梁松 楊亞飛 張耀斌
摘 要:異化鐵還原耦合厭氧氧化(Feammox)是自然環(huán)境中普遍存在的氨氮去除途徑,但該過程在污水處理領(lǐng)域的研究及應(yīng)用還比較少。以含氨氮的污泥消化液為對象,研究其在厭氧條件下由水鐵礦驅(qū)動Feammox進(jìn)行脫氮的效果。結(jié)果表明:經(jīng)過48 d厭氧處理后,NH+4-N去除率和總氮去除率分別為72.4%和57.5%,而未投加水鐵礦的對照組中NH+4-N去除率和總氮去除率分別為7.6%和2.5%;在投加水鐵礦的反應(yīng)器內(nèi)檢測到Fe(Ⅱ)的持續(xù)產(chǎn)生;以同位素標(biāo)記的15NH+4-N進(jìn)料,在投加水鐵礦的反應(yīng)器頂空中檢出30N2,證明了Feammox的發(fā)生;實時定量PCR(qPCR)結(jié)果顯示,F(xiàn)eammox功能微生物Acidimicrobiaceae A6菌表達(dá)活躍。高通量測序表明,在投加水鐵礦的反應(yīng)器內(nèi)富集了多種鐵還原菌;同時,向反應(yīng)器內(nèi)投加水鐵礦和腐殖質(zhì)后,NH+4-N去除率達(dá)88.35%,總氮去除率達(dá)73.75%,對反應(yīng)器內(nèi)鐵氧化物組成和形態(tài)分析發(fā)現(xiàn),腐殖質(zhì)減弱了鐵氧化物鈍化速度,有利于水鐵礦保持活性并持續(xù)參與Feammox脫氮。
關(guān)鍵詞:含氮廢水;生物脫氮;異化鐵還原;鐵氨氧化
中圖分類號:X703.1 ? 文獻(xiàn)標(biāo)志碼:A ? 文章編號:2096-6717(2022)01-0168-09
收稿日期:2021-05-04
基金項目:國家自然科學(xué)基金(21777016)
作者簡介:梁松(1995- ),女,主要從事厭氧水處理研究,E-mail:elle_liang@163.com。
張耀斌(通信作者),男,教授,博士生導(dǎo)師,E-mail:zhangyb@dlut.edu.cn。
Abstract: Dissimilar iron reduction coupled with anaerobic oxidation (Feammox) is a common pathway to oxidize ammonia nitrogen in natural environment, which however has been rarely reported in sewage treatment. In this study, the sludge digester liquor was used as the NH+4-N source to study the NH+4-N removal during Feammox driven by adding ferrihydrite under anaerobic conditions. The results showed that after 48 days of anaerobic incubation, the NH+4-N removal efficiency and total nitrogen removal efficiency were 72.4% and 57.5%, respectively, while the NH+4-N removal efficiency and total nitrogen removal efficiency in the reactor without adding ferrihydrite were 7.6% and 2.5%, respectively. The continuous production of Fe(Ⅱ) was detected in the ferrihydrite-added reactor. After feeding with isotope-labeled 15NH+4-N as the NH+4-N source, 30N2 was detected in the headspace of the ferrihydrite-added reactor, which proved the occurrence of Feammox. Real-time quantitative PCR(qPCR) results showed that Acidimicrobiaceae A6 expressed actively. High-throughput 16S rDNA showed that a variety of iron-reducing bacteria were significantly enriched. After simultaneously adding ferrihydrite and humus into the reactor, the removal efficiency of NH+4-N further increased to 88.35%, and the removal efficiency of total nitrogen reached 73.75%. The analysis of the composition and morphology of iron oxides added in the reactors showed that humus weakened the passivation rate of iron oxides, which was beneficial for ferrihydrite to maintain activity and continue to participate in Feammox.
