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    生物炭原位添加對養(yǎng)殖池塘底泥中微生物群落結(jié)構(gòu)的影響

    2022-01-24 07:53:42趙漢胤陳潘毅唐欣哲陳以芹李娟英
    關(guān)鍵詞:底泥群落池塘

    趙漢胤,陳潘毅,唐欣哲,陳以芹,李娟英*

    (1.上海海洋大學(xué)海洋生態(tài)與環(huán)境學(xué)院,上海 201306;2.上海中學(xué)東校,上海 201306)

    隨著養(yǎng)殖技術(shù)的高速發(fā)展,水產(chǎn)養(yǎng)殖已呈現(xiàn)出規(guī)?;?、集約化等特點(diǎn),但與此同時(shí),養(yǎng)殖池塘的污染狀況也日漸凸顯。焦寶玉等[1]對萬灘鎮(zhèn)養(yǎng)殖池塘底泥中重金屬的污染現(xiàn)狀進(jìn)行研究,結(jié)果表明該地區(qū)底泥中的重金屬Cr 已超《農(nóng)產(chǎn)品安全質(zhì)量無公害水產(chǎn)品產(chǎn)地環(huán)境要求》(GB/T 18407.4—2001)國家標(biāo)準(zhǔn)最高限值,存在潛在的生態(tài)風(fēng)險(xiǎn);劉云飛等[2]對崇明島草魚池塘沉積物中多環(huán)芳烴(PAHs)的分布狀況進(jìn)行調(diào)查,結(jié)果表明該沉積物中PAHs 的總含量范圍為ND~1 654.09μg·kg?1,其中4~5環(huán)PAHs對總濃度的貢獻(xiàn)率較高,來源分析表明沉積物中的PAHs 主要來自于生物燃燒和石油燃燒,崇明島草魚池塘整體的生態(tài)風(fēng)險(xiǎn)較低,但個(gè)別池塘存在潛在生態(tài)風(fēng)險(xiǎn),需引起重視。本課題組先前的研究表明,我國東部地區(qū)的養(yǎng)殖池塘底泥普遍存在PAHs污染[3]。

    目前,修復(fù)受污染養(yǎng)殖底泥的主要方法包括生物法、物理法和化學(xué)法。但生物修復(fù)和物理修復(fù)存在修復(fù)周期長、修復(fù)成本高等問題,因此不適用于養(yǎng)殖底泥的修復(fù)[4]?;瘜W(xué)修復(fù)中的吸附固定法,因其修復(fù)成本低、效果顯著而被廣泛應(yīng)用[5]。該方法將生物炭作為修復(fù)劑添加到底泥中,以達(dá)到固定污染物的目的,且已被證明效果可靠[6?7]。小麥秸稈生物炭是一種具有高污染物固定能力的生物炭,已經(jīng)被廣泛用作模型生物炭用于土壤/沉積物的修復(fù)[8?9]。同時(shí),將小麥秸稈制成生物炭,不僅可以減少傳統(tǒng)處理過程(堆肥或焚燒)對大氣污染的影響,也可以達(dá)到以廢治廢的目的。

    通常,生物炭除了吸附固定污染物外,還可以改善植物生長[10],增加土壤陽離子交換能力[11]和土壤孔隙度[12],降低土壤密度并增強(qiáng)土壤通氣性[13]。已有的研究還表明,添加生物炭可以改變微生物群落組成[14?15],提高微生物的生物量[16],增加微生物的總體活性并促進(jìn)有機(jī)污染物的微生物降解[17?18],從而達(dá)到修復(fù)底泥的目的。因此,本文選擇小麥秸稈生物炭,將其原位添加到養(yǎng)殖池塘底泥中,以底泥中的微生物作為研究對象,通過高通量測序方法,研究小麥秸稈生物炭的添加對底泥中微生物群落結(jié)構(gòu)的影響,以期為養(yǎng)殖池塘底泥原位修復(fù)提供理論指導(dǎo)和科學(xué)依據(jù)。

    1 材料與方法

    1.1 藥品與試劑

    有機(jī)溶劑二氯甲烷和乙腈均為色譜純(Sigma?Aldrich);層析硅膠和銅片等為分析純,購自國藥集團(tuán)。層析硅膠650 ℃下灼燒6 h,冷卻后轉(zhuǎn)移到干燥器中保存待用;PAHs 標(biāo)準(zhǔn)物質(zhì)購自Sigma?Aldrich 公司(NIST1647F),將其置于4 ℃冰箱中保存待用。

