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    豬偽狂犬病病毒糖蛋白gD在谷氨酸棒桿菌中的表達(dá)及優(yōu)化

    2022-02-06 02:07:14惠萌萌孫曼曼劉秀霞楊艷坤白仲虎
    關(guān)鍵詞:生長(zhǎng)分析

    惠萌萌, 孫曼曼, 劉秀霞,2,3, 楊艷坤,2,3, 白仲虎,2,3

    (1.江南大學(xué)糧食發(fā)酵與食品生物制造國(guó)家工程研究中心,江蘇無(wú)錫214122;2.江南大學(xué)工業(yè)生物技術(shù)教育部重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室,江蘇無(wú)錫214122;3.江蘇省生物活性制品加工工程技術(shù)研究中心,江蘇無(wú)錫214122)

    偽狂犬病(Pseudorabies,PR)是一種由偽狂犬病病毒(Pseudorabies virus,PRV)引起的傳染性、病毒性疾病,宿主范圍廣,可引起多種家畜、家禽以及野生動(dòng)物共患,屬α皰疹病毒亞科[1]。PRV在豬群中呈暴發(fā)性流行,臨床癥狀包括豬的生長(zhǎng)遲緩和呼吸困難、母豬流產(chǎn)和種豬不孕,大都呈致死性感染,對(duì)全世界養(yǎng)豬業(yè)危害極大[2-3]。自1914年以來(lái),基于臨床癥狀、動(dòng)物接觸史或血清抗體檢測(cè)結(jié)果,偶有關(guān)于人類感染PRV的爭(zhēng)議性報(bào)道[4-5]。2019年,Wang等[6]報(bào)道了4例人急性腦炎病例,均由偽狂犬病病毒感染引起,首次提供了PRV向人群跨種傳播的病毒分離證據(jù)。研究結(jié)果表明,PRV基因組由線性雙股DNA組成,大約長(zhǎng)150 kb,具獨(dú)特長(zhǎng)區(qū)段(UL)和短區(qū)段(US),位于UL區(qū)的主要編碼蛋白質(zhì)有g(shù)B、gC、gH、TK等,位于US區(qū)的主要編碼蛋白質(zhì)有g(shù)D、gE、gG、gI和gL等。gC、TK和gE是PRV主要毒力蛋白質(zhì),gB、gD和gH是病毒復(fù)制的必需蛋白質(zhì)[7]。目前已發(fā)現(xiàn)的11種PRV糖蛋白中,gB、gC、gD均能誘導(dǎo)機(jī)體產(chǎn)生中和抗體,其單克隆抗體在體內(nèi)、體外均能中和PRV,是制造亞單位疫苗的首選蛋白質(zhì)。gD,又稱gp50,開(kāi)放閱讀框由1 206個(gè)堿基組成,蛋白質(zhì)相對(duì)分子質(zhì)量約為4.5×104,是成熟PRV表面的主要囊膜糖蛋白,參與病毒的穿透過(guò)程;gD作為必需的結(jié)構(gòu)蛋白質(zhì),在PRV侵入宿主細(xì)胞時(shí)的感染和增殖過(guò)程中具有重要作用[8]。研究結(jié)果表明,不同毒株間gD的DNA水平和蛋白質(zhì)水平的同源性都非常高,說(shuō)明gD在遺傳過(guò)程中是高度保守的。

    基因工程亞單位疫苗是指將病原的保護(hù)性抗原編碼基因在原核或真核細(xì)胞中表達(dá),再將基因產(chǎn)物制成疫苗,其優(yōu)點(diǎn)是:安全性高,接種后不會(huì)引起機(jī)體急性感染;穩(wěn)定性好,便于輸送和貯存;可與野毒感染產(chǎn)生的免疫應(yīng)答區(qū)分,利于疫病的控制與根除[9-11]。Marchioli等[12]篩選出一株表達(dá)gD的細(xì)胞株,免疫豬后能產(chǎn)生中和性抗體并抵抗PRV的強(qiáng)毒攻擊。作為PRV最重要的保護(hù)性抗原,gD在刺激動(dòng)物機(jī)體后,可以產(chǎn)生中和抗體[13],是PRV亞單位疫苗的主要候選蛋白質(zhì),在PRV的免疫防控中意義重大[14-15]。為進(jìn)一步加強(qiáng)對(duì)PR的疫情監(jiān)測(cè)和流行病學(xué)調(diào)查,gD還可作為理想的血清學(xué)檢測(cè)用抗原。

