張麗娜, 張迪迪, 趙 雷, 顧宇軒, 孫霄麟
(北京工業(yè)大學(xué) 環(huán)境與生命學(xué)部 生命科學(xué)與化學(xué)學(xué)院,北京 100124)
乳腺癌是一種對全球婦女健康威脅最大的腫瘤,尤其在我國女性乳腺癌的發(fā)病率和死亡率呈顯著增長趨勢。目前認為乳腺癌的浸潤和轉(zhuǎn)移是導(dǎo)致乳腺癌患者死亡的主要原因,但關(guān)于乳腺癌轉(zhuǎn)移的分子機制仍然不太清楚。上皮-間質(zhì)轉(zhuǎn)化(epithelial-mesenchymal transition,EMT)被認為是腫瘤轉(zhuǎn)移的首要步驟[1]。近年來,細胞融合理論逐漸成為腫瘤轉(zhuǎn)移的研究熱點之一[2]。間充質(zhì)干細胞和巨噬細胞是目前細胞融合研究經(jīng)常選用的兩種細胞類型,也被作為探索腫瘤生物治療的靶向載體。多數(shù)研究已證實間充質(zhì)干細胞可與腫瘤細胞融合,參與腫瘤的發(fā)生轉(zhuǎn)移[3-7]。一些研究也表明巨噬細胞能同腫瘤細胞發(fā)生融合,促進腫瘤的發(fā)生轉(zhuǎn)移[8-10]。因此,細胞融合被認為是腫瘤轉(zhuǎn)移的一種新機制[11-12]。但目前關(guān)于細胞融合與腫瘤轉(zhuǎn)移之間的關(guān)系及對其關(guān)鍵的分子調(diào)控機制仍不太清楚,這也阻礙了細胞融合在腫瘤臨床治療中的應(yīng)用。
研究表明多條信號通路參與調(diào)控EMT過程[13],其中與腫瘤細胞增殖轉(zhuǎn)移密切相關(guān)的PI3K/AKT和MAPK/ERK信號通路也參與EMT調(diào)控,這兩條信號通路的異?;罨c多種癌癥的發(fā)生發(fā)展密切相關(guān)[14]。我們前期已經(jīng)成功建立了小鼠乳腺癌細胞與巨噬細胞融合模型,結(jié)果表明融合細胞的惡性增殖和遷移侵襲能力明顯增強,融合細胞獲得了腫瘤細胞無限增殖和巨噬細胞易于遷移的特性,而且可能是通過激活Wnt/β-catenin信號通路誘導(dǎo)EMT促進乳腺癌增殖轉(zhuǎn)移[9]。先前研究發(fā)現(xiàn)來源于乳腺上皮細胞和乳腺癌細胞融合形成的雜交細胞表現(xiàn)出不同的RAF-AKT信號通路之間的交叉對話[15],巨噬細胞與乳腺癌細胞融合是否也會影響PI3K/AKT和MAPK/ERK信號通路介導(dǎo)EMT促進乳腺癌增殖轉(zhuǎn)移并不清楚。
為解決上述問題,本研究結(jié)合前期建立的融合細胞模型和所取得的實驗結(jié)果,重點探索乳腺癌細胞與巨噬細胞融合對腫瘤增殖轉(zhuǎn)移密切相關(guān)的PI3K/AKT和MAPK/ERK信號通路的影響,揭示乳腺癌細胞與巨噬細胞融合是否可以通過這兩條信號通路介導(dǎo)EMT從而促進乳腺癌增殖轉(zhuǎn)移,以期為闡明細胞融合在腫瘤轉(zhuǎn)移中的分子機制提供新的視角和思路,也為干預(yù)細胞融合在腫瘤轉(zhuǎn)移治療中的應(yīng)用提供理論基礎(chǔ)。
采用自建的小鼠乳腺癌細胞-巨噬細胞融合模型(N2O2-RAW264.7),融合細胞的具體構(gòu)建方法詳見本課題組前期發(fā)表論文[9]。其中小鼠乳腺癌細胞N2O2來自Dr. Joseph Lustgarten (Sidney Kimmel Cancer Center, San Diego, CA)實驗室饋贈。
