內碳源短程反硝化啟動及EPD-ANAMMOX耦合工藝性能

張小玲,張 萌,陳紫薇,張 卓

內碳源短程反硝化啟動及EPD-ANAMMOX耦合工藝性能

張小玲1,2*,張 萌1,陳紫薇1,張 卓1

(1.長安大學水利與環(huán)境學院,陜西 西安 710064；2.長安大學,旱區(qū)地下水與生態(tài)效應教育部重點實驗室,陜西 西安 710064)

接種普通活性污泥,以乙酸鹽為碳源,控制進水COD/P為150:1,在A/O SBR反應器內富集培養(yǎng)了聚糖菌;采用逐漸提高SBR厭氧末硝酸鹽投加濃度的方法,將聚糖菌馴化誘導為反硝化聚糖菌結果.SBR厭氧末排水中COD與缺氧末排水基本相同,COD平均去除率達到86.74%,總氮去除率達到98%以上.然后縮短SBR的厭氧及缺氧時間,即可啟動內碳源短程反硝化(EPD)系統(tǒng),缺氧末亞硝酸鹽轉化率(NTR)平均值為65.96%;表明內碳源短程反硝化與厭氧氨氧化(EPD-ANAMMOX)耦合工藝運行的30d內,COD去除負荷及去除率分別為0.337kgCOD/(kgMLSS·d)及87.21%;總氮去除負荷及去除率分別為0.222kgN/(m3·d)及86.12%,出水中NO3--N濃度低至4.2mg/L,NO2--N和NH4+-N濃度接近于零.通過高通量測序,EPD-SBR穩(wěn)定運行期的污泥與接種污泥相比,具有反硝化功能的聚糖菌屬豐度從0.001%增加至25.06%,其它聚糖菌屬以及的總豐度從0.14%增加至0.431%,表明是SBR反應器內內碳源短程反硝過程的主要功能菌屬.

內碳源短程反硝化；亞硝酸鹽轉化率；反硝化聚糖菌；厭氧氨氧化

厭氧氨氧化(ANAMMOX)工藝是利用厭氧氨氧化菌(AnAOB)以亞硝酸鹽為電子受體將氨轉化為氮氣實現污水脫氮的過程,因AnAOB菌的自養(yǎng)及基質利用特性,以ANAMMOX為基礎的脫氮工藝具有不消耗有機碳源、節(jié)省曝氣量,污泥產量低等優(yōu)點,目前主要用于處理高氨氮廢水[1-2],但NO2-供應不穩(wěn)定是限制其在城市生活污水主流工藝應用的瓶頸問題之一.目前NO2-主要由短程硝化(PN)和短程反硝化(PD)2種途徑產生,而PN中亞硝酸鹽氧化細菌(NOB)難以完全淘汰,在低溫低氨環(huán)境下活性難以完全抑制,是造成PN+ANAMMOX工藝脫氮效能不穩(wěn)定的主要原因,而且短程硝化也是自養(yǎng)過程,不能降解有機物,污水中的有機物造成異養(yǎng)菌大量繁殖,降低氨氧化菌(AOB)及AnAOB菌在污泥系統(tǒng)中的豐度,因此在實際工程應用時,需要先降低有機物濃度,再進入厭氧氨氧化脫氮系統(tǒng)[3].PD是通過控制反應器運行條件,利用異養(yǎng)反硝化菌以硫或有機物為電子供體,將硝酸鹽還原過程控制到以亞硝酸鹽為主要的終產物,不僅可為ANAMMOX提供NO2-,而且可降解污水中的有機物,降低有機物對AnAOB菌的不利影響.近年來,學者們對外碳源驅動的PD工藝的啟動及控制策略、亞硝酸鹽積累的影響因素及機制等進行了大量的實驗研究[4-8],通過控制進水C/N、缺氧反應時間、pH值等條件,能實現較高的亞硝酸鹽積累率,而且短程反硝化一旦啟動便可長期穩(wěn)定[9],為PD-ANAMMOX工藝的實際應用奠定了基礎.