    谷氨酸棒桿菌(Corynebacteriumglutamicum)是一種典型高GC含量的革蘭氏陽(yáng)性菌[16],被美國(guó)食品藥品監(jiān)督管理局(FDA)認(rèn)證為安全菌株(Generally recognized as safe,GRAS),具有無(wú)內(nèi)毒素、胞外蛋白酶含量少[17]、可高密度發(fā)酵且易于分泌[18-21]等優(yōu)良特性,是目前工業(yè)生產(chǎn)重組蛋白質(zhì)的優(yōu)越表達(dá)系統(tǒng)[22-23]。

    PRV蛋白的表達(dá)有一定的難度,構(gòu)建的表達(dá)載體往往不能表達(dá),其主要原因可能是PRV蛋白與工程菌的兼容性不好,現(xiàn)有的研究多用病毒或真核載體表達(dá),在大腸桿菌中以包涵體形式表達(dá)[24-25],尚未有在谷氨酸棒桿菌中表達(dá)生產(chǎn)gD的研究報(bào)道。本研究擬在谷氨酸棒桿菌中進(jìn)行g(shù)D的可溶性表達(dá),通過(guò)Western Blot和酶聯(lián)免疫吸附劑測(cè)定(ELISA)法檢測(cè)gD蛋白的表達(dá)和抗原活性,并優(yōu)化發(fā)酵條件以提高產(chǎn)量,為進(jìn)一步研制PRV亞單位疫苗提供一種可用的表達(dá)體系,也為PRV免疫學(xué)檢測(cè)方法提供理論和技術(shù)支撐。

    1 材料與方法

    1.1 材料

    1.1.1 菌株 本研究所用的菌株見(jiàn)表1。大腸桿菌用于構(gòu)建質(zhì)粒,谷氨酸棒桿菌用于表達(dá)重組蛋白質(zhì),均由本實(shí)驗(yàn)室保存。

    1.1.2 質(zhì)粒 本研究所用的質(zhì)粒見(jiàn)表2。質(zhì)粒pXMJ19用作谷氨酸棒桿菌外源蛋白質(zhì)表達(dá)載體,由本實(shí)驗(yàn)室保存。

    1.2 方法

    1.2.1 培養(yǎng)條件 大腸桿菌培養(yǎng)條件:LB培養(yǎng)基(蛋白胨10 g/L,酵母提取物5 g/L,NaCl 10 g/L,蒸餾水定容),37 ℃,220 r/min。谷氨酸棒桿菌培養(yǎng)條件:LBB培養(yǎng)基(蛋白胨10 g/L,酵母提取物5 g/L,NaCl 10 g/L,腦心浸出液10 g/L,蒸餾水定容),30 ℃,220 r/min。大腸桿菌和谷氨酸棒桿菌培養(yǎng)體系中使用的氯霉素質(zhì)量濃度分別為30 μg/ml和20 μg/ml。

    1.2.2gD表達(dá)質(zhì)粒的構(gòu)建 從美國(guó)國(guó)家生物技術(shù)信息中心(NCBI)官網(wǎng)上獲取gD的氨基酸序列(GenBank:ABR13825.1),對(duì)其編碼序列進(jìn)行密碼子優(yōu)化(參考CorynebacteriumglutamicumATCC13032)?;蚝铣捎商K州安升達(dá)生物科技有限公司完成,添加5′(Hind Ⅲ)和3′(EcoR Ⅰ)。將基因通過(guò)5′(Hind Ⅲ)和3′(EcoR Ⅰ)酶切連接克隆至表達(dá)載體pXMJ19,獲得重組基因表達(dá)質(zhì)粒pXMJ19-gD。

    1.2.3 gD表達(dá)菌株的構(gòu)建 將構(gòu)建好的質(zhì)粒pXMJ19-gD電擊轉(zhuǎn)化C.glutamicum獲得表達(dá)菌株Cg-gD,30 ℃培養(yǎng)36 h,對(duì)長(zhǎng)出的單菌落進(jìn)行PCR和測(cè)序驗(yàn)證。為更好地反映gD的表達(dá)情況,同時(shí)構(gòu)建Cg-pXMJ19作為空白對(duì)照。

