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    共軛亞油酸對高脂飼料誘導(dǎo)肥胖大鼠脂質(zhì)蓄積和腸道菌群的影響

    2022-01-19 08:09:02陳杰東李文榜郭福川
    食品工業(yè)科技 2022年2期
    關(guān)鍵詞:桿菌屬高脂菌群

    李 彤,黃 芳,陳杰東,李文榜,林 岱,郭福川

    (福建醫(yī)科大學(xué)公共衛(wèi)生學(xué)院,福建福州 350122)

    肥胖是一種由多因素引起的慢性代謝性疾病,其會引起一系列健康問題。隨著人們生活方式的改變,能量攝入和消耗不平衡引起肥胖患病率急劇上升。流行病學(xué)調(diào)查顯示中國成年人肥胖的患病率為14%,其中男性的患病率為14%,女性為14.1%;腹部肥胖患病率為35.1%,男性患病率為30.7%,女性為32.4%[1]。全球范圍內(nèi),目前有13億人超重或肥胖[2],肥胖已經(jīng)成為重要的全球公共衛(wèi)生問題。

    近年來,多項研究表明腸道菌群紊亂與肥胖等代謝性疾病發(fā)生發(fā)展密切相關(guān)[3?5],腸道菌群在肥胖中的作用引起人們廣泛關(guān)注。共軛亞油酸(Conjugated linoleic acid,CLA)是亞油酸的同分異構(gòu)體,是具有共軛不飽和雙鍵的亞油酸位置異構(gòu)體和幾何異構(gòu)體混合物的總稱[6]。其中cis9、trans11-CLA和trans10、cis12-CLA是兩種主要異構(gòu)體[7]。CLA的主要天然食品來源是反芻動物的肉類和乳制品[8]。有研究表明,共軛亞油酸可以在改善肥胖和脂代謝等方面發(fā)揮有益作用[9?12],但其對于肥胖的具體機制和對健康的影響還有待進一步討論。此外,CLA還可通過增強腸道免疫力,發(fā)揮調(diào)節(jié)腸道穩(wěn)態(tài)的作用[13]。另有文獻報道,腸道沙門氏菌中的跨膜組氨酸激酶受體PhoQ可作為長鏈不飽和脂肪酸(如CLA)的受體,而該受體對于沙門氏菌在腸道中的定植起到至關(guān)重要的作用[14],因此推測CLA可通過競爭受體進而影響沙門氏菌等有害菌在腸道的定植。另外一項研究發(fā)現(xiàn)接種產(chǎn)CLA的干酪乳酸菌可以預(yù)防沙門氏菌引起的腸道紊亂[15]。因此,CLA可以在一定程度上影響腸道菌群構(gòu)成,但是目前尚未見有關(guān)CLA對高脂飼料喂養(yǎng)大鼠脂質(zhì)蓄積的預(yù)防作用以及與腸道菌群關(guān)系的研究報道。本研究通過采用脂肪供能比為45%的高脂飼料誘導(dǎo)建立大鼠肥胖模型,采用預(yù)防性給予CLA灌胃的方式,觀察其對肥胖大鼠脂質(zhì)蓄積及腸道菌群構(gòu)成的影響,從而為CLA通過影響腸道菌群進而起到預(yù)防肥胖的作用機制提供線索。

    1 材料與方法

    1.1 材料與儀器

    雄性SPF級SD大鼠 40只,6周齡,體重150 g左右,福建醫(yī)科大學(xué)動物中心(福建福州,動物許可號:SCXK(閩)2016-0002);共軛亞油酸 其中c9、t11-CLA占38.6%,t10、c12-CLA占37.8%,其余異構(gòu)體占4.5%,棕櫚酸占4.0%,硬脂酸占2.5%,油酸占9.7%,亞油酸占1.9%,酸值196.9,購自青島澳海生物有限公司;總膽固醇測試盒、甘油三酯測試盒南京建成生物工程研究所;45%棕櫚油高脂飼料 南通特洛菲飼料科技有限公司(飼料代碼:TP0861A),飼料配方:普通飼料49%,酪蛋白17%,糖10%,棕櫚油20%,纖維素1%,維生素和礦物質(zhì)4%,飼料能量4.3 kcal/g,總能量占比中蛋白質(zhì)為22%,脂肪為45%,碳水化合物為33%。