研究發(fā)現,SBR以厭氧/缺氧或厭氧/缺氧/好氧方式運行,微生物利用內碳源也能實現短程反硝化及短程反硝化聚磷過程.內碳源驅動的部分反硝化(EPD)實現87%左右的亞硝酸鹽轉化率,EPD與ANAMMOX工結合,系統(tǒng)總氮去除率高達90%,即使在低溫主流條件下內源部分反硝化顆粒污泥系統(tǒng)仍具有較高的亞硝酸鹽積累率[10-12].內碳源短程反硝化脫氮除磷(EPDPR)和ANAMMOX工藝結合可實現同步脫氮除磷,硝酸鹽-亞硝酸鹽轉化率的高效性為厭氧氨氧化提供了穩(wěn)定的亞硝酸鹽,磷酸鹽主要是利用硝酸鹽通過DPR作為電子受體去除的[13-14].厭氧氨氧化、內源短程反硝化和反硝化除磷可集成在一個序批式顆粒污泥反應器(SNPR)中完成同步脫氮除磷過程[15].

反應器內微生物菌種鑒定表明,反硝化聚糖菌(DGAOs)是將硝酸鹽轉化為亞硝酸鹽的功能菌[11,14,16-18].聚糖菌(GAOs)是生物除磷系統(tǒng)中普遍存在的一類菌,其代謝行為與聚磷菌(PAOs)相似,在厭氧階段消耗糖原并將吸收的有機物以PHAs等形式儲存在體內,但不釋磷;在好氧階段分解PHAs并合成糖原,但不吸磷[19-20].而內碳源短程反硝化就是控制反應器運行條件實現利用DGAO將硝酸鹽轉化為亞硝酸鹽.

EPD反應器獲得穩(wěn)定、高效的亞硝酸鹽積累是ANAMMOX反應器實現良好脫氮性能的保證.目前EPD-ANAMMOX工藝仍處于實驗室小試階段, EPD工藝的關鍵是培養(yǎng)將硝酸鹽轉化為亞硝酸鹽的功能菌,研究者大多是接種現有的EPD污泥,進行EPD及EPD-ANAMMOX耦合工藝性能的研究.本文接種普通活性污泥,采用先抑制PAOs菌再培養(yǎng)DGAOs菌,控制缺氧時間,而后將EPD-SBR和ANAMMOX-SBBR反應器連接,考察EPD- ANAMMOX工藝脫氮除碳性能,通過基于化學計量學的功能性微生物在C和N去除中的活性定量計算分析耦合工藝的脫氮機理,并基于高通量測序分析污泥馴化前后微生物菌群結構的演變規(guī)律.

1 材料與方法

1.1 反應器與運行周期

表1 EPD-SBR反應器運行參數

注:階段Ⅱ厭氧末排水是為了置換厭氧上清液,以抑制聚磷菌生長.

采用2個反應器:一個是EPD-SBR反應器,進水為模擬實際生活污水和硝酸鹽廢水;另一個為ANAMMOX-SBBR反應器,進水為EPD-SBR出水及氨氮廢水.EPD-SBR反應器運行參數見表1.EPD-SBR反應器在厭氧階段的前5min內,向反應器中添加了1.75L模擬廢水,而在缺氧階段的前1min內,向反應器內添加了100mL硝酸鹽廢水(將一定量的硝酸鈉溶于100mL蒸餾水中).在缺氧階段的最后2min,排出200mL混合液,以控制混合液懸浮固體(MLSS)濃度為(3.5± 0.5)g/L,SRT為18d.

1.2 EPD-ANAMMOX耦合工藝的運行模式

如圖1所示,左邊為EPD-SBR反應器(有效容積3.6L,排水比為51.4%),右邊為ANAMMOX-SBBR反應器(有效容積2L,排水比為100%).首先將1.75L模擬生活污水引入EPD-SBR反應器,經過90min厭氧反應后,將100mL硝酸鹽廢水引入EPD-SBR反應器中進行30min缺氧攪拌,然后將1.85L出水泵入ANAMMOX-SBBR反應器中,同時泵入150mL人工配置的氨氮廢水,經過160min反應后,耦合工藝最終出水由潛水泵排出.

圖1 EPD-ANAMMOX耦合工藝裝置示意

1.硝酸鹽進水桶 2.模擬實際生活污水進水桶 3.氨氮進水桶 4.出水桶 5.蠕動泵

1.3 模擬廢水與接種污泥

EPD-SBR反應器的進水為模擬生活污水,污水主要特征如下:COD:300mg/L,NH4+-N:7mg/L, PO43--P:2.5mg/L,NO3--N濃度按需配置.調節(jié)反應器內pH值為7.2±0.2,溫度為(28±1)℃,接種污泥取自西安市北石橋污水處理廠回流污泥.