Keywords:nitrogen containing wastewater; biological nitrogen removal; dissimilated iron reduction; Feammox
硝化反硝化是常用的廢水生物脫氮工藝,但硝化反應(yīng)需要曝氣,反硝化反應(yīng)在處理低C/N廢水時需要外加碳源[1]。厭氧氨氧化(Anammox)是以NO-2為電子受體將NH+4氧化的生物脫氮工藝,能耗低且污泥產(chǎn)量少,但Anammox的功能菌增殖緩慢且對環(huán)境敏感[2]。上述不足使兩者在工程應(yīng)用中均存在不同的局限性。異化鐵還原耦合厭氧氨氧化(Feammox),是指微生物以Fe(Ⅲ)為最終電子受體將NH+4氧化成N2、NO-2或NO-3[3]的過程,是一種廣泛存在于自然環(huán)境中的脫氮途徑。Feammox過程無需曝氣和專門的Anammox微生物,是一種區(qū)別于硝化反硝化和厭氧氨氧化的新型生物脫氮方式。
目前,有關(guān)Feammox的研究主要集中于自然環(huán)境中的物質(zhì)遷移轉(zhuǎn)化和元素循環(huán)[3-6]。但在廢水脫氮方面,由于Feammox發(fā)現(xiàn)較晚,目前的少量報道主要以人工配制廢水為主[7-8],且缺乏15N標(biāo)記同位素等手段進(jìn)行證實。另一方面,F(xiàn)eammox與異化鐵還原密切相關(guān)[9]。據(jù)報道[10],腐殖質(zhì)結(jié)構(gòu)上具有的羥基/醌基可用作電子穿梭體,提高異化鐵還原效率。但腐殖質(zhì)是否可以用于加快Feammox的報道較少。
筆者將稀釋后的污泥消化液作為處理對象,向厭氧反應(yīng)器內(nèi)投加水鐵礦,嘗試驅(qū)動Feammox過程并探究其對氮去除效果的影響;利用同位素標(biāo)記、微生物群落分析等方法研究脫氮與Feammox的相關(guān)性;投加腐殖質(zhì)探究其對Feammox脫氮的影響。
1 材料和方法
1.1 材料
1.1.1 引種污泥及其馴化
引種污泥取自大連市某污泥處理廠的厭氧消化污泥(VS 35±0.2 g/L)。為消耗引種污泥中所含的有機物,避免其與廢水中的NH+4競爭投加到反應(yīng)器中的水鐵礦,以及避免引種污泥中的蛋白質(zhì)在分解過程中釋放出的氨氮造成實驗反應(yīng)器中NH+4-N濃度產(chǎn)生較大波動,實驗前在上流式厭氧污泥床(UASB)中對引種污泥進(jìn)行連續(xù)流進(jìn)水厭氧馴化,直至反應(yīng)器的出水NH+4-N濃度不再變化。
1.1.2 水鐵礦合成
使用的水鐵礦根據(jù)Cornell等[11]的方法合成,即在磁力攪拌條件下向FeCl3·6H2O溶液中逐滴加入1 mol/L NaOH溶液,調(diào)節(jié)pH值為7.0~7.6,得到褐色懸浮狀水鐵礦后靜置并吸去上清液,用去離子水重復(fù)洗滌離心(8 000 r/min,10 min)3次,去除多余的去離子水后冷凍干燥,獲得實驗所用水鐵礦。
1.1.3 污泥消化液
實驗所用的污泥消化液同樣取自大連市某污泥處理廠,稀釋20倍后NH+4-N濃度為91.03 mg/L,TCOD濃度為71.23 mg/L,pH值為6.8~7.2。主要初始指標(biāo)如表1所示。
1.1.4 腐殖質(zhì)
實驗所用腐殖質(zhì)為阿拉丁試劑(上海)有限公司所生產(chǎn)的腐植酸,主要成分為黃腐酸,CAS為1415-93-6。
1.2 實驗方案及測試方法
1.2.1 實驗設(shè)置
實驗開始前,將無菌缺氧的去離子水與經(jīng)過馴化后的引種污泥按照體積比3∶1的比例充分混合,在黑暗中于25 ℃預(yù)培養(yǎng)3 d,以去除背景氮氧化物,去除上清液后的污泥用作實驗接種污泥,主要初始指標(biāo)如表2所示。向100 mL血清瓶中加入7 mL已去除上清液的接種污泥和70 mL稀釋后的污泥消化液。設(shè)置實驗方法(每組9個血清瓶):1)未投加水鐵礦的對照組;2)投加水鐵礦的水鐵礦組;3)投加水鐵礦和腐殖質(zhì)的腐殖質(zhì)組。用丁基橡膠隔片密封血清瓶,并用鋁蓋壓蓋后用超高純氬氣沖洗血清瓶以排出空氣,然后將其置于充滿氬氣的厭氧手套箱中,該手套箱放置于恒溫房中。
每間隔2 d從血清瓶中進(jìn)行破壞性采樣,每個血清瓶采樣2次后丟棄。取樣前,劇烈搖晃血清瓶以混勻樣品,取樣在充滿氬氣的厭氧手套箱中操作。