    Satorius BS 224S電子天平 賽多利斯科學(xué)儀器有限公司;XB160M-SCS電子天平 瑞士Precisa公司;Z323K型臺式冷凍高速離心機 德國HERMLE公司;TG16-WS臺式高速離心機 湖南湘儀實驗室儀器開發(fā)有限公司;其林貝爾XW-80A旋渦混合器上海巴玖實業(yè)有限公司;Multisakn go酶標儀 美國賽默飛世爾科技有限公司。

    1.2 實驗方法

    1.2.1 動物分組及處理 將40只SPF級雄性SD大鼠按體重隨機分為四組,每組10只,除對照組(ND組)以普通飼料喂養(yǎng)外,其余組均以高脂飼料喂養(yǎng)。其中ND組和高脂模型組(HD組)均灌胃花生油1 g/kg;高脂共軛亞油酸低劑量組(LC組)和高脂共軛亞油酸高劑量組(HC組)分別灌胃以花生油稀釋的0.2%和2%共軛亞油酸1 g/kg BW,共干預(yù)9周。實驗期間各組大鼠自由攝食和飲水,符合福建醫(yī)科大學(xué)實驗動物倫理委員會要求。

    1.2.2 血清和肝臟生化指標測定 實驗?zāi)?,將各組大鼠禁食12 h后,使用干冰麻醉大鼠后心臟采血,血液樣本室溫靜置1 h后,3000 r/min,離心10 min,取血清樣本待測;將大鼠處死后,剖檢采集肝臟組織、腎周脂肪和睪周脂肪組織,并用電子天平測定脂肪重量;取肝臟組織樣本,加入無水乙醇制備10%的肝勻漿,冰水浴條件下進行組織勻漿,2500 r/min,離心10 min,取上清液待測,按照試劑盒說明書分別測定血清和肝臟樣本中的TC和TAG,計算各指標含量。

    1.2.3 糞便微生物提取及16S rDNA測序 實驗?zāi)o菌采集大鼠糞便,于?80 ℃保存。采集的糞便樣本委托上海百趣生物醫(yī)學(xué)科技有限公司進行糞便微生物16S rDNA測序。測序過程如下:提取樣品總DNA后,用細菌16S rRNA (V3+V4)區(qū)域引物(5'-ACTCCTACGGGAGGCAGCA-3'和5'-GGACTACH VGGGTWTCTAAT-3')進行PCR擴增,擴增條件為95 ℃預(yù)變性5 min,15個循環(huán)(95 ℃變性1 min,50 ℃退火1 min,72 ℃延伸1 min),最后72 ℃延伸7 min。獲取PCR產(chǎn)物后,用1.8%的瓊脂糖凝膠回收PCR產(chǎn)物,然后對其產(chǎn)物進行純化,純化步驟如下:樣品與磁珠按照1:1混勻后進行磁珠篩選片段,35 μL洗脫。向PCR產(chǎn)物中加入50 μL的磁珠,混勻室溫5 min后,置于磁力架上5 min,去上清;加入200 μL的80%乙醇清洗磁珠,室溫30 s后棄上清,重復(fù)此步驟一次;置磁力架上干燥3 min,用37 μL雙蒸水重懸磁珠,室溫孵育2 min,置于磁力架上2 min,吸取35 μL上清至新的PCR管中。電泳結(jié)束后,用ImageJ軟件定量。根據(jù)Illumina HiSeq 2500進行測序得到的原始圖像數(shù)據(jù)文件,經(jīng)堿基識別分析轉(zhuǎn)化為原始測序序列,結(jié)果以FASTQ文件格式存儲,其中包含測序序列的序列信息以及其對應(yīng)的測序質(zhì)量信息用于后續(xù)數(shù)據(jù)分析。

    1.3 數(shù)據(jù)處理

    采用IBM SPSS 20.0軟件對數(shù)據(jù)進行統(tǒng)計分析,結(jié)果以Xˉ±SEM表示。多組比較數(shù)據(jù)符合正態(tài)分布時,進行單因素方差分析,若方差齊則采用LSD法進行兩兩比較,若方差不齊則采用Dunnet’T3進行兩兩比較。不符合正態(tài)分布則進行非參數(shù)檢驗,檢驗水準α=0.05。

    2 結(jié)果與分析

    2.1 CLA干預(yù)對大鼠體重的影響

    如圖1A所示,4組大鼠的初始體重無顯著性差異(P>0.05)。圖2B顯示了各組的體重變化趨勢,可以看出干預(yù)期間大鼠體重逐漸增加,而HC組在干預(yù)第8周開始體重出現(xiàn)下降趨勢。干預(yù)9周后,與ND組比較,HD組大鼠體重顯著增加(P<0.05)。與HD組相比,HC組大鼠體重顯著降低(P<0.05),而LC組體重并無顯著性差異(P>0.05)。結(jié)果表明預(yù)防性給予高劑量CLA可抑制高脂飼料喂養(yǎng)大鼠體重增長。