ANAMMOX-SBBR反應器的進水為兩部分,廢水Ⅰ為EPD-SBR反應器出水(1.85L),廢水Ⅱ為合成氨氮廢水(0.15L),主要包括NH4+-N:15mg/L (ANAMMOX反應器內初始濃度),PO43--P:5mg/L (ANAMMOX反應器內初始濃度).調節(jié)反應器內pH值為7.8±0.2,溫度為(28±1)℃,接種污泥取自實驗室成熟的生物膜厭氧氨氧化污泥.

1.4 測定項目與方法

水樣經45μm濾紙過濾后,采用納氏試劑分光光度法測定氨氮[21];N－(1－萘基)－乙二胺分光光度法測定亞硝酸鹽氮[21];紫外分光光度法測定硝酸鹽氮[21];COD快速測定儀測定COD;硫酸-蒽酮比色法測定糖原[21];紫外分光光度計法測定PHB[22];重量法測定MLSS及MLVSS[21];哈希-HQ30D型便攜式溶氧儀測定DO;pHS 10便攜式酸度計測定pH值;微生物菌群測定采用16sRNA擴增子高通量測序.

1.4.1 糖原的測定方法 樣品預處理:1.取反應器內30mL攪拌均勻的污泥樣品放置在50mL干凈的離心管中,首先放入超聲波細胞破碎機(25W, 5min),以減少胞外聚合物(EPS)EPS的影響;2.隨后在離心機內重復3次離心(4000r/min, 5min,4℃),并將每次離心完的樣品倒掉上清液,加入超純水至30mL后搖勻;3.將離心后的污泥樣品置入干凈的超聲管中,用超純水定容至10mL,在超聲波細胞破碎機中進行破胞(450W,5min);4.取1mL破碎后的污泥樣品置于新的離心管中,超純水定容至20mL;5.取定容后的樣品2mL置于干凈的消解管中,依次加入3mL超純水和1mL 1:1HCl,在消解儀中消解(100℃,h),隨后對樣品進行離心(4000r/min, 5min,4℃).

測定方法:蒽酮試劑:精密稱取0.1g蒽酮,加80%濃硫酸使其溶解,搖勻(當日配當日用).取1mL樣品于消解管,加4mL蒽酮,冷水浴冷卻; 100℃條件下消解10min,取出后冷水浴降至室溫; 620nm下測吸光度.

1.4.2 PHB的測定方法 PHB標準曲線繪制:1.準確稱取0.01gPHB標準樣品于100mL燒杯中,加入20mL氯仿,在60℃下水浴加熱溶解,冷卻后轉移至500mL容量瓶中,用氯仿定容,制備成20mg/mL的PHB使用液;2.再分別取0.25, 0.75, 1, 1.25, 1.5, 2mL該溶液于帶塞的試管中,每個梯度平行重復3次,70℃下水浴加熱1h使氯仿溶液完全揮發(fā);3.水浴晾涼后,在每個標準系列樣品中加入10mL濃硫酸,塞緊試管后充分混勻,100℃水浴加熱10min,制成0.5, 1, 2, 2.5, 3, 4μg/mL的溶液;4.冷卻后,以濃硫酸做空白對照,在波長235nm下測定吸光度,以PHB濃度為縱坐標,以吸光度為橫坐標繪制標準曲線.

PHB提取測定:實驗中NaClO溶液的配制:30mL原NaClO溶液+70mL蒸餾水.1.取10mL活性污泥定容至30mL,8000r/min離心10min,洗滌并重復3次;2.濾紙吸干污泥中水分,加入15mL NaClO、5mLCCl4,用力搖晃離心管;3.40℃水浴搖床條件下150r/min振蕩150min;4.用移液槍從下層氯仿相中吸取2mL混有PHB的氯仿于25mL比色管中,105℃烘干去除氯仿(約30min);5.晾涼后加入10mL濃硫酸,密封后搖勻,100℃加熱10min;6.冷卻并混勻,吸取1mL,用蒸餾水稀釋10倍;7.以濃硫酸為空白在235nm處測吸光度.