    1.2 小麥秸稈生物炭特性的測定

    本文所選用小麥秸稈生物炭購于河南譽(yù)中奧農(nóng)業(yè)科技有限公司。生物炭的C、H、O、N、S 含量用EA有機(jī)元素分析儀(德國,Vario EL Cube)測定;小麥秸稈生物炭的比表面積采用比表面積與孔隙度分析儀(Autosorb?IQ3)測定;生物炭的表面結(jié)構(gòu)特征采用六硼化鑭掃描電子顯微鏡(Vega LaB6?SEM)觀察。

    1.3 養(yǎng)殖池塘底泥原位生物炭的添加

    養(yǎng)殖池塘的選?。呼~蝦混養(yǎng)養(yǎng)殖池塘位于上海市浦東新區(qū)書院鎮(zhèn)祥園路(121°50′04″E,30°58′40″N),養(yǎng)殖品種包括蝦類(南美白對蝦和羅氏沼蝦)和魚類(鰱、鳙、草魚、鯽魚、鳊魚),同時(shí)混有螺螄、三角帆蚌等底棲生物。這些魚蝦類生物與上海市居民水產(chǎn)品消費(fèi)結(jié)構(gòu)中的優(yōu)勢品種高度吻合[19],因此該養(yǎng)殖池塘作為研究對象具有很強(qiáng)的代表性。

    生物炭添加:該養(yǎng)殖池塘底泥含水率約為60%,濕泥密度為1.4×103kg·m?3。在該養(yǎng)殖池塘的清塘階段,將生物炭與實(shí)驗(yàn)塘的養(yǎng)殖池塘表層5 cm 底泥混合,添加3%干質(zhì)量比的小麥秸稈生物炭(參考本實(shí)驗(yàn)室之前的研究結(jié)果[20]),即每平方米底泥中生物炭的添加量約為0.84 kg(熱解老化處理后的生物炭[21])。實(shí)驗(yàn)中每個(gè)池塘面積約為104 m2(8 m×13 m),為更好地促進(jìn)生物炭與底泥的混合,將每個(gè)池塘分割成10個(gè)面積約為10 m2的小塊。用瓢將事先稱好質(zhì)量的生物炭均勻覆蓋在其表面,再利用鐵鏟等工具將其與表層底泥進(jìn)行混合,重復(fù)多次,直至充分混勻。處理完成后,保持生物炭與底泥接觸自然老化4 周,池塘放水再接觸老化2 周后投放養(yǎng)殖生物。整個(gè)實(shí)驗(yàn)分為實(shí)驗(yàn)塘(n=3)和對照塘(n=3)兩組,在養(yǎng)殖池塘飼養(yǎng)階段對塘內(nèi)水質(zhì)做定期監(jiān)測以保證各個(gè)池塘無明顯差異。該試驗(yàn)屬于小型現(xiàn)場試驗(yàn),以此探究生物炭在實(shí)際原位應(yīng)用時(shí)的修復(fù)效果,但此方法并不適用于大范圍修復(fù)。

    1.4 底泥樣品的采集

    實(shí)驗(yàn)自6月放水開始持續(xù)28周,分別在實(shí)驗(yàn)過程中的第1、7、14、21、28、42、56、84、112、140、168 d對實(shí)驗(yàn)塘和對照塘中的底泥樣品進(jìn)行取樣,在12 月份時(shí)結(jié)束整個(gè)實(shí)驗(yàn)。每個(gè)養(yǎng)殖池塘設(shè)置3 個(gè)采樣點(diǎn),在池塘的中心線上等分3 個(gè)采樣點(diǎn),且每個(gè)采樣點(diǎn)設(shè)3 個(gè)平行,樣品用經(jīng)滅菌后的竹勺裝入離心管中,置于干冰保溫箱帶回實(shí)驗(yàn)室,將其保存于?80 ℃的低溫冰箱中,一部分用于提取樣品的DNA,另一部分用于測定樣品的PAHs。

    1.5 底泥樣品中總DNA的提取方法

    1.5.1 DNA抽提和PCR擴(kuò)增

    根據(jù)E.Z.N.A.?soil DNA kit(Omega Bio?tek,Nor?cross,GA,U.S.)說明書進(jìn)行底泥樣品總DNA 抽提,用1%的瓊脂糖凝膠電泳檢測DNA 的提取質(zhì)量,用NanoDrop2000 測定DNA 的濃度和純度;同時(shí)采用338F(5’?ACTCCTACGGGAGGCAGCAG?3′)和806R(5′?GGACTACHVGGGTWTCTAAT?3′)對16S rRNA基因V3~V4可變區(qū)進(jìn)行PCR擴(kuò)增,每個(gè)樣本3個(gè)重復(fù)。

    1.5.2 Illumina Miseq測序

    將同一樣本的PCR 產(chǎn)物混合后使用2%瓊脂糖凝膠回收PCR 產(chǎn)物,利用AxyPrep DNA Gel Extraction Kit(Axygen Biosciences,Union City,CA,USA)進(jìn)行回收產(chǎn)物純化,2%瓊脂糖凝膠電泳檢測,并用Quantus?Fluorometer(Promega,USA)對回收產(chǎn)物進(jìn)行檢測定量。利用Illumina 公司的Miseq PE300 平臺進(jìn)行測序(上海美吉生物醫(yī)藥科技有限公司)。

    1.5.3 數(shù)據(jù)處理

    使用UPARSE軟件,根據(jù)97%的相似度對序列進(jìn)行OTU 聚類并剔除嵌合體。利用RDP classifier 對每條序列進(jìn)行物種分類注釋,比對Silva 數(shù)據(jù)庫(SSU128),設(shè)置比對閾值為70%。

    1.6 底泥樣品PAHs預(yù)處理及測定

    稱取3.0 g冷凍干燥的底泥樣品,過100目篩后置于微波萃取管中,加入12 mL 二氯甲烷萃取2 h,將萃取溶液移入10 mL 玻璃離心管中,再用5 mL 二氯甲烷淋洗微波管兩次。將兩次10 mL 溶液氮吹合并至2 mL 左右后過濾。用活化銅和層析柱硅膠凈化上述溶液,并用10 mL 二氯甲烷洗脫,最后將洗脫液用氮?dú)獯抵两桑靡译娑ㄈ葜?.5 mL,待上機(jī)測定。所有PAHs 樣品用氣相色譜?質(zhì)譜法(GC?MS,Agilent 7890B/5975C)測定。

    1.7 質(zhì)量控制與數(shù)據(jù)分析

    為保證實(shí)驗(yàn)結(jié)果的準(zhǔn)確性和科學(xué)性,所有樣品設(shè)置3 個(gè)平行樣,底泥樣品中PAHs 的檢出限和回收率如表1 所示。本文圖表制作及數(shù)據(jù)分析均采用Prism 8.0和SPSS 20.0完成。

    表1 底泥樣品(干質(zhì)量)中PAHs的檢出限與回收率Table 1 Detection limits and recoveries of PAHs in sediment(dry weight)

    2 結(jié)果與討論

    2.1 待修復(fù)池塘底泥污染特征及小麥秸稈生物炭的特性

    2.1.1 待修復(fù)池塘底泥污染特征

    待修復(fù)池塘底泥(干質(zhì)量)中∑PAHs 的濃度為396.68±3.50 ng·g?1(表2),共檢出11 種PAHs,以2、3、4 環(huán)為主,占ΣPAHs 的76%~97%。絕對性優(yōu)勢的單體污染物為FLU、PHE 和PYR,其中FLU 的濃度為111.67±5.12 ng·g?1,處于LONG 等[22]提出的效應(yīng)區(qū)間低值(16 ng·g?1)與效應(yīng)區(qū)間中值(500 ng·g?1)之間,即已具有一定的潛在生態(tài)毒性。因此,該待修復(fù)養(yǎng)殖底泥具有典型污染特征,與之前本課題組對長三角區(qū)域養(yǎng)殖池塘底泥污染的調(diào)查結(jié)果基本一致[3]。為提高養(yǎng)殖水產(chǎn)品的質(zhì)量,減小其食用的健康風(fēng)險(xiǎn),有必要利用技術(shù)手段對養(yǎng)殖底泥展開修復(fù)。

    表2 養(yǎng)殖池塘底泥(干質(zhì)量)中PAHs的濃度(ng·g?1)Table 2 Concentration of PAHs in aquaculture sediment(dry weight)(ng·g?1)

    2.1.2 小麥秸稈生物炭的特征

    在5μm 分辨率的掃描電鏡(SEM)下觀測小麥秸稈生物炭(圖1),其表面有很多凸起的細(xì)小顆粒,且具有大量無規(guī)則的孔隙結(jié)構(gòu)。這些孔隙結(jié)構(gòu)可為微生物提供更多的棲息地并成為它們的庇護(hù)所,從而有利于其生長[23]。生物炭呈堿性(表3),可以提高底泥的pH,而中性或弱堿性的土壤條件可刺激細(xì)菌的增長,增加其菌落豐度[24]。綜合而言,該小麥秸稈生物炭施用于養(yǎng)殖底泥有利于底泥微生物的生長。

