郭亞凈, 任 靜, 劉 寒, 李亭亭, 王 洪
(河北中醫(yī)學(xué)院中西醫(yī)結(jié)合學(xué)院,河北石家莊050200)
腦出血(intracerebral hemorrhage,ICH)具有很高的死亡率和致殘率,占所有卒中類型的15%~20%,且其發(fā)病人數(shù)呈逐年上升趨勢(shì)[1]。并且,大多數(shù)幸存者會(huì)遺留不同程度的神經(jīng)功能障礙[2]。大量研究表明,血腦屏障破壞、腦水腫、炎癥反應(yīng)和凝血酶毒性效應(yīng)等繼發(fā)性腦損傷是導(dǎo)致神經(jīng)功能障礙,造成不良預(yù)后的主要原因[3-4]。
胱天蛋白酶1(caspase-1)作為炎癥性半胱天冬酶,介導(dǎo)細(xì)胞固有免疫炎癥反應(yīng),促進(jìn)白細(xì)胞介素1β(interleukin-1β,IL-1β)和IL-18等炎癥因子的成熟與釋放。同時(shí),caspase-1還能使細(xì)胞焦亡執(zhí)行蛋白gasdermin D(GSDMD)發(fā)生剪切,并在細(xì)胞膜聚集,造成細(xì)胞穿孔,引起細(xì)胞焦亡[5]。實(shí)驗(yàn)研究顯示,caspase-1介導(dǎo)的炎癥反應(yīng)和細(xì)胞焦亡參與多種神經(jīng)相關(guān)性疾病的發(fā)展過程[6-10]。然而,其在ICH后神經(jīng)損傷中是否起作用仍不十分清楚。
本課題組利用自體非抗凝血注射法制造大鼠ICH模型,采用腦室內(nèi)注射caspase-1選擇性抑制劑Ac-YVAD-CMK的方法,觀察caspase-1介導(dǎo)的細(xì)胞焦亡在ICH后神經(jīng)損傷中的作用。
SPF級(jí)雄性Sprague-Dawley(SD)大鼠,8~10周齡,體重約250~300 g,購(gòu)于北京維通利華實(shí)驗(yàn)動(dòng)物技術(shù)有限公司,動(dòng)物許可證號(hào)為SCXK(京)2016-0006。飼養(yǎng)條件,溫度恒定為(22±1)℃,濕度為(50±20)%,光照條件為晝夜各12 h,自由飲食、水。適應(yīng)性飼養(yǎng)1周后,開始第1部分實(shí)驗(yàn)。將30只大鼠隨機(jī)分為5組(每組6只大鼠):假手術(shù)(sham)組、ICH 12 h組、ICH 24 h組、ICH 48 h組和ICH 72 h組。采用Western blot方法,觀察caspase-1和GSDMD在ICH后的表達(dá)及激活情況,選取活化變化最明顯的時(shí)間點(diǎn)。根據(jù)第1部分實(shí)驗(yàn)結(jié)果,采用同樣的造模方式,開始第2部分實(shí)驗(yàn):54只大鼠隨機(jī)平均分為3組(每組18只大鼠):sham組、ICH組和Ac-YVAD-CMK給藥組(YVAD組),用于觀察Ac-YVAD-CMK的作用。造模過程中未出現(xiàn)動(dòng)物死亡情況,成功率為100%。動(dòng)物實(shí)驗(yàn)程序通過河北中醫(yī)學(xué)院實(shí)驗(yàn)動(dòng)物倫理委員會(huì)批準(zhǔn)(編號(hào)DWLL-2018005)。
Ac-YVAD-CMK購(gòu)自APExBIO;BCA蛋白濃度測(cè)定試劑盒、神經(jīng)元核抗原(neuronal nuclei,NeuN;神經(jīng)元特異性核蛋白)抗體、離子鈣結(jié)合接頭分子1(ionized calcium-binding adaptor molecule-1,Iba-1;小膠質(zhì)細(xì)胞標(biāo)志物)抗體和β-actin抗體購(gòu)自Servicebio;ECL顯色試劑盒購(gòu)自北京康為世紀(jì)生物科技有限公司;caspase-1和GSDMD抗體購(gòu)自Santa Cruz;IL-1β和IL-18抗體購(gòu)自Abcam;辣根過氧化物酶標(biāo)記的Ⅱ抗IgG購(gòu)自Cell Signaling Technology;TUNEL試劑盒購(gòu)自Roche;Fluoro-Jade C(FJC)染色劑購(gòu)自Millipore。
