熱水處理后環(huán)境放置期間黃瓜果實(shí)溫度及抗氧化系統(tǒng)變化

胡均如,張敏,2,3,4*,蓋曉陽(yáng),李佳樂(lè),凌玉,鄭凱,方佳琪,賈淼,李奇勛

1(上海海洋大學(xué) 食品學(xué)院,上海,201306) 2(上海水產(chǎn)品加工及貯藏工程技術(shù)研究中心,上海,201306) 3(上海冷鏈裝備性能與節(jié)能評(píng)價(jià)專業(yè)技術(shù)服務(wù)平臺(tái),上海,201306) 4(食品科學(xué)與工程國(guó)家級(jí)實(shí)驗(yàn)教學(xué)示范中心(上海海洋大學(xué)),上海,201306)

黃瓜(CucumissativusL.)是典型的亞熱帶冷敏果實(shí),是我國(guó)主要的夏季蔬菜之一,因其采后仍在進(jìn)行新陳代謝等生命活動(dòng),且含水量高,容易受機(jī)械損傷,在常溫下貯藏容易失水皺縮、營(yíng)養(yǎng)流失[1]。低溫貯藏是廣泛使用的黃瓜果實(shí)采后貯藏技術(shù),其在維持黃瓜果實(shí)正常生命活動(dòng)的前提下,最大限度地抑制新陳代謝,從而減少果實(shí)的物質(zhì)消耗、延長(zhǎng)采后貯藏期[2]。然而,國(guó)內(nèi)外學(xué)者研究發(fā)現(xiàn)低溫雖能顯著延長(zhǎng)果蔬的貯藏期,但冷敏果蔬在低溫下貯藏和運(yùn)輸時(shí)會(huì)產(chǎn)生低溫脅迫,造成細(xì)胞生理功能紊亂從而導(dǎo)致冷害等現(xiàn)象發(fā)生[3],癥狀包括嚴(yán)重的點(diǎn)蝕、局部凹陷、花萼變黑、果體浸水和腐爛等[4],冷害現(xiàn)象通常在果蔬從低溫環(huán)境轉(zhuǎn)移到室溫環(huán)境一定時(shí)間后才會(huì)表現(xiàn)出來(lái),這會(huì)影響到黃瓜的品質(zhì)和貨架期等[5]。

近年來(lái)關(guān)于果蔬熱處理技術(shù)的研究大都著重于熱處理的參數(shù),如處理溫度和持續(xù)時(shí)間,很少考慮到熱水處理后在室溫下放置時(shí)間這一重要因素。在實(shí)際操作中,熱水處理后在非低溫貯藏環(huán)境中的停留時(shí)間對(duì)果實(shí)機(jī)體抗氧化系統(tǒng)有著不可忽略的影響,是重要的商業(yè)考慮因素,熱水處理后的果實(shí)應(yīng)在處理后立即轉(zhuǎn)移到低溫貯藏環(huán)境中,還是在低溫貯藏之前于室溫下放置一段時(shí)間以使其適應(yīng)環(huán)境,這取決于果實(shí)機(jī)體的生理狀態(tài),而關(guān)于熱水處理后環(huán)境放置期間果實(shí)溫度及抗氧化系統(tǒng)變化的研究鮮有報(bào)道。因此,本研究以申青黃瓜為實(shí)驗(yàn)材料,根據(jù)前期試驗(yàn)篩選出的最佳熱水處理?xiàng)l件(40 ℃熱水處理20 min),測(cè)定了熱水處理后環(huán)境放置期間(0、1、2、4、8 h)黃瓜果實(shí)果體溫度、活性氧水平及抗氧化酶活性；研究了熱水處理后在非低溫貯藏環(huán)境放置期間黃瓜果實(shí)果體溫度及抗氧化系統(tǒng)變化,旨在為采后黃瓜果實(shí)貯前熱水處理技術(shù)的實(shí)踐與進(jìn)一步研究提供參考。

