞘氨醇單胞菌屬(Sphingomonas)中的鞘氨醇單胞菌(Sphingomonas yabuuchiae)等細(xì)菌類群,并檢測到了3株不可培養(yǎng)細(xì)菌。與PCR-DGGE技術(shù)相比,高通量測序技術(shù)不僅能檢測出豐度高的微生物群落,而且豐度極低的微生物群落也能檢測出,具有簡單、通量高、準(zhǔn)確度高和速度快等優(yōu)點,能夠更好地研究復(fù)雜的白酒微生物群落結(jié)構(gòu)及微生物多樣性。沈毅等[6]利用高通量測序技術(shù)對醬香型郎酒大曲、酒醅和窖泥的細(xì)菌菌群進(jìn)行了比較分析,結(jié)果顯示郎酒窖泥中細(xì)菌菌群豐富度和多樣性最高,而大曲中細(xì)菌菌群的多樣性遠(yuǎn)遠(yuǎn)高于酒醅;母應(yīng)春等[7]運用高通量測序技術(shù)分析不同地區(qū)酒曲中微生物的組成及多樣性在屬和門水平上的差異性,結(jié)果表明,不同地區(qū)的酒曲微生物群落構(gòu)成及多樣性存在明顯差異。

    目前,僅有少數(shù)研究采用傳統(tǒng)培養(yǎng)法揭示了曲皮、曲心之間的微生物種類及數(shù)量的差異[8],關(guān)于醬香大曲不同部位的微生物組成差異的研究鮮見報道。本研究采用Illumina Hiseq高通量測序技術(shù)對貴州地區(qū)醬香型白酒大曲的細(xì)菌群落進(jìn)行研究,分析醬香型白酒大曲不同部位的細(xì)菌群落結(jié)構(gòu)特點,初步了解其菌群組成的差異性,以期更好地揭示醬香型白酒大曲微生物發(fā)酵機理。

    1 材料與方法

    1.1 材料與試劑

    1.1.1 樣品采集

    高溫大曲樣品:取自貴州省茅臺鎮(zhèn)某酒廠同批次大曲,在不同顏色的大曲曲塊表面厚度約為1 cm處分別取三塊平行樣,粉碎后充分混勻作為曲皮(QP)樣品;在曲塊中心,取三塊長、寬、厚均為5 cm的正方體,粉碎后充分混勻作為曲心(QX)樣品。

    1.1.2 試劑

    Hiseq Rapid SBS Kit v2測序試劑盒:美國Illumina公司;膠回收試劑盒:德國QIAGEN公司;DNA Marker:北京擎科生物科技有限公司;引物:由上海生物工程股份有限公司合成;Gengreen染料:上海賽百盛有限公司;TruSeq DNA PCR-Free Sample Prep Kit:美國Illumina公司;KOD-Plus-Neo酶:日本TOYOBO公司;QIA quick Gel Extraction Kit:德國QIAGEN公司。

    1.2 儀器與設(shè)備

    ABIGeneAmpR9700型PCR儀:美國ABI公司;Qubit2.0熒光定量儀:美國Thermo Fisher公司;Thermo Scientific X3R型冷凍離心機:美國Thermo Fisher Scientific公司;CP114電子分析天平:上海奧豪斯儀器有限公司;DYY-8C電泳儀:北京六一儀器廠;JS-680C凝膠成像儀:上海培清科技有限公司。