3.1 Ac-YVAD-CMK給藥方法 給藥方法參考已有文獻(xiàn)[11]。將Ac-YVAD-CMK溶解于DMSO中,用PBS進(jìn)一步稀釋至濃度為1 g/L(DMSO終濃度<0.2%)待用。大鼠稱重,1%戊巴比妥鈉,100 mL/kg腹腔注射麻醉。待大鼠麻醉成功后,將其固定于全自動(dòng)腦立體定位儀上(51700,Stoelting),剪去大鼠頭頂毛發(fā),碘伏消毒,剪開大鼠頭部正中皮膚約1 cm×1 cm,輕輕擦拭掉顱骨表面筋膜及軟組織,定位前囟,然后以前囟作為原點(diǎn),向后1.0 mm、向右旁開1.5 mm標(biāo)記為穿刺點(diǎn),顱鉆垂直向下鉆開一個(gè)直徑約1 mm的注射孔,將裝有Ac-YVAD-CMK的微量注射器安裝到電動(dòng)注射裝置上,垂直向下進(jìn)針4.5 mm穿刺進(jìn)入腦室后,以1μL/min的速度注入Ac-YVAD-CMK,每只大鼠注射1μL。注藥完畢后留針3 min,再緩慢退針。sham組和ICH組操作方法同上,以等體積PBS稀釋的DMSO注入側(cè)腦室,不注入任何藥物。
3.2 ICH模型的制備 側(cè)腦室注射Ac-YVAD-CMK 20 min后,建立ICH模型。以前囟作為原點(diǎn),向前0.12 mm、向右旁開3.8 mm標(biāo)記為穿刺點(diǎn),然后用顱鉆垂直向下鉆開直徑約1 mm的注射孔。碘伏擦拭大鼠尾尖,剪斷尾尖取血,迅速將100μL血液轉(zhuǎn)移到微量注射器中,將微量注射器安裝到電動(dòng)注射裝置上,垂直向下進(jìn)針5.5 mm穿刺進(jìn)入紋狀體,以10μL/min的速度注入自體非抗凝血,注射結(jié)束后停針20 min,然后緩慢退針。最后用骨蠟封閉注射孔,并用手術(shù)線縫合切口。
3.3 神經(jīng)功能評(píng)價(jià) (1)前肢放置實(shí)驗(yàn)用于評(píng)價(jià)大鼠的感覺運(yùn)動(dòng)功能:測(cè)試者握住大鼠背部皮膚使四肢懸空,將大鼠胡須接觸桌面邊緣誘導(dǎo)其將前肢放置于桌面上,紋狀體受損大鼠,其受損對(duì)側(cè)肢體將出現(xiàn)不同程度的放置能力缺失。大鼠每側(cè)受測(cè)10次,左側(cè)前肢成功放置的百分率反應(yīng)損傷情況。(2)轉(zhuǎn)角實(shí)驗(yàn)用于評(píng)價(jià)大鼠肢體協(xié)調(diào)功能:將大鼠放入一個(gè)兩塊板所形成的30°夾角內(nèi),使其轉(zhuǎn)身,觀察并記錄大鼠向左側(cè)轉(zhuǎn)身的次數(shù)。每只大鼠重復(fù)放置10次,每次間隔至少30 s,左側(cè)轉(zhuǎn)身次數(shù)百分率反應(yīng)損傷情況。(3)改良神經(jīng)功能缺損評(píng)分(modified neurologi?cal severity score,mNSS)用于評(píng)價(jià)大鼠的運(yùn)動(dòng)、感覺、平衡和反射功能:評(píng)分范圍為0~18分,分值越高,其神經(jīng)損害越嚴(yán)重,評(píng)分方法參考相關(guān)文獻(xiàn)[12]。
3.4 干濕比重法 用于檢測(cè)腦組織含水量,觀察水腫情況。大鼠麻醉后,迅速取腦組織。將其分為病灶側(cè)皮質(zhì)、病灶側(cè)基底、病灶對(duì)側(cè)皮質(zhì)、病灶對(duì)側(cè)基底及小腦5個(gè)部分。將腦組織分別放入錫紙中,稱量濕重并記錄。然后,將錫紙包裹的腦組織,放入恒溫干燥箱(UF160,Memmert)中,以100℃烘干24 h。將烘烤后的腦組織取出,稱量干重。腦組織含水量(%)=(濕重?干重)/濕重×100%。
3.5 標(biāo)本的留取和制備 將麻醉成功的大鼠固定于操作臺(tái)上,充分暴露大鼠胸腔,在右心耳處做一小切口。自左心室注入冰冷的生理鹽水,將心血管系統(tǒng)內(nèi)的血液沖洗干凈。腦組織完整取出后去除小腦和腦干,僅留大腦。用于病理學(xué)檢測(cè)的組織,在血液注射進(jìn)針點(diǎn)冠狀面將大腦分為前后兩部分,放入4%組織細(xì)胞固定液中進(jìn)行固定,隨后進(jìn)行蠟塊包埋和組織切片;用于Western blot檢測(cè)的組織,以血液注射進(jìn)針點(diǎn)冠狀面為基準(zhǔn),分別向其前后延伸1 mm距離,切取厚約2 mm的腦組織切片,并留取患側(cè)紋狀體腦組織,于液氮中存放24 h后,轉(zhuǎn)入?80℃冰箱備用。所有操作均在冰上快速進(jìn)行,以防止蛋白酶降解蛋白。