    表1 本研究所用菌株

    表2 本研究所用質(zhì)粒

    1.2.4gD的誘導(dǎo)表達(dá) Cg-gD和Cg-pXMJ19分別接種于10 ml氯霉素抗性LBB培養(yǎng)基中,在30 ℃、220 r/min條件下過(guò)夜培養(yǎng),之后以2%接種量轉(zhuǎn)接到50 ml新鮮的氯霉素抗性LBB培養(yǎng)基中,培養(yǎng)3~5 h(OD600=0.6~0.8)時(shí)添加1‰(質(zhì)量體積比)異丙基-β-D-硫代半乳糖苷(IPTG)誘導(dǎo)(100 mmol/L IPTG),繼續(xù)培養(yǎng)24 h后收集菌體進(jìn)行蛋白質(zhì)分析。

    1.2.5 生長(zhǎng)曲線的測(cè)定 將蛋白質(zhì)表達(dá)菌株接種于10 ml氯霉素抗性LBB培養(yǎng)基中,30 ℃、220 r/min條件下過(guò)夜培養(yǎng),轉(zhuǎn)接至100 ml新鮮的LBB培養(yǎng)基中,使初始OD600=0.2。30 ℃、220 r/min條件下培養(yǎng)48 h,每4 h取1次樣并測(cè)定OD600。

    1.2.6 蛋白質(zhì)表達(dá)鑒定 取gD發(fā)酵產(chǎn)物(定量OD600=10)在12 000 r/min離心,棄上清液,用磷酸鹽緩沖液(PBS)清洗菌體2次,并用PBS重懸菌體,破碎,取全菌液、上清液和沉淀(用PBS重懸)制成相應(yīng)蛋白質(zhì)樣品,進(jìn)行十二烷基硫酸鈉-聚丙烯酰胺凝膠電泳(SDS-PAGE)和Western Blot分析。使用組氨酸(His)單抗進(jìn)行Western Blot定性分析。純化后使用ELISA法進(jìn)行蛋白質(zhì)檢測(cè),封閉液用5%牛血清白蛋白(BSA),一抗用gD陽(yáng)性血清,二抗用辣根過(guò)氧化物羊抗豬IgG。ELISA方法:將純化液按一定梯度進(jìn)行稀釋后,每孔100 μl,37 ℃、1 h孵育至酶標(biāo)板上,用洗液清洗5次后甩干;按1∶800的體積比每孔100 μl繼續(xù)孵育一抗試劑,37 ℃,1 h,用洗液清洗5次后甩干;按1∶2 000的體積比每孔加入100 μl繼續(xù)孵育二抗試劑,37 ℃,1 h,用洗液清洗5次后甩干;每孔加入200 μl顯色液,37 ℃,1 h;最后每孔加入50 μl終止液,觀察顏色反應(yīng)或檢測(cè)OD450值。

    1.2.7 蛋白質(zhì)純化及定量分析 取50 ml發(fā)酵液,收集菌體沉淀,用50 ml結(jié)合液(Binding buffer)重懸,并進(jìn)行高壓勻漿破碎,于12 000 r/min、4 ℃離心30 min,收集上清液,用鎳離子親和層析柱進(jìn)行目標(biāo)蛋白質(zhì)的純化,用不同濃度洗脫液(Elution buffer)梯度洗脫目標(biāo)蛋白質(zhì)。結(jié)合液:Na2HPO4·12 H2O 5.8 g/L,NaH2PO4·2H2O 0.593 g/L,NaCl 29.22 g/L,用蒸餾水定容;洗脫液:Na2HPO4·12H2O 5.8 g/L,NaH2PO4·2H2O 0.593 g/L,NaCl 29.22 g/L,咪唑34 g/L,用蒸餾水定容。使用BCA試劑盒法進(jìn)行蛋白質(zhì)定量分析。

