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    地涌金蓮酵素的發(fā)酵工藝及其抗氧化活性研究

    2021-12-31 02:55:34劉曉雪李瑞杰彭婉芊白忠彬田洋宋爽
    食品工業(yè) 2021年12期
    關(guān)鍵詞:金蓮酵素培養(yǎng)箱

    劉曉雪,李瑞杰,彭婉芊,白忠彬,田洋*,宋爽*

    1. 云南農(nóng)業(yè)大學(xué)食品科學(xué)技術(shù)學(xué)院(昆明 650201);2. 國家辣木加工技術(shù)研發(fā)專業(yè)中心(昆明 650201);3. 云南省生物大數(shù)據(jù)重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室(昆明 650201)

    地涌金蓮,拉丁學(xué)名Musella lasiocarpa(Franch.)C.Y. Wu ex H. W. Li,原產(chǎn)于中國云南省,是中國特產(chǎn)花卉[1]。其可用于藥用[2]、食用、飼料[3-4]、觀賞、造紙、紡織、水土保持及生態(tài)修復(fù)等[5-9]。由于人工合成的抗氧化劑對生物體有潛在的致癌、致畸變[10],而天然性功能食品不僅具有良好的抗氧化和清除自由基能力,而且對機(jī)體沒有任何毒副作用,使之成為抗氧化活性物質(zhì)領(lǐng)域研究的新方向。

    酵素(enzyme)是一類風(fēng)靡我國的植物保健食品[11],其主要功能包含幫助體內(nèi)廢物排出、消炎作用、抗菌作用、凈化血液、促進(jìn)細(xì)胞新生等[12-15]。作為一類保健產(chǎn)品以其天然、無副作用的特點(diǎn)廣受追捧,相關(guān)研究證明酵素有增加消化酶及降脂的效果[16-18]。也有研究表明酵素具有增強(qiáng)抗氧化能力及提高免疫力作用等[19-21]。我國對酵素的研究還比較匱乏,并未對其進(jìn)行充分的開發(fā)和利用[22]。因此,試驗(yàn)通過對地涌金蓮發(fā)酵后的細(xì)胞抗氧化及對細(xì)胞受損模型的保護(hù)作用進(jìn)行研究,評價(jià)地涌金蓮酵素的保健功效,以體現(xiàn)地涌金蓮開發(fā)保健食品價(jià)值。

    1 材料與方法

    1.1 材料與儀器

    地涌金蓮(云南晉寧縣地區(qū));植物乳桿菌(廣東省微生物菌種保藏中心);人肝癌株細(xì)胞(Hep-G2,上海名勁生物科技有限公司);DMEM高糖培養(yǎng)基(美國Gibco公司);胎牛血清(FBS,美國Hyclon公司);胰蛋白酶(美國Amresco公司);磷酸緩沖溶液(PBS)、四甲基偶氮唑鹽(MTT),均為美國Amresco公司;二甲基亞砜(DMSO)、雙抗,均為美國Amresco公司;無水乙醇、四氯化碳(均為天津市風(fēng)船化學(xué)試劑科技有限公司);沒食子酸(上海索萊寶生物科技有限公司)。

    二氧化碳培養(yǎng)箱[美國熱力(Thermo)公司];多功能酶標(biāo)儀[賽默飛世爾科技(中國)有限公司];80-2低速離心機(jī)(常州澳華儀器有限公司);UBT3000生化培養(yǎng)箱(上海一恒科學(xué)儀器有限公司)。

    1.2 試驗(yàn)方法

    1.2.1 地涌金蓮原汁液發(fā)酵工藝的研究

    1.2.1.1 地涌金蓮原汁液發(fā)酵工藝流程

    原料選擇與處理→成分配比→混勻→接種前滅菌→接種乳酸菌→發(fā)酵→發(fā)酵液→離心→過濾→成品

    1.2.1.2 操作要點(diǎn)