3.6 HE染色 用于觀察血腫周圍腦組織病理學(xué)變化及水腫情況。正置顯微鏡下(DM5300,Leica),每張切片選取4個(gè)視野進(jìn)行拍照,每只動(dòng)物選取3張切片進(jìn)行觀察。
3.7 FJC染色 用于檢測(cè)血腫周圍神經(jīng)元退化情況。石蠟?zāi)X組織切片脫蠟至水后,用PBS沖洗,每次5 min,沖洗3次后將切片浸入0.06%的髙錳酸鉀溶液中10 min(在搖床上輕搖)。從高錳酸鉀溶液中取出切片,PBS沖洗3次,每次5 min。在避光環(huán)境下,將切片轉(zhuǎn)移浸入0.000 1%的FJC染色液中染色30 min。用蒸餾水沖洗3次,每次5 min,切片周圍水用紙巾擦干,晾干5 min,烤箱中(50℃)烘烤5 min。然后,將干燥后的切片置于二甲苯中進(jìn)行透明,用抗熒光淬滅封片劑封片。熒光顯微鏡下(DM5300,Lei?ca),每張切片選取血腫周圍組織4個(gè)視野進(jìn)行拍照,并用ImageJ軟件進(jìn)行FJC陽(yáng)性細(xì)胞數(shù)量統(tǒng)計(jì)。
3.8 Western blot 用RIPA裂解液進(jìn)行腦組織勻漿后,在4℃下,12 000×g離心15 min。然后收集上清液,使用BCA蛋白檢測(cè)試劑盒檢測(cè)蛋白濃度。將含有50μg蛋白質(zhì)的上清液加入SDS-PAGE分離,然后將分離的蛋白質(zhì)轉(zhuǎn)移到PVDF膜上。5%脫脂牛奶封閉PVDF膜后,分別孵育caspase-1、GSDMD、IL-1β、IL-18和β-actin抗體,于4℃過夜。然后,將TBST洗滌后的PVDF膜孵育過氧化物辣根酶標(biāo)記的Ⅱ抗,于室溫下放置90 min。使用ECL顯色試劑盒進(jìn)行顯影,多功能激光掃描系統(tǒng)(Fusion FX5 Spectra,Vil?ber)檢測(cè)蛋白含量,ImageJ軟件進(jìn)行灰度分析。
3.9 免疫熒光雙標(biāo)染色 石蠟切片脫蠟至水,稍甩干后用3%H2O2處理切片10 min,抑制內(nèi)源性過氧化酶的活性,PBS漂洗3次,每次5 min。放入枸櫞酸鹽緩沖液中加熱修復(fù)抗原10 min,室溫冷卻,PBS漂洗3次,每次5 min;滴加羊血清,于37℃恒溫箱中封閉1 h;輕輕甩掉封閉液,在切片上滴加鼠源和兔源Ⅰ抗(GSDMD和Iba-1抗體,或GSDMD和NeuN抗體),于濕盒內(nèi)4℃孵育過夜;次日用PBS漂洗3次,每次5 min。切片滴加兩種相應(yīng)種屬的熒光Ⅱ抗,避光室溫孵育30 min。PBS中漂洗3次后,滴加DAPI染液,避光室溫孵育10 min。PBS中漂洗3次,抗熒光淬滅封片劑封片。正置熒光顯微鏡下(DM5300,Leica),觀察并采集圖像,用ImageJ軟件進(jìn)行分析。
3.10 免疫熒光與TUNEL雙染 TUNEL(綠色)和Iba-1(紅色)雙染色用于評(píng)估ICH后小膠質(zhì)細(xì)胞焦亡情況。石蠟切片經(jīng)脫蠟至水、抑制內(nèi)源性過氧化酶、抗原修復(fù)步驟后,根據(jù)TUNEL檢測(cè)試劑盒(Roche)說明書,進(jìn)行TUNEL染色;然后往切片上加入Iba-1抗體,4℃孵育過夜;次日將切片與熒光染料標(biāo)記的Ⅱ抗在室溫黑暗環(huán)境中孵育2 h;最后DAPI染核,抗熒光淬滅封片劑封片。在正置熒光顯微鏡下進(jìn)行觀察和拍照,每個(gè)切片在血腫周圍選取3個(gè)視野,每個(gè)腦組織選取3個(gè)切片進(jìn)行觀察。使用ImageJ軟件分析TUNEL陽(yáng)性小膠質(zhì)細(xì)胞數(shù)量。
用GraphPad Prism 7軟件進(jìn)行統(tǒng)計(jì)分析。數(shù)據(jù)均采用均數(shù)±標(biāo)準(zhǔn)誤(mean±SEM)表示。多組間均數(shù)比較采用單因素方差分析(one-way ANOVA),兩兩比較采用Tukey's檢驗(yàn)。以P<0.05為差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。
Western blot結(jié)果顯示,與sham組比較,caspase-1、pro-caspase-1、caspase-1/pro-caspase-1、GSDMD-N、GSDMD和GSDMD-N/GSDMD均在ICH后72 h時(shí)顯著升高(P<0.05),并且在72 h時(shí)病變最為明顯,見圖1。因此,本課題組選擇ICH 72 h時(shí)點(diǎn)作為后續(xù)實(shí)驗(yàn)時(shí)點(diǎn)。
Figure 1.Western blot results for the changes of caspase-1(A)and GSDMD(B)activation and expression in the perihematoma after intracerebral hemorrhage(ICH).Mean±SEM.n=6.*P<0.05,**P<0.01 vs sham group.圖1 腦出血后血腫周圍組織caspase-1和GSDMD的激活及蛋白表達(dá)
前肢放置實(shí)驗(yàn)結(jié)果顯示,與sham組比較,ICH大鼠左側(cè)前肢放置成功率顯著下降(P<0.01),而抑制caspase-1顯著提高了大鼠左側(cè)前肢放置成功率(P<0.05),見圖2A。轉(zhuǎn)角實(shí)驗(yàn)結(jié)果顯示,與sham組比較,ICH大鼠左側(cè)轉(zhuǎn)身的百分比顯著下降(P<0.05),而抑制caspase-1顯著提高了大鼠左側(cè)轉(zhuǎn)身的百分比(P<0.05),見圖2B。mNSS結(jié)果顯示,與sham組比較,ICH大鼠mNSS顯著升高(P<0.01),而抑制caspase-1顯著降低了大鼠mNSS(P<0.05),見圖2C。
Figure 2.Neurological function assessment in the rats with intracerebral hemorrhage(ICH).A:forelimb placement test;B:corner turn test;C:modified neurological severity score(mNSS).Mean±SEM.n=6.*P<0.05,**P<0.01 vs sham group;#P<0.05 vs ICH group.圖2 腦出血大鼠的神經(jīng)功能評(píng)估結(jié)果
HE染色結(jié)果顯示,sham組大鼠腦組織中神經(jīng)細(xì)胞排列整齊、分布勻稱,細(xì)胞組織結(jié)構(gòu)染色均勻;ICH組大鼠血腫周圍腦組織中小膠質(zhì)細(xì)胞數(shù)量增加,神經(jīng)細(xì)胞腫脹,排布不均,部分細(xì)胞固縮性壞死,染色加深;YVAD組大鼠血腫周圍腦組織中神經(jīng)細(xì)胞腫脹明顯減輕,固縮壞死細(xì)胞數(shù)量減少,見圖3A。干濕比重結(jié)果顯示,與sham組比較,ICH大鼠病灶側(cè)基底顯著水腫(P<0.05),而抑制caspase-1顯著緩解了病灶側(cè)基底的水腫(P<0.05),見圖3B。然而,與sham組比較,ICH大鼠病灶側(cè)皮質(zhì)、病灶對(duì)側(cè)基底、病灶對(duì)側(cè)皮質(zhì)及小腦的水腫情況無(wú)顯著差異。FJC染色結(jié)果顯示,與sham組比較,ICH大鼠血腫周圍腦組織中FJC染色陽(yáng)性細(xì)胞數(shù)量顯著增加(P<0.05),而抑制caspase-1顯著減少了FJC染色陽(yáng)性細(xì)胞的數(shù)量(P<0.05),見圖3C、D。
Figure 3.Nerve injury in the rats with intracerebral hemorrhage(ICH).A:HE staining was used to observe the histopathological changes in the surrounding tissues of hematoma(scale bar=50μm);B:the changes of brain water content in different parts of brain tissue(Ispi:ispilateral;Cont:contralateral;BG:basal ganglia;CX:cortex)in each group;C:representa?tive microphotographs and quantitative analysis of Fluoro-Jade C(FJC)-positive neