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    基于培養(yǎng)組學(xué)的腸道菌群培養(yǎng)及鑒定方法研究

    2022-01-14 11:38:52譚寅鳳許瀠月何抒陽周艷秋
    關(guān)鍵詞:生長

    劉 瑩,譚寅鳳,張 迎,孫 菲,許瀠月,何抒陽,周艷秋,于 苗

    (吉林市人民醫(yī)院,吉林 吉林 132001)

    隨著人類微生物組計劃的提出,腸道菌群逐漸成為微生物領(lǐng)域研究的熱點.有研究[1-2]表明:腸道菌群與人類健康及相關(guān)疾病的發(fā)生、發(fā)展密切相關(guān),因此,腸道菌群檢測及鑒定日益受到專家學(xué)者們的關(guān)注.目前,腸道菌群常用的檢測方法主要包括16S rRNA基因序列分析技術(shù)、組學(xué)(宏基因組、宏轉(zhuǎn)錄組、蛋白質(zhì)組)、代謝組學(xué)及培養(yǎng)組學(xué)等不同檢測技術(shù).16S rRNA基因序列分析技術(shù)和宏基因組測序技術(shù)均為高通量測序技術(shù),其能夠準(zhǔn)確地描述微生物群落,并且具有功能預(yù)測等特點,在科學(xué)研究中被廣泛應(yīng)用.但是高通量測序技術(shù)成本昂貴,花費時間長,技術(shù)要求高,不能辨別菌的死活,不能區(qū)分同一菌種的不同菌株[3-4],因此,臨床上開展16S rRNA基因序列分析技術(shù)和宏基因組測序技術(shù)檢測患者的腸道菌群受到限制.不同技術(shù)有不同的檢測閾值,例如宏基因組學(xué)僅能分析每克糞便含有>106數(shù)量的細(xì)菌,PCR僅能分析每克糞便含有>104數(shù)量的細(xì)菌,而培養(yǎng)組學(xué)能分析到每克糞便含有>102數(shù)量的細(xì)菌.因此,培養(yǎng)組學(xué)的研究閾值低于宏基因組學(xué)和PCR法,更加靈敏.

    腸道菌群培養(yǎng)組學(xué)技術(shù)具有簡便、實用、成本低等優(yōu)勢,LAGIER J C等[5]率先利用培養(yǎng)組學(xué)技術(shù)獲得腸道中優(yōu)勢菌群,使得腸道菌群培養(yǎng)及鑒定技術(shù)在臨床上具有潛在的應(yīng)用價值.但是目前關(guān)于人體腸道菌群培養(yǎng)條件的研究較少,并且尚未有利用光密度(optical density,OD)確定最佳細(xì)菌接種量的報道.本研究旨在探索一種適宜臨床應(yīng)用的腸道菌群培養(yǎng)及鑒定方法,并可獲得評估腸道菌群的相關(guān)量化指標(biāo),為診治腸道菌群失調(diào)、指導(dǎo)抗菌藥物應(yīng)用、制定微生態(tài)調(diào)節(jié)方案等提供參考依據(jù).

    1 實驗材料

    1.1 材料與試劑

    甲酸、乙腈(默克公司,德國);三氟乙酸(Sigma-aldrich公司,美國);IVD Bacterial Test Standard、IVD Matrix HCCA(Bruker Daltonik GmbH,德國);Gifu Anaerobic Medium(GAM,日水制藥株式會社,日本);哥倫比亞培養(yǎng)基、沙保羅培養(yǎng)基(鄭州安圖生物工程公司);Breathe-Easy?sealing membrane(Sigma-aldrich公司,美國).

    1.2 主要儀器

    Microflex LT/SH型基質(zhì)輔助激光解吸電離飛行時間質(zhì)譜儀(MADLI-TOF MS,布魯克科技有限公司,德國);BACTRONI-2型厭氧培養(yǎng)箱(SHELLAB公司,美國);Heratherm IGS100型微生物培養(yǎng)箱、371型二氧化碳培養(yǎng)箱(Thermo Fisher Scientific公司,美國);Smartcountert-1型全自動菌落計數(shù)器(廣東環(huán)凱微生物科技有限公司);SYNERGY H1型多功能微孔板檢測儀(BioTek公司,美國);ULUP-IV-40L型超純水機(四川優(yōu)普超純科技有限公司).

