李金鑫,張一南,苗瑞芬,邢軍超,李 敏,申宛娜,王 黎,趙嘉平*
(1.中國林業(yè)科學(xué)研究院林業(yè)新技術(shù)研究所,北京 100091;2.內(nèi)蒙古五原縣林業(yè)和草原局種苗站,內(nèi)蒙古 巴彥淖爾 015100;3.中國林業(yè)科學(xué)研究院林業(yè)研究所,北京 100091)
環(huán)境脅迫以及病原菌侵染會引起植物光合作用以及水分代謝失衡[1-4]。病菌侵染往往會導(dǎo)致植物組織壞死、凈光合速率顯著降低、碳同化減少、生長放緩甚至出現(xiàn)植物死亡的現(xiàn)象[1,5-8]。葉銹病、葉斑病等通過調(diào)節(jié)氣孔開度以及抑制酶和光合作用中心改變氣體交換[9-11];枝干潰瘍類病害也遠程改變寄主植物的葉部光合特征[12-14]。本課題組前期研究表明潰瘍病菌(Botryosphaeria dothidea)、爛皮病菌(Valsa sordida)侵染早中期,新疆楊葉片凈光合速率和氣孔導(dǎo)度顯著下降[15]。病菌對光合作用的抑制會減少光合產(chǎn)物的合成,同時,雖然潰瘍類病害主要發(fā)生于枝干韌皮部,但也能侵入木質(zhì)部,并最終在侵染點周圍形成壞死性病斑。因此我們推測,潰瘍病害的發(fā)生不僅可以抑制韌皮部碳水化合物的長距離運輸,造成枝干碳饑餓[15],也可能阻礙木質(zhì)部水分的向上運輸[16]。
病原菌可以通過不同的途徑影響植物水分代謝,如根腐病原菌可以破壞植物根系,減少水分的吸收[17],而葉部病原真菌通過調(diào)控氣孔開度影響植物的水分散失[18]。枝干潰瘍類病菌侵染會造成氣孔導(dǎo)度降低,進而影響寄主葉片的蒸騰速率和水分利用效率[12,14]。研究發(fā)現(xiàn),在榛子(Corylus avellanaL.)和潰瘍類病菌(Anisogramma anomal)的互作系統(tǒng)中,臨近潰瘍病區(qū)域的水分運輸會受到限制,進而造成潰瘍病區(qū)域遠端的冠層枝枯[16];潰瘍病菌(Quambalaria coyrecup)引起桉樹(Corymbia calophyllaLindl.)邊材功能喪失,進而降低全株導(dǎo)水率[14],即病原真菌造成林木衰亡的原因之一是水力學(xué)失敗。
碳饑餓、水力學(xué)失敗以及兩者共同作用造成的韌皮部運輸功能失?。ú话ńY(jié)構(gòu)破壞)是干旱導(dǎo)致的樹木衰亡的3 種可能途徑[19-20]。研究發(fā)現(xiàn),碳饑餓和水力學(xué)失敗之間彼此影響、相互作用,水分脅迫可以抑制韌皮部碳水化合物的運輸,碳水化合物儲量下降可能會通過再填充受損導(dǎo)致水力學(xué)失敗,二者獨立或者聯(lián)合作用提高干旱脅迫下植物的死亡率[20-22]。研究表明,病原菌脅迫引起的林木衰亡與碳饑餓或者水力學(xué)失敗有關(guān)[14-16,23-26]。然而,在病害發(fā)展的不同階段,病菌導(dǎo)致樹木死亡的具體方式可能并不相同。我們的研究發(fā)現(xiàn),潰瘍病菌侵染通過抑制碳代謝途徑整體基因的表達,誘導(dǎo)早期碳饑餓[26];進一步研究發(fā)現(xiàn),病原真菌侵染誘導(dǎo)早中期枝干韌皮部運輸功能障礙,但水分運輸狀況沒有明顯的改變。然而,多項研究發(fā)現(xiàn),在潰瘍類病害發(fā)生晚期,樹木水分運輸狀況發(fā)生顯著改變[14,16],但是,我們認為,病害發(fā)生后期出現(xiàn)的水力學(xué)失敗是碳饑餓導(dǎo)致的結(jié)果,而非引起樹木衰亡的主要原因。因此,潰瘍類病害發(fā)生的生理機制仍有很多亟待解決的問題。