DMEM培養(yǎng)基、胎牛血清(fetal bovine serum, FBS)、PBS、100×青霉素-鏈霉素雙抗和0.25% Trypsin-EDTA均為美國Hyclone公司產(chǎn)品;RIPA細胞裂解液、CCK-8細胞增殖檢測試劑盒、BCA蛋白定量試劑盒、4×SDS蛋白上樣緩沖液、PMSF、脫脂奶粉、4%多聚甲醛和SDS-PAGE凝膠配制試劑均購自北京鼎國昌盛生物技術(shù)有限責(zé)任公司;PVDF膜、ECL化學(xué)發(fā)光底物、Transwell穿透小室(24孔)為美國Millipore公司產(chǎn)品;Matrigel膠購自美國BD公司;結(jié)晶紫和DMSO購自美國Amresco公司;LY294002和PD98059抑制劑、β-actin、PI3K、p-PI3K(Tyr458)、AKT、p-AKT(Ser473)、ERK1/2和p-ERK1/2(Thr202/Tyr204)一抗均購自美國CST公司;HRP標記的山羊抗兔和抗鼠IgG二抗是美國ABGENT公司產(chǎn)品。其他化學(xué)試劑均為國產(chǎn)試劑。
1.2.1 細胞培養(yǎng)
乳腺癌細胞和融合細胞置于含10%FBS和1×青霉素-鏈霉素雙抗的DMEM培養(yǎng)基培養(yǎng),待細胞生長至90%密度,用0.25% Trypsin-EDTA消化傳代,放置于5% CO2、37 ℃培養(yǎng)箱培養(yǎng)。取狀態(tài)良好的對數(shù)生長期細胞實驗。LY294002和PD98059信號通路阻斷劑用DMSO溶解,分別采用10 μmol/L終濃度處理細胞。
1.2.2 Western Blot實驗
用0.25%胰酶消化細胞,加入RIPA裂解液,冰上裂解30 min,12 000 r/min于4 ℃離心30 min,取上清液轉(zhuǎn)至1.5 mL EP管,用BCA蛋白定量試劑盒測定總蛋白濃度。然后加入4×SDS上樣緩沖液,沸水浴煮10 min變性蛋白。配制10%聚丙烯酰胺凝膠,每孔上樣40 μg總蛋白,100 V恒壓電泳2 h,90 V恒壓轉(zhuǎn)膜1 h,5%脫脂牛奶室溫封閉2 h。然后分別加入PI3K、p-PI3K、AKT、p-AKT、ERK1/2、p-ERK1/2(1∶1 000稀釋)和β-actin(1∶5 000稀釋),4℃孵育過夜。第2天回收一抗,TBST洗膜3次,然后加入HRP標記二抗(1∶6 000稀釋),室溫孵育1 h,TBST洗膜3次。最后加入ECL化學(xué)發(fā)光底物,利用Tanon 4200化學(xué)發(fā)光成像系統(tǒng)掃描圖像。β-actin作為內(nèi)參,每個Western Blot結(jié)果至少重復(fù)3次,選擇代表性結(jié)果展示。
1.2.3 CCK-8細胞增殖實驗
0.25%胰酶消化細胞并計數(shù),96孔板每孔接種1×103個細胞,每組設(shè)4個復(fù)孔。分別培養(yǎng)24、48、72、96和120 h后,每孔更換100 μL新鮮培養(yǎng)基(同時設(shè)置只加培養(yǎng)基的空白對照),然后每孔加10 μL CCK-8溶液,37 ℃培養(yǎng)箱避光孵育1 h,用Bio-Tek酶標儀測定450 nm處吸光度。以培養(yǎng)時間為橫坐標,450 nm處吸光度(OD450實驗組-OD450空白對照)為縱坐標,繪制連續(xù)5 d的生長曲線。
1.2.4 細胞劃痕實驗
0.25%胰酶消化細胞接種至12孔板,待細胞貼壁匯合至80%密度時,用200 μL黃槍頭在孔中央劃一道橫線,PBS清洗去掉脫落的細胞,更換為含5% FBS的DMEM培養(yǎng)基。分別在0、12和24 h通過倒置顯微鏡拍照記錄細胞劃痕變化,并計算細胞相對遷移率。
1.2.5 Transwell細胞遷移和侵襲實驗
0.25%胰酶消化細胞并計數(shù),遷移實驗時,將細胞重懸于無血清DMEM培養(yǎng)基,以每孔5×104個細胞密度接種于24孔Transwell穿透小室。侵襲實驗是預(yù)先在24孔Transwell小室鋪Matrigel膠,每孔接種5×105個細胞。然后在24孔板加入含20%FBS的DMEM培養(yǎng)基,37 ℃孵育24 h后,用棉簽刮掉小室內(nèi)細胞,4%多聚甲醛固定,0.5%結(jié)晶紫染色,最后通過Olympus IX71倒置顯微鏡觀察拍照。隨機選取5個視野統(tǒng)計穿透膜的細胞數(shù)量。
為了確定乳腺癌細胞與巨噬細胞融合對PI3K/AKT和MAPK/ERK信號通路的影響,首先通過Western Blot實驗檢測這兩條信號通路中關(guān)鍵標志蛋白的表達變化。結(jié)果表明,與對照組乳腺癌細胞相比,融合細胞中磷酸化的p-PI3K、p-AKT和p-ERK1/2表達水平顯著升高,而非磷酸化的總PI3K、AKT和ERK1/2蛋白的表達則沒有明顯變化(圖1)。該結(jié)果說明乳腺癌細胞與巨噬細胞融合可能會激活PI3K/AKT和MAPK/ERK信號通路,從而促進乳腺癌增殖轉(zhuǎn)移。
圖1 乳腺癌細胞與巨噬細胞融合對增殖轉(zhuǎn)移相關(guān)的PI3K/AKT和MAPK/ERK信號通路關(guān)鍵蛋白的影響Figure 1 Effects of fusion between breast cancer cells and macrophages on the key proteins of PI3K/AKT and MAPK/ERK signaling pathways related to proliferation and metastasis
檢測LY294002和PD98059特異性抑制劑處理對融合細胞中PI3K/AKT和MAPK/ERK信號通路的阻斷效果。Western Blot實驗結(jié)果表明,LY294002和PD98059抑制劑處理導(dǎo)致融合細胞中磷酸化的p-AKT和p-ERK1/2表達水平顯著降低,而未磷酸化的AKT和ERK1/2表達則沒有明顯變化(圖2)。該結(jié)果也進一步說明融合細胞中的PI3K/AKT和MAPK/ERK信號通路是處于被激活的狀態(tài)。
圖2 LY294002和PD98059抑制劑處理對融合細胞中PI3K/AKT和MAPK/ERK信號通路的影響Figure 2 Effects of LY294002 and PD98059 inhibitor treatment on PI3K/AKT and MAPK/ERK signaling pathways in the fused cells,respectively
通過CCK-8實驗分析LY294002和PD98059抑制劑阻斷PI3K/AKT和MAPK/ERK信號通路后細胞的增殖能力變化。從圖3(a)和(b)中可以看出,對照乳腺癌N2O2細胞組在450 nm處的吸光值明顯低于融合細胞組,說明融合細胞的增殖能力顯著強于對照乳腺癌細胞,LY294002和PD98059抑制劑處理導(dǎo)致對照乳腺癌細胞和融合細胞的增殖能力均受到抑制,尤其對融合細胞的抑制效果更明顯。
(a)對照乳腺癌細胞CCK-8實驗結(jié)果;(b)融合細胞CCK-8實驗結(jié)果。* P<0.05; ** P<0.01。圖3 CCK-8實驗分析抑制PI3K/AKT和MAPK/ERK信號通路對細胞增殖能力的影響Figure 3 Effects of inhibition of PI3K/AKT and MAPK/ERK signaling pathways on the cell proliferation ability by CCK-8 assay