    2 結(jié)果與分析

    2.1 表達(dá)gD的菌株構(gòu)建與驗(yàn)證

    為獲得表達(dá)gD的谷氨酸棒桿菌,首先構(gòu)建質(zhì)粒pXMJ19-gD,質(zhì)粒圖譜如圖1a所示,載體質(zhì)粒pXMJ19酶切結(jié)果如圖1b所示。為觀察谷氨酸棒桿菌表達(dá)gD對(duì)菌株生長(zhǎng)的影響,對(duì)Cg-gD和Cg-pXMJ19進(jìn)行了生長(zhǎng)曲線測(cè)定,結(jié)果顯示,表達(dá)gD的菌株前期生長(zhǎng)稍顯緩慢,對(duì)菌株生長(zhǎng)的影響較小(圖1c)。Cg-gD發(fā)酵24 h后,取樣進(jìn)行蛋白質(zhì)表達(dá)分析,Western Blot分析結(jié)果如圖1d所示,在相對(duì)分子質(zhì)量4.5×104處有明顯條帶,與gD理論大小相符,且基本為可溶性表達(dá),但在1.7×104處有降解,SDS-PAGE條帶較淺,表明表達(dá)量較低。

    a:pXMJ19-gD的質(zhì)粒圖譜;b:pXMJ19載體酶切結(jié)果,M為10 000 marker,L1~L3為生物學(xué)平行樣本;c:Cg-pXMJ19和Cg-gD 菌株48 h生長(zhǎng)曲線;d:十二烷基硫酸鈉-聚丙烯酰胺凝膠電泳(SDS-PAGE)和Western Blot分析結(jié)果,M為蛋白質(zhì)marker,1~3分別為Cg-pXMJ19發(fā)酵全菌、破碎后上清液、沉淀,4~6分別為Cg-gD發(fā)酵全菌、破碎后上清液、沉淀。圖1 質(zhì)粒pXMJ19-gD的構(gòu)建與目的蛋白質(zhì)分析Fig.1 Construction of plasmid pXMJ19-gD and analysis of target protein

    2.2 gD表達(dá)元件優(yōu)化

    為進(jìn)一步提高gD的表達(dá)量,對(duì)表達(dá)元件啟動(dòng)子和信號(hào)肽進(jìn)行了優(yōu)化。由于C.glutamicum中組成型啟動(dòng)子更有利于外源蛋白質(zhì)的表達(dá)[26],因此分別選用組成型H36啟動(dòng)子(圖2a)、cspB和0949信號(hào)肽對(duì)gD的表達(dá)進(jìn)行優(yōu)化(圖3a)。

    為構(gòu)建組成型表達(dá)質(zhì)粒H36-gD,對(duì)pXMJ19-gD質(zhì)粒進(jìn)行Hind Ⅲ和EcoR Ⅴ酶切,凝膠回收后獲得含目的基因的載體,H36序列(300 bp)使用引物H36-F+H36-R擴(kuò)增獲得,載體和片段以1∶3濃度比例進(jìn)行同源重組,轉(zhuǎn)化E.coliJM109并測(cè)序驗(yàn)證。用相同方法構(gòu)建對(duì)照質(zhì)粒H36-pXMJ19。將菌落PCR和測(cè)序正確的H36-gD電轉(zhuǎn)入C.glutamicum進(jìn)行發(fā)酵表達(dá)。SDS-PAGE和Western Blot分析結(jié)果如圖2所示,可見(jiàn)組成型質(zhì)粒H36-gD的蛋白質(zhì)表達(dá)條帶顏色深,灰度分析結(jié)果顯示,其蛋白質(zhì)表達(dá)量比誘導(dǎo)型質(zhì)粒pXMJ19-gD的蛋白質(zhì)表達(dá)量高4.5倍。

    a:H36-gD構(gòu)建示意;b:Cg-H36-gD菌株P(guān)CR驗(yàn)證,M為2000 marker,1~6平行樣品;c:十二烷基硫酸鈉-聚丙烯酰胺凝膠電泳(SDS-PAGE)和Western Blot分析結(jié)果,M為蛋白質(zhì)marker,1為Cg-pXMJ19破碎后上清液,2為Cg-gD破碎后上清液,3為Cg-H36-gD破碎后上清液。圖2 組成型表達(dá)質(zhì)粒H36-gD的構(gòu)建與目的蛋白質(zhì)分析Fig.2 Construction of constitutive expression plasmid H36-gD and analysis of target protein