    1.2.1.2.1 原料選擇與處理

    選用云南省晉寧縣優(yōu)質(zhì)地涌金蓮,將地涌金蓮榨成的汁液與純凈水按照一定的體積比例混合,并攪拌均勻,成為原料液待用。

    1.2.1.2.2 滅菌

    將置于大錐形瓶中并用封口膜密封好的發(fā)酵原料液于121 ℃滅菌30 min,用冰水以水浴的方法將發(fā)酵原料液快速冷卻到4~5 ℃,置于潔凈工作臺(tái)。

    1.2.1.2.3 發(fā)酵

    將活化選育的乳酸菌按2%菌種量接種到滅菌后的發(fā)酵原料液中,用封口膜密封好搖勻,于37 ℃恒溫生化培養(yǎng)箱中進(jìn)行發(fā)酵[23]。

    1.2.2 地涌金蓮酵素發(fā)酵工藝試驗(yàn)設(shè)計(jì)

    1.2.2.1 工藝條件優(yōu)化單因素試驗(yàn)

    在植物乳桿菌添加量2%的條件下,對料液比(1∶9,2∶8和3∶7 g/mL)、發(fā)酵時(shí)間(2,3和4 d)、發(fā)酵溫度(30,33和35 ℃)進(jìn)行單因素試驗(yàn),以感官評分為指標(biāo),確定最適工藝參數(shù)。

    1.2.2.2 工藝條件優(yōu)化正交試驗(yàn)設(shè)計(jì)

    從單因素發(fā)酵試驗(yàn)過程中初步確定3個(gè)因素的最優(yōu)工藝范圍,為提高產(chǎn)品品質(zhì)和產(chǎn)量,確定發(fā)酵過程中各個(gè)參數(shù)的最優(yōu)工藝條件。以感官評價(jià)分?jǐn)?shù)作為考察指標(biāo),設(shè)計(jì)正交試驗(yàn)(如表1)并進(jìn)行分析,得到發(fā)酵的最優(yōu)工藝參數(shù)。

    表1 L9(33)地涌金蓮酵素發(fā)酵正交試驗(yàn)設(shè)計(jì)

    1.2.3 感官評定測定

    感官評價(jià)邀請從事食品產(chǎn)品開發(fā)相關(guān)人員及其他實(shí)驗(yàn)室非食品專業(yè)同學(xué)共計(jì)20人,對地涌金蓮酵素的風(fēng)味、口感、色澤、澄清度4個(gè)評價(jià)指標(biāo)進(jìn)行感官評分,參加感官評價(jià)的人員在評價(jià)前6 h內(nèi)未曾食用具有辛辣刺激的飲食,評分具有可信性。

    表2 地涌金蓮酵素感官評分標(biāo)準(zhǔn)

    1.2.4 抗氧化活性試驗(yàn)

    參照文獻(xiàn)[23]進(jìn)行,略加改進(jìn)。取ABTS(7 mmoL/L)與過硫酸鉀(2.45 moL/L)按1∶1比例充分混合均勻后,室溫避光放置12~16 h,得到ABTS+·自由基儲(chǔ)備液,備用,使用時(shí)用無水乙醇稀釋40~50倍得到工作液(吸光度在0.68~0.72之間),該工作液在30 ℃,734 nm波長下吸光度為0.70±0.02(乙醇調(diào)零)。用移液槍吸取100 μL多酚粗提物,加入3.8 mL ABTS+工作液,室溫下放置6 min,用甲醇作為空白,在紫外可見分光光度630 nm下測定樣品的吸光度[27],據(jù)式(1)計(jì)算清除率,并計(jì)算出EC50(半數(shù)抑制率)。

    1.2.4.2 DPPH自由基清除活性測定

    參照文獻(xiàn)[23]進(jìn)行,略加改進(jìn)。準(zhǔn)確稱取0.8 mg DPPH,用乙醇溶解,定容至燒杯(200 mL)中,配成濃度1 mmol/L的DPPH母液。測定時(shí)用乙醇稀釋10倍配成0.1 mol/L的DPPH反應(yīng)液。用移液槍吸取1 mL多酚粗提液,添加4 mL濃度0.1 mol/L DPPH反應(yīng)液,充分搖勻后,暗處放置30 min,用甲醇作為空白,在520 nm波長下測吸光度[27],據(jù)式(1)計(jì)算清除率,并計(jì)算EC50值。

