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    潛伏表達(dá)癌調(diào)蛋白的HSV-1減毒載體能有效治療大鼠機(jī)械性視神經(jīng)損傷

    2021-11-10 16:24:22高瀛政黃新偉
    關(guān)鍵詞:研究

    楊 明,高瀛政,李 萌,曹 霞,黃新偉

    1昆明醫(yī)科大學(xué)第一附屬醫(yī)院眼科,云南 昆明 650032;2昆明醫(yī)科大學(xué)第二附屬醫(yī)院,云南 昆明650033

    視神經(jīng)損傷后視網(wǎng)膜神經(jīng)節(jié)細(xì)胞(RGCs)無(wú)法形成新的突觸,逐漸凋亡或壞死,是視力喪失的主要原因[1]。因此,減緩或抑制RGCs的死亡及促進(jìn)其軸突再生是有效治療視神經(jīng)損傷和促進(jìn)視功能恢復(fù)的重要基礎(chǔ)。

    近年來(lái)研究發(fā)現(xiàn),眼內(nèi)炎癥誘導(dǎo)的中性粒細(xì)胞和巨噬細(xì)胞分泌的小分子癌調(diào)蛋白(OCM)具有顯著的促神經(jīng)修復(fù)作用[2-4]。與睫狀神經(jīng)細(xì)胞營(yíng)養(yǎng)因子(CNTF)、腦源性神經(jīng)營(yíng)養(yǎng)因子(BDGF)和膠質(zhì)細(xì)胞源性神經(jīng)營(yíng)養(yǎng)因子(GDNF)相比,OCM是目前最為有效的促進(jìn)RGC軸突生成的營(yíng)養(yǎng)因子[5]。在視神經(jīng)受損的大鼠眼內(nèi)注入含重組OCM及其增敏劑cAMP類似物的緩釋微粒后,可使RGCs的軸突再生長(zhǎng)度增加5~7倍[3]。因此,OCM是轉(zhuǎn)基因治療視神經(jīng)損傷的理想靶標(biāo)。

    單純皰疹病毒(HSV)是一種常見(jiàn)的人類病原微生物,在基因治療方面有著很廣泛的研究[6,7]。新型減毒HSV-1載體具備安全型載體的一系列特點(diǎn):較低的毒力和體內(nèi)復(fù)制能力。減毒型HSV-1 1716 strain由于刪除神經(jīng)毒力相關(guān)基因γ34.5,其體內(nèi)復(fù)制能力大大減弱;安全的中樞神經(jīng)系統(tǒng)基因轉(zhuǎn)導(dǎo)。研究表明,1716 strain感染中樞神經(jīng)系統(tǒng)后,不引起顯著的神經(jīng)元功能病變,病毒直接進(jìn)入潛伏感染階段,不表達(dá)任何病毒相關(guān)抗原,從而具備較低免疫原性[8];潛伏相關(guān)啟動(dòng)子(LAP)介導(dǎo)長(zhǎng)期穩(wěn)定的外源基因表達(dá)。且區(qū)別于目前常用的病毒載體,HSV-1基因組非整合特性使得基因治療更為安全。研究顯示,1716-GUSB 重組病毒能介導(dǎo)模型鼠腦部長(zhǎng)期表達(dá)GUSB,從而顯著緩解葡萄糖貯積癥[9,10]。盡管對(duì)于HSV-1皰癥性角膜炎的研究表明病毒可感染進(jìn)入視網(wǎng)膜,目前尚未有實(shí)驗(yàn)證據(jù)表明減毒型HSV-1載體能夠介導(dǎo)視網(wǎng)膜基因轉(zhuǎn)導(dǎo)。

    本研究通過(guò)構(gòu)建可長(zhǎng)期潛伏表達(dá)外源基因OCM的HSV-1基因治療載體1716-OCM,介導(dǎo)視網(wǎng)膜神經(jīng)再生調(diào)控蛋白OCM表達(dá),并于大鼠視神經(jīng)機(jī)械性損傷模型中評(píng)價(jià)其對(duì)神經(jīng)節(jié)細(xì)胞存活及視覺(jué)電生理功能的有效性。

    1 材料和方法

    1.1 實(shí)驗(yàn)材料

    本研究采用的HSV-1 1716減毒株由賓夕法尼亞大學(xué)Dr.Nigel惠贈(zèng),基于1716毒株遺傳背景的潛伏表達(dá)OCM毒株(1716-OCM)由本實(shí)驗(yàn)室前期構(gòu)建。