1 材料與方法

1.1 植物材料與處理

申青黃瓜,中國(guó)上海南匯新城種植園,采摘當(dāng)天裝于泡沫箱運(yùn)回實(shí)驗(yàn)室。黃瓜的長(zhǎng)度約為(30±2) cm,平均直徑約為(4±0.5) cm,單個(gè)果實(shí)的平均質(zhì)量為(250±20) g。在恒溫恒濕箱中將黃瓜復(fù)溫至(20±1) ℃,選擇成熟度相同、無(wú)病蟲(chóng)害、無(wú)機(jī)械損傷的果實(shí)進(jìn)行實(shí)驗(yàn)處理。將黃瓜果實(shí)表面塵土拭凈后隨機(jī)分2組,分別為熱水處理(hot water treat,HWT)組和CK(未處理),每組450根。每個(gè)組再分為5個(gè)亞組(每個(gè)亞組3個(gè)平行,每個(gè)平行3根)：HWT0(熱處理后0 h)、HWT1(熱處理后1 h)、HWT2(熱處理后放置2 h)、HWT4(熱處理后放置4 h)、HWT8(熱處理后放置8 h)；CK0(放置0 h)、CK1(放置1 h)、CK2(放置2 h)、CK4(放置4 h)、CK8(放置8 h)。根據(jù)前期預(yù)實(shí)驗(yàn)結(jié)果,將黃瓜果實(shí)置于40 ℃熱水浴中20 min,熱水處理完畢后立即輕拭水分并轉(zhuǎn)移至實(shí)驗(yàn)室干凈的工作臺(tái)上[(20±1) ℃],立即開(kāi)始測(cè)定果體溫度,此外分別在0、1、2、4、8 h對(duì)HWT和CK組的果實(shí)進(jìn)行取樣(用潔凈的小刀快速除去果皮和果瓤,取赤道部位中果肉),測(cè)定其活性氧水平及抗氧化酶活性變化。并在每個(gè)時(shí)間點(diǎn),將黃瓜果實(shí)裝于帶有小孔的聚乙烯保鮮袋(厚度0.02 mm)中,放于冷庫(kù)[(4±0.5) ℃,相對(duì)濕度(relative humidity,RH)(80±5)%]貯藏,于貯藏6 d后取出黃瓜果實(shí)觀察冷害指數(shù)。

1.2 試劑與儀器

丙二醛測(cè)試盒,上海蘭拓生物科技有限公司；抗壞血酸檢測(cè)試劑盒,上海源葉生物科技有限公司；超氧陰離子自由基測(cè)試盒、過(guò)氧化氫測(cè)試盒、谷胱甘肽測(cè)定試劑盒、超氧化物歧化酶測(cè)試盒、過(guò)氧化氫酶測(cè)定試劑盒、過(guò)氧化物酶測(cè)試盒、抗壞血酸過(guò)氧化物酶活性測(cè)試盒,南京建成生物工程研究所。

BPS-100CA型恒溫恒濕箱,上海一恒科學(xué)儀器有限公司；HSWX-600BS型電熱恒溫水溫箱,上海圣科儀器設(shè)備有限公司；H-2050R-1型高速冷凍離心機(jī),長(zhǎng)沙湘儀離心機(jī)有限公司；BJ2100D型數(shù)字孔式電子天平、福祿克F2640多點(diǎn)溫度采集儀、紫外可見(jiàn)分光光度計(jì),北京普析通用儀器有限責(zé)任公司。

1.3 測(cè)定方法

1.3.1 黃瓜果實(shí)果體溫度測(cè)定

采用福祿克F2640多點(diǎn)溫度采集儀,將測(cè)溫探針(直徑0.2 mm)從完整的黃瓜果實(shí)赤道部位垂直刺入果肉(1/2黃瓜果體直徑處),每隔3 s采集黃瓜果實(shí)中心溫度,測(cè)量精度為±0.1 ℃。

1.3.2 MDA 含量測(cè)定

丙二醛(malondialdehyde,MDA)含量的測(cè)定參照MDA 測(cè)試盒說(shuō)明書(shū),結(jié)果以 nmol/g 表示。

1.3.4 AsA、GSH含量測(cè)定

抗壞血酸(ascorbic acid,AsA)含量的測(cè)定參照AsA測(cè)定試劑盒說(shuō)明書(shū),結(jié)果以mg/100 g表示。還原型谷胱甘肽(reduced glutathione,GSH)含量的測(cè)定參照GSH測(cè)定試劑盒說(shuō)明書(shū),結(jié)果以mgGSH/g表示。