    1.2.4.3 MTT法建立CH3CH2OH和CCl4氧化損傷模型

    將人肝癌Hep-G2細(xì)胞按2.0×104cells/孔的濃度接種到2個(gè)96孔板,置于37 ℃、5% CO2培養(yǎng)箱中培養(yǎng)24 h,細(xì)胞貼壁生長后,棄去上清液,將細(xì)胞分為正常對照組、不同濃度的CH3CH2OH模型組1和不同濃度的CCl4模型組2,正常對照組加入100% DMEM(含1%雙抗)培養(yǎng)液,模型組1分別加入含CH3CH2OH不同濃度的培養(yǎng)基,模型組2加入含CCl4不同濃度的培養(yǎng)基,培養(yǎng)12 h。建模結(jié)束后,加入質(zhì)量濃度5 mg/mL的MTT溶液,每孔20 μL,繼續(xù)置于培養(yǎng)箱中培養(yǎng)4 h,終止培養(yǎng),小心吸棄孔內(nèi)上清液,加入DMSO,每孔200 μL,振蕩10 min,492 nm波長下測定吸光度,并計(jì)算細(xì)胞存活率。選取細(xì)胞相對存活率在50%左右的CH3CH2OH和CCl4致?lián)p濃度,作為后續(xù)試驗(yàn)對肝細(xì)胞的損傷濃度。

    1.2.4.4 地涌金蓮對損傷細(xì)胞的保護(hù)作用

    接細(xì)胞見1.2.4.3小節(jié)。分別加入含不同濃度樣品的培養(yǎng)液,每個(gè)濃度設(shè)6個(gè)復(fù)孔,每孔200 μL,設(shè)置對照組、損傷組和保護(hù)組,對照組用100% DMEM培養(yǎng)液,損傷組和保護(hù)組都分別加入4%濃度的CH3CH2OH培養(yǎng)液和5 mmol/L濃度的CCl4培養(yǎng)液,繼續(xù)培養(yǎng)12 h;12 h后,保護(hù)組加入不同濃度的地涌金蓮酵素,加樣品后置于CO2培養(yǎng)箱中培養(yǎng)12 h,加入MTT溶液(5 mg/mL),每孔20 μL,置于培養(yǎng)箱中繼續(xù)培養(yǎng)4 h,棄上清液后加入DMSO,每孔200 μL,振蕩10 min,選擇492 nm波長,在酶標(biāo)儀上測定各孔吸光度(OD值),10 min內(nèi)測定完成后計(jì)算細(xì)胞相對存活率。

    1.3 數(shù)據(jù)處理

    每個(gè)試驗(yàn)重復(fù)3次,試驗(yàn)結(jié)果用“均數(shù)±標(biāo)準(zhǔn)差”表示。數(shù)據(jù)結(jié)果采用Excel 2007軟件進(jìn)行分析,帶入Graphpad prism5軟件進(jìn)行繪制柱形圖和分析顯著性差異。

    礦區(qū)內(nèi)以往工作求得333+334類多金屬礦石量為120.337萬噸,金屬量為45 289 t,其中銅為13 094 t、鉛為16 747 t、鋅為15 448 t、硫?yàn)?44 901 t,可達(dá)小型規(guī)模。目前江西省地勘基金和中央地勘基金在礦區(qū)內(nèi)聯(lián)合開展工作,找礦工作已取得一定的進(jìn)展,在15線、20線、36線、40線均發(fā)現(xiàn)多層銅礦體,其厚度為1~18.36 m,銅品位為0.27%~13.3%,往深部礦體有變厚變富的趨勢。

    2 結(jié)果與分析

    2.1 地涌金蓮酵素的工藝條件優(yōu)化單因素結(jié)果

    2.1.1 料液比對地涌金蓮酵素發(fā)酵的影響

    在植物乳桿菌添加量2%、發(fā)酵溫度35 ℃、發(fā)酵時(shí)間4 d的條件下,調(diào)節(jié)料液比,設(shè)置3個(gè)不同料液比的組分,分別為1∶9,2∶8和3∶7 g/mL,每個(gè)組分設(shè)置3個(gè)平行,進(jìn)行發(fā)酵,結(jié)果得出不同料液比對地涌金蓮感官評分有明顯影響,且料液比3∶7 g/mL時(shí),感官評分最高。