1.4.3 16srRNA擴增子高通量測序方法 將采集的污泥樣品裝入離心管中并立即放入液氮中速凍,交予上海生工公司測序.采用Illumina MiSeq測序平臺對群落DNA片段進行雙端測序,得到的PE reads首先根據overlap關系進行拼接,區(qū)分樣本后對序列質量進行質控和過濾,然后進行OTU聚類分析和物種分類學分析.基于OTU聚類分析結果,可以對OTU進行多種多樣性指數分析,以及對測序深度的檢測;基于分類學信息,可以在各個分類水平上進行群落結構的統(tǒng)計分析.

1.5 相關指標的計算公式

EPD反應器硝酸鹽轉化為亞硝酸鹽的比率(NTR)[13]:

ANAMMOX反應器厭氧氨氧化對總氮去除所占的貢獻率[13]:

ANAMMOX反應器反硝化對總氮去除所占的貢獻率[13]:

EPD反應器中儲存為細胞內碳源的COD (CODintra)[16]:

2 結果與討論

2.1 GAOs菌富集及DGAOs菌馴化誘導過程

階段Ⅰ～Ⅲ(1～47d)SBR反應器以A/O模式運行,進水主要基質有機物及磷酸鹽濃度理論值分別為:300mgCOD/L及2mgPO43--P/L,用來富集培養(yǎng)GAOs菌.

由圖2A可知,Ⅰ～Ⅲ階段SBR進水COD為252.1～313.5mg/L,厭氧末和出水COD濃度基本一致(22.61～48.13mg/L),說明在厭氧階段已經完成有機物儲存的過程,幾乎沒有剩余有機物進入好氧段.

(A):SBR進出水及厭氧末COD、去除率;(B):PO43--P濃度及去除率

由圖2B可知,在第Ⅰ階段(1～13d),反應器內有明顯的厭氧釋磷和好氧吸磷現象,系統(tǒng)除磷效果較好.為了抑制反應器內PAOs菌的活性,在第Ⅱ階段(14～35d)采取厭氧末換水的方式,第16d明顯觀察到厭氧末釋磷量下降.原因是厭氧末將富磷廢水排出后,導致好氧段PAOs菌胞內Poly-P積累降低,糖原合成不足,影響下一周期厭氧段儲存PHB的過程,最終導致PAOs菌活性下降[23].第Ⅲ階段(36～47d)取消SBR周期的厭氧末排水,厭氧末PO43--P濃度在3mg/L以下.階段Ⅲ厭氧釋磷量和好氧吸磷量明顯下降,但有機物去除不受影響,說明COD主要依靠GAOs菌轉化為PHB而去除,并且所消耗的能量來源于糖原酵解而不是胞內Poly-P水解[24];另外,整個富集培養(yǎng)階段反應器中沒有添加硝酸鹽和亞硝酸鹽,不存在普通反硝化菌(DNB)消耗COD的情況.因此,可以認為在限磷條件下,通過采用特殊的厭氧/好氧交替運行方式成功富集了GAOs菌.

階段Ⅳ～Ⅴ(48～129d)SBR以A/A/O模式運行, SBR厭氧末投加硝酸鹽(采用蠕動泵投加硝酸鹽,投加時間為1min),硝酸鹽的投加量逐漸增加,缺氧時間由150min延長到180min,階段Ⅵ(130～160d)取消好氧段,SBR以A/A模式運行,從階段Ⅳ到階段Ⅵ,反應器的反硝化能力逐漸加強,因此階段Ⅳ～Ⅵ為DGAOs菌的馴化誘導期.