    表3 小麥秸稈生物炭的基本理化性質(zhì)Table 3 Physical?chemical properties of wheat straw biochar

    2.2 生物炭添加對底泥中微生物群落多樣性的影響

    2.2.1 底泥中細(xì)菌OTU分布

    圖2 為小麥秸稈生物炭添加后,不同修復(fù)時(shí)間的底泥樣本組之間共有OTU 的花瓣圖分析。不同修復(fù)時(shí)間共有的OTU 數(shù)目為904,而特有OTU 數(shù)目存有一定差異。與第1 d 相比,小麥秸稈生物炭處理后的底泥特有OTU 數(shù)目相對增加,實(shí)驗(yàn)開始時(shí)特有OTU 數(shù)僅為62,隨著修復(fù)時(shí)間的增加,改善作用明顯。除實(shí)驗(yàn)第21 d和168 d時(shí)特有OTU 數(shù)目較低外(63和27),其余時(shí)間特有OTU 數(shù)目均高于原有數(shù)目。在實(shí)驗(yàn)第42 d時(shí),OTU特有數(shù)目升高到272,這可能是因?yàn)樯锾慷嗫椎慕Y(jié)構(gòu)有利于微生物的生長發(fā)育[25]。之后特有OTU數(shù)目呈持續(xù)下降趨勢,在實(shí)驗(yàn)的第168 d,特有OTU 數(shù)目降至最低的27,這可能與現(xiàn)場實(shí)驗(yàn)中環(huán)境條件的變化有關(guān)。實(shí)驗(yàn)進(jìn)行到第168 d 時(shí),正值12 月底,水溫處于10 ℃左右,微生物生長受到溫度影響而持續(xù)下降。周濤等[26]和任海偉等[27]的研究皆表明,低溫會(huì)降低微生物生長的多樣性,因此,在實(shí)驗(yàn)臨近結(jié)束時(shí)出現(xiàn)了OTU數(shù)目的下降。

    2.2.2 底泥中細(xì)菌群落Alpha多樣性

    為進(jìn)一步分析添加小麥秸稈生物炭對底泥微生物群落多樣性的影響,本文采用3 種方法計(jì)算了底泥細(xì)菌豐度,包括Simpson 指數(shù)、Shannon 指數(shù)以及Chao1 指數(shù)[28]。Simpson 指數(shù)是用來估算樣本中微生物多樣性的指數(shù)之一,由Edward Hugh Simpson 提出,該指數(shù)在生態(tài)學(xué)中常用來定量描述一個(gè)區(qū)域的生物多樣性。Shannon指數(shù)也是用來估算樣本中微生物多樣性的指數(shù)之一,常用于反映群落Alpha 多樣性[29]。Simpson 指數(shù)側(cè)重于對物種的均勻度,而Shannon 指數(shù)側(cè)重于物種的豐富度。Chao1 指數(shù)則反映的是群落的豐富度。