    圖1 料液比對地涌金蓮發(fā)酵的影響

    2.1.2 發(fā)酵時(shí)間對地涌金蓮發(fā)酵的影響

    在料液比3∶7 g/mL、植物乳桿菌添加量2%、發(fā)酵溫度35 ℃的條件下,調(diào)節(jié)發(fā)酵時(shí)間,設(shè)置3個(gè)不同發(fā)酵時(shí)間的組分,分別為2,3和4 d,每個(gè)組分設(shè)置3個(gè)平行,進(jìn)行發(fā)酵,以多感官評價(jià)為考察指標(biāo),得出發(fā)酵時(shí)間4 d的感官評分最高。

    圖2 發(fā)酵時(shí)間對地涌金蓮發(fā)酵的影響

    2.1.3 發(fā)酵溫度對地涌金蓮酵素的影響

    在料液比3∶7 g/mL、植物乳桿菌添加量2%、發(fā)酵時(shí)間4 d的條件下,調(diào)節(jié)發(fā)酵溫度,設(shè)置3個(gè)不同發(fā)酵溫度的組分,分別為30,33和35 ℃,每個(gè)組分設(shè)置3個(gè)平行,以感官評價(jià)為考察指標(biāo)進(jìn)行分析,得出發(fā)酵溫度33 ℃時(shí)感官評分最高。

    2.2 地涌金蓮酵素的工藝條件優(yōu)化正交試驗(yàn)設(shè)計(jì)及結(jié)果

    在單因素結(jié)果基礎(chǔ)上,采用正交試驗(yàn)法,以地涌金蓮發(fā)酵飲料的感官評價(jià)分?jǐn)?shù)為指標(biāo),對其料液比、發(fā)酵溫度、發(fā)酵時(shí)間3個(gè)因素進(jìn)行考察,根據(jù)正交試驗(yàn)表L9(33)進(jìn)行試驗(yàn),篩選出最佳提取工藝條件。

    由表3正交試驗(yàn)結(jié)果可知,三因素對地涌金蓮發(fā)酵效率的影響的主次關(guān)系依次是RB>RA>RC,即地涌金蓮發(fā)酵過程中,發(fā)酵時(shí)間>料液比>發(fā)酵溫度。比較各ki值可知,發(fā)酵的最佳工藝組合為B3A3C2,即發(fā)酵時(shí)間4 d、料液比3∶7 g/mL、發(fā)酵溫度33 ℃,該組合在試驗(yàn)組中,得到的感官評價(jià)平均分?jǐn)?shù)為83分。

    圖3 發(fā)酵溫度對地涌金蓮發(fā)酵的影響

    表3 地涌金蓮酵素正交試驗(yàn)表

    2.3 地涌金蓮酵素的抗氧化活性

    由表4可知,地涌金蓮酵素隨著質(zhì)量濃度的增加(25~200 μg/mL),ABTS自由基清除率逐漸上升,沒食子酸當(dāng)量濃度也隨之上升。經(jīng)計(jì)算,地涌金蓮酵素EC50約57 μg/mL,沒食子酸約101 μg/mL,證明地涌金蓮酵素對ABTS自由基具有一定清除能力,且清除效果強(qiáng)于沒食子酸。

    表4 地涌金蓮酵素對ABTS自由基的清除作用(±s)

    表4 地涌金蓮酵素對ABTS自由基的清除作用(±s)

    濃度/(μg·mL-1) 清除率/% 沒食子酸當(dāng)量質(zhì)量濃度/(μg·mL-1)25 23.06±6.45 40.89±3.62 50 48.25±5.37 78.47±5.41 100 79.06±8.53 143.16±10.89 200 93.21±9.82 208.36±12.78地涌金蓮酵素質(zhì)量