    2 實驗方法

    2.1 培養(yǎng)基的選擇及制備

    厭氧菌培養(yǎng)選擇GAM(用于厭氧菌培養(yǎng)和抗菌藥物敏感性試驗的培養(yǎng)基),準(zhǔn)確稱取9.25 g的GAM粉末于燒瓶中,并加入125 mL去離子水完全溶解,115 ℃高壓滅菌15 min,當(dāng)高壓滅菌器溫度降至90 ℃左右時,制作厭氧培養(yǎng)基平板,放入?yún)捬跖囵B(yǎng)室中過夜,除氧備用[6-7].需氧菌培養(yǎng)選擇哥倫比亞培養(yǎng)基[8-9],真菌培養(yǎng)選擇沙保羅培養(yǎng)基[9-10],培養(yǎng)皿的直徑均為90 mm.厭氧菌[11]、需氧菌[12]、真菌[13]的培養(yǎng)溫度均為37 ℃,厭氧環(huán)境為混合氣體(90%N2,5%CO2,5%H2).

    2.2 標(biāo)準(zhǔn)菌株的培養(yǎng)

    2.2.1 標(biāo)準(zhǔn)菌株的選擇

    選擇49種厭氧菌和20種需氧菌,對其進行菌種生長能力的監(jiān)測,制作生長曲線,確定厭氧菌培養(yǎng)時間和需氧菌培養(yǎng)時間.所選菌種覆蓋人體腸道菌群的5大優(yōu)勢菌門,即擬桿菌門、厚壁菌門、變形菌門、放線菌門和梭桿菌門.所有菌種均在-80 ℃冰箱中保存.

    2.2.2 厭氧菌和需氧菌培養(yǎng)時間

    監(jiān)測49種厭氧菌標(biāo)準(zhǔn)菌株和一個厭氧菌標(biāo)準(zhǔn)菌株混合菌、20種需氧菌標(biāo)準(zhǔn)菌株和一個需氧菌標(biāo)準(zhǔn)菌株混合菌的生長能力.挑取1~4個菌落置于4 mL GAM中,充分振蕩混勻,10倍稀釋,設(shè)為3個不同的濃度,每個濃度設(shè)置3個平行孔,每個濃度取500 μL接種到96孔培養(yǎng)板中,每塊培養(yǎng)板上設(shè)置6個陰性對照孔,培養(yǎng)板使用呼吸膜密封(Breathe-Easy?sealing membrane),放入?yún)捬跖囵B(yǎng)箱中培養(yǎng).通過檢測光密度(OD600)監(jiān)測細(xì)菌生長趨勢,總監(jiān)測時長為48 h.

    2.3 臨床應(yīng)用

    2.3.1 臨床資料及標(biāo)本采集

    選取吉林市人民醫(yī)院2019年10月—2020年3月20例健康志愿者(對照組),腸道菌群檢測前1周內(nèi)應(yīng)用抗菌藥物治療的162例患者(實驗組)進行接種細(xì)菌數(shù)的研究,比較兩組人群的腸道菌群.所選研究對象均需簽署知情同意書,并經(jīng)過醫(yī)院倫理委員會審核通過.用無菌糞便標(biāo)本采集盒中的小勺挑取自然排出的新鮮糞便的不同部位約1 g,放入無菌糞便標(biāo)本采集盒中送檢.

    對照組篩選標(biāo)準(zhǔn):經(jīng)身體檢查無相關(guān)臨床疾病癥狀,無腸道相關(guān)疾病病史;采樣前1個月內(nèi)無腹瀉和便秘史;采樣前3個月內(nèi)未服用過抗菌藥物和微生態(tài)調(diào)節(jié)劑.

    2.3.2 標(biāo)本接種、菌落計數(shù)及菌種鑒定

    接種細(xì)菌數(shù):稱取100~150 mg新鮮糞便標(biāo)本,加入4 mL 0.9%的無菌生理鹽水(原液),渦旋振蕩充分混勻,用無菌生理鹽水將原液分別稀釋至OD600值為0.060、0.045和0.030進行厭氧菌培養(yǎng),接種量為5 μL;將原液分別稀釋至OD600值為0.070、0.050和0.030進行需氧菌培養(yǎng),真菌培養(yǎng)接種原液接種量為50 μL.觀察生長的菌落數(shù),菌落計數(shù)采用全自動菌落計數(shù)器.

    接種時間:稱取100~150 mg新鮮糞便標(biāo)本,加入4 mL 0.9%的無菌生理鹽水(原液),渦旋振蕩充分混勻,用無菌生理鹽水將原液稀釋至最佳OD600值,然后將5 μL稀釋的原液接種到GAM上,分別于0、1、2、3 h時接種培養(yǎng),每個時間點設(shè)3個平行樣,放入?yún)捬跖囵B(yǎng)箱中培養(yǎng).菌落計數(shù)采用全自動菌落計數(shù)器,菌種鑒定采用MADLI-TOF MS.

    菌落計數(shù):培養(yǎng)后生長的菌落均采用全自動菌落計數(shù)器計數(shù).

    菌種鑒定:培養(yǎng)后生長的菌落種類均采用MADLI-TOF MS進行鑒定.用無菌牙簽挑取單個菌落,均勻涂布在靶板孔上,自然晾干,每個靶板孔加1 μL甲酸,自然晾干,然后每個靶板孔加1 μL基質(zhì)液,自然晾干后上機鑒定.

    2.4 統(tǒng)計學(xué)分析

    3 結(jié) 果

    3.1 厭氧菌和需氧菌培養(yǎng)時間

    49種厭氧菌和一個混合厭氧菌中90%以上的菌種在36 h內(nèi)到達(dá)生長平臺期(見圖1 a~d);20種需氧菌和一個混合需氧菌中90%以上的菌種在18 h內(nèi)到達(dá)生長平臺期(見圖1 e~f).

    a~d.厭氧菌生長曲線;e~f.需氧菌生長曲線.圖1 各菌種生長曲線Fig.1 Growth curve of each strain

    3.2 接種細(xì)菌數(shù)

    厭氧培養(yǎng)條件下,OD600值為0.060時,生長的菌落數(shù)無法進行精確計數(shù),OD600值為0.045時,生長的菌落數(shù)為(462.65±25.86) cfu;OD600值為0.030時,生長的菌落數(shù)為(348.75±38.54)cfu;兩組比較差異具有統(tǒng)計學(xué)意義(P<0.001);需氧培養(yǎng)條件下,OD600值為0.070時,生長的菌落數(shù)無法進行精確計數(shù),OD600值為0.050時,生長的菌落數(shù)為(444.50±23.77)cfu;OD600值為0.030時,生長的菌落數(shù)為(339.35±21.76)cfu;兩組比較差異具有統(tǒng)計學(xué)意義(P<0.001).見表1.

    表1 厭氧菌和需氧菌在不同OD600值培養(yǎng)生長的菌落數(shù)Tab.1 Colony numbers of anaerobic bacteria and aerobic bacteria cultured in different OD600

    3.3 標(biāo)本采集后的不同接種時間

    標(biāo)本留取后分別于0、1、2、3 h時接種培養(yǎng),0、1、2 h菌落數(shù)和種類多于3 h的菌落數(shù)和種類,差異具有統(tǒng)計學(xué)意義(P<0.05),0、1、2 h 3組間比較差異均無統(tǒng)計學(xué)意義(P>0.05).見圖2.

    *、#.P<0.05.圖2 標(biāo)本不同留置時間培養(yǎng)生長的菌落數(shù)和種類數(shù)Fig.2 Number of colonies and species in different indwelling time

    3.4 兩組患者的腸道菌群相關(guān)量化指標(biāo)

    對照組總菌數(shù)、厭氧菌數(shù)/需氧菌數(shù)、革蘭陰性菌(G-菌)/革蘭陽性菌(G+菌)、桿菌/球菌、益生菌占比高于抗菌藥物組,而真菌數(shù)低于抗菌藥物組,差異具有統(tǒng)計學(xué)意義(P<0.001).見表2.

    表2 兩組患者的腸道菌群相關(guān)量化指標(biāo)分析Tab.2 Quantitative indexes of gut microbiota in two groups

    3.5 部分菌種的MADLI-TOF MS鑒定質(zhì)譜圖

    部分菌種的核糖體蛋白特征性質(zhì)譜峰構(gòu)成該微生物的指紋圖譜,用于該菌鑒定.見圖3.

    圖3 部分菌種的MADLI-TOF MS鑒定質(zhì)譜Fig.3 Mass spectra of MADLI-TOF MS for identification of some strains

    4 討 論

    微生物培養(yǎng)法歷史悠久,而建立一種更適合于臨床應(yīng)用的腸道菌群優(yōu)化培養(yǎng)方法顯得尤為重要.本研究通過改進培養(yǎng)組學(xué)方法,獲得一種更適宜臨床應(yīng)用的腸道菌群培養(yǎng)及鑒定方法.

    由于受生活習(xí)慣、營養(yǎng)狀況、性別、疾病情況、治療用藥等因素影響,使得個體間腸道菌群含量差別較大,因此,探索一種適合不同個體間細(xì)菌的接種數(shù)量是十分必要的.基于培養(yǎng)組學(xué)的腸道菌群培養(yǎng)及鑒定方法首次提出采用檢測樣本以O(shè)D600值確定接種數(shù)量,可顯著減少不同樣本間的接種誤差:培養(yǎng)人體腸道中的厭氧菌、需氧菌和真菌,并可獲得評估腸道菌群的相關(guān)量化指標(biāo),如細(xì)菌總數(shù)、厭氧菌數(shù)/需氧菌數(shù)、G-菌/G+菌、桿菌/球菌、益生菌占比等,能夠更全面地反映腸道菌群的特征,對于診斷腸道菌群失調(diào)、制定個性化微生態(tài)調(diào)節(jié)方案、指導(dǎo)臨床抗菌藥物的應(yīng)用具有重要意義,可為臨床診療提供一定的參考依據(jù).基于培養(yǎng)組學(xué)的腸道菌群培養(yǎng)及鑒定方法具有操作簡便、成本低、準(zhǔn)確率高和鑒定迅速等特點,尤其在價格上僅為16S rRNA 基因測序技術(shù)的百分之一,更具有臨床應(yīng)用價值.基于培養(yǎng)組學(xué)的腸道菌群培養(yǎng)及鑒定方法有利于發(fā)現(xiàn)新菌種,并為種或亞種的代謝特征、菌株之間的競爭抑制與協(xié)同作用、菌株與宿主關(guān)系等方面的研究提供活的菌株,為研究特定菌株在疾病發(fā)生、發(fā)展中的作用機制等后續(xù)延展性研究奠定基礎(chǔ).

    有研究[6]表明:GAM是一種主要用于厭氧菌培養(yǎng)和抗菌藥物敏感性試驗的培養(yǎng)基,可作為一種標(biāo)準(zhǔn)培養(yǎng)基培養(yǎng)人體腸道中的優(yōu)勢菌,對培養(yǎng)人腸道菌群具有較高的應(yīng)用價值,此外,GAM無須補充馬血或羊血,經(jīng)高壓滅菌后仍然為透明狀態(tài),有利于應(yīng)用全自動菌落計數(shù)器計數(shù),并且容易檢測不同時間點的OD600值,能夠很好地監(jiān)測各菌種的生長特性等.哥倫比亞培養(yǎng)基在基礎(chǔ)培養(yǎng)基上額外加入了動物血,營養(yǎng)豐富,可培養(yǎng)并分離多種代謝類型的微生物,各種樣本均適用[8].臨床上由真菌引起的感染逐年增多,沙保羅培養(yǎng)基是臨床上培養(yǎng)真菌的常用培養(yǎng)基,可培養(yǎng)多種類型的真菌,如念珠菌、酵母菌、霉菌等[13].本研究已經(jīng)通過預(yù)試驗排除了由于營養(yǎng)物質(zhì)缺乏對生長平臺期的影響.在厭氧條件下,49種厭氧菌中90%以上的菌種在36 h內(nèi)到達(dá)生長平臺期,故厭氧菌的培養(yǎng)時間選擇36~48 h;需氧條件下,20種需氧菌中90%以上的菌種在18 h內(nèi)到達(dá)生長平臺期,故需氧菌的培養(yǎng)時間選擇18~24 h.常規(guī)臨床真菌培養(yǎng)為18~24 h,故本研究選擇上述時間作為培養(yǎng)真菌的最佳時間[14].考慮到菌種之間的生長抑制和協(xié)同作用,本研究通過監(jiān)測菌種混合后其生長情況,觀察到厭氧混合菌和需氧混合菌分別在36 h和18 h內(nèi)也到達(dá)了生長平臺期.

    本研究結(jié)果顯示:生長的菌落覆蓋整個培養(yǎng)基且菌落之間不相連,為最佳的接種數(shù)量.厭氧菌在接種5 μL時,OD600為0.045的樣本生長菌落數(shù)最多,并且可以精確計數(shù);而需氧菌在接種50 μL時,OD600為0.050時可出現(xiàn)上述情況,因此,本研究將厭氧菌和需氧菌的最佳接種OD600值設(shè)置為0.045(5 μL)和0.050(50 μL).健康人糞便中的真菌數(shù)量遠(yuǎn)遠(yuǎn)低于細(xì)菌數(shù)量,數(shù)量約為細(xì)菌數(shù)量的一半,故本研究中真菌培養(yǎng)選擇接種原液.糞便中的部分菌種對氧或溫度等條件敏感,因此,糞便留置時間會對細(xì)菌總數(shù)及種類產(chǎn)生影響[15-16].本研究發(fā)現(xiàn):在2 h內(nèi),隨著標(biāo)本留置時間的延長,培養(yǎng)出的細(xì)菌種類數(shù)和數(shù)量均呈下降趨勢,但差異無統(tǒng)計學(xué)意義(P>0.05);而標(biāo)本留置時間延長至3 h接種,其生長的數(shù)量和種類進一步減少,與2 h內(nèi)比較差異具有統(tǒng)計學(xué)意義(P<0.05),故標(biāo)本留取后需2 h內(nèi)接種培養(yǎng).

    抗菌藥物會引起腸道菌群失調(diào),主要以數(shù)量、種類和功能多樣性的減少、抵抗病原體入侵的能力降低為特征[17].JERNBERG C等[18]研究顯示:應(yīng)用克林霉素后厭氧菌減少、G+菌升高,可能導(dǎo)致總菌數(shù)、厭氧菌數(shù)/需氧菌數(shù)、G-菌/G+菌、益生菌占比降低,應(yīng)用環(huán)丙沙星后腸桿菌科減少,可能導(dǎo)致桿菌/球菌降低,與本研究結(jié)果類似.本研究培養(yǎng)出的細(xì)菌總數(shù)為109~1010cfu/g,與RETTEDAL E A等[7]的研究結(jié)果一致.應(yīng)用抗菌藥物導(dǎo)致腸道菌群失調(diào),真菌感染的機會增加,糞便中培養(yǎng)出真菌的數(shù)量增加,與王慮等[19]的研究一致.為獲得較高的鑒定率,在操作過程中要挑取單個菌落,為防止涂布混菌,挑取菌落的量要適宜,涂布不宜過厚或過薄,涂布要均勻,靶板要清洗干凈;同時,菌種的蛋白質(zhì)圖譜庫要及時更新.未被鑒定出或未被準(zhǔn)確鑒定時,可采用甲酸提取法處理.若仍未被準(zhǔn)確鑒定,將菌種凍存以備后續(xù)測序用.本研究建立的人類腸道微生物培養(yǎng)組學(xué)法可培養(yǎng)鑒定出人體腸道中的優(yōu)勢菌,并可獲得評估腸道菌群的相關(guān)量化指標(biāo),成本低,操作簡便,對于診治腸道菌群失調(diào)、指導(dǎo)抗菌藥物應(yīng)用具有臨床價值.

    本研究也存在一定的局限性,由于選取的人群樣本量有限,市售的培養(yǎng)基和機器鑒定通量的限制,尚不能培養(yǎng)及鑒定人體所有的腸道微生物;操作中也會產(chǎn)生誤差,如稀釋誤差、涂布丟失、未被準(zhǔn)確鑒定等.此外,本研究中對真菌的研究也不夠深入,在后續(xù)的研究中,將加大樣本量,重點研究真菌的培養(yǎng)及鑒定,以探索人體腸道菌群的更真實、準(zhǔn)確的特征,為臨床診斷腸道菌群相關(guān)疾病提供參考依據(jù).

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