    1.2 病毒株擴(kuò)增、純化及感染性滴度測(cè)定

    所有毒株接種于DMEM完全培養(yǎng)基中的Vero細(xì)胞,感染吸附3~4 h后跟換維持培養(yǎng)液(含2% FBS的DMEM培養(yǎng)液),繼續(xù)培養(yǎng)3~4 d,待細(xì)胞病變圓起后收集細(xì)胞上清,4000 r/min 離心15 min以去除細(xì)胞碎片。病毒液覆蓋于20%蔗糖溶液后進(jìn)行密度梯度離心。26 000 r/min離心3 h后,用PBS重懸病毒沉淀,分裝后于-80 ℃凍存。采用甲基纖維素噬斑法(1.5%甲基纖維素DMEM 培養(yǎng)液),測(cè)定上述濃縮病毒的感染性滴度,使用無(wú)血清DMEM培養(yǎng)液連續(xù)十倍稀釋病毒液至10-8,以每孔100 μL接種于六孔板Vero細(xì)胞,感染吸附3 h后跟換甲基纖維素噬斑培養(yǎng)液,繼續(xù)培養(yǎng)4~5 d。1%結(jié)晶紫染色后噬斑計(jì)數(shù),病毒感染滴度(PFU/mL)記為:10×稀釋度×蝕斑數(shù)。

    1.3 1716-OCM重組病毒株體外增殖動(dòng)力及外源基因表達(dá)檢測(cè)

    重組病毒株1716-ocm與親本株1716,以及野生型HSV-1(Strain 17+和McKrea)以感染復(fù)數(shù)MOI=0.01接種于六孔Vero細(xì)胞中,病毒吸附3 h后,去除培養(yǎng)液,PBS洗滌細(xì)胞2~3次,跟換新鮮維持液,繼續(xù)培養(yǎng)5 d,每24 h收集上清進(jìn)行噬斑滴定(方法如上)及細(xì)胞形態(tài)觀察。為檢測(cè)病毒即早期基因和晚期基因表達(dá)差異,如上方法接種病毒至Vero細(xì)胞,于感染后6、12、24、48、72 h收集細(xì)胞,trizol 法提取細(xì)胞總RNA 后,一步法qRTPCT 檢測(cè)ICP0(F:ACCACCATGACGACGACTC;R:AGCCCCGTCTCGAACAGT),ICP4(F:ATGGGGTG GCTCCAGAAC;R:CTGCCGGTGATGAAGGAG)及LAT(F:CCAACACAAAAGACCCGCTG;R:CTACA CCAGCCAATCCGTGT)與OCM(F:GGAAGATTG GGGCGGATGAA;R:CTTCGGGGGACTCGGTAA AG);GAPDH 作為內(nèi)參(F:TCGACAGTCAGCCGC ATCT;R:CCGTTGACTCCGACCTTCA)。為驗(yàn)證重組病毒株1716-ocm外源基因蛋白水平表達(dá),病毒接種Vero細(xì)胞后進(jìn)行免疫熒光及Western blot檢測(cè)。

    1.4 1716-OCM重組病毒株在大鼠眼部基因轉(zhuǎn)導(dǎo)及安全性檢測(cè)

    取12周齡大鼠按隨機(jī)數(shù)表法分為3組(對(duì)照組、1716-OCM注射組和野生型病毒角膜感染組)每時(shí)間點(diǎn)3只/組。異氟烷氣體麻醉狀態(tài)下,玻璃體注射重組病毒1716-OCM 105PFU/μL 或?qū)φ誔BS(1 μL)。野生型HSV-1(Strain 17+和Strain McKrea)感染組采用角膜接種方式,5 μL病毒液(102PFU/μL)接種于大鼠眼球表面。病毒接種后(7、14、30 和60 d)分別取眼球,視神經(jīng),腦組織;冰凍切片后免疫熒光檢測(cè)OCM表達(dá)分布。本研究獲得昆明醫(yī)科大學(xué)動(dòng)物倫理委員會(huì)批準(zhǔn),批準(zhǔn)文號(hào)KMMU2021723。