    1.3 實驗方法

    1.3.1 大曲樣品基因組總DNA的提取

    將粉碎好的大曲樣品使用DNA提取試劑盒進(jìn)行基因組DNA提取后,使用0.8%瓊脂糖凝膠電泳檢測DNA。

    1.3.2 PCR擴增

    以提取的基因組總DNA為模板,使用帶有Barcode的特異引物515F(5'-GTGCCAGCMGCCGCGGTAA-3')和806R(5'-GGACTACHVGGGTWTCTAAT-3')PCR擴增16SrDNA V4區(qū)域基因序列。PCR擴增體系(50 μL)為:1×PCR buffer 5 μL,MgCl2(1.5 mmol/L)3 μL,脫氧核糖核苷三磷酸(deoxy-ribonucleoside triphosphate,dNTPs)(0.4 μmol/L)5 μL,正向和反向引物(1.0 μmol/L)各1 μL,KOD-Plus-Neo酶1 μL,模板10 ng,雙蒸水(ddH2O)31 μL。PCR擴增程序:94 ℃預(yù)變性1 min;94 ℃變性20 s,54 ℃退火30 s,72 ℃延伸30 s,30個循環(huán);72 ℃再延伸5 min。使用2%瓊脂糖凝膠電泳檢測,利用QIA quick Gel Extraction Kit進(jìn)行純化,PCR純化產(chǎn)物用Qubit 2.0熒光定量儀進(jìn)行檢測定量。

    1.3.3 Illumina Hiseq高通量測序

    使用TruSeq DNA PCR-Free Sample Prep Kit建庫,構(gòu)建好的文庫經(jīng)過定量和文庫檢測合格后,使用Hiseq 2500平臺PE250模式進(jìn)行高通量測序。

    1.3.4 數(shù)據(jù)處理與分析

    使用Flash 8.0軟件進(jìn)行序列拼接,使用Trimmomatic進(jìn)行質(zhì)控,過濾得到高質(zhì)量目標(biāo)序列后,利用Usearch序列分析軟件分組成具有97%相似度的操作分類單元(operational taxonomic units,OTU),挑選出現(xiàn)頻率最高的序列作為每個OTUs的代表性序列,使用SILVA數(shù)據(jù)庫對其進(jìn)行物種信息分類,采用隨機抽樣的方式對OTU特征表進(jìn)行抽平處理后,再利用QIIME等軟件對樣本進(jìn)行Alpha多樣性分析,采用Origin 9.0軟件作圖。

    2 結(jié)果與分析

    2.1 大曲樣品中細(xì)菌菌群OTU的統(tǒng)計結(jié)果

    OTU可以反映樣品物種的豐富程度[9],利用Usearch序列分析軟件在97%相似度下對所有序列進(jìn)行OTU的劃分。經(jīng)分析,QP和QX樣品基于97%相似度的OTU數(shù)量分別為73和74,說明QP與QX樣品的細(xì)菌種類差異不大。在水平方向,曲線的寬度反映樣本中物種的豐度,曲線在橫軸上的范圍越大,物種的豐度越高;曲線的平滑程度反映樣本中物種的均勻度,曲線越平緩,物種分布越均勻[10]。由圖1可知,兩個樣品的Rank-Abundance曲線不是很平緩,物種分布并不是很均勻,相比QX樣品,QP樣品的Rank-Abundance曲線較為平緩。盡管QP和QX樣品只有1個OTU數(shù)的差異,但根據(jù)OTU統(tǒng)計結(jié)果,大曲不同部位的細(xì)菌豐度分布存在一定的差異,可能是因為曲皮樣品與外界環(huán)境能夠直接接觸,曲皮的水分及空氣含量要低于曲心,導(dǎo)致大曲不同部位的物種存在較大差異[11]。

    圖1 醬香型白酒大曲曲皮和曲心樣品中細(xì)菌菌群的Rank-Abundance曲線Fig.1 Rank-abundance curves of bacterial community in Qupi and Quxin samples of high-temperature Daqu

    2.2 大曲樣品中細(xì)菌菌群多樣性的分析結(jié)果

    2.2.1 稀釋曲線

    稀釋曲線可以用來比較測序數(shù)據(jù)量不同的樣本中物種的豐富度,也可以用來說明樣本的測序數(shù)據(jù)量是否合理[12]。經(jīng)過Illumina Hiseq高通量測序和序列質(zhì)量控制,QP和QX樣品中細(xì)菌菌群中所得有效序列分別為29 871條和34 636條,其平均堿基長度分別為290 bp和288 bp。由圖2可知,測序深度>10 000條時,稀釋曲線趨于平緩,說明本次測序結(jié)果能代表樣本的真實情況,能較好地反映該區(qū)域細(xì)菌菌群的種類和結(jié)構(gòu)。