1.3.5 SOD、CAT、POD、APX活性測(cè)定

SOD活性的測(cè)定參照 SOD 測(cè)試盒說(shuō)明書(shū),以每克組織在1 mL反應(yīng)液中SOD抑制率達(dá)50%時(shí)所對(duì)應(yīng)的 SOD 量為1個(gè)SOD活力單位(U),結(jié)果以U/g表示。CAT活性的測(cè)定參考CAT測(cè)定試劑盒說(shuō)明書(shū),以每克樣品每分鐘吸光度變化值減少0.01為1個(gè)CAT活性單位(U),結(jié)果以 U/g 表示。過(guò)氧化物酶(peroxidase,POD)活性的測(cè)定參考測(cè)試盒說(shuō)明書(shū),以每克樣品每分鐘吸光度變化值增加1時(shí)為1個(gè)POD活力單位(U),結(jié)果以U/g 表示?？箟难徇^(guò)氧化物酶(ascorbate peroxidase,APX)活性的測(cè)定參考APX測(cè)定試劑盒說(shuō)明書(shū),以每克樣品每分鐘吸光度變化值降低0.01為1個(gè)酶活力單位(U),結(jié)果以 U/g 表示。

1.3.6 冷害指數(shù)測(cè)定

冷害指數(shù)的測(cè)定參考ZHANG等[8]的方法,在低溫貯藏6 d后每組隨機(jī)選取12根黃瓜,對(duì)黃瓜果實(shí)外表面點(diǎn)蝕和凹陷區(qū)域進(jìn)行視覺(jué)評(píng)級(jí)(0～4級(jí))后計(jì)算冷害指數(shù),見(jiàn)公式 (1)。0級(jí)=無(wú)傷害；1級(jí)=輕度,損傷面積25%；2級(jí)=中度,損傷面積26%～50%；3級(jí)=中度嚴(yán)重,損傷面積51%～75%；4級(jí)=嚴(yán)重,損傷面積76%～100%。

(1)

1.4 數(shù)據(jù)分析

采用 SPSS21.0軟件對(duì)數(shù)據(jù)進(jìn)行單因素方差分析及 Duncan 多重比較,顯著性水平設(shè)為 0.05。

2 結(jié)果與分析

2.1 熱水處理后環(huán)境放置期間黃瓜果實(shí)果體溫度變化

如圖1所示,熱水處理后黃瓜果體即刻溫度(熱水處理后0 h)為36.5 ℃,熱水處理后0～10 min黃瓜果體溫度由36.5下降到32.79 ℃,平均下降速率高達(dá)0.37 ℃/min；10～30 min黃瓜果體溫度由32.79下降到28.70 ℃,平均下降速率為0.20 ℃/min,與0～10 min相比減少了45.9%；在隨后的30～60 min、1～1.5 h黃瓜果體溫度下降速度逐漸放緩,平均下降速率分別為0.11、0.06 ℃/min,與0～10 min相比分別減少了70.3%和83.8%；熱水處理1.5～2 h,黃瓜果體溫度由23.74 ℃下降到22.39 ℃,平均下降速率為0.04 ℃/min,與0～10 min相比減少了89.2%。此外,熱水處理2～4 h內(nèi)黃瓜果體溫度下降到20.37 ℃,與CK組黃瓜果體溫度逐漸接近,且與環(huán)境溫度相一致(20±1) ℃,而在隨后的4～8 h,熱水處理黃瓜果體溫度與CK組保持相接近的狀態(tài)且穩(wěn)定在環(huán)境溫度范圍。由此可見(jiàn),熱水處理后將黃瓜果實(shí)置于環(huán)境中一定時(shí)間使其適應(yīng)環(huán)境是有必要的,且在熱水處理后2～4 h黃瓜果體溫度變化逐漸穩(wěn)定,說(shuō)明在此時(shí)間段內(nèi)黃瓜果實(shí)機(jī)體自我調(diào)節(jié)可能達(dá)到了平衡狀態(tài)。

圖1 熱水處理后環(huán)境放置期間黃瓜果實(shí)果體溫度變化Fig.1 Change of temperature in cucumber fruit during environmental storage after HWT

2.2 熱水處理后環(huán)境放置期間黃瓜果實(shí)抗氧化能力變化

圖2 熱水處理后環(huán)境放置期間黃瓜果實(shí)中變化Fig.2 Change of in cucumber fruit during environmental storage after HWT注：各階段HWT組中不含相同大寫(xiě)字母表示差異顯著(P<0.05)； 同一階段HWT和CK組中不含相同小寫(xiě)字母表示差異顯著 (P<0.05)(下同)