通過劃痕損傷實驗分析LY294002和PD98059抑制劑處理后融合細胞的遷移能力變化。結(jié)果表明與未經(jīng)抑制劑處理組相比,LY294002和PD98059抑制劑處理12 h和24 h組融合細胞的劃痕明顯愈合較慢,劃痕也較寬一些[圖4(a)]。通過定量分析發(fā)現(xiàn)LY294002和PD98059抑制劑處理組細胞的相對遷移率明顯低于未處理對照組,抑制劑處理導(dǎo)致融合細胞的遷移顯著受阻[圖4(b)]。
此外,進一步通過Transwell實驗分析LY294002和PD98059抑制劑處理后融合細胞的遷移能力變化,發(fā)現(xiàn)阻斷PI3K/AKT和MAPK/ERK信號通路后,融合細胞的遷移能力顯著被抑制[圖5(a)和(b)]。
通過Transwell侵襲實驗分析LY294002和PD98059抑制劑處理后融合細胞的侵襲能力變化。結(jié)果如圖6(a)和(b)所示,LY294002和PD98059抑制劑處理阻斷PI3K/AKT和MAPK/ERK信號通路后,融合細胞的侵襲能力也明顯被抑制。
(a)細胞劃痕損傷實驗結(jié)果(標尺:100 μm);(b)細胞遷移能力的相對定量統(tǒng)計分析。* P<0.05; ** P<0.01。圖4 劃痕損傷實驗分析抑制PI3K/AKT和MAPK/ERK信號通路對融合細胞遷移能力的影響Figure 4 Effects of inhibition PI3K/AKT and MAPK/ERK signaling pathways on the migration ability of the fused cells by wound healing assay
(a)Transwell遷移實驗結(jié)果(×200);(b)Transwell遷移實驗結(jié)果的定量統(tǒng)計分析(隨機選取5個視野統(tǒng)計分析)。** P<0.01。圖5 Transwell實驗分析抑制PI3K/AKT和MAPK/ERK信號通路對融合細胞遷移能力的影響Figure 5 Effects of inhibition PI3K/AKT and MAPK/ERK signaling pathways on the migration ability of the fused cells by Transwell migration assay
(a)Transwell侵襲實驗結(jié)果(×200);(b)Transwell侵襲實驗結(jié)果的定量統(tǒng)計分析(隨機選取5個視野統(tǒng)計分析)。* P<0.05; ** P<0.01。圖6 Transwell實驗分析抑制PI3K/AKT和MAPK/ERK信號通路對融合細胞侵襲能力的影響Figure 6 Effects of inhibition PI3K/AKT and MAPK/ERK signaling pathways on the migration ability of the fused cells by Transwell invasion assay