1.2.2 15N同位素標(biāo)記實驗
同位素標(biāo)記培養(yǎng)所使用的培養(yǎng)基組分為:MgCl2·6H2O(0.4 g/L)、CaCl2·H2O(0.1 g/L)、15NH4Cl(0.1 g/L)和KH2PO4(0.6 g/L)、1 mL/L維生素溶液、1 mL/L微量元素溶液、30 mmol/L碳酸氫鹽緩沖液和2 mmol/L乙酸鹽[12]。所有實驗的接種污泥處理方法和實驗方法設(shè)置全部一致。同位素標(biāo)記培養(yǎng)基在厭氧手套箱中培養(yǎng)30 d后,使用配有質(zhì)譜分析儀的氣相色譜儀(GC/MS, QP2020)檢測厭氧反應(yīng)器頂空氣體中30N2的生成(色譜柱類型為SH-RXI-5silMS,氣體手動進(jìn)樣,進(jìn)樣口溫度280 ℃,質(zhì)譜掃描范圍12~32 m/z,全掃描)。頂空氣體中的N2體積通過帶有熱導(dǎo)檢測器(TCD)的氣相色譜儀(Tianmei, GC-7900P/TCD, 中國)進(jìn)行測定。
1.2.3 分析儀器和測試方法
采用納氏試劑法測定NH+4-N濃度,N-(1-萘基)-乙二胺法測定NO-2-N,紫外分光光度法測定NO-3-N,過硫酸鉀分光光度法測定總氮[13]。反應(yīng)器內(nèi)鐵氧化物的晶體形態(tài)采用X射線衍射(XRD)鑒定。XRD衍射儀(SmartLab 9 kW,日本)配備有Cu-Ka輻射,電壓為45 kV,電流為200 mA。根據(jù)Ding等[9]的方法測定反應(yīng)器中的Fe(Ⅱ)和Fe(Ⅲ),即在室溫下用5 mL 0.5 mol/L的HCl提取1 mL泥水混合物2 h,然后以8 000 r/min離心5 min,通過0.22 mm過濾器過濾后用鄰菲羅啉分光光度法測定上清液的Fe(Ⅱ)含量。
采用分步提取法對反應(yīng)器內(nèi)不同鐵氧化物進(jìn)行提取并對其各自所占比例進(jìn)行計算[14-16]。
第48天的對照組和水鐵礦組反應(yīng)器內(nèi)的污泥樣品委托上海美吉生物公司通過高通量16S rDNA測序進(jìn)行微生物群落分析:根據(jù) E.Z.N.A. soil DNA kit (Omega Bio-tek, Norcross, GA, U.S.)說明書進(jìn)行微生物群落總DNA抽提,使用338F (5-ACTCCTACGGGAGGCAGCAG-3)和806R (5-GGACTACHVGGGTWTCTAAT-3)對16S rRNA基因V3-V4可變區(qū)進(jìn)行PCR擴增,擴增之后的產(chǎn)物經(jīng)過回收純化和檢測定量后利用Illumina公司的Miseq PE300/NovaSeq PE250平臺進(jìn)行測序。
同時委托上海美吉生物公司進(jìn)行基于RNA的實時定量PCR分析(qPCR),用于進(jìn)一步確定某些功能性基因的絕對數(shù)量和活性[17]。使用引物組1055f/1392r對16S rRNA基因進(jìn)行總細(xì)菌定量表示。使用引物組Amx368f/Amx820r鑒定量化Anammox功能菌,F(xiàn)eammox功能微生物Geobacteraceae和Acidimicrobiaceae A6細(xì)菌分別使用引物組Geo494F/Geo825R和acm342f/439r進(jìn)行鑒定量化[18-19]。具體的引物信息如表3所示。
2 試驗結(jié)果與討論
2.1 投加水鐵礦對氨氮去除的影響
如圖1(a)所示,經(jīng)過48 d處理后,水鐵礦組中NH+4-N的濃度從初始的91.03 mg/L降至25.11 mg/L,而未投加水鐵礦或離子態(tài)Fe(Ⅲ)的對照組中NH+4-N濃度只略微降低至86.62 mg/L。即,水鐵礦組中NH+4-N的去除率約為72.4%,而對照中的去除率僅為7.6%。在熱力學(xué)上,有機物比NH+4更具有優(yōu)勢成為Fe(Ⅲ)還原的電子供體[20]??梢钥闯觯诜磻?yīng)前期NH+4-N濃度下降并不明顯。這是因為污泥消化液的TCOD為71.23 mg/L,其中的少量有機物會與氨氮競爭電子受體水鐵礦;隨著有機物被消耗,NH+4才更多地被用作異化Fe(Ⅲ)還原,因此,圖1(a)中投加水鐵礦組的NH+4-N濃度下降存在滯后。另外,相關(guān)功能微生物的富集過程可能也是導(dǎo)致滯后的原因之一。
為考察反應(yīng)器內(nèi)是否生成了Feammox產(chǎn)物NO-3和NO-2,在實驗過程中不定期測定了反應(yīng)器內(nèi)NO-3-N和NO-2-N含量,結(jié)果如圖1(b)、(c)所示。在反應(yīng)器中檢測到NO-3和NO-2,且水鐵礦組中的濃度總是高于對照組(圖1(b)、(c)),這與圖1(a)中NH+4-N濃度的變化差異是一致的,表明投加水鐵礦促進(jìn)了NH+4的轉(zhuǎn)化??梢钥吹剑磻?yīng)器中NO-3和NO-2濃度均較低,這是因為N2是Feammox過程中的主要轉(zhuǎn)化產(chǎn)物,占Feammox總產(chǎn)物的67%~78%[9],所以,NO-2和NO-3的產(chǎn)量較小;同時,厭氧條件下的NO-2和NO-3可被Fe(Ⅱ)分別以化學(xué)反硝化以及硝酸鹽依賴型鐵氧化(NO-3 dependent Fe(Ⅱ) oxidation,NDFO)的方式被還原[21],因此,NO-2和NO-3難以大量存在,同時,這兩種物質(zhì)作為中間物質(zhì),含量波動變化,與反應(yīng)時間無明顯線性關(guān)系。需要指出的是,對照組中所檢測到的NO-x以及少量氨氮損失(圖1(a))也來自Feammox。原因是對照組中的污泥也含有0.047%的背景Fe(Ⅲ),這大部分來自污泥調(diào)理過程中的鐵絮凝劑。
為了進(jìn)一步研究投加水鐵礦對氮去除的影響,對實驗前后的總氮進(jìn)行測定(圖1(d))。結(jié)果表明,水鐵礦組的總氮去除率為57.5%,而對照組僅為2.5%,表明向厭氧反應(yīng)器中投加水鐵礦可以顯著提高氮的去除率。
2.2 Fe(Ⅱ)濃度變化
Fe(Ⅱ)作為Feammox的水鐵礦還原產(chǎn)物,可以間接反映異化鐵還原和脫氮的程度。圖2描述了實驗過程中Fe(Ⅱ)濃度的變化。水鐵礦組中,F(xiàn)e(Ⅱ)濃度從388.58 mg/L逐漸增加至1 917.27 mg/L,最后一天降至1 138.33 mg/L。Fe(Ⅱ)濃度的增加與圖1(a)中水鐵礦組中NH+4-N的去除結(jié)果相呼應(yīng)。而對照組中Fe(Ⅱ)濃度基本保持在400 mg/L左右,這是接種污泥中背景Fe(Ⅲ)參與異化鐵還原的結(jié)果,但接種污泥在實驗前經(jīng)過馴化,其中的背景Fe(Ⅲ)被自身所含的有機物消耗,導(dǎo)致其含量不高且多難以被微生物利用,因此,對照組中的Fe(Ⅱ)含量基本不變。水鐵礦組的Fe(Ⅱ)濃度上升與NH+4-N濃度下降,表明反應(yīng)器中NH+4轉(zhuǎn)化率的提高與異化Fe(Ⅲ)還原有關(guān),即投加水鐵礦驅(qū)動了Feammox過程進(jìn)行脫氮。
另外,第42天水鐵礦組中Fe(Ⅱ)濃度急劇下降。Boland等[22]指出,在水溶液態(tài)Fe(Ⅱ)的存在下,水鐵礦可以化學(xué)轉(zhuǎn)化為晶型更為穩(wěn)定的鐵礦物質(zhì)。從實驗結(jié)束時水鐵礦組污泥冷凍干燥后的XRD圖譜(圖3)可以看出,在加了水鐵礦的反應(yīng)器中形成了磁鐵礦。Yang等[23]也在實驗終止后投加有水鐵礦的反應(yīng)器污泥中檢測到磁鐵礦(Fe3O4)和纖鐵礦(FeOOH)。也就是說,反應(yīng)器內(nèi)的水鐵礦轉(zhuǎn)化成了微生物難以利用的磁鐵礦,可被利用還原的Fe(Ⅲ)越來越少,F(xiàn)e(Ⅱ)生成量越來越少,同時,又存在Fe(Ⅱ)被NO-x氧化的過程,F(xiàn)e(Ⅱ)生成量少于消耗量,導(dǎo)致了Fe(Ⅱ)濃度的下降。
2.3 同位素標(biāo)記結(jié)果分析
為了進(jìn)一步證實Feammox過程的脫氮作用,采用N-15標(biāo)記的NH+4和水鐵礦在相同的接種污泥中混合培養(yǎng)。該培養(yǎng)全程在厭氧手套箱中進(jìn)行,嚴(yán)格厭氧消除有氧硝化的可能性。在厭氧條件下,F(xiàn)eammox可以直接生成30N2(3Fe(OH)3+ 5H+ + 15NH+4→3Fe2+ + 9H2O + 0.530N2),或者利用Feammox生成的15NO-3和15NO-2通過Anammox或反硝化生成30N2[24]。從表4可知,所有潛在的30N2生成途徑都必須以Feammox發(fā)生為前提。因此,如在反應(yīng)器的頂空氣中檢測到30N2,可以證明厭氧反應(yīng)器中發(fā)生Feammox。