    圖2 醬香型白酒大曲曲皮和曲心樣品中細(xì)菌群落的稀釋曲線Fig.2 Dilution curve of bacterial community in Qupi and Quxin samples of high-temperature Daqu

    2.2.2 Alpha多樣性分析

    Alpha多樣性是指一個特定區(qū)域或者生態(tài)系統(tǒng)內(nèi)的多樣性和群落的物種豐富度,常用辛普森(Simpson)指數(shù)、香農(nóng)(Shannon)指數(shù)、超1(Chao 1)指數(shù)、系統(tǒng)發(fā)育多樣性(phylogenetic diversity,PD)指數(shù)等進(jìn)行評價數(shù)據(jù)結(jié)果[13]。QP和QX樣品中細(xì)菌菌群的Alpha多樣性分析結(jié)果見表1。由表1可知,QP樣品的Shannon指數(shù)(2.34)高于QX樣品(2.20),QP樣品的Simpson指數(shù)(0.77)低于QX樣品(0.82),表明QP樣品中細(xì)菌群落多樣性高于QX樣品。QX樣品細(xì)菌群落Chao 1指數(shù)(76.50)、PD指數(shù)(6.65)均高于QP樣品(74.33、6.63),表明QX樣品中細(xì)菌群落物種的豐富度高于QP樣品。這一研究結(jié)果與李登勇等[14]研究發(fā)現(xiàn)的高溫大曲細(xì)菌群落分布規(guī)律不同,可能是因為取樣時間的不同造成了差異性[15]。

    表1 醬香型白酒大曲曲皮和曲心樣品中細(xì)菌菌群的Alpha多樣性分析結(jié)果Table 1 Alpha diversity analysis results of bacterial community in Qupi and Quxin samples of high-temperature Daqu

    2.3 大曲樣品細(xì)菌群落結(jié)構(gòu)分析結(jié)果

    將每個OTU與數(shù)據(jù)庫進(jìn)行比對,選取置信度閾值,即相似度在97%以上的序列進(jìn)行物種分類,得到每個OTU的分類水平,結(jié)果發(fā)現(xiàn),兩個大曲樣品中細(xì)菌菌群主要歸屬于7個門、13個綱、19個目、29個科和55個屬。

    2.3.1 基于門水平細(xì)菌菌群結(jié)構(gòu)分析結(jié)果

    由圖3可知,從QP、QX樣品中共檢測到7個細(xì)菌菌門,分別為厚壁菌門(Firmicutes)、放線菌門(Actinobacteria)、變形菌門(Proteobacteria)、擬桿菌門(Bacteroidetes)、埃普西隆桿菌門(Epsilonbacteraeota)、螺旋體門(Spirochaetes)、Kiritimatiellaeota。在QP樣品中,優(yōu)勢細(xì)菌門(平均相對豐度≥1.00%)為厚壁菌門(Firmicutes)(90.92%)、放線菌門(Actinobacteria)(6.92%)、變形菌門(Proteobacteria)(1.93%)。任愛容等[16]從茅臺鎮(zhèn)主釀區(qū)大曲樣本中檢測出21個門,其中Firmicutes、Proteobacteria、Actinobacteria、擬桿菌門(Bacteroidetes)為優(yōu)勢菌門;郭敏[17]對醬香大曲微生態(tài)多樣性研究也發(fā)現(xiàn)了同樣的結(jié)果。張雙燕等[9,18-19]通過高通量測序分析發(fā)現(xiàn),清香型大曲、芝麻香型高溫大曲以及濃香型大曲的主要細(xì)菌種群為Firmicutes及Proteobacteria。在不同香型的白酒中均能發(fā)現(xiàn)這些細(xì)菌,說明Firmicutes和Proteobacteria是中國白酒大曲中的重要微生物。而在QX樣品中,優(yōu)勢細(xì)菌門只有Firmicutes(81.65%)、Actinobacteria(17.40%)。LI H等[20]研究發(fā)現(xiàn),醬香大曲中的優(yōu)勢細(xì)菌門為Firmicutes和Actinobacteria。醬香大曲中耐高溫細(xì)菌的種類共通性和豐度差異性,造成差異性的原因可能與原料來源、母曲中微生物組成及制曲工藝等因素有關(guān)[21]。在QX樣品中Proteobacteria沒有成為優(yōu)勢細(xì)菌門,原因在于曲心的制曲溫度高(達(dá)到65 ℃)和水分含量低,導(dǎo)致不耐熱的Proteobacteria無法存活;而在QP樣品中因跟外界環(huán)境直接接觸,水分和溫度的適宜促使Proteobacteria成為優(yōu)勢細(xì)菌門[22]。這一結(jié)果說明在曲塊的不同部位所含的細(xì)菌菌群盡管種類沒有差異,但其相對豐度有所差異。