細胞融合是腫瘤發(fā)生發(fā)展過程中的一種常見現(xiàn)象,研究表明腫瘤細胞同其他正常細胞形成的融合細胞往往表現(xiàn)出比親代腫瘤細胞更惡性的特征,包括形成異倍體,增殖轉(zhuǎn)移能力增強,獲得耐藥性及干細胞樣特性等[2,16-19]。腫瘤細胞融合理論目前也被認為是腫瘤轉(zhuǎn)移的一種新機制[11-12,20]。通過對腫瘤細胞與間充質(zhì)干細胞融合研究發(fā)現(xiàn),不同的腫瘤細胞與間充質(zhì)干細胞融合對腫瘤的生長轉(zhuǎn)移存在一定爭議。多數(shù)研究認為間充質(zhì)干細胞融合促進腫瘤生長轉(zhuǎn)移[4,16,21];還有一些研究認為間充質(zhì)干細胞融合抑制腫瘤生長轉(zhuǎn)移[22-23]。巨噬細胞作為腫瘤微環(huán)境中重要的免疫細胞,也是細胞融合研究經(jīng)常選用的細胞類型。我們前期通過建立小鼠乳腺癌細胞與巨噬細胞融合模型研究發(fā)現(xiàn)融合細胞的惡性增殖和遷移侵襲能力明顯增強,巨噬細胞融合會促進乳腺癌增殖轉(zhuǎn)移[9]。
研究表明腫瘤細胞與間充質(zhì)干細胞融合是通過誘導(dǎo)EMT促進腫瘤轉(zhuǎn)移[24-25]。我們前期研究發(fā)現(xiàn)乳腺癌細胞與巨噬細胞融合也會誘發(fā)EMT促進乳腺癌增殖轉(zhuǎn)移[9]。經(jīng)典的TGF-β、Wnt/β-catenin、Notch等信號通路均被證實參與EMT調(diào)控[13]。此外,與增殖轉(zhuǎn)移密切相關(guān)的PI3K/AKT和MAPK/ERK信號通路也與EMT調(diào)控相關(guān)[26-27]。EMT相關(guān)信號通路的異?;罨瘎t促進腫瘤發(fā)生轉(zhuǎn)移。已有研究表明細胞融合可通過不同的信號通路調(diào)控腫瘤發(fā)生轉(zhuǎn)移。Ozel等[15]發(fā)現(xiàn)乳腺上皮細胞和乳腺癌細胞融合形成的雜交細胞表現(xiàn)出RAF-AKT信號通路的交叉對話。Fu等[28]發(fā)現(xiàn)巨噬細胞可通過分泌IL-8激活JAK2/STAT3/Snail信號通路,從而誘導(dǎo)肝癌細胞發(fā)生EMT促進肝癌轉(zhuǎn)移。我們前期結(jié)果表明乳腺癌細胞與巨噬細胞融合是通過激活Wnt/β-catenin信號通路誘發(fā)EMT促進乳腺癌增殖轉(zhuǎn)移[9]。
本研究重點分析乳腺癌細胞與巨噬細胞融合對增殖轉(zhuǎn)移密切相關(guān)的PI3K/AKT和MAPK/ERK信號通路的影響。結(jié)果表明:與對照乳腺癌細胞相比,融合細胞中這兩條通路的標志蛋白即磷酸化的p-PI3K、p-AKT和p-ERK1/2表達水平顯著升高,而總PI3K、AKT和ERK1/2表達沒有變化;LY294002和PD98059抑制劑阻斷PI3K/AKT和MAPK/ERK信號通路后,融合細胞中p-AKT和p-ERK1/2表達明顯降低,而且融合細胞的增殖、遷移和侵襲能力均顯著被抑制。結(jié)果初步表明乳腺癌細胞與巨噬細胞融合可能通過激活PI3K/AKT和MAPK/ERK信號通路誘導(dǎo)EMT從而促進乳腺癌增殖轉(zhuǎn)移。
在本研究基礎(chǔ)上,再結(jié)合前期研究結(jié)果,進一步提示乳腺癌細胞與巨噬細胞融合可能會通過激活多條EMT相關(guān)的信號通路誘導(dǎo)EMT從而促進乳腺癌增殖轉(zhuǎn)移。由此推斷,調(diào)控細胞融合與腫瘤轉(zhuǎn)移的信號通路是復(fù)雜多樣的,細胞融合可能會導(dǎo)致多條EMT相關(guān)信號通路的改變協(xié)同調(diào)控腫瘤的發(fā)生轉(zhuǎn)移。因此,關(guān)于細胞融合、信號通路調(diào)控與腫瘤發(fā)生轉(zhuǎn)移之間的具體作用機制仍有待深入研究。