經(jīng)檢測,對照組中30N2的總產(chǎn)量約為0.013 μmol,而水鐵礦組總產(chǎn)量約為65.69 μmol,是未投加水鐵礦的對照組總產(chǎn)量的5 000倍以上(圖4)。在水鐵礦組反應(yīng)器頂空氣體中檢測到30N2以及兩組30N2生成量的巨大差距證明了向厭氧反應(yīng)器中投加Fe(Ⅲ)驅(qū)動了Feammox過程發(fā)生。同時,在后續(xù)的微生物群落分析中Anammox菌未被檢測到,即進(jìn)一步排除了反應(yīng)器內(nèi)的NH+4通過Anammox途徑被去除的可能。
此外,29N2在水鐵礦組中也大量累積,表4中顯示了幾種潛在的29N2生成途徑,包括通過Feammox直接生成,或者利用Feammox生成的15NO-x與背景14NH+4或14NO-x通過Anammox或反硝化生成29N2。Yang等[24]利用同位素標(biāo)記法在熱帶土壤中證明Feammox時也發(fā)現(xiàn)了添加Fe(Ⅲ)和15NH+4后,除30N2外,29N2的產(chǎn)量也顯著提高,認(rèn)為添加Fe(Ⅲ)后對29N2產(chǎn)生的刺激表明,無論29N2的生成機制是什么,F(xiàn)eammox在NH+4的厭氧氧化中有重要作用。本研究中投加水鐵礦后29N2產(chǎn)量的激增也說明Feammox在厭氧NH+4氧化中發(fā)揮了重要作用。
2.4 微生物群落分析
到目前為止,F(xiàn)eammox的功能性微生物尚未被完全闡明,大多數(shù)研究認(rèn)為鐵還原菌是Feammox的功能微生物[12, 25]。在本研究中,水鐵礦組中的鐵還原菌被富集。對比對照組和水鐵礦組,在屬水平,Geobacter在水鐵礦組中的相對豐度為0.54%,而在對照組中僅為0.003 6%,相差約150倍。
此外,Huang等[19]在河岸濕地中發(fā)現(xiàn)了另一種在Feammox中起重要作用的微生物(Acidimicrobiaceae A6菌),其被確認(rèn)為是Feammox的功能微生物。在本研究中,盡管在16S rDNA高通量測序中未檢測到Acidimicrobiaceae A6細(xì)菌,但基于RNA的實時定量PCR分析(qPCR)結(jié)果顯示,在水鐵礦組和對照組中Acidimicrobiaceae A6細(xì)菌的拷貝數(shù)分別為4.15×107和4.90×106,這一差距表明,作為Feammox功能微生物的Acidimicrobiaceae A6細(xì)菌在投加Fe(Ⅲ)的厭氧反應(yīng)器中表達(dá)得更為活躍。
特別地,16S rDNA高通量測序結(jié)果和qPCR中都未檢測到Anammox菌或Anammox基因,進(jìn)一步證明了氨氮的去除并非由Anammox導(dǎo)致。
2.5 投加腐殖質(zhì)對脫氮效果的影響
異化鐵還原過程中,微生物將電子傳遞至胞外不溶性鐵氧化物,是其呼吸代謝的制約性步驟。同時,反應(yīng)過程中生成的Fe(Ⅱ)不斷沉積在鐵氧化物表面并與其進(jìn)行電子交換,導(dǎo)致次生礦物生成,鐵氧化物晶型不斷向更穩(wěn)定狀態(tài)轉(zhuǎn)化,使微生物難以利用。上述原因?qū)е铝水惢F還原的速率逐步降低。一般說來,小分子有機物可作為有機碳源被微生物吸收用于生長,而腐殖質(zhì)為大分子有機物,難以進(jìn)入細(xì)胞內(nèi)部為微生物提供生長所需碳源。據(jù)報道[10],腐殖質(zhì)以電子穿梭體的作用存在于異化鐵還原過程中。為探究腐殖質(zhì)在Feammox過程中的作用,在投加水鐵礦的同時向反應(yīng)器內(nèi)投加腐殖質(zhì)。
經(jīng)過48 d厭氧培養(yǎng),投加有腐殖質(zhì)的反應(yīng)器內(nèi)NH+4-N濃度由最初的91.03 mg/L降至10.16 mg/L,NH+4-N去除率和總氮去除率分別為88.35%和73.75%,對比只投加水鐵礦的反應(yīng)器的72.4%和57.54%,分別提高了15.95%和16.21%,說明向反應(yīng)器內(nèi)投加腐殖質(zhì)后進(jìn)一步促進(jìn)了Feammox厭氧脫氮。