(A)進出水、厭氧末COD、COD去除率;(B)缺氧初NO3--N、缺氧末NO2--N及出水NO3--N和NO2--N濃度

由圖3A可知,整個DGAOs菌誘導階段(Ⅳ～Ⅴ), SBR進水COD為266.6～311.4mg/L,出水COD為21.26～43.93mg/L,有機物去除保持穩(wěn)定(平均87.69%).由圖3B可知,第Ⅳ階段(48～101d),反應器內初始NO3--N濃度由5mg/L逐漸增加至20mg/L,缺氧末NO3--N和NO2--N濃度均接近零.第Ⅴ階段(102～129d),初始NO3--N濃度提高至25mg/L,缺氧末和出水NO2-均有剩余,因此第104d(階段Ⅴ)延長缺氧時間至3h,縮短好氧時間至1h.2周后,出水NO3-和NO2-均無殘留.第Ⅵ(130～ 160d)階段為了進一步馴化誘導DGAOs菌,取消好氧段,以厭氧/缺氧交替的模式運行,并增加初始NO3--N濃度至30mg/L,同時延長缺氧時間至4h.第Ⅵ階段前10d出水NO3--N濃度最高為4.57mg/L,缺氧末NO2--N最高為15.22mg/L.但隨著DGAOs菌持續(xù)馴化誘導,出水NO3-、NO2-濃度下降,1個月后出水NO3-和NO2-均無殘留,總氮去除率達到98%以上.結合COD去除情況,可以認為系統(tǒng)中DGAOs菌已經馴化誘導成功,并且主導代謝模式為:在厭氧階段,DGAOs菌利用胞內糖原酵解產生的能量及還原力(NADH2)吸收COD并轉化為PHB儲存在細胞內;在缺氧階段,DGAOs菌消耗PHB并還原硝酸鹽,剩余的能量一方面用于微生物生長,另一方面合成糖原為下一周期厭氧階段提供能量儲備[19,25].

圖4 第Ⅵ階段SBR反應器典型周期中COD、NO3--N、NO2--N、PO43--P、PHB及糖原變化(第150d)

由圖4可見,在厭氧階段,COD在前30min迅速下降,由139.7mg/L下降至39.75mg/L,而后保持基本不變; PHB由65.91mg/g增加至133.2mg/g,糖原由227.6mg/g下降至139.2mg/g.COD去除和磷釋放基本在厭氧階段前30min內完成,后60min主要進行PHB合成和糖原降解,代謝規(guī)律與賈淑媛等[26]對GAOs菌的研究基本一致.在厭氧階段釋磷量僅為4.31mg/L,根據式(8)計算,DPAOs菌對COD去除貢獻為8.04%,說明有機物快速吸收及胞內儲存所需的能量并非來自于胞內聚磷水解,而是來自糖原酵解.

在缺氧階段,COD無明顯變化,外碳源的消耗在厭氧段已經完成;PHB下降至55.74mg/g,糖原增加至230.5mg/g;NO3--N濃度在前30min內由29.04mg/L下降至0.22mg/L, NO2--N濃度隨之增長至最高,為20.12mg/L,隨后NO2--N濃度逐漸降低至0.08mg/L,內碳源反硝化過程已經完成.在反硝化過程中出現NO2--N先積累后下降情況,原因可能是硝酸鹽還原酶相比亞硝酸鹽還原酶競爭電子能力更強[27],DGAOs菌優(yōu)先利用NO3-作為電子受體進行反硝化,利用還原速率差值造成NO2-積累;當NO3-消耗殆盡時,DGAOs菌會利用NO2-進行反硝化.缺氧磷吸收量為5.73mg/L,根據DPAOs菌模型(PUA/ NaRA=2.1),DPAOs菌對硝酸鹽去除所做的貢獻為9.47%,表明反應器內存在少量的DPAOs菌,但COD去除和亞硝酸鹽積累主要是DGAOs菌代謝作用的結果.

2.2 內碳源短程反硝化工藝的運行性能

在DGAOs菌馴化誘導成熟后進行EPD工藝的脫氮性能研究,整個研究過程共經歷60d(第Ⅶ階段(161～220d)).由實驗可知,SBR運行周期內COD去除以及內碳源儲存在厭氧90min內基本完成;并且經過30min內碳源反硝化,硝酸鹽消耗殆盡,亞硝酸鹽積累達到頂峰,因此在進行EPD工藝的脫氮性能研究過程中將反應器周期縮短至3h,厭氧時間和缺氧時間分別縮短至90, 30min.

如圖5所示,在EPD-SBR反應器運行期間進水COD為269.6～305.9mg/L,厭氧末和出水COD為25.69～42.73mg/L,COD去除率平均為86.74%,說明縮短時間后有機物去除不受影響,90min厭氧時間足以進行有機物去除和內碳源儲存,而且?guī)缀鯖]有易于生物降解的有機物被DNB菌進行外碳源反硝化,而縮短缺氧時間后,SBR反應器的NTR立即達到69.73%,在隨后的60d內均保持在60.65%～70.61%,平均65.96%,但與文獻[10-12,16]相比,NTR轉化率較低.其原因可能有2方面:本實驗富集培養(yǎng)的DGAOs菌與他們不同,本實驗僅控制了缺氧時間,未對COD/NO3--N及pH值等影響因素進行優(yōu)化.