    為了研究分泌表達(dá)對(duì)gD表達(dá)量的影響,分別增加cspB和0949 2種信號(hào)肽構(gòu)建分泌型表達(dá)質(zhì)粒cspB-gD和0949-gD。以pXMJ19-gD質(zhì)粒為模板,使用引物cspB-F+sp-R、cspB-R+sp-F擴(kuò)增片段,凝膠回收后兩片段以1∶1濃度比例進(jìn)行同源重組,轉(zhuǎn)化E.coliJM109并測(cè)序驗(yàn)證,獲得cspB-gD。cspB-pXMJ19的構(gòu)建模板為pXMJ19。以pXMJ19-gD質(zhì)粒為模板,使用引物gD-F+ gD-R擴(kuò)增載體,0949-F+0949-R直接引物退火,延伸獲得片段,載體和片段以1∶3濃度比例進(jìn)行同源重組,轉(zhuǎn)化JM109并測(cè)序驗(yàn)證,獲得0949-gD。0949-pXMJ19的構(gòu)建模板為pXMJ19。長(zhǎng)出的轉(zhuǎn)化子通過(guò)菌落PCR和測(cè)序來(lái)驗(yàn)證,用測(cè)序正確的質(zhì)粒轉(zhuǎn)化C.glutamicum進(jìn)行發(fā)酵誘導(dǎo)表達(dá)。SDS-PAGE和Western Blot結(jié)果(圖3)顯示,在相對(duì)分子質(zhì)量4.5×104處無(wú)條帶,這表明增加信號(hào)肽序列,gD在谷氨酸棒桿菌中反而不表達(dá),猜測(cè)是因?yàn)榈鞍踪|(zhì)自身特性,在添加信號(hào)肽后不能正確折疊導(dǎo)致無(wú)法表達(dá)。

    a:質(zhì)粒cspB-gD和0949-gD構(gòu)建示意;b:十二烷基硫酸鈉-聚丙烯酰胺凝膠電泳(SDS-PAGE)和Western Blot分析結(jié)果,M為蛋白質(zhì)marker,1~3分別為Cg-pXMJ19發(fā)酵液上清液、全菌、細(xì)胞破碎后上清液,4~7分別為Cg-cspB-gD發(fā)酵液上清液、全菌、細(xì)胞破碎后上清液、細(xì)胞破碎后沉淀,8~11分別為Cg-0949-gD發(fā)酵液上清液、全菌、細(xì)胞破碎后上清液、細(xì)胞破碎后沉淀。圖3 糖蛋白gD分泌系統(tǒng)的構(gòu)建與目的蛋白質(zhì)分析Fig.3 Construction of glycoprotein gD secretion system and analysis of target protein

    2.3 gD的表達(dá)底盤菌株優(yōu)化

    為了分析不同底盤菌株對(duì)gD表達(dá)的影響,以提高蛋白質(zhì)表達(dá)量,在前期研究基礎(chǔ)上,選取3株底盤菌株(分別為C.glutamicumCGMCC1.15647、蛋白酶敲除菌株Cg-△clpC和Cg-△clpS)進(jìn)行研究。首先進(jìn)行生長(zhǎng)曲線的測(cè)定,結(jié)果如圖4a所示,與對(duì)照菌株Cg-pXMJ19相比,表達(dá)gD的其他菌株生長(zhǎng)都受到不同程度的影響,△clpC -H36-gD長(zhǎng)勢(shì)最弱。SDS-PAGE和Western Blot分析結(jié)果(圖4b)顯示,Cg-△clpS-gD的蛋白質(zhì)表達(dá)條帶最深,經(jīng)灰度分析發(fā)現(xiàn)其蛋白質(zhì)表達(dá)量比組成型表達(dá)菌株Cg-H36-gD高2.4倍。由此可見(jiàn)clpS蛋白酶對(duì)外源蛋白質(zhì)在C.glutamicum中表達(dá)的影響最大。

    a:不同底盤菌株的36 h生長(zhǎng)曲線;b:Western Blot分析結(jié)果,M為蛋白質(zhì)marker,1~6均為發(fā)酵后破碎上清液,1為Cg-pXMJ19,2為Cg-H36-gD,3為Cg-△clpS-gD,4為Cg-△clpC-gD,5為Cg-△clpS-H36-gD,6為Cg-△clpC-H36-gD。圖4 gD的表達(dá)底盤菌株優(yōu)化Fig.4 Optimization of chasis strain expressing gD