在厭氧培養(yǎng)48 d后,水鐵礦組和腐殖質(zhì)組反應(yīng)器內(nèi)Fe(Ⅱ)濃度最終分別為1 138.33、1 839.18 mg/L,相應(yīng)的Fe(Ⅱ)生成率分別為23.72、38.32 mg/(L·d),反應(yīng)器內(nèi)Fe(Ⅱ)的生成速率提高了近一倍。根據(jù)第48天兩組反應(yīng)器內(nèi)二價鐵濃度對鐵還原率進(jìn)行核算,結(jié)果如圖5所示,水鐵礦組和腐殖質(zhì)組反應(yīng)器內(nèi)的鐵還原率分別為46.18%和89.36%,鐵還原率提高了40%以上。結(jié)果表明,投加腐殖質(zhì)后,通過促進(jìn)異化鐵還原過程提高了Feammox的反應(yīng)速率。
圖6為單獨投加水鐵礦和同時投加水鐵礦和腐殖質(zhì)組內(nèi)樣品的掃描電子顯微鏡(SEM)圖像,可以看到,未投加腐殖質(zhì)的反應(yīng)器內(nèi)塊狀磁鐵礦顆粒更清晰,體積更大,數(shù)量較多,分布更密集;而投加了腐殖質(zhì)的反應(yīng)器內(nèi)混合物的形態(tài)更為蓬松,顆粒狀晶型不明顯,數(shù)量少,分布散,體積也更小。結(jié)果表明,向反應(yīng)器內(nèi)投加腐殖質(zhì)可以減緩反應(yīng)器內(nèi)結(jié)構(gòu)松散的鐵氧化物向結(jié)構(gòu)密實的高結(jié)晶態(tài)鐵氧化物的轉(zhuǎn)化進(jìn)程。
X射線光電子能譜(XPS)分峰擬合結(jié)果如圖7所示,水鐵礦組樣品的Fe 2p圖譜在723.1、710.61 eV處出現(xiàn)兩個峰,分別對應(yīng)了Fe3O4的Fe 2p1/2和Fe 2p3/2自旋軌道躍遷[26],說明反應(yīng)器內(nèi)生成了高結(jié)晶態(tài)的磁鐵礦,而腐殖質(zhì)組樣品的Fe 2p圖譜在724.6、710.8 eV處出現(xiàn)兩個峰,對應(yīng)了Fe2O3的存在,該結(jié)果與SEM結(jié)果吻合,表明投加腐殖質(zhì)可減慢水鐵礦的晶型轉(zhuǎn)變速度。
此外,對比兩組樣品的Fe 2p掃描圖譜可以發(fā)現(xiàn),水鐵礦組樣品的圖譜更為平滑,而腐殖質(zhì)組樣品的圖譜上有許多噪音信號,說明該樣品表面的含鐵量較少,而腐殖質(zhì)的投加并不會改變樣品表面的含鐵量,原因可能是腐殖質(zhì)覆蓋在鐵氧化物的表面并與其結(jié)合,這種作用會加速電子傳遞,進(jìn)而提高反應(yīng)速率。
對反應(yīng)結(jié)束后的水鐵礦組和腐殖質(zhì)組內(nèi)不同鐵氧化物進(jìn)行提取,確定其各自占總量的比例,結(jié)果如圖8所示。兩組樣品中主要以易還原的羥基氧化鐵(水鐵礦和纖鐵礦)和結(jié)晶態(tài)的鐵氧化物形式存在,水鐵礦組和腐殖質(zhì)組內(nèi)易被還原態(tài)的鐵氧化物占比分別為41.92%和52.44%,結(jié)晶態(tài)的鐵氧化物占比分別為55.21%和41.63%??梢钥吹剑谕都恿烁迟|(zhì)的反應(yīng)器內(nèi)易被還原形態(tài)的鐵氧化物所占比例最高,而未投加腐殖質(zhì)的反應(yīng)器內(nèi)高結(jié)晶態(tài)鐵氧化物含量最高,表明腐殖質(zhì)在一定程度上可以阻止部分鐵氧化物向晶型更為穩(wěn)定的鐵礦物轉(zhuǎn)化。
3 結(jié)論
向污泥消化液中投加水鐵礦驅(qū)動厭氧反應(yīng)器中Feammox過程發(fā)生,研究投加Fe(Ⅲ)對氮去除效果的影響,得到以下主要結(jié)論:
1)48 d后,水鐵礦組的NH+4-N去除率為72.4%,比對照組提高了64.8%,總氮去除率提高了50%以上;投加腐殖質(zhì)后,NH+4-N去除率為88.35%,總氮去除率為73.75%,對比水鐵礦組分別提高了15.95%和16.25%,說明投加Fe(Ⅲ)后提高了厭氧反應(yīng)器中氮的去除率,腐殖質(zhì)的投加進(jìn)一步促進(jìn)了NH+4的轉(zhuǎn)化。
2)使用同位素標(biāo)記的15NH+4進(jìn)料,在投加了Fe(Ⅲ)的反應(yīng)器頂空氣體中檢出30N2,證明在厭氧反應(yīng)器中發(fā)生了Feammox。
3)微生物群落分析結(jié)果表明,投加水鐵礦后在反應(yīng)器內(nèi)富集了Geobacter等多種鐵還原菌;qPCR結(jié)果表明,投加水鐵礦的反應(yīng)器內(nèi)Feammox功能微生物Acidimicrobiaceae A6菌表達(dá)活躍,說明反應(yīng)器內(nèi)的氮去除與Feammox有關(guān)。