(A)進水、厭氧末及出水COD變化情況;(B)缺氧進水NO3--N、出水NO3--N、NO3--N及NTR的變化情況

2.3 EPD-ANAMMOX耦合工藝性能研究

與EPD-SBR耦合的ANAMMOX反應器為實驗室內運行2a的SBBR反應器,進水中總氮平均濃度為52.28mg/L,總氮平均去除率達到79.27%,出水中ΔNO2--N/ΔNH4+-N及ΔNO3--N/ΔNH4+-N分別維持在1.34和0.3左右,通過厭氧氨氧化氮去除量占總無機氮去除量的比值平均為90.03%,并且觀察到生物膜污泥顏色為淺紅褐色,這是因為AnAOB菌含有大量的細胞色素C,表明反應器內AnAOB菌占優(yōu)勢,并且活性較高.

由圖6A可知,耦合工藝中EPD-SBR反應器進水COD為在285.4～305.8mg/L,有機物去除保持穩(wěn)定(87.21%),有機物在EPD-SBR反應器中已經被DGAOs菌吸收利用,避免外碳源進入后續(xù)的ANAMMOX-SBBR反應器內.圖6B表明,耦合工藝中EPD-SBR反應器缺氧初始NO3--N平均濃度為28.64mg/L,30min后NO3-消耗殆盡,NO2--N濃度達到最大值,平均為18.82mg/L,NTR平均為66.49%.該研究表明,EPD工藝可以穩(wěn)定地為ANAMMOX反應提供NO2-,同時充分利用進水COD并降低能耗.

ANAMMOX-SBBR反應器進水中的NH4+-N (人工配水)和NO2--N濃度(EPD-SBR的出水)分別平均為13.79,18.92mgN/L,進水TN濃度平均為32.71mgN/L(圖6C),總氮去除率(NRE)平均為85.71%.在耦合階段運行的30d內,ΔNO2--N/ ΔNH4+-N、ΔNO3--N/ΔNH4+-N平均值分別為1.33、0.24,出水NH4+--N濃度接近于零,這與理論值基本一致.其中通過厭氧氨氧化氮去除量占總無機氮去除量的96.2%(圖6D),進一步說明ANAMMOX反應是ANAMMOX-SBBR系統(tǒng)內主導的生化反應,說明EPD-ANAMMOX耦合工藝成功啟動.耦合工藝運行的30d內,COD去除負荷及去除率的平均值分別為0.337kgCOD/(kgMLSS·d)及87.21%;總氮去除負荷及去除率的平均值分別為0.222kgN/(m3·d)及86.12%.

圖6 EPD-ANAMMOX耦合工藝運行特性

(A)EPD-SBR反應器進、出水COD及去除率;(B)EPD-SBR反應器進出水硝酸鹽氮及出水中NTR;(C)ANAMMOX-SBBR反應器進、出水TN濃度及去除率(NRE);(D)ANAMMOX-SBBR反應器內各種途徑脫氮貢獻率

2.4 耦合工藝中深度脫氮的機理

在耦合工藝運行第25d研究了典型周期中EPD系統(tǒng)和ANAMMOX系統(tǒng)中的化學計量(圖7),揭示了不同功能微生物(例如DNB, DPAOs、DGAOs和AnAOB)在COD、N去除方面的活性.在EPD-SBR反應器中,厭氧段COD和NO2--N的變化量分別為97.48,2.25mg/L,釋磷量為6.25mg/L,即DNB菌去除了3.85mg/L (3.95%)外碳源, DPAOs菌和DGAOs菌分別將12.5mg/L (12.82%)、82.13mg/L(83.23%)的外碳源轉化為內碳源儲存在體內.EPD-SBR中的磷去除是通過DPAOs菌反硝化除磷來實現的,而NO3-的還原是通過DPAOs菌和DGAOs菌的內碳源反硝化來實現的,其中DGAOs菌發(fā)揮了主要作用(99.08%),并且NO2-積累(NTR為66.54%)主要歸因于DGAOs菌的活性.