本研究以1 年生新疆楊(Populus albaLinn.var.pyramidalis)為植物材料,采用微環(huán)割方法接種楊樹爛皮病菌,通過測定氣體交換參數(shù)、光響應(yīng)曲線、葉綠素熒光、葉片水勢以及根部非結(jié)構(gòu)性碳水化合物含量等指標,研究寄主植物光合機制對病害脅迫的響應(yīng),枝干病菌侵染對根部碳代謝特征的影響等,揭示爛皮病菌侵染下楊樹碳水代謝特征的變化,為樹木潰瘍類病害的有效控制奠定理論及實驗基礎(chǔ)。
本研究以1 年生新疆楊扦插苗為植物材料,扦插幼苗在含有混合基質(zhì)(草炭土∶珍珠巖=6∶1)的塑料花盆中栽培,培養(yǎng)于中國林科院林業(yè)新技術(shù)研究所植物生理研究室試驗地。爛皮病菌(Valsa sordida)菌株CZC[15]實驗菌株活化后接種于PDA培養(yǎng)基(pH 6.0),25℃暗培養(yǎng)7 天后接種新疆楊。
選取生長健壯、無病蟲害、長勢一致的54 株新疆楊1 年生幼苗作為實驗材料。實驗設(shè)置表皮環(huán)割接種爛皮病菌(V.sordida)菌株CZC(Vso)、表皮環(huán)割接種空白PDA 對照(Ctrl)和未環(huán)割對照(UC)共3 個處理,每個處理18 株苗木。Vso 處理方法:用75%酒精對枝干表面滅菌,鋒利刀片剝開并去掉距基部30 cm 處楊樹枝干環(huán)周表皮,高度為1 cm,接種PDA 培養(yǎng)基上培養(yǎng)1 周的V.sordidaCZC 菌塊(長3 cm,寬1 cm),封口膜包裹保濕培養(yǎng);Ctrl 處理方法:將CZC 菌塊更換為空白PDA 培養(yǎng)基,其它操作相同。
分別在接種后10、20、30 天(dpi)測定葉片生理指標(光合及氣體交換參數(shù)、葉綠素熒光參數(shù)、正午水勢)并收集根部樣品以測定非結(jié)構(gòu)性碳水化合物含量,每個處理每次測定6 個生物學(xué)重復(fù)。光合測定在上午9:00—11:00 完成,正午水勢在光合參數(shù)測定之后完成。試驗期間保持充足的灌水以及適當?shù)墓芾怼?/p>
1.3.1 氣體交換及光合參數(shù)測定 采用Li-6400XT光合儀(LI-COR,Lincoln,USA)測定苗木凈光合速率(Pn)、氣孔導(dǎo)度(Gs)等指標。測定時采用LED 紅藍光源以及環(huán)境CO2濃度,設(shè)置光合有效輻射(PAR)1 500 μmol·m?2·s?1、氣體流速500 μmol·s?1。光合測定采用楊樹自頂部向下第4~6 片成熟葉。根據(jù)公式(1)、(2),計算水分利用效率(WUE)和氣孔限制值(Ls):
1.3.2 光響應(yīng)曲線測定 光響應(yīng)曲線測定于接種后15 天進行,所用光合儀同上,測定時間為上午9:00—12:00。自然光對植物葉片充分誘導(dǎo)后,在2 000、1 800、1 600、1 400、1 200、1 000、800、600、400、200、100、50、0 μmol·m?2·s?1光合有效輻射梯度下,測定植株的凈光合速率(Pn),每個處理3 個生物學(xué)重復(fù)。CO2濃度設(shè)置為400 μmol·mol?1,葉室溫度和相對濕度同環(huán)境參數(shù)。
采用非直角雙曲線模型,根據(jù)公式(3)擬合光合響應(yīng)曲線:
其中,Pn 為凈光合速率(μmol·m?2·s?1),α 為光合響應(yīng)曲線的初始量子效率,I為光合有效輻射,Pnmax為最大凈光合速率(μmol·m?2·s?1),θ為光響應(yīng)曲線曲角(0 <θ≤ 1),Rd為暗呼吸速率(μmol·m?2·s?1)。