4)反應(yīng)器內(nèi)的鐵氧化物組成及形態(tài)分析表明,腐殖質(zhì)除了以電子穿梭體進(jìn)行作用外,還可通過減緩鐵氧化物鈍化,增強異化鐵還原而提高Feammox效率。
利用水鐵礦驅(qū)動了Feammox脫氮,而腐殖質(zhì)進(jìn)一步促進(jìn)了該過程,氮去除率進(jìn)一步提高。需要指出的是,F(xiàn)eammox過程中氨氮去除需要較長反應(yīng)時間,這可能與Feammox的自養(yǎng)方式有關(guān),也與異化鐵還原的胞外電子傳遞相關(guān)。可以在微生物富集、強化,以及提高胞外電子傳遞等方面進(jìn)一步開展研究。
區(qū)別于傳統(tǒng)生物脫氮方式,該方法可在厭氧消化器內(nèi)實現(xiàn)脫氨氮,前提是需要Fe(Ⅲ)的持續(xù)投加。連續(xù)投加Fe(Ⅲ)看似不易,但對于富含F(xiàn)e(Ⅲ)的芬頓污泥,可將其用作三價鐵源。尤其對具備較長處理時間條件的垃圾填埋場,F(xiàn)eammox可以作為一種有較好應(yīng)用前景的生物脫氮技術(shù)。參考文獻(xiàn):
[1] 鄭平, 徐向陽, 胡保蘭. 新型生物脫氮理論與技術(shù)[M]. 北京: 科學(xué)出版社, 2004.
ZHENG P, XU X Y, HU B L. New biological denitrification theory and technology [M]. Beijing: Science Press, 2004. (in Chinese)
[2] ?DALSGAARD T, THAMDRUP B, CANFIELD D E. Anaerobic ammonium oxidation (anammox) in the marine environment [J]. Research in Microbiology, 2005, 156(4): 457-464.
[3] 易博. 稻田土壤厭氧氨氧化協(xié)同鐵還原為途徑的氣態(tài)氮素?fù)p失過程及其機理的研究[D]. 杭州: 浙江大學(xué), 2019.
YI B. Nitrogen losses throughiron reduction coupled with anaerobic ammonium oxidation from paddy soils [D].Hangzhou: Zhejiang University, 2019. (in Chinese)
[4] ?DING B J, CHEN Z H, LI Z K, et al. Nitrogen loss through anaerobic ammonium oxidation coupled to iron reduction from ecosystem habitats in the Taihu estuary region [J]. Science of the Total Environment, 2019, 662: 600-606.
[5] ?YAO Z B, WANG F, WANG C L, et al. Anaerobic ammonium oxidation coupled to ferric iron reduction in the sediment of a eutrophic lake [J]. Environmental Science and Pollution Research International, 2019, 26(15): 15084-15094.
[6] ?LI H, SU J Q, YANG X R, et al. RNA stable isotope probing of potential feammox population in paddy soil [J]. Environmental Science & Technology, 2019, 53(9): 4841-4849.
[7] ?LI X, HUANG Y, LIU H W, et al. Simultaneous Fe(Ⅲ) reduction and ammonia oxidation process in Anammox sludge [J]. Journal of Environmental Sciences, 2018, 64: 42-50.
[8] 姚海楠, 張立秋, 李淑更, 等. 厭氧鐵氨氧化處理模擬垃圾滲濾液的影響因素研究[J]. 環(huán)境科學(xué)學(xué)報, 2019, 39(9): 2953-2963.