    隨著現(xiàn)場修復(fù)實(shí)驗(yàn)的持續(xù)進(jìn)行,實(shí)驗(yàn)組中Simpson菌群豐度指數(shù)呈現(xiàn)先降低后升高的趨勢(表4),說明底泥中微生物的豐度是先升高再降低的。在實(shí)驗(yàn)的第42 d,底泥細(xì)菌群落的Simpson 指數(shù)達(dá)到最低(0.16),此時(shí)微生物的豐度達(dá)到最高。Shannon 多樣性指數(shù)在實(shí)驗(yàn)過程中則呈現(xiàn)先上升后逐漸下降的趨勢,同樣是在第42 d 時(shí)達(dá)到最高值(2.34),這與Simp?son 指數(shù)反映的結(jié)果一致。這些趨勢與特有OTU 的分布相似,因?yàn)橐粋€(gè)OTU 即代表一個(gè)分類學(xué)信息,特有OTU 越多則菌落的分類信息也越多,多樣性就越豐富。Chao1 指數(shù)代表了菌群的豐度,其數(shù)值越大,說明群落豐富度越高。Chao1 指數(shù)在實(shí)驗(yàn)第21 d 時(shí)最高,說明此時(shí)底泥中微生物的多樣性最高,隨后多樣性呈逐漸下降趨勢,與其他兩個(gè)指數(shù)的變化趨勢基本一致。在臨近實(shí)驗(yàn)結(jié)束的第140 d 和168 d 的Chao1 指數(shù)減小,與養(yǎng)殖池塘的環(huán)境溫度下降關(guān)系密切。而在對照組各項(xiàng)Alpha 多樣性數(shù)據(jù)中大部分均低于實(shí)驗(yàn)組,表明實(shí)驗(yàn)組中底泥微生物有更高的豐度和群落多樣性。同時(shí),對照組中的各項(xiàng)數(shù)據(jù)均呈下降趨勢,說明隨著現(xiàn)場實(shí)驗(yàn)的進(jìn)行,對照組中底泥微生物的豐度和多樣性逐漸降低,且在實(shí)驗(yàn)臨近結(jié)束時(shí)達(dá)到最低,這也是由于環(huán)境溫度的降低造成的。綜合而言,底泥中添加小麥秸稈生物炭可增加細(xì)菌群落的多樣性,這與EL?NAGGAR 等[30]添加三種不同生物炭到底泥中,均增加了微生物群落的多樣性的結(jié)論一致。

    表4 底泥微生物群落的Alpha多樣性Table 4 The Alpha diversity of microbial communities in sediment

    2.3 生物炭添加對底泥中微生物群落結(jié)構(gòu)的影響

    細(xì)菌通常以群落的形式存在,細(xì)菌群落結(jié)構(gòu)主要指群落中細(xì)菌種群的種類和豐度。生物炭具有發(fā)達(dá)的多孔結(jié)構(gòu)和較大的表面積,可以為細(xì)菌提供合適的生長環(huán)境[31?32]。選取每個(gè)樣本組在門水平下相對豐度大于0.01 的菌群,菌群組成的豐度分布如圖3 所示。主要涉及到的菌群包括變形菌門(Proteobacte?ria)、綠彎菌門(Chloroflexi)、放線菌門(Actinobacte?ria)、酸桿菌門(Acidobacteria)、厚壁菌門(Fir?micutes)、擬桿菌門(Bacteroidetes)、棒狀桿菌門(Rokubacteria)、硝化螺旋菌門(Nitrospirae)、芽單胞菌門(Gemmatimonadetes)、藍(lán)細(xì)菌(Cyanobacteria)、髕骨細(xì)菌門(Patescibacteria)、疣微菌門(Verrucomicro?bia)、浮霉菌門(Planctomycetes)、匿桿菌門(Latesci?bacteria)、達(dá)達(dá)菌門(Dadabacteria)和其他菌群。

    隨著修復(fù)時(shí)間的增加,底泥中細(xì)菌群落的豐度也在發(fā)生緩慢的變化(圖3)。從門水平優(yōu)勢細(xì)菌相對豐度來看,實(shí)驗(yàn)組中變形菌門和放線菌門的相對豐度顯著提升,成為優(yōu)勢菌種,而在對照組中并未觀測到這一現(xiàn)象。這與ZHANG 等[33]和SONG 等[34]的研究結(jié)果一致,即生物炭的添加可導(dǎo)致變形菌門的相對豐度提高。放線菌門則可以有效降解底泥中復(fù)雜的芳香類化合物,從而獲取更多能量用于生長繁殖,這使得修復(fù)實(shí)驗(yàn)期間其在整個(gè)細(xì)菌群落中的相對豐度逐漸增加[35]。有研究也表明,變形菌門、放線菌門以及厚壁菌門在土壤的有機(jī)物降解和碳循環(huán)中起到關(guān)鍵作用,能夠降解底泥中的部分PAHs[36?38]。本課題組先前的研究表明,我國東部地區(qū)的養(yǎng)殖池塘底泥普遍存在PAHs 污染[3]。而本研究也同時(shí)對實(shí)驗(yàn)組以及對照組底泥中的PAHs 濃度進(jìn)行了分析,結(jié)果表明經(jīng)小麥秸稈生物炭修復(fù)后,底泥PAHs 的含量顯著降低(圖4a),這可能是由于微生物的降解作用。生物炭對PAHs 的影響通常體現(xiàn)在其吸附固定能力上,其能夠減少底泥中自由溶解態(tài)PAHs 的濃度(Cfree)[20],但對底泥PAHs 的總含量并無明顯影響。而微生物可利用其自身優(yōu)勢降解PAHs,使PAHs 濃度降低,這與PENG等[39]的研究結(jié)果一致。