    2.4 gD的表達(dá)發(fā)酵條件優(yōu)化

    選取最優(yōu)表達(dá)菌株Cg-△clpS-gD進(jìn)行發(fā)酵條件優(yōu)化,以進(jìn)一步提高gD的表達(dá)量,分別從發(fā)酵溫度和誘導(dǎo)時(shí)間進(jìn)行優(yōu)化。根據(jù)谷氨酸棒桿菌生長(zhǎng)特性,選取16 ℃、23 ℃、30 ℃ 3個(gè)溫度進(jìn)行g(shù)D的表達(dá),以Cg-△clpS-pXMJ19作為陰性對(duì)照,搖瓶培養(yǎng)24 h后進(jìn)行SDS-PAGE和Western Blot分析。結(jié)果(圖5a)顯示,30 ℃培養(yǎng)條件下,蛋白質(zhì)條帶最深,16 ℃和23 ℃條件下蛋白質(zhì)條帶較淺,且菌株長(zhǎng)勢(shì)弱于30 ℃培養(yǎng)條件。這表明對(duì)于gD的表達(dá)而言,30 ℃不僅有利于菌株生長(zhǎng),還有利于蛋白質(zhì)的表達(dá)。為探究誘導(dǎo)時(shí)長(zhǎng)對(duì)gD表達(dá)的影響,分別在誘導(dǎo)后6 h、12 h、18 h、24 h、30 h、36 h取樣進(jìn)行目的蛋白質(zhì)表達(dá)量分析。結(jié)果(圖5b)顯示,gD在誘導(dǎo)后24 h才開(kāi)始明顯表達(dá),且后期增量不明顯,這表明菌株前期主要側(cè)重于生長(zhǎng),在穩(wěn)定期進(jìn)行外源蛋白質(zhì)表達(dá)。

    a:不同溫度發(fā)酵表達(dá)gD的SDS-PAGE(上圖)和Western Blot分析結(jié)果(下圖),其中1為Cg-pXMJ19發(fā)酵后破碎上清液,2~4分別為16 ℃、23 ℃、30 ℃下Cg-△clpS-gD發(fā)酵后破碎上清液;b:不同誘導(dǎo)時(shí)長(zhǎng)發(fā)酵表達(dá)gD的SDS-PAGE(上圖)和Western Blot分析結(jié)果(下圖),其中1為Cg-pXMJ19發(fā)酵后破碎上清液,2~7分別為Cg-△clpS-gD發(fā)酵后6 h、12 h、18 h、24 h、30 h、36 h破碎上清液;M:蛋白質(zhì)marker。圖5 不同溫度、誘導(dǎo)時(shí)長(zhǎng)發(fā)酵表達(dá)gD的十二烷基硫酸鈉-聚丙烯酰胺凝膠電泳(SDS-PAGE)和Western Blot 分析Fig.5 Sodium dodecyl sulfate-polyacrylamide gel electrophoresis (SDS-PAGE) and Western Blot analysis of gD expression at different fermentation temperatures and induction durations

    2.5 gD的純化及定量分析

    在目的蛋白質(zhì)3′端添加6×His標(biāo)簽,使用鎳離子親和層析柱對(duì)其進(jìn)行純化分析,結(jié)果表明,使用5%洗脫液即可將目的蛋白質(zhì)洗脫,純化樣品SDS-PAGE結(jié)果如圖6a所示。使用BCA試劑盒對(duì)目的蛋白質(zhì)進(jìn)行定量分析,經(jīng)計(jì)算,200 ml搖瓶發(fā)酵液中,菌株Cg-△clpS-gD發(fā)酵后gD質(zhì)量濃度約為517 mg/L。洗脫液蛋白質(zhì)電泳結(jié)果顯示仍有少量雜蛋白質(zhì),且流穿液也含有目的蛋白質(zhì),說(shuō)明目的蛋白質(zhì)和純化柱結(jié)合得不夠緊密。使用ELISA法檢測(cè)純化后的gD,以5% BSA為封閉液,gD抗體陽(yáng)性血清為一抗、HRP羊抗豬IgG為二抗進(jìn)行包板試驗(yàn),以2.1倍陰性對(duì)照值作為陽(yáng)性結(jié)果的判斷標(biāo)準(zhǔn),OD450目的蛋白>2.1倍OD450陰性對(duì)照,純化后gD呈陽(yáng)性。以gD抗體陽(yáng)性血清作單抗孵育,Western Blot結(jié)果(圖6c)顯示,gD有特異性條帶。