1.3.3 葉綠素熒光參數(shù)測定 葉綠素熒光參數(shù)采用Li-6400XT 熒光葉室進行測定。將葉片充分暗適應(yīng)30 min,測定其初始熒光(Fo)、最大熒光(Fm)和PSII 最大光化學(xué)效率(Fv/Fm),以及光適應(yīng)下(20~30 min)的穩(wěn)態(tài)熒光(Fs)、光下最大熒光(Fm)和光下最小熒光(Fo')。葉綠素熒光與光合參數(shù)測定選用同一葉片。根據(jù)公式(4)、(5)、(6),計算PSII 的實際光化學(xué)效率(ΦPSII)、光化學(xué)猝滅系數(shù)(qP)和電子傳遞速率(ETR):
其中,PFD為光子通量密度(μmol·m?2·s?1)。
1.3.4 根部非結(jié)構(gòu)性碳水化合物含量測定 采集植株細根,殺青并烘干至恒質(zhì)量,研磨、100 目篩過濾后,采用植物可溶性糖和淀粉試劑盒(BC0035和BC0705;Solarbio Life Sciences)測定接種后10、20、30 d 非結(jié)構(gòu)性碳水化合物含量。每個處理測定6 個生物學(xué)重復(fù)。
1.3.5 葉片正午水勢測定 采用SAPSII 植物水勢壓力室(Model 3115,Sec Instruments,USA)測定葉片正午水勢(Midday water potential,Ψmd)。水勢與光合參數(shù)、葉綠素熒光測定選用同一葉片,水勢測定進行3 次,分別在接種后10、20、30 d 的12:00—12:30 完成。
采用R 3.5.0 進行數(shù)據(jù)統(tǒng)計以及可視化分析,不同處理之間的差異顯著性采用One-way ANOVA分析,并用Tukey 檢驗(P<0.05)進行多重比較,各項統(tǒng)計數(shù)據(jù)均為平均值 ± 標準誤差。本研究對Gs、Ci與Pn,Gs、VPD與Tr,以及Fv/Fm、ΦPSII、ETR與Pn作回歸分析,所有擬合均進行T 檢驗(P<0.001)。
2.1.1 凈光合速率、氣孔導(dǎo)度、胞間CO2濃度和氣孔限制值 除10 dpi(接種后10 天)之外,環(huán)割對照(Ctrl)和未環(huán)割對照(UC)植株的凈光合速率(Pn)和氣孔導(dǎo)度(Gs)無顯著差異(ANOVA,P>0.05)。與環(huán)割對照相比,爛皮病菌侵染(Vso)導(dǎo)致新疆楊葉片的Pn和Gs(10~30 dpi)顯著降低,胞間CO2濃度(Ci)(20~30 dpi)顯著升高,氣孔限制值(Ls)(20~30 dpi)顯著降低(ANOVA,P<0.05),且Ls隨處理時間呈緩慢下降的趨勢,30 dpi 時達到最低值(下降66.5%)。相關(guān)性分析揭示Pn和Gs呈正相關(guān)(R2=0.91,P<0.001),Pn和Ci呈負相關(guān)(R2=0.49,P<0.001)(圖1),該結(jié)果說明爛皮病菌主要以非氣孔限制方式抑制新疆楊的光合作用。
圖1 爛皮病菌侵染對新疆楊葉片光合特性的影響Fig.1 Effects of V.sordida infection on photosynthetic characteristics of P.alba var.pyramidalis leaves
2.1.2 爛皮病菌侵染對新疆楊苗木光響應(yīng)參數(shù)的影響 如圖2 所示,隨光合有效輻射(PAR)的增加,環(huán)割對照(Ctrl)、未環(huán)割對照(UC)和爛皮病菌侵染(VSo)植株的凈光合速率(Pn)均呈上升的趨勢;Ctrl 和UC 對照的光響應(yīng)無顯著差異(ANOVA,P>0.05);除0 和50 μmol·m?2·s?1光強外,經(jīng)VSo 處理的植株凈光合速率(Pn)顯著低于Ctrl 和UC 對照(ANOVA,P<0.05)。利用非直角雙曲線模型擬合曲線并計算相應(yīng)參數(shù),結(jié)果顯示爛皮病菌侵染顯著降低新疆楊葉片最大凈光合速率(Pnmax)(76.9%)及表觀量子效率(AQY)(46.1%),并顯著升高暗呼吸速率(Rd)(82.1%)及光補償點(LCP)(242.4%)(ANOVA,P<0.05)(表1)。此外,病菌侵染條件下新疆楊葉片光飽和點(LSP)相比對照顯著降低(P<0.05)(表1)。以上結(jié)果表明,爛皮病菌侵染嚴重抑制新疆楊葉片的光合以及利用弱光的能力,同時加快暗呼吸速率。