    2.2 CLA對SD大鼠內(nèi)臟脂肪重量及血生化指標的影響

    由表1可見,與ND組相比,高脂飼料誘導(dǎo)可顯著升高大鼠腎周脂肪、睪周脂肪重量,升高血清TC和TAG水平,證實高脂模型組造模成功。與HD組相比,低劑量CLA干預(yù)對大鼠腎周脂肪、睪周脂肪重量、血清TAG、肝臟TC和肝臟TAG無顯著影響(P>0.05),但能降低血清TC水平(P<0.05);高劑量CLA干預(yù)可顯著降低大鼠腎周及睪周脂肪重量,降低血清TC、TAG和肝臟TC水平(P<0.05),但對肝臟TAG水平無顯著影響(P>0.05)。以上結(jié)果表明高劑量CLA可預(yù)防高脂飼料喂養(yǎng)引起的大鼠內(nèi)臟脂肪含量增加。此外,CLA干預(yù)后大鼠血清TC、TAG和肝臟TC水平明顯降低,說明CLA同時可預(yù)防大鼠血清TAG和TC的蓄積,該結(jié)果與其他研究的人群和動物研究結(jié)果相近[12,16?19]。

    2.3 CLA對腸道菌群多樣性及結(jié)構(gòu)的作用

    2.3.1 腸道菌群的α和β多樣性分析α多樣性反映的是單個樣品物種豐度及物種多樣性,Chao1和Ace指數(shù)是用于衡量物種豐富度的指標,Chao1和Ace指數(shù)越大,說明物種的豐富度越高。Shannon和Simpson指數(shù)用于衡量物種多樣性,Shannon指數(shù)和Simpson指數(shù)值越大,說明物種多樣性越高。由表2可見,Ace指數(shù)分析顯示,高劑量CLA的菌群多樣性指數(shù)與高脂模型組比較顯著降低(P<0.05),而低劑量CLA的菌群多樣性指數(shù)與對照組無顯著性差異(P>0.05);Chao 1指數(shù)分析顯示,高劑量CLA的菌群多樣性與高脂模型組比較顯著降低(P<0.05),而與對照組的菌群多樣性無顯著性差異(P>0.05);Shannon指數(shù)和Simpson指數(shù)顯示了各組的腸道菌群多樣性無顯著性差異(P>0.05),說明高脂飼料和CLA對腸道菌群的多樣性無明顯影響。β多樣性反映了不同組之間的豐度差異,如圖2所示,四組間β多樣性的差異具有統(tǒng)計學(xué)意義(P<0.05),高脂模型組和對照組的腸道菌群組成有顯著性差異(P<0.05),高脂模型組和高劑量CLA組的腸道菌群組成的差異具有統(tǒng)計學(xué)意義(P<0.05),說明高脂模型組和對照組的腸道菌群組成有明顯差異,且CLA可以明顯改變受到高脂飼料影響的腸道菌群組成。

    2.3.2 腸道菌群組成差異分析 為進一步分析四組腸道菌群組成差異,采用LEfSe分析進行兩兩比較,ND與HD組相比,在屬水平上,ND組的主要菌群為Alloprevotella(擬普雷沃菌屬)、Prevotellaceae_U CG_001(普雷沃氏菌科_UCG-001)、Ruminococcus_2(瘤胃球菌屬_2),HD組主要菌群為Eubacterium_coprostanoligenes_group(真桿菌屬)、Psychrobacter(嗜冷桿菌屬)、Corynebacterium_1(棒狀桿菌屬_1)、Staphylococcus(葡萄球菌屬)(圖3A);LC與HD組相比,在屬水平上,LC組的主要菌群為Roseburia(羅氏菌屬)、Leptolyngbya_PCC_6406(瘦鞘絲藻屬_PCC_6406)、uncultured_bacterium_f_Clostridium_sp__K4410_MGS_306(未分類的梭菌屬),HD組的主要菌群為Psychrobacter(嗜冷桿菌屬)、Corynebacterium_1(棒狀桿菌屬_1)、Staphylococcus(葡萄球菌屬)(圖3B);HC與HD組相比,在屬水平上,HC組的主要菌群為Ruminococcaceae_UCG_014(瘤胃球菌科_UCG_014)、Romboutsia(羅姆布茨菌屬)、Bifidobacterium(雙歧桿菌屬),HD組的主要菌群為Escherichia_shigella(大腸志賀氏桿菌屬)、Enterococcus(腸球菌屬)、Corynebacterium_1(棒狀桿菌屬_1)、Staphylococcus(葡萄球菌屬)(圖3C)。

    圖3 LEfSe分析Fig.3 LEfSe analysis

    為研究HC組與肥胖相關(guān)的菌群,進一步作如圖4所示的屬水平關(guān)鍵腸道菌群相對豐度,結(jié)果顯示,在屬水平上,HC組顯著升高了Bifidobacterium(雙歧桿菌屬)、Butyrivibrio(丁酸弧菌屬)、Ruminococcaceae_UCG_014(瘤胃球菌科_UCG_014)等的相對豐度(P<0.05),顯著降低了Corynebacterium_1(棒狀桿菌屬_1)、Staphylococcus(葡萄球菌屬)等的相對豐度。其中,Bifidobacterium(雙歧桿菌屬)、Butyrivibrio(丁酸弧菌屬)、Ruminococcaceae_UCG_014(瘤胃球菌科_UCG_014)是與短鏈脂肪酸(shortchain fatty acids,SCFA)生成有關(guān)的菌群。Agnieszka等[20]研究發(fā)現(xiàn)肥胖患者中,Bifidobacterium(雙歧桿菌屬)豐度顯著低于健康個體,并與高密度脂蛋白濃度呈正相關(guān)。其可通過產(chǎn)生SCFA,維持糖脂平衡,減少肥胖的發(fā)生發(fā)展[21]。Ruminococcaceae_UCG_014(瘤胃球菌科_UCG_014)和Butyrivibrio(丁酸弧菌屬)在緩解肥胖發(fā)生發(fā)展同樣發(fā)揮著重要的作用。Ruminococcaceae_UCG_014(瘤胃球菌科_UCG_014)是瘤胃球菌屬家族的一員,據(jù)報道該菌是SCFA的產(chǎn)生菌[22],具有緩解高脂飲食誘導(dǎo)肥胖的作用[23]。Butyrivibrio(丁酸弧菌屬)則是丁酸的產(chǎn)生菌[24],丁酸可以有效緩解肥胖[25]。以上結(jié)果表明,高劑量CLA可以顯著逆轉(zhuǎn)由于高脂飼料導(dǎo)致的腸道菌群紊亂,增加短鏈脂肪酸產(chǎn)生菌屬的相對豐度。

    圖4 屬水平關(guān)鍵腸道菌群相對豐度Fig.4 Bar plots of critical intestinal microbiota on genus level

    2.3.3 菌群相對豐度與肥胖相關(guān)指標的相關(guān)性分析將四組體重、內(nèi)臟脂肪重量和生化指標與菌門和菌屬數(shù)據(jù)作Spearman相關(guān)性分析,如圖5所示,在門水平上,Bacteroidetes(擬桿菌門)與血清TAG呈顯著正相關(guān)(P<0.05),Epsilonbacteraeota與體重和睪周脂肪呈極顯著負相關(guān)(P<0.01),Rokubacteria(棒狀桿菌門)與腎周脂肪和睪周脂肪呈顯著負相關(guān)(P<0.05),Tenericutes(軟壁菌門)與血清TC呈顯著正相關(guān)(P<0.05),F(xiàn)irmicutes(厚壁菌門)與血清TAG呈顯著負相關(guān)(P<0.05);在屬水平上,Corynebacterium_1(棒狀桿菌屬_1)與體重呈顯著正相關(guān)(P<0.05),與血清TC呈顯著正相關(guān)(P<0.01),而Bifidobacterium(雙歧桿菌屬)與血清TAG呈顯著負相關(guān)(P<0.01),其他菌群與相關(guān)指標的相關(guān)性無顯著性差異(P>0.05)。因此,Corynebacterium _1(棒狀桿菌屬_1)可能與肥胖的發(fā)生發(fā)展和血脂異常有關(guān),而Bifidobacterium(雙歧桿菌屬)能夠改善高脂飲食誘導(dǎo)的血脂異常。

    圖5 菌群與肥胖相關(guān)指標的相關(guān)性分析Fig.5 Correlation analysis between microbiota and obesity-related parameters