    此外,在實(shí)驗(yàn)組中綠彎菌門和酸桿菌門的相對豐度顯著降低。這可能是由于不同菌落對生物炭的利用能力以及環(huán)境因素造成的,酸桿菌是嗜酸性細(xì)菌,酸性土壤環(huán)境有利于酸桿菌門的代謝活動(dòng),而生物炭作為堿性物質(zhì)施入底泥可以提高底泥pH(圖4b),從而抑制了酸桿菌的生長,減少其在門水平優(yōu)勢細(xì)菌中的相對豐度[40]。綜合而言,向底泥添加小麥秸稈生物炭,不僅能夠改善底泥中微生物群落結(jié)構(gòu),固定底泥中的PAHs,而且微生物可以將PAHs部分降解,從而有利于養(yǎng)殖池塘底泥的修復(fù)。

    2.4 生物炭添加后底泥微生物相對豐度的變化和聚類分析

    為進(jìn)一步揭示底泥微生物的群落結(jié)構(gòu),本文選擇在屬水平上制作Heatmap圖。Heatmap圖是以顏色梯度來表征二維矩陣或表格中的數(shù)據(jù)大小,通過顏色變化來反映不同分組在各分類學(xué)水平上群落組成的相似性和差異性[41]。本文選擇相對豐度排名前20 的菌屬進(jìn)行聚類分析。

    生物炭的添加明顯改變了細(xì)菌屬水平上的相對豐度(圖5),其中,一些未分類的優(yōu)勢菌屬在整個(gè)實(shí)驗(yàn)過程中并沒有發(fā)生變化,仍為優(yōu)勢菌屬,如norank_f_Steroidobacteraceae和厭氧繩菌屬(Anaerolin?eaceae)。但也有一些菌屬初始的相對豐度較低,而后逐漸變成優(yōu)勢菌屬,例如大理石雕菌屬(Marmoricola)和鞘氨醇單胞菌(Sphingomonas),這可能是因?yàn)樗鼈兡軌蚪到馔寥乐械腜AHs,且分解化合物產(chǎn)生的養(yǎng)分有利于自身生長[42]。其他未分類的菌屬,如Ardenticate?nales、芽單胞菌科屬(Gemmatimonadaceae)、bacteri?ap25和棒狀桿菌屬(Rokubacteriales)的相對豐度出現(xiàn)了先增加后降低的趨勢,原因可能是生物炭添加為這些菌屬提供了有利的生存環(huán)境,故菌種大量繁殖,但在實(shí)驗(yàn)后期又受到氣溫影響,繁殖速度減弱,相對豐度降低。綜合而言,生物炭的添加能為底泥微生物提供更多生長發(fā)育空間,從而增加底泥微生物的Alpha 多樣性,改善原有的微生物群落結(jié)構(gòu),在實(shí)現(xiàn)底泥中有機(jī)污染物吸附固定的同時(shí),促進(jìn)底泥中部分污染物的降解。

    3 結(jié)論

    (1)添加小麥秸稈生物炭的修復(fù)期間,實(shí)驗(yàn)組中Simpson 多樣性指數(shù)先降低后逐漸升高,說明該底泥中微生物多樣性先增多后減少,Shannon 指數(shù)與Chao1 指數(shù)以及OTU 數(shù)也表現(xiàn)出微生物多樣性先增后降的趨勢。對照組中的各項(xiàng)Alpha 多樣性指數(shù)均低于實(shí)驗(yàn)組,這是由于生物炭的添加有利于微生物的生長發(fā)育,造成實(shí)驗(yàn)組中底泥微生物擁有更高的豐度和多樣性。

    (2)小麥秸稈生物炭處理?xiàng)l件下,實(shí)驗(yàn)組養(yǎng)殖底泥細(xì)菌中變形菌門(Proteobacteria)和放線菌門(Acti?nobacteria)的相對豐度顯著提高,而酸桿菌門(Acido?bacteria)和綠彎菌門(Chloroflexi)的相對豐度降低,這表明生物炭的添加可改變底泥微生物的群落結(jié)構(gòu),且有利于修復(fù)受PAHs 污染的養(yǎng)殖底泥,因?yàn)檫@些細(xì)菌能夠降解部分的PAHs化合物。

    (3)Heatmap 圖顯示,生物炭的添加使菌屬豐度增加,有助于降解養(yǎng)殖底泥中的有機(jī)污染物。

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