    圖3 基于門水平醬香型大曲曲皮和曲心中細(xì)菌群落結(jié)構(gòu)的分析結(jié)果Fig.3 Analysis results of bacterial community structure in Qupi and Quxin samples of high-temperature Daqu at the phylum level

    2.3.2 基于屬水平細(xì)菌菌群結(jié)構(gòu)分析結(jié)果

    由圖4可知,在QP和QX樣品中均檢測到55個屬。QP和QX樣品中的優(yōu)勢細(xì)菌屬(相對豐度≥1.00%)分別為8個、7個,共有優(yōu)勢細(xì)菌屬有5個,分別為枝芽孢桿菌屬(Virgibacillus)(46.36%,19.87%)、芽孢桿菌屬(Bacillus)(12.78%,32.41%)、芽孢鏈菌屬(Desmospora)(10.26%,13.55%)、乳桿菌屬(Lactobacillus)(14.79%,6.47%)、糖多孢菌屬(Saccharopolyspora)(2.87%,13.37%),其中Virgibacillus、Bacillus、Desmospora、Lactobacillus都屬于芽孢桿菌綱,因此表明芽孢桿菌是高溫大曲中的主要微生物菌群,該結(jié)果與戴奕杰等[23-24]的研究結(jié)果一致。有研究表明,Virgibacillus對醬香型白酒風(fēng)味品質(zhì)的形成有重要貢獻(xiàn)[25];Lactobacillus在釀造過程中產(chǎn)生的乳酸能為白酒形成風(fēng)味物質(zhì)合成提供前體,具有維護與保持釀酒微生態(tài)環(huán)境等作用[26]。屬于放線菌綱的Saccharopolyspora為醬香型白酒第1輪次酒醅堆積發(fā)酵中的優(yōu)勢細(xì)菌屬[27],對白酒風(fēng)味物質(zhì)的形成有重要作用。在芝麻香型白酒中也發(fā)現(xiàn)了Saccharopolyspora為優(yōu)勢菌群[28]。有研究表明,Desmospora與克羅彭施泰特氏菌屬(Kroppenstedtia)的基因序列相似度達(dá)到94.3%[29],Kroppenstedtia主要與丁酸乙酯、己酸乙酯、庚酸乙酯、辛酸乙酯等酯類、β-苯基乙醇、2-甲氧基-4-乙烯基苯酚乙基愈創(chuàng)木酚的產(chǎn)量呈正相關(guān),Kroppenstedtia在白酒釀造中發(fā)現(xiàn)的時間較短,目前對其功能特性了解有限[30]。

    圖4 基于屬水平醬香型大曲曲皮和曲心中細(xì)菌群落結(jié)構(gòu)的分析結(jié)果Fig.4 Analysis results of bacterial community structure in Qupi and Quxin samples of high-temperature Daqu at the genus level