    3 討論與結(jié)論

    在本研究中,高劑量CLA干預(yù)可顯著降低高脂飼料喂養(yǎng)的大鼠體重和內(nèi)臟脂肪重量(P<0.05),說明CLA可預(yù)防高脂飼料誘導(dǎo)的體重和脂肪的增長。同時,CLA干預(yù)后大鼠血清TC、TAG及肝臟TC降低,說明CLA可預(yù)防體內(nèi)的甘油三酯和膽固醇的蓄積。此外,腸道菌群的結(jié)果顯示高劑量CLA可逆轉(zhuǎn)由高脂飼料導(dǎo)致的腸道菌群紊亂,主要表現(xiàn)在顯著增加產(chǎn)生短鏈脂肪酸的菌屬Bifidobacterium(雙歧桿菌屬)、Butyrivibrio(丁酸弧菌屬)、Ruminococcaceae_UCG-014(瘤胃球菌科_UCG-014)的相對豐度,這些菌群在維持腸腔厭氧環(huán)境中有關(guān)鍵作用[26]。

    此外,本研究還發(fā)現(xiàn)血清TAG和Bifidobacterium(雙歧桿菌屬)相對豐度呈極顯著負相關(guān)(P<0.01)。Chaplin A等[27]的研究表明CLA干預(yù)未逆轉(zhuǎn)高脂飼料導(dǎo)致的Bifidobacterium(雙歧桿菌屬)的降低。而本研究顯示CLA能夠顯著升高Bifidobacterium(雙歧桿菌屬)的相對豐度,可能是由于該研究采用的是C57BL/6小鼠每日灌胃6 mg/d干預(yù)54 d,與本研究的動物品系、干預(yù)劑量和干預(yù)時間不同所致。Ruminococcaceae_UCG-014(瘤胃球菌科_UCG-014)和Butyrivibrio(丁酸弧菌)在緩解肥胖發(fā)生發(fā)展同樣發(fā)揮著重要的作用。本研究顯示對照組和高脂模型組組Butyrivibrio(丁酸弧菌)的相對豐度非常低,而CLA干預(yù)后隨著劑量的升高其相對豐度越來越高,提示Butyrivibrio(丁酸弧菌)可能是CLA干預(yù)的特征菌群。以上可知,在高劑量CLA干預(yù)下,腸道中某些與SCFA產(chǎn)生的專性厭氧菌明顯增加,這可能是CLA發(fā)揮抑制肥胖和調(diào)節(jié)血糖的生理基礎(chǔ)之一。此外,兼性厭氧菌相對豐度的顯著增加是腸道菌群失調(diào)的重要特征之一[26],本研究發(fā)現(xiàn)在CLA干預(yù)后兼性厭氧菌的相對豐度明顯降低,其中由于高脂飲食誘導(dǎo)的Staphylococcus(葡萄球菌屬)、Corynebacterium_1(棒狀桿菌屬_1)等相對豐度的顯著增加可以被高劑量的CLA干預(yù)逆轉(zhuǎn)。據(jù)報道,低氧環(huán)境利于專性厭氧菌生長,它們可降解纖維生成SCFA,進而促進宿主健康[28]。另有研究發(fā)現(xiàn),SCFA刺激PPAR-γ信號傳導(dǎo),驅(qū)動結(jié)腸上皮細胞的能量代謝向β-氧化轉(zhuǎn)化,抑制腸道上皮細胞氧合作用,維持腸腔厭氧環(huán)境,形成不利于兼性厭氧菌生長的腸腔微環(huán)境[29],進而維持腸道屏障,避免脂多糖、鞭毛蛋白等有害菌群代謝產(chǎn)物入血循環(huán),抑制全身炎癥發(fā)生,這對機體糖脂穩(wěn)態(tài)至關(guān)重要[30]。因此,高劑量CLA干預(yù)后兼性厭氧菌減少可能與SCFA產(chǎn)生相關(guān)的腸道菌群明顯增加有關(guān)。

    綜上所述,CLA能夠顯著降低體重、內(nèi)臟脂肪并且改善高脂飼料導(dǎo)致的甘油三酯和膽固醇蓄積,可能與CLA重塑腸道菌群有關(guān)。經(jīng)過高劑量CLA干預(yù)后,腸道菌群中專性厭氧菌和兼性厭氧菌的相對豐度發(fā)生顯著的變化,同時與SCFA產(chǎn)生有關(guān)的菌群在高劑量的CLA干預(yù)后顯著增加,這可能是CLA發(fā)揮抑制肥胖和降低脂質(zhì)蓄積的重要生理基礎(chǔ)。同時,本研究存在一定的局限性,尚未檢測糞便中的菌群代謝物,后續(xù)實驗將進一步采用腸道菌群測序與代謝組學(xué)技術(shù)以明確CLA調(diào)節(jié)肥胖相關(guān)的菌群代謝物。

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