    1.5 大鼠視神經(jīng)損傷模型中驗(yàn)證1716-OCM治療效果

    取12周齡SD大鼠,進(jìn)行視網(wǎng)膜鉗夾模型,每治療組設(shè)5只大鼠作為平行重復(fù)。實(shí)驗(yàn)動(dòng)物入組標(biāo)準(zhǔn)為:體質(zhì)量250~300 g、雙眼屈光間質(zhì)清晰、眼底無(wú)病變。異氟烷持續(xù)麻醉狀態(tài)下,進(jìn)行視神經(jīng)夾持損傷模型。選擇傷后無(wú)前房出血、玻璃體出血、視網(wǎng)膜脫落等并發(fā)癥;散瞳檢查眼底無(wú)持續(xù)性缺血(傷后5~10 min血流恢復(fù))的模型鼠入組。造模大鼠獨(dú)立編號(hào)后,采用隨機(jī)數(shù)表方法分入各組進(jìn)行后續(xù)治療。視神經(jīng)夾持后3 d進(jìn)行玻璃體腔注射重組病毒1716-OCM,2 μL(105PFU/μL)或?qū)φ誔BS。其中1716-OCM-cAMP組需在視神經(jīng)損傷后3、21、42 d于玻璃體腔注射cAMP以增強(qiáng)OCM活性。

    功能性評(píng)價(jià):于治療45 d后進(jìn)行視覺(jué)誘發(fā)電位檢測(cè)(FVEP),從而評(píng)價(jià)視覺(jué)信號(hào)從視網(wǎng)膜神經(jīng)節(jié)細(xì)胞大腦枕葉皮層的傳導(dǎo)功能。FVEP檢測(cè)方法參照本實(shí)驗(yàn)室前期研究方法[11]。

    結(jié)構(gòu)性評(píng)價(jià):各模型組于治療45 d后;灌注取眼球,制備冰凍切片,采用NeuN抗體標(biāo)記視網(wǎng)膜神經(jīng)節(jié)細(xì)胞,采用Immage J軟件定量統(tǒng)計(jì)。取視神經(jīng)全段,制備冰凍切片,采用MBP 抗體標(biāo)記神經(jīng)髓鞘結(jié)構(gòu),采用Immage J軟件定量統(tǒng)計(jì)。

    1.6 統(tǒng)計(jì)學(xué)分析

    本研究中數(shù)據(jù)統(tǒng)計(jì)均采用SPSS 19.0 軟件進(jìn)行。數(shù)據(jù)定量結(jié)果采用均數(shù)±標(biāo)準(zhǔn)差表示。完全隨機(jī)設(shè)計(jì)的多樣本均數(shù)比較采用單因素方差分析方法,多組樣本間兩兩比較時(shí)采用Tukey's multiple comparisons test。P<0.05為差異具有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。

    2 結(jié)果

    2.1 重組病毒1716-OCM體外增殖動(dòng)力及外源基因表達(dá)

    相比于野生型毒株(17+strain,McKrea),疫苗株1716 strain具有較高的減毒特性(圖1A)。體外細(xì)胞增殖培養(yǎng)時(shí),病毒滴度僅為野生型的千分之一;所感染細(xì)胞在更晚時(shí)間點(diǎn)出現(xiàn)CPE病變效應(yīng)(圖1B)。病毒即早期(ICP0,ICP4)和晚期(LAT)基因轉(zhuǎn)錄分析顯示,感染中后期病毒開(kāi)始轉(zhuǎn)錄潛伏相關(guān)轉(zhuǎn)錄本(LAT),從而介導(dǎo)構(gòu)建至LAT啟動(dòng)子下的外源治療基因OCM(圖1C、D)。重組疫苗病毒感染Vero細(xì)胞后免疫熒光及Western blot檢測(cè)顯示,其能夠介導(dǎo)OCM與Vero細(xì)胞中適量表達(dá)(圖1E、F)。

    圖1 1716-ocm重組病毒增殖動(dòng)力及外源基因表達(dá)驗(yàn)證Fig.1 Proliferation kinetics of the recombinant virus and validation of exogenous gene expression.A:Titration of progeny virus after infection of Vero cells.B:Cytopathic effect of Vero cells infected with different viruses(Original magnification:×200).C,D:ICP0,ICP4 and LAT (OCM) transcription in Vero cells infected with HSV-1 17+strain (C) or the recombinant 1716-OCM (D).E:Immunofluorescence staining of OCM in Vero cells infected with 1716-OCM (scale bar:100 μm).F:Western blotting of OCM expression in Vero cells infected with 1716-OCM.