表1 爛皮病菌侵染下新疆楊苗木光響應(yīng)曲線擬合參數(shù)Table 1 The light response curve parameters of P.alba var.pyramidalis seedlings under the infection of V.sordida
圖2 爛皮病菌侵染下新疆楊苗木光合響應(yīng)曲線Fig.2 Photosynthetic response curve of P.alba var.pyramidalis seedlings under the infection of V.sordida
接種后10 d,環(huán)割對照(Ctrl)植株的實際光化學(xué)效率(ΦPSII)、電子傳遞速率(ETR)及光化學(xué)猝滅系數(shù)(qP)顯著高于未環(huán)割對照(UC)植株(ANOVA,P<0.05),除此之外,試驗期間Ctrl和UC 對照植株的PSII 最大光化學(xué)效率(Fv/Fm)、ΦPSII、ETR及qP均無顯著差異。除30 dpi 的qP之外,爛皮病菌侵染(VSo)顯著降低新疆楊葉片的Fv/Fm、ΦPSII、ETR、qP(ANOVA,P<0.05)(圖3)。以上結(jié)果揭示爛皮病菌侵染導(dǎo)致新疆楊葉片PSII 與PSI 之間的電子傳遞受阻、光能轉(zhuǎn)化效率降低及天線色素捕獲的光能用于光化學(xué)反應(yīng)的份額減少,進而導(dǎo)致了新疆楊葉片凈光合速率的降低。
圖3 爛皮病菌侵染下新疆楊葉綠素熒光參數(shù)Fig.3 The chlorophyll fluorescence parameters of P.alba var.pyramidalis under the infection of V.sordida
結(jié)果顯示,環(huán)割對照(Ctrl)不改變根部組織中非結(jié)構(gòu)性碳水化合物(NSC)含量(ANOVA,P>0.05)。與環(huán)割對照相比,爛皮病菌侵染(VSo)顯著降低根部組織中可溶性糖(20~30 dpi)和淀粉含量(10~30 dpi)(ANOVA,P<0.05)(圖4A、B)。另外,值得注意的是,30 dpi 時,Ctrl 和未環(huán)割對照(UC)植株的根部組織中可溶性糖含量顯著高于10、20 dpi,同時20、30 dpi 時根部組織淀粉顯著高于10 dpi(ANOVA,P<0.05),顯示Ctrl 和UC 植株根部組織的NSC 逐漸積累。然而,爛皮病菌處理下,根部組織可溶性糖和淀粉含量在實驗期間無顯著增加(ANOVA,P>0.05)
圖4 爛皮病菌侵染下新疆楊根部非結(jié)構(gòu)性碳水化合物含量Fig.4 Non-structural carbohydrate content in roots of P.alba var.pyramidalis seedlings under the infection of V.sordida
且NSC含量顯著低于環(huán)割對照Ctrl(P<0.05,圖4C),因此,本研究結(jié)果顯示,爛皮病菌侵染導(dǎo)致根部NSC含量始終維持在10 dpi 時的水平。