YAO H N, ZHANG L Q, LI S G, et al. Study on the factors affecting simulated landfill leachate treatment by anaerobic ferric ammonia oxidation [J]. Acta Scientiae Circumstantiae, 2019, 39(9): 2953-2963. (in Chinese)
[9] ?DING L J, AN X L, LI S, et al. Nitrogen loss through anaerobic ammonium oxidation coupled to iron reduction from paddy soils in a chronosequence [J]. Environmental Science & Technology, 2014, 48(18): 10641-10647.
[10] 遲光宇, 張兆偉, 陳欣, 等. 土壤Fe(Ⅲ)異化還原機理及影響因素研究進(jìn)展[J]. 生態(tài)學(xué)雜志, 2007, 26(12): 2075-2080.
CHI G Y, ZHANG Z W, CHEN X, et al. Research advances in the mechanisms and affecting factors of soil Fe(Ⅲ) dissimilatory reduction [J]. Chinese Journal of Ecology, 2007, 26(12): 2075-2080. (in Chinese)
[11] ?CORNELL R M, SCHWERTMANN U. The iron oxides: Structure, properties, reactions, occurences and uses [M]. Wiley-VCH Verlag GmbH & Co. KGaA, 2003.
[12] ?ZHOU G W, YANG X R, LI H, et al. Electron shuttles enhance anaerobic ammonium oxidation coupled to iron(III) reduction [J]. Environmental Science & Technology, 2016, 50(17): 9298-9307.
[13] ?水和廢水監(jiān)測分析方法[M]. 4版. 北京: 中國環(huán)境科學(xué)出版社, 2002.
Water and wastewater monitoring and analysis methods[M]. 4th Edition. Beijing: China Environmental Science Press, 2002.
[14] ?POULTON S W, CANFIELD D E. Development of a sequential extraction procedure for iron: Implications for iron partitioning in continentally derived particulates [J]. Chemical Geology, 2005, 214(3/4): 209-221.
[15] ?LEERMAKERS M, MBACHOU B E, HUSSON A, et al. An alternative sequential extraction scheme for the determination of trace elements in ferrihydrite rich sediments [J]. Talanta, 2019, 199: 80-88.
[16] ?SHEPPARD R Y, MILLIKEN R E, RUSSELL J M, et al. Characterization of iron in lake Towuti sediment [J]. Chemical Geology, 2019, 512: 11-30.
[17] ?HUANG S, CHEN C, JAFF P R. Seasonal distribution of nitrifiers and denitrifiers in urban river sediments affected by agricultural activities [J]. Science of the Total Environment, 2018, 642: 1282-1291.
[18] ?HUANG S, CHEN C, PENG X C, et al. Environmental factors affecting the presence of Acidimicrobiaceae and ammonium removal under iron-reducing conditions in soil environments [J]. Soil Biology and Biochemistry, 2016, 98: 148-158.
[19] ?HUANG S, JAFF P R. Characterization of incubation experiments and development of an enrichment culture capable of ammonium oxidation under iron-reducing conditions [J]. Biogeosciences, 2015, 12(3): 769-779.
[20] LOVLEY D R, PHILLIPS E J. Organic matter mineralization with reduction of ferric iron in anaerobic sediments [J]. Applied and Environmental Microbiology, 1986, 51(4): 683-689.
[21] ?PICARDAL F. Abiotic and microbial interactions during anaerobic transformations of Fe(Ⅱ) and NO-X [J]. Frontiers in Microbiology, 2012, 3: 112.
[22] ?BOLAND D D, COLLINS R N, MILLER C J, et al. Effect of solution and solid-phase conditions on the Fe(Ⅱ)-accelerated transformation of ferrihydrite to lepidocrocite and goethite [J]. Environmental Science & Technology, 2014, 48(10): 5477-5485.
[23] ?YANG Y F, JIN Z, QUAN X, et al. Transformation of nitrogen and iron species during nitrogen removal from wastewater via feammox by adding ferrihydrite [J]. ACS Sustainable Chemistry & Engineering, 2018, 6(11): 14394-14402.
[24] ?YANG W H, WEBER K A, SILVER W L. Nitrogen loss from soil through anaerobic ammonium oxidation coupled to iron reduction [J]. Nature Geoscience, 2012, 5(8): 538-541.
[25] ?BAO P, LI G X. Sulfur-driven iron reduction coupled to anaerobic ammonium oxidation [J]. Environmental Science & Technology, 2017, 51(12): 6691-6698.
[26] ?WU Z L, WANG Y P, XIONG Z K, et al. Core-shell magnetic Fe3O4@Zn/Co-ZIFs to activate peroxymonosulfate for highly efficient degradation of carbamazepine [J]. Applied Catalysis B: Environmental, 2020, 277: 119136.
(編輯 黃廷)