    由表5可知,地涌金蓮酵素清除DPPH自由基的清除也隨著濃度的增加而升高,相對沒食子酸當(dāng)量濃度也增加,與ABTS的試驗(yàn)結(jié)果相似。酵素和沒食子酸的EC50分別約33和87 μg/mL,證明地涌金蓮酵素對DPPH自由基也具有一定清除能力,且清除效果明顯強(qiáng)于沒食子酸。

    表5 地涌金蓮酵素對DPPH自由基的清除作用(±s)

    表5 地涌金蓮酵素對DPPH自由基的清除作用(±s)

    濃度/(μg·mL-1) 清除率/% 沒食子酸當(dāng)量質(zhì)量濃度/(μg·mL-1)25 30.82±4.82 33.45±7.87 50 62.74±3.58 74.36±10.66 100 93.21±8.28 150.61±8.49 200 120.36±7.64 215.94±8.65地涌金蓮酵素質(zhì)量

    2.4 Hep-G2細(xì)胞CH3CH2OH和CCl4氧化損傷模型建立

    由不同濃度CH3CH2OH和CCl4培養(yǎng)12 h后的Hep-G2細(xì)胞活性測定結(jié)果(圖4)可知,隨著CH3CH2OH和CCl4濃度增加,細(xì)胞相對存活率逐漸下降,濃度8%和8 mmol/L時(shí),存活率僅有12.98%和34.14%,大部分死亡,說明Hep-G2細(xì)胞對CH3CH2OH和CCl4較為敏感,用CH3CH2OH和CCl4建立Hep-G2細(xì)胞的氧化損傷模型是可行的。CH3CH2OH和CCl4濃度為4%和5 mmol/L時(shí),兩細(xì)胞的存活率與正常對照組差異顯著,分別為55.20%和52.96%,接近50%~60%,因此選取該濃度作為建立后續(xù)Hep-G2細(xì)胞的氧化損傷模型。

    圖4 不同濃度CH3CH2OH和CCl4對Hep-G2細(xì)胞活力影響

    2.5 地涌金蓮酵素對CH3CH2OH和CCl4氧化損傷細(xì)胞的保護(hù)作用

    通過圖5可知,在相同CH3CH2OH濃度(4%)和CCl4濃度(5 mmol/L)致?lián)p下,模型組的Hep-G2細(xì)胞存活率分別只有56.49%±9.23%和51.66%±14.43%,但是加入不同濃度的地涌金蓮酵素與其共同作用后發(fā)現(xiàn)細(xì)胞存活率均高于模型組值,即地涌金蓮酵素可有效降低CH3CH2OH和CCl4誘導(dǎo)Hep-G2細(xì)胞的氧化損傷作用。但是地涌金蓮酵素并不是隨著濃度的升高,對細(xì)胞的保護(hù)作用增強(qiáng),這說明不同濃度地涌金蓮酵素與氧化損傷劑之間可能存在對抗作用,而地涌金蓮酵素卻能起到很好的抗氧化作用。

    圖5 不同濃度地涌金蓮酵素對Hep-G2損傷細(xì)胞的保護(hù)作用

    3 結(jié)論

    地涌金蓮原料液發(fā)酵的最佳工藝條件是料液比1∶3 g/mL(25%)、植物乳桿菌添加量2%、發(fā)酵溫度37 ℃、發(fā)酵時(shí)間4 d,最優(yōu)條件下得到的感官評價(jià)分?jǐn)?shù)是83分。地涌金蓮酵素風(fēng)味獨(dú)特,清爽無異味,口感柔滑,酸度適宜,回味較醇厚,色澤呈淡黃色,色澤較為誘人,較澄清透明,無沉淀,綜合得分83分。地涌金蓮發(fā)酵液對ABTS和DPPH自由基均有一定清除能力,CH3CH2OH和CCl4建立的氧化損傷體外模型在統(tǒng)一處理12 h后,Hep-G2細(xì)胞存活率達(dá)到50%左右的濃度分別為4%和5 mmol/L。不同濃度地涌金蓮酵素對經(jīng)CH3CH2OH和CCl4氧化損傷的Hep-G2細(xì)胞保護(hù)作用最好的濃度分別為10%和15%。

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