結(jié)果顯示,除10 dpi 時的蒸騰速率外,環(huán)割對照(Ctrl)和未環(huán)割對照組(UC)的蒸騰速率(Tr)、水汽壓虧缺(VPD)以及水分利用效率(WUE)、葉片水勢(Ψmd)無顯著差異(ANOVA,P>0.05)(圖5)。然而,與Ctrl 相比,爛皮病菌侵染(VSo)導(dǎo)致新疆楊葉片的Tr和WUE顯著降低,VPD顯著升高(ANOVA,P<0.05)。接種后10、30 d,爛皮病菌處理與Ctrl 及UC 對照植株水勢相同,并且20 dpi 時新疆楊葉片Ψmd顯著高于Ctrl(ANOVA,P<0.05)。該結(jié)果說明爛皮病菌侵染不僅未造成新疆楊葉片水分狀況的惡化,甚至對水分狀況有一定改善。
圖5 爛皮病菌侵染下新疆楊葉片蒸騰速率、水分利用效率、水汽壓虧缺及葉片正午水勢Fig.5 Transpiration rate,water use efficiency,vapor pressure deficit and leaf water potential of P.alba var.pyramidalis leaves under the infection of V.sordida
相關(guān)性分析顯示,氣孔導(dǎo)度(Gs)與蒸騰速率(Tr)呈正相關(guān)(R2=0.94,P<0.001)(圖6A),而Tr與水汽壓虧缺(VPD)呈負相關(guān)(R2=0.78,P<0.001)(圖6B)。葉片正午水勢(Ψmd)與Gs以及VPD均無線性關(guān)系(圖6C、D),說明爛皮病菌侵染引起的氣孔關(guān)閉與葉部水分狀況無關(guān)。凈光合速率與Fv/Fm、ΦPSII以及ETR均呈正相關(guān)(圖7),說明病菌侵染造成凈光合速率降低的同時,也影響葉片的光合特性。
圖6 爛皮病菌侵染下新疆楊各生理指標的相關(guān)性分析Fig.6 Correlation analysis of physiological indexes of P.alba var.pyramidalis under the infection of V.sordida
在生物和非生物脅迫下,植物光合機構(gòu)往往會受到不同程度的破壞[27-28],而葉綠素熒光參數(shù)可以作為快速評價植物葉片光合機構(gòu)、效率是否受損的指標[29]。有研究證實,病原真菌脅迫下寄主植物葉片的最大光化學(xué)效率(Fv/Fm)顯著降低(如,Melampsora medusae脅迫下的楊樹[9]以及Seiridium.cardinale脅迫下的柏樹[30])。本研究顯示爛皮病菌侵染期間,新疆楊葉片的Fv/Fm、實際光化學(xué)效率(ΦPSII)、電子傳遞速率(ETR)和光化學(xué)猝滅系數(shù)(qP)均顯著降低(圖3),并且相關(guān)性分析顯示凈光合速率與Fv/Fm、ΦPSII以及ETR均呈顯著正相關(guān)(圖7)。由此可以看出,爛皮病菌侵染抑制新疆楊葉片的光能轉(zhuǎn)化效率,導(dǎo)致新疆楊葉片光反應(yīng)中心部分關(guān)閉,阻礙PSII 與PSI 之間電子傳遞,使得天線色素捕獲的光能用于光化學(xué)反應(yīng)的份額減少,降低光合反應(yīng)中心活性,從而導(dǎo)致光合速率降低。
圖7 最大光化學(xué)效率、實際光化學(xué)效率及電子傳遞速率與凈光合速率的相關(guān)性Fig.7 Correlations between the maximum photochemical efficiency,actual photochemical efficiency,electron transport rate and net photosynthetic rate
最大凈光合速率(Pnmax)取決于光合機構(gòu)關(guān)鍵酶Rubisco 活性和電子傳遞速率[31]。病原菌脅迫不僅導(dǎo)致葉片光合機構(gòu)受損,抑制光合電子傳遞,也影響寄主葉片對光能的利用能力。本研究中,在爛皮病菌侵染植株P(guān)nmax顯著降低的同時(表1),ETR也顯著降低,然而Pnmax降低與Rubisco 酶活性變化是否有關(guān)還需更深入的研究。另外,脅迫條件下新疆楊葉片暗呼吸速率(Rd)及光補償點(LCP)顯著升高,而表觀量子效率(AQY)卻顯著降低(表1),表明爛皮病菌侵染增強了新疆楊植株光合產(chǎn)物的消耗,降低了葉片對弱光的吸收和利用能力,并最終導(dǎo)致葉片光合能力下降。