    a:△clpS-gD純化后樣品的SDS-PAGE分析結(jié)果,1為Cg-pXMJ19破碎后上清液,2為△clpS-gD純化流穿液,3~4為純化蛋白質(zhì)樣品;b:BSA質(zhì)量濃度標(biāo)準(zhǔn)曲線;c:OD450值和Western Blot結(jié)果,CK為陰性對(duì)照,A1為純化流穿液,A2為純化蛋白質(zhì)樣品。圖6 糖蛋白gD的定量定性檢測(cè)Fig.6 Quantitative and qualitative detection of glycoprotein gD

    3 討論

    谷氨酸棒桿菌在表達(dá)異源蛋白質(zhì)上具有很大潛力,相較于大腸桿菌表達(dá)系統(tǒng),C.glutamicum不含內(nèi)毒素,更適合醫(yī)藥蛋白質(zhì)生產(chǎn);與同為革蘭氏陽(yáng)性菌的枯草芽孢桿菌相比,C.glutamicum能正確折疊蛋白質(zhì),確保蛋白質(zhì)活性;與真核細(xì)胞相比,C.glutamicum生長(zhǎng)周期短,培養(yǎng)成本不高,基因操作成熟,可高密度發(fā)酵,有利于異源蛋白質(zhì)的發(fā)酵放大。本研究中,為了在谷氨酸棒桿菌中表達(dá)gD,首先進(jìn)行pXMJ19-gD的構(gòu)建與表達(dá),初步通過(guò)SDS-PAGE和Western Blot條帶分析,驗(yàn)證gD可在谷氨酸棒桿菌中可溶性表達(dá)。其次通過(guò)表達(dá)元件、底盤菌株、發(fā)酵條件等優(yōu)化,發(fā)現(xiàn)與誘導(dǎo)型表達(dá)質(zhì)粒相比,組成型表達(dá)質(zhì)粒更有利于gD的表達(dá),蛋白質(zhì)表達(dá)量提高了4.5倍;蛋白酶敲除菌株Cg-△clpS誘導(dǎo)表達(dá)gD的能力最強(qiáng),蛋白質(zhì)表達(dá)量是組成型的2.5倍。上述研究結(jié)果說(shuō)明,不同菌株對(duì)于不同啟動(dòng)子的適配能力不同。根據(jù)谷氨酸棒桿菌的生長(zhǎng)特性,30 ℃培養(yǎng)、誘導(dǎo)24 h是gD表達(dá)的最優(yōu)條件。推測(cè)表達(dá)gD對(duì)宿主菌有一定毒性,所以使宿主菌生長(zhǎng)緩慢,生長(zhǎng)到一定程度后,延遲表達(dá)。最后,通過(guò)鎳離子層析柱純化目的蛋白質(zhì),經(jīng)BCA試劑盒檢測(cè),在搖瓶水平200 ml發(fā)酵液中目的蛋白質(zhì)質(zhì)量濃度可達(dá)517 mg/L。利用ELISA法檢測(cè)目的蛋白質(zhì),OD450值和顯色反應(yīng)均顯示純化后的gD呈陽(yáng)性。綜上所述,本研究成功構(gòu)建了表達(dá)可溶性gD的谷氨酸棒桿菌系統(tǒng),該系統(tǒng)同樣可以用于其他異源蛋白質(zhì)的表達(dá),目前已有用C.glutamicum表達(dá)VHH和scFv等異源蛋白質(zhì)的報(bào)道。

    本研究中還存在一些需要進(jìn)一步探索的問(wèn)題,比如本研究只驗(yàn)證了蛋白酶單敲除菌株對(duì)gD表達(dá)的影響,組合敲除的情況有待進(jìn)一步研究。其次,gD與鎳離子親和層析柱結(jié)合的緊密性也需要進(jìn)一步研究,以獲得更高純度的目的蛋白質(zhì)。最后,沒(méi)有進(jìn)行大規(guī)模發(fā)酵培養(yǎng),優(yōu)化更多的發(fā)酵條件,比如碳源、溶解氧含量等。這些未解決的問(wèn)題同樣具有重要意義,亟待研究人員進(jìn)一步探索。

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