如圖3所示,熱水處理后0～8 h黃瓜果實(shí)中H2O2含量隨放置時(shí)間呈先上升后下降再上升的趨勢(shì),而CK組H2O2含量隨著時(shí)間持續(xù)升高。熱水處理后0 h黃瓜果實(shí)H2O2含量相較熱水處理前增加了20.72%,差異具有顯著性(P<0.05)；熱水處理后1～2 h黃瓜果實(shí)H2O2含量逐漸降低,到2 h時(shí)H2O2含量達(dá)到最低水平且顯著低于CK組(P<0.05),僅為CK的57.1%；而隨后的2～8 h H2O2含量逐漸升高,但CK 組與熱水處理后1～8 h黃瓜果實(shí)H2O2含量之間始終存在顯著性差異(P<0.05)。這表明,熱水處理能顯著降低黃瓜 H2O2含量的積累,抑制果實(shí)膜脂過(guò)氧化進(jìn)程,且在熱水處理后2 h左右對(duì)H2O2含量的抑制作用最顯著。

圖3 熱水處理后環(huán)境放置期間黃瓜果實(shí)中H2O2含量變化Fig.3 Change of H2O2 content in cucumber fruit during environmental storage after HWT

2.2.2 熱水處理后環(huán)境放置期間黃瓜果實(shí)MDA含量變化

MDA被廣泛用作指示果蔬機(jī)體氧化損傷程度的指標(biāo),因此,可以通過(guò)測(cè)量MDA的含量來(lái)表征植物細(xì)胞脂質(zhì)過(guò)氧化的程度[8]。如圖4所示,熱水處理后0～8 h黃瓜果實(shí)中MDA含量隨放置時(shí)間呈先上升后下降再上升的趨勢(shì),而CK組MDA含量隨著時(shí)間緩慢升高。熱水處理后0 h黃瓜果實(shí)MDA含量相較熱水處理前顯著升高(P<0.05),這可能是由于熱處理后黃瓜果體溫度接近植物組織中酶的最適溫度[15],激發(fā)了脂氧合酶的活性,促進(jìn)了組織中多不飽和脂肪酸的氧化反應(yīng),導(dǎo)致了作為次級(jí)終產(chǎn)物的MDA的瞬時(shí)積累。在熱水處理后1～4 h MDA含量降低,2和4 h時(shí)MDA含量均顯著低于0 h時(shí),也顯著低于CK(P<0.05),相較于CK分別降低了0.41和1.11 μmol/g；而隨后的4～8 h MDA含量逐漸升高,但低于CK組,且 CK 組與熱水處理后2～8 h黃瓜果實(shí)MDA含量之間存在顯著性差異(P<0.05)。這表明熱水處理能抑制果實(shí)膜脂過(guò)氧化進(jìn)程,且在熱水處理后2～4 h熱激抑制作用最顯著。

圖4 熱水處理后環(huán)境放置期間黃瓜果實(shí)中MDA含量變化Fig.4 Change of MDA content in cucumber fruit during environmental storage after HWT

2.2.3 熱水處理后環(huán)境放置期間黃瓜果實(shí)AsA、GSH含量變化

如圖5所示,熱水處理后0～8 h黃瓜果實(shí)中AsA含量隨放置時(shí)間呈先上升后下降的趨勢(shì),且1～4 h均顯著高于CK組(P<0.05)。熱水處理后0～4 h黃瓜果實(shí)AsA含量相較熱水處理前持續(xù)升高,放置2、4 h時(shí)黃瓜果實(shí)AsA含量顯著高于熱水處理前(P<0.05),分別增加了0.39和0.56 mg/100 g；而4～8 h黃瓜果實(shí)AsA含量逐漸降低,8 h時(shí)處于最低水平,略低于CK,但差異不具有顯著性(P>0.05)。這表明適度的熱脅迫有助于果蔬體內(nèi)AsA的生物合成,且在熱水處理后0～4 h均能有效維持AsA含量的升高,而熱水處理后8 h的AsA含量降低可能是由于放置時(shí)間過(guò)長(zhǎng)導(dǎo)致熱激效應(yīng)的消失。

圖5 熱水處理后環(huán)境放置期間黃瓜果實(shí)中AsA含量變化Fig.5 Change of AsA content in cucumber fruit during environmental storage after HWT

如圖6所示,熱水處理后0～8 h黃瓜果實(shí)中GSH含量隨放置時(shí)間呈先上升后下降再上升的趨勢(shì)。熱水處理后0 h黃瓜果實(shí)GSH含量相較熱水處理前顯著降低(P<0.05),為熱水處理前的80.5%；但在熱水處理1 h后GSH逐漸升高,到放置2 h時(shí)黃瓜果實(shí)GSH含量達(dá)到熱水處理后的最高水平,相較于CK及熱水處理前分別增長(zhǎng)了26.8%和24%,且差異具有顯著性(P<0.05),這與放置2 h時(shí)最低的H2O2含量相呼應(yīng)。