在ANAMMOX-SBBR反應器中,殘留的NO2-(來自EPD-SBR出水)和NH4+(人工配水)的去除主要是通過AnAOB菌的厭氧氨氧化(分別占95.32%和96.98%)完成的.其中DNB菌進一步還原了ANAMMOX反應產生NO3--N的2.93%,使得總氮去除率達到81.74%,可見各種菌的協同作用實現了深度脫氮,出水中NO3--N濃度低至4.2mg/L, NO2-- N和NH4+-N濃度接近于零.因此, EPD-SBR和ANAMMOX-SBBR中功能性微生物的活動闡明了深度脫氮機理:EPD通過控制厭氧/缺氧時間利用DGAOs菌將NO3-轉化為NO2-,既充分利用了碳源又消除了有機物對AnAOB菌的抑制;ANAMMOX利用EPD穩(wěn)定提供的NO2-實現了深度脫氮的目的.

圖7 在穩(wěn)定的EPD-ANAMMOX過程中,基于化學計量學的功能性微生物在C和N去除中的活性定量

2.5 EPD-SBR反應器微生物群落的演變

圖8A表明,污泥馴化前后Proteobacteria(變形菌門)從41.4%增加至71.24%,Bacteroidetes(擬桿菌門)從21.14%減少至5.75%,Verrucomicrobia(疣微菌門)從3.36%增加至4.29%,Planctomycetes(浮霉菌門)從5.32%減少至4.04%,Chloroflexi(綠彎菌門)從6.61%減少至1.95%,這些都是污水處理廠常見的細菌門[28].除此之外,Acidobacteria(酸桿菌門)、Firmicutes(厚壁菌門)、Candidatus Saccharibacteria等消失不見.從數據來看,污泥馴化后微生物多樣性減少,是因為人工配水水質單一,環(huán)境簡單造成的,而變形菌門豐度增加是由于本實驗進水及運行條件下培養(yǎng)的優(yōu)勢菌GAOs菌、DNB菌及PAOs菌都屬于變形菌門. Bacteroidetes(擬桿菌門)[29]和Firmicutes(厚壁菌門)[30]豐度減少,這是因為這兩種菌屬于厭氧消化產甲烷過程中的優(yōu)勢菌群,在污水廠較為常見,在EPD-SBR反應器馴化過程中逐漸被淘汰掉.

A.門水平,B.屬水平

圖8B表明,γ-變形菌綱(γ-Proteobacteria)的屬,其豐度從0.001%增加至25.06%,它是GAOs菌的優(yōu)勢菌屬.其他GAOs菌包括以及的總豐度從0.14%增加至0.431%.可以還原硝酸鹽或亞硝酸鹽,而僅能還原硝酸鹽[31]為亞硝酸鹽,豐度增加有利于反應器內NO2-積累.本實驗中EPD-SBR反應器以乙酸鈉為單一碳源,對乙酸鈉吸收速率較低,而對丙酸鈉吸收速率較高,則與之相反[32],所以在本實驗反應器內所占比例較低(0.0513%),這可能是導致本實驗NO2-積累率不高的原因之一.Wang等[17]對EPDPR-SBR反應器進行微生物群落分析后觀察到,經市政廢水馴化后GAOs豐度增加了6%,缺氧段硝酸鹽向亞硝酸鹽的轉化率從32.4%顯著提高到77.8%,表明高NTR是由GAOs主導的.

反應器內的PAOs菌種類較多,其中β-變形菌綱(β-Proteobacteria)的[33]和[34],是豐度較高的PAOs菌屬,其豐度分別從0.09%、0.001%增加至0.259%、0.54%.這表明SBR內PAOs菌屬豐度較低,因為在厭氧-換水-好氧交替運行模式下,PAOs菌胞內聚磷積累量下降,糖原合成量不足,影響下一周期厭氧階段吸收有機物,導致PAOs菌生長繁殖受限.在磷限制水平下, GAOs菌豐度(25.49%)遠遠高于PAOs菌豐度(2.78%),證明反應器內內碳源反硝化過程主要依靠GAOs菌進行.其它菌屬包括以及等總豐度從1.46%增加至2.77%.另外還檢測出了豐度為0.05%的氨氧化菌屬[35],豐度為0.516%的硝化菌屬[36]以及豐度為5.048%的反硝化菌屬[37]等.因為EPD反應器上一周期殘留的NO2-會進入下一周期作為DNB菌的電子受體,為DNB菌生長提供了條件,所以反應器內存在一定比例的DNB菌.另外還檢測了豐度為26%的[38],這是因為絲狀菌在反應器中要作為污泥骨架存在,與菌膠團協同作用形成顆粒污泥.綜上所述,本實驗EPD-SBR系統(tǒng)中,優(yōu)勢菌屬為,與反應器內碳源反硝化能力增強的實驗結果相互印證.