    QP樣品中特有的優(yōu)勢細(xì)菌屬為鏈霉菌屬(Streptomyces)(2.30%)、鞘氨醇單胞菌屬(Sphingomonas)(1.30%)、片球菌屬(Pediococcus)(1.02%)。其中,Streptomyces可能來源于白酒釀造環(huán)境中的空氣,其作為一種需氧菌,具有酯化脂肪酶、分泌酯酶、堿性磷酸酶與水解磷酸鹽酶的能力,可能在醬香型白酒風(fēng)味物質(zhì)或風(fēng)味前體的形成中起重要作用[31];Sphingomonas可以降解芳香類化合物和產(chǎn)生多糖類物質(zhì),同時具有較強的產(chǎn)輔酶Q能力[32]。Pediococcus可以利用碳水化合物產(chǎn)生乳酸不產(chǎn)氣,無法分解蛋白,但能夠促進(jìn)發(fā)酵食品產(chǎn)生特有的風(fēng)味物質(zhì),因此在白酒發(fā)酵過程中起著重要的作用[33]。這些菌屬僅在QP中成為優(yōu)勢菌屬可能是因為它們是需氧菌,因QX樣品中沒有氧氣所以無法大量生存。

    QX樣品中特有的優(yōu)勢細(xì)菌屬為Scopulibacillus(3.71%)、葡萄球菌屬(Staphylococcus)(1.66%)。其中,Scopulibacillus是兼性厭氧嗜熱菌,在芝麻香型白酒高溫大曲也有發(fā)現(xiàn)[34],但目前對Scopulibacillus在白酒中的功能還尚未清楚。

    大曲曲塊不同部位的微生物群落的差異會導(dǎo)致水分、酸度、溫度等理化指標(biāo)也不同。同樣,大曲不同部位的水分和酸度值也是導(dǎo)致微生物群落分布不同的環(huán)境因素[35]。因此,盡管在QP和QX中的細(xì)菌種類差別不大,但由于其含量不同,共同在后期發(fā)酵過程中相互作用,可以對后期合成的風(fēng)味物質(zhì)造成一定的影響。

    3 結(jié)論

    本研究采用Illumina HiSeq高通量測序技術(shù),分析比較了醬香型白酒大曲曲皮和曲心的細(xì)菌菌群多樣性及群落結(jié)構(gòu)的差異性。結(jié)果表明,曲皮樣品中的細(xì)菌群落多樣性高于曲心樣品,但其豐度低于曲心樣品。在曲皮和曲心樣品中共檢測到7個門、13個綱、19個目、29個科和55個屬,曲皮、曲心樣品中檢測到的細(xì)菌種類沒有差異,但同一細(xì)菌的相對豐度存在一定的差異性。曲皮樣品中的優(yōu)勢細(xì)菌門為Firmicutes、Actinobacteria、Proteobacteria,曲心樣品中的優(yōu)勢細(xì)菌門沒有Proteobacteria。曲皮和曲心樣品共有的優(yōu)勢細(xì)菌屬為Virgibacillus、Bacillus、Desmospora、Lactobacillus、Saccharopolyspora,除Desmospora屬外,其他優(yōu)勢細(xì)菌屬在曲皮和曲心樣品中的含量差異較大。曲皮樣品的特有優(yōu)勢細(xì)菌屬為Streptomyces、Sphingomonas、Pediococcus;曲心樣品的特有優(yōu)勢細(xì)菌屬為Scopulibacillus、Staphylococcus。這些細(xì)菌在茅臺酒的風(fēng)味生產(chǎn)和發(fā)酵中均起著重要作用,有助于形成茅臺酒獨特的酒體組成和獨特的風(fēng)格。本研究在一定程度上豐富了對貴州地區(qū)高溫大曲微生物群落多樣性的認(rèn)識,證實了在大曲的不同部位,細(xì)菌群落結(jié)構(gòu)是有差異的,對后續(xù)研究微生物對大曲的理化指標(biāo)及其風(fēng)味物質(zhì)的影響奠定了基礎(chǔ)。

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