而4～8 h黃瓜果實(shí)GSH含量又恢復(fù)到與0～1 h相當(dāng)?shù)乃?；相?duì)應(yīng)的,0～8 h CK的GSH含量也呈波動(dòng)變化。這可能由于GSH是果蔬機(jī)體內(nèi)GSH-AsA循環(huán)的主要成分,受GSH-AsA循環(huán)和其他抗氧化酶物質(zhì)的多級(jí)調(diào)控[4],使其含量在熱水處理后0～8 h呈波動(dòng)變化。但熱水處理后2 h黃瓜果實(shí)仍有顯著最高的GSH含量,這表明熱水處理后放置2 h對(duì)于正向熱激作用的發(fā)揮是有益的。

圖6 熱水處理后環(huán)境放置期間黃瓜果實(shí)中GSH含量變化Fig.6 Change of GSH content in cucumber fruit during environmental storage after HWT

2.2.4 熱水處理后環(huán)境放置期間黃瓜果實(shí) SOD、CAT、APX和POD活性的變化

如圖7所示,熱水處理后0～8 h黃瓜果實(shí)SOD含量呈先上升后下降再上升的趨勢(shì),且在熱水處理后2～8 h熱水處理組黃瓜SOD活力均顯著高于CK。熱水處理后0 h黃瓜果實(shí)SOD活性較熱水處理前顯著下降,降低了20.6 U/g,這可能是由于黃瓜果實(shí)剛離開(kāi)熱水環(huán)境,濕度溫度差導(dǎo)致調(diào)控SOD酶生成的途徑受到影響[16-17]；而在隨后的1～2 h 黃瓜果實(shí)SOD活性升高,并在2 h達(dá)到最高水平,相較于CK和熱水處理前分別增加了17.01和32.2 U/g,差異具有顯著性(P<0.05)；且在隨后的4～8 h熱水處理黃瓜果實(shí)SOD活性也處于高于CK和熱水處理前的狀態(tài)。這說(shuō)明適宜的熱水處理能顯著提高SOD的活性,但此熱激效果的發(fā)揮需要給黃瓜果實(shí)適應(yīng)環(huán)境的時(shí)間,在放置2 h左右熱激效果得到發(fā)揮。

圖7 熱水處理后環(huán)境放置期間黃瓜果實(shí)中SOD活性變化Fig.7 Change of SOD activity in cucumber fruit during environmental storage after HWT

如圖8所示,熱水處理后和CK組黃瓜果實(shí)0～8 h CAT含量隨時(shí)間呈波動(dòng)式緩慢下降的趨勢(shì),且在熱水處理后0～8 h熱水處理組黃瓜CAT活力均顯著高于CK(P<0.05)。但在熱水處理后0 h,黃瓜果實(shí)CAT活性較熱水處理前下降了0.36 U/g,這可能是由于瞬時(shí)溫度差造成了黃瓜果實(shí)機(jī)體調(diào)節(jié)失衡；熱水處理后1 h黃瓜果實(shí)CAT活力緩慢回升到與熱處理前相當(dāng),且達(dá)到顯著高于CK的水平,在之后的1～8 h熱水處理黃瓜果實(shí)CAT活性始終顯著高于CK(P<0.05)。這表明,相較于CK,熱水處理能延緩CAT活性的下降,并可在果體溫度接近最適酶活溫度時(shí)促進(jìn)CAT的活力。

圖8 熱水處理后環(huán)境放置期間黃瓜果實(shí)中CAT活性變化Fig.8 Change of CAT activity in cucumber fruit during environmental storage after HWT

如圖9所示,熱水處理后0～8 h黃瓜果實(shí)POD活性呈先下降后上升的趨勢(shì)且均顯著高于CK(P<0.05)。熱水處理后0 h黃瓜果實(shí)POD活性較熱水處理前顯著升高,而在0～2 h逐步下降,這可能是由于0 h為熱水處理環(huán)境與放置環(huán)境的臨界點(diǎn),溫度濕度差使黃瓜機(jī)體POD活性瞬時(shí)升高。熱水處理后2 h黃瓜果實(shí)POD活性為最低水平但仍然顯著高于CK(P<0.05)。這表明熱水處理能夠提高POD的活性,且熱水處理后2 h的放置使熱脅迫的損傷效果降低。