3 結論

3.1 EPD-SBR反應器接種普通活性污泥,以乙酸鈉為碳源,控制進水C/P為150:1,并采用厭氧末排水的方式成功實現了GAOs菌的富集;以NO3-為電子受體,成功誘導了DGAOs菌,總氮去除率達到98%以上.通過縮短SBR周期為3h(厭氧90min/缺氧30min),COD去除率平均為86.74%,NTR平均為65.96%,EPD-SBR反應器成功啟動并且EPD出水可作為ANAMMOX反應器穩(wěn)定的NO2-來源.

3.2 EPD-ANAMMOX耦合工藝,COD去除負荷及去除率的平均值分別為0.337kgCOD/(kgMLSS·d)及87.21%;總氮去除負荷及去除率的平均值分別為0.222kgN/(m3·d)及86.12%.

3.3 EPD-SBR污泥馴化成功后,微生物多樣性下降,數量增加且豐度最高,為71.24%;從屬水平上講,GAOs豐度最高,為25.06%,是EPD-SBR反應器中進行內碳源短程反硝化的主要功能屬.并且在磷限制水平下,PAOs菌活性受到限制,GAOs菌豐度(25.49%)遠遠高于PAOs菌豐度(2.78%),證明反應器內內碳源短程反硝化過程主要依靠GAOs菌進行.

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Start-up of endogenous partial denitrification and performance of EPD-ANAMMOX coupling process.

ZHANG Xiao-ling1,2*, ZHANG Meng1, CHEN Zi-wei1, ZHANG Zhuo1

(1.School of Water and Environment, Chang’an University, Xi’an 710064, China；2.Key Laboratory of Subsurface Hydrology and Ecological Effects in Arid Region of the Ministry of Education, Chang’an University, Xi’an 710064, China)., 2022,42(2)：601～611

This study was designed to evaluate performances of the start-up of endogenous partial denitrification and EPD-ANAMMOX process. The glycogen accumulation bacteria (GAO) were enriched in the anaerobic/aerobic sequence batch reactor (SBR) using the activated sludge as inoculum sludge and the acetate acted as carbon source by regulating the influent COD/P ratio as 150: 1. Then, the GAOs were induced into denitrifying glycogen accumulation bacteria (DGAO) by means of gradually boosting the concentration of added nitrate at the end of anaerobic phase in SBR. Correspondingly, the level of chemical oxygen demand (COD) at the end of anoxic period was almost the same as that at the distal end of anaerobic stage, the total nitrogen removal efficiency and the average COD removal efficiency were over 98% and 86.74% at the end of anaerobic period of SBR, respectively. Furthermore, the endogenous partial denitrification system was successfully formed by shortening the anaerobic and anoxic time, the ratio of nitrite translated from nitrate (NTR) at the end of anoxic period was up to 65.96%. The average total nitrogen and COD removal load in the 30days operation of the coupled process were 0.222kgN/(m3×d) and 0.337kgCOD/(kgMLVSS.d) with an efficiency of 86.12% and 87.21%, respectively. Typically, the effluent NO3--N concentration was lower than 4.2mg/L and both NO2--N and NH4+-N levels were near to 0mg/L in the same phase. Compared with inoculated sludge, the relative abundance ofr increased from 0.001% to 25.06% in the sludge of EPD-SBR during the stable operation period, and the total abundance of,,,andincreased from 0.14% to 0.431%, implying that thewas the dominated functional bacteria for the endogenous partial denitrification system.

endogenous partial denitrification (EPD)；the ratio of nitrite translated from nitrate；denitrifying glycogen accumulation bacteria；ANAMMOX

X703.5

A

1000-6923(2022)02-0601-11

張小玲(1976-),女,安徽亳州人,教授,博士,主要研究方向為污水及污泥資源化利用.

2021-05-25

國家自然科學基金資助項目(51408041)

* 責任作者, 教授, zhangxiaoling101@126.com