非結(jié)構(gòu)性碳水化合物(NSC)是植物體內(nèi)光合產(chǎn)物的主要儲存形式。在生長季,光合產(chǎn)物在葉部產(chǎn)生并分配至各個器官,其濃度可以反映植物自身的碳收支狀況[32-33]。本研究結(jié)果顯示在接種后30 天內(nèi),環(huán)割對照(Ctrl)、未環(huán)割對照(UC)植株的根部可溶性糖、淀粉含量均呈持續(xù)增長的趨勢(圖4),顯示未脅迫植株根部非結(jié)構(gòu)性碳水化合物持續(xù)積累的特征。然而,爛皮病菌侵染下,楊樹根部可溶性糖及淀粉含量始終維持在10 dpi 的水平。田間觀察及本研究組研究顯示,隨著爛皮病菌侵染時間的延長以及侵染程度的加劇,爛皮病菌侵染40~50 天,楊樹接種部位上部出現(xiàn)枯萎、枝枯等癥狀[15],這必將造成光合作用的下降甚至停止并進而造成根部碳積累的減少。因此,本研究結(jié)果顯示,從接種后20 甚至10 天起,爛皮病菌已經(jīng)顯著抑制楊樹根部非結(jié)構(gòu)性碳水化合物的積累。
水分吸收與蒸騰散失之間的平衡是植物正常生長發(fā)育的必要條件,病原菌侵染可以造成植物水分代謝紊亂。潰瘍類病害作為典型的枝干病害,在病斑擴展的過程中會直接破壞植物的維管組織,或形成侵填體阻礙植物的體內(nèi)水分運輸[16],進而引起植物葉片水勢和氣孔導(dǎo)度的改變[14]。一般認為,水分相關(guān)病害,干旱高溫下病害易于發(fā)生或發(fā)病嚴重[34-35]。Rohrs-Richey 等人在榿木與Valsa melanodiscus互作研究中發(fā)現(xiàn),榿木利用氣孔調(diào)節(jié)提高了葉片水分利用效率[12],楊樹潰瘍病菌侵染也會顯著升高寄主的水分利用效率(WUE)、降低蒸騰速率(Tr)[26]。我們近期的研究發(fā)現(xiàn),潰瘍病菌侵染早期通過抑制碳代謝途徑誘導(dǎo)碳饑餓[26];并且顯著降低枝干非結(jié)構(gòu)性碳水化合物含量,但不改變水分狀況[15],說明潰瘍類病害造成的樹木衰亡與水力學(xué)失敗無關(guān)。本研究中,雖然爛皮病菌侵染下新疆楊葉片的Tr和WUE降低,水汽壓虧缺(VPD)升高,但10 dpi和30 dpi 時,新疆楊葉片的正午水勢(Ψmd)并未降低,反而在脅迫20 dpi 時顯著升高。該結(jié)果說明爛皮病菌侵染不僅未造成新疆楊葉片水分狀況的惡化,甚至對水分狀況有一定改善作用。以上研究顯示,至少在早中期,潰瘍、爛皮病菌侵染并不會造成水分脅迫,進一步證實了水力學(xué)途徑不是病菌侵染下樹木衰亡的主要原因。該現(xiàn)象的產(chǎn)生可能與較低的氣孔導(dǎo)度和光合速率有關(guān),病菌侵染使氣孔導(dǎo)度和光合速率降低,進一步減少植物葉片蒸騰耗水。即使在病菌侵染下,楊樹水分代謝與碳代謝之間也能保持相對的平衡。
通過對爛皮病菌(V.sordida)與新疆楊的互作研究發(fā)現(xiàn),爛皮病菌侵染導(dǎo)致新疆楊葉片光能轉(zhuǎn)化、光合電子傳遞及光能利用受阻,從而降低凈光合速率。與此同時,盡管爛皮病菌侵染顯著升高新疆楊葉片的水汽壓虧缺,降低蒸騰速率和水分利用效率,但較高的葉片水勢說明爛皮病菌侵染并未造成新疆楊葉部水分脅迫,甚至有一定的改善作用。另外,爛皮病菌侵染抑制寄主植株根部非結(jié)構(gòu)性碳水化合物的積累,使其含量維持在脅迫初期的水平。由此說明,爛皮病菌侵染早中期造成樹木碳代謝失衡,引發(fā)碳饑餓,進而導(dǎo)致樹木衰亡。