圖9 熱水處理后環(huán)境放置期間黃瓜果實(shí)中POD活性變化Fig.9 Change of POD activity in cucumber fruit during environmental storage after HWT

如圖10所示,熱水處理后0～8 h黃瓜果實(shí)APX活性呈先上升后下降的趨勢(shì),且顯著高于CK和熱水處理前(P<0.05)。熱水處理后0 h黃瓜果實(shí)APX 含量相較于熱水處理前顯著升高(P<0.05),并在隨后的0～2 h持續(xù)升高,在2 h 時(shí)達(dá)到最高水平(P<0.05)；而在隨后的2～8 h APX活性緩慢下降。這表明熱水處理上調(diào)黃瓜果實(shí)中APX活性效果顯著,且在熱水處理后2 h達(dá)到最高活性。

圖10 熱水處理后環(huán)境放置期間黃瓜果實(shí)中APX活性變化Fig.10 Change of APX activity in cucumber fruit during environmental storage after HWT

2.3 熱水處理后不同環(huán)境放置時(shí)間對(duì)黃瓜果實(shí)冷藏6 d冷害指數(shù)的影響

低溫貯藏可能會(huì)造成冷敏果實(shí)的冷害現(xiàn)象,從而降低水果和蔬菜的感官品質(zhì)、營(yíng)養(yǎng)品質(zhì)和商業(yè)價(jià)值,而冷害指數(shù)是反映冷敏果蔬低溫貯藏期間冷害發(fā)生情況的指標(biāo)。如表1所示,低溫貯藏黃瓜果實(shí)的冷害程度受熱水處理后放置時(shí)間影響顯著,在整個(gè)貯藏期間,所有熱水處理組黃瓜果實(shí)的冷害指數(shù)均顯著低于CK(P<0.05)；而在所有熱水處理組之間,熱水處理后放置2 h組的冷害指數(shù)始終保持最低水平(0.28)且其差異具有顯著性(P<0.05),而對(duì)照組則高達(dá)0.58。在本研究中,即使熱水處理后的不同放置時(shí)間對(duì)低溫貯藏過(guò)程中黃瓜果實(shí)的冷害指數(shù)有影響,但熱水處理后所有不同放置時(shí)間組的冷害指數(shù)仍顯著低于對(duì)照組,尤其是放置2 h組始終表現(xiàn)出最低的冷害指數(shù)。這可能表明熱水處理后放置2 h是誘導(dǎo)黃瓜抗冷性并減輕黃瓜在貯藏期間冷害癥狀的有效方法。

表1 熱水處理后不同環(huán)境放置時(shí)間對(duì)黃瓜果實(shí)冷藏6 d冷害指數(shù)的影響Table 1 Effect of after HWT storage time on chilling injury index of cucumber cold storage for 6 d

3 討論

GSH-AsA循環(huán)是果蔬機(jī)體中抗氧化系統(tǒng)重要的一環(huán)[22],因此,維持AsA和GSH水平對(duì)果蔬機(jī)體尤為重要。AsA不僅是評(píng)估果蔬品質(zhì)的重要指標(biāo),還是清除果蔬中活性氧的重要抗氧化劑[7]。環(huán)境脅迫中低溫或高溫脅迫都可能會(huì)激活A(yù)sA的生物合成基因以及維持AsA合成前體物質(zhì)的含量,這表明人為施加適當(dāng)?shù)臏囟让{迫時(shí)可能有助于植物體內(nèi)AsA的生物合成[23-24]。在本研究中,適度的熱脅迫有助于果蔬體內(nèi)AsA的生物合成,且在熱水處理后0～4 h內(nèi)均能有效維持AsA含量的升高。GSH是一種重要的生物功能因子,廣泛分布于植物機(jī)體內(nèi),具有抗氧化、清除自由基的作用,在維持細(xì)胞生理功能方面起著重要的作用[22]。GSH作為植物體活性氧清除系統(tǒng)中十分重要的非酶類抗氧化劑,是組成GSH-AsA循環(huán)的非常關(guān)鍵的部分,該循環(huán)在清除H2O2的過(guò)程中起著重要作用。其含量能直接指示果蔬抵抗活性氧有害影響的能力[25]。在本研究中,熱水處理后2 h黃瓜果實(shí)仍有最高的GSH含量,這表明熱水處理后放置2 h對(duì)于正向熱激作用的發(fā)揮是有益的。

4 結(jié)論