    2.2 1716-OCM重組病毒株在大鼠眼部基因轉(zhuǎn)導(dǎo)

    外源基因OCM免疫熒光染色顯示,HSV重組病毒1716-OCM能夠介導(dǎo)外源基因與大鼠視網(wǎng)膜多層細(xì)胞結(jié)構(gòu)中表達(dá),包括神經(jīng)節(jié)細(xì)胞層,視網(wǎng)膜色素上皮層,脈絡(luò)膜層及鞏膜;但不能轉(zhuǎn)導(dǎo)內(nèi)核層(圖2)。相比于AAV2,AAV5等常見(jiàn)眼部基因轉(zhuǎn)導(dǎo)載體,1716-OCM玻璃體注射能夠更高效的介導(dǎo)RGC 層細(xì)胞的轉(zhuǎn)導(dǎo),且HSV LAT介導(dǎo)的基因轉(zhuǎn)導(dǎo)不僅在感染早期(7 dpi),而且在感染后期(30 dpi)均穩(wěn)定高效表達(dá)外源基因。值得注意的是,病毒接種60 d后,RGC層OCM基因表達(dá)水平明顯下降,但在視網(wǎng)膜外的脈絡(luò)膜及鞏膜區(qū)域表達(dá)仍較為顯著。

    圖2 1716-OCM介導(dǎo)大鼠眼部基因轉(zhuǎn)導(dǎo)Fig.2 OCM expressions in the eyes of rata after intravitreal injection of 1716-OCM detected with immunofluorescence staining(Red)(scale bar:200 μm).

    2.3 1716-OCM重組病毒株眼部注射的安全性檢測(cè)

    由于HSV-1天然具備神經(jīng)嗜性與神經(jīng)毒力,本研究采用疫苗型HSV-1 1716 strain 和野生型KOS,McKrea strain 對(duì)照比較玻璃體接種后的眼部病理變化。野生型HSV-1接種后,可導(dǎo)致大鼠出現(xiàn)白內(nèi)障狀病變,晶體混濁(圖3A、B)。抗HSV包膜蛋白gB免疫熒光顯示,角膜接種的野生型病毒在眼內(nèi)多層細(xì)胞結(jié)構(gòu)中大量復(fù)制,典型視網(wǎng)膜結(jié)構(gòu)受到破壞(圖3C、D)。而減毒型疫苗株1716感染后,并未檢測(cè)到病毒結(jié)構(gòu)蛋白基因的表達(dá);且視網(wǎng)膜結(jié)構(gòu)并未受到明顯損傷,晶狀體清晰。

    考到到HSV-1能夠沿神經(jīng)軸突順行/逆行傳播且可能導(dǎo)致腦炎,研究中采用免疫熒光(anti-HSV gB)檢測(cè)視上丘等腦部結(jié)構(gòu)的病毒復(fù)制。野生型HSV-1眼部接種后,病毒可逆行傳播至上丘腦,并產(chǎn)生病理特征(圖3E)。相比之下,減毒型1716-OCM玻璃體腔注射后,腦各區(qū)域均未檢測(cè)病毒復(fù)制及病理現(xiàn)象。

    圖3 1716-OCM重組病毒株眼部注射的安全性檢測(cè)Fig.3 Safety test of ocular injection of the recombinant virus1716-OCM.A,B:Representative photographs of rat eyes infected with 1716-OCM (A) or wide-type HSV-1 strain (B).C,D:Immunofluorescence staining of viral gB in the eyes infected with the wide-type HSV-1 strain McKrea (C) and 17+(D).E:Immunofluorescence staining of viral gB expression in the epithalamus of the rats infected with 1716-OCM or the wide-type strain.The neurons were stained in green and gB was stained in red(×200,scale bar:200 μm).

    2.4 1716-OCM重組病毒株基因治療在大鼠視神經(jīng)損傷模型中的效果評(píng)價(jià)

    視神經(jīng)損傷后視網(wǎng)膜神經(jīng)節(jié)細(xì)胞顯著減少,這也是目前所認(rèn)為的創(chuàng)傷性視神經(jīng)損傷導(dǎo)致視力受損的主要因素之一(圖4)。在此模型基礎(chǔ)上,進(jìn)行疫苗型HSV 1716-OCM載體治療,以及聯(lián)合眼內(nèi)cAMP注射治療。NeuN陽(yáng)性RGC細(xì)胞免疫熒光染色及統(tǒng)計(jì)分析顯示,疫苗載體介導(dǎo)的OCM基因轉(zhuǎn)導(dǎo)能夠一定程度促進(jìn)視網(wǎng)膜神經(jīng)節(jié)細(xì)胞存活(圖4B、C)。

    由于機(jī)械性視神經(jīng)損傷可導(dǎo)致視神經(jīng)局部少突膠質(zhì)細(xì)胞等壞死(即脫髓鞘);且?jiàn)A持部位視神經(jīng)軸突破碎壞死,并沿神經(jīng)胞體方向退行。本研究采用髓鞘堿性蛋白(MBP)標(biāo)記視神經(jīng)軸突結(jié)構(gòu),對(duì)比分析HSV-OCM基因治療對(duì)軸突完整性的影響。相比于正常生理狀態(tài),夾持后受損部位MBP表達(dá)顯著減少(圖5)。免疫熒光定量分析顯示HSV 1716-OCM基因治療聯(lián)合cAMP 眼內(nèi)注射能夠顯著促進(jìn)軸突再生或免于二次退行損傷(圖4B、C)。

    圖4 1716-OCM基因治療促進(jìn)視神經(jīng)夾持后RGC存活Fig.4 Gene therapy with 1716-OCM promotes retinal ganglion cell (RGC) survival in rat models of optic nerve injury.A:Immunofluorescence staining of RGCs and viral gB expression in the rat eyes at 45 days posttreatment.B,C:Quantitative analysis of the average fluorescence intensity and number of RGCs using Image J Software.*P<0.05,**P<0.01,***P<0.001,****P<0.0001.

    圖5 1716-OCM基因治療抑制視神經(jīng)脫髓鞘Fig.5 Gene therapy with 1716-OCM inhibits demyelination of the optic nerve.A:Immunofluorescence staining of MBP in rat optic nerve 45 days posttreatment.B,C:Quantitative analysis of average fluorescence intensity (B) and integrated fluorescence intensity(C)of MBP staining using Image J Software.*P<0.05,***P<0.001,****P<0.0001.

    視神經(jīng)夾持后大鼠的閃光視覺(jué)誘發(fā)電位(FVEP)模式圖顯著卻別與正常小鼠,其ΔN1-P1峰振幅顯著下降且無(wú)法識(shí)別出典型的P2及P3峰,表現(xiàn)出視覺(jué)電信號(hào)傳導(dǎo)障礙(圖6)。統(tǒng)計(jì)分析顯示,HSV 1716-OCM基因治療聯(lián)合cAMP激活能夠顯著促進(jìn)大鼠ΔN1-P1峰振幅恢復(fù)及P1波延遲縮短,這提示模型鼠視覺(jué)通路修復(fù)(圖6B~D)。

    圖6 FVEP檢測(cè)1716-OCM基因治療后大鼠電生理特征Fig.6 Detection of electrophysiological characteristics of rats after 1716-OCM gene therapy by FVEP.A:Representative images of rat FEVP detection.B-D:Quantitative analysis of ΔN1-P1 amplitude (B) and the incubation periods of N1(C)and P1(D)wave.*P<0.05,**P<0.01,***P<0.001,****P<0.0001.

    3 討論

    本研究表明基于減毒型HSV-1 1716株的新型載體在大鼠眼部基因治療應(yīng)用中具有較高安全性及有效性。早期研究顯示,核糖核苷酸還原酶缺陷的減毒型HSV-1(hrR3 strain)載體能夠有效介導(dǎo)嚙齒類及靈長(zhǎng)目動(dòng)物眼部基因轉(zhuǎn)導(dǎo)[12,13]。然而,該減毒株在介導(dǎo)眼部基因轉(zhuǎn)導(dǎo)時(shí)呈現(xiàn)出較高的復(fù)制能力,病毒可由角膜感染至眼內(nèi)神經(jīng)節(jié)細(xì)胞層,虹膜及視網(wǎng)膜色素上皮層[12,13]。這提示hrR3株仍可能表達(dá)關(guān)鍵的神經(jīng)毒力基因γ34.5并擴(kuò)散感染至其他非靶向組織,安全性較低。相較而言,本研究使用的減毒型1716株由于γ34.5-/-突變,在非癌細(xì)胞中缺乏復(fù)制能力,而初次感染中樞神經(jīng)系統(tǒng)即進(jìn)入潛伏狀態(tài)。此外,減毒型HSV-1 1716-OCM介導(dǎo)的眼部基因治療相比于重組OCM眼內(nèi)注射方式具有理論優(yōu)勢(shì),其可顯著減少治療所需注射次數(shù)。大鼠模型顯示,單次接種即可維持外源基因表達(dá)持續(xù)至少60 d;相比之下,重組神經(jīng)營(yíng)養(yǎng)因子OCM半衰期極短,很難在實(shí)際治療中實(shí)現(xiàn)多次的創(chuàng)傷性眼內(nèi)注射。

    對(duì)HSV-1 LAT 突變株的研究表明,敲除野生型HSV-1 LAT能夠顯著抑制病毒重激活能力[14,15]。本研究中我們將治療基因構(gòu)建至病毒潛伏相關(guān)LAP啟動(dòng)子下游,既確保了外源基因在潛伏狀態(tài)下的持續(xù)表達(dá),同時(shí)也阻斷了病毒LAT轉(zhuǎn)錄本下游區(qū)域的轉(zhuǎn)錄,這進(jìn)一步抑制了病毒重激活的能力。因此,本研究中改造1716-OCM重組病毒比其親本株1716具備更高安全性。我們近期的研究也表明,外源表達(dá)框插入至1716株LAP啟動(dòng)子下游時(shí),能夠介導(dǎo)外源基因在小鼠海馬區(qū)的長(zhǎng)期安全高效表達(dá)[16]??傊x擇1716 strain減毒載體構(gòu)建具有長(zhǎng)期表達(dá)外源基因的新型治療載體具有較為廣闊的應(yīng)用前景。

    近年來(lái),HSV-1基因治療載體相關(guān)研究多聚焦于完全復(fù)制缺陷型載體。例如,復(fù)制缺陷性HSV-1可以高效地將外源基因轉(zhuǎn)染至脊髓背根神經(jīng)節(jié)(DRG)或腦內(nèi)并獲得表達(dá),因此被應(yīng)用于癲癇、慢性疼痛、多發(fā)性硬化癥和缺血性腦損傷等[17-20]。其中復(fù)制缺陷型HSV-1表達(dá)腦啡肽以減輕癌性疼痛的研究已進(jìn)入臨床I期研究[21]。盡管敲除病毒所有即早期基因(ICP0,ICP4,ICP22,ICP27和ICP47)能夠使其完全失去復(fù)制能力,并且不表達(dá)任何病毒相關(guān)基因;但這也導(dǎo)致病毒失去其天然嗜神經(jīng)特性,表現(xiàn)出“泛嗜性”[22-25]。同時(shí),完全復(fù)制缺陷型載體的構(gòu)建也較為復(fù)雜低效,其僅能夠在相應(yīng)的互補(bǔ)細(xì)胞系中復(fù)制。由于病毒基因具有細(xì)胞毒性(如ICP0),穩(wěn)定表達(dá)這些即早期基因的細(xì)胞系較難構(gòu)建[26]。

    然而,本研究尚未明確減毒型1716-OCM載體玻璃體注射后病毒基因組潛伏區(qū)域。對(duì)皰癥性角膜炎潛伏感染的機(jī)制研究顯示,野生型HSV-1角膜感染后可沿視神經(jīng)軸突逆行傳播至面部三叉神經(jīng)節(jié)部位[27,28]。病毒雖感染裂殖部分神經(jīng)節(jié)細(xì)胞,但隨后進(jìn)入潛伏感染階段[29,30]。本研究中使用HSV-1 1716-OCM疫苗載體進(jìn)行玻璃體腔接種,雖在視網(wǎng)膜RGC,RPE層檢測(cè)到目的基因的長(zhǎng)期表達(dá),但尚不能確認(rèn)OCM基因產(chǎn)物是三叉神經(jīng)節(jié)潛伏表達(dá)并順行傳導(dǎo)至視網(wǎng)膜區(qū)域,還是視網(wǎng)膜部位的潛伏表達(dá)。后續(xù)研究中,我們將進(jìn)一步明確疫苗型1716-OCM基因載體眼部接種后的病毒感染分子機(jī)制,確認(rèn)其潛伏部位,潛伏時(shí)間,表達(dá)產(chǎn)物順行/逆行軸漿轉(zhuǎn)運(yùn)現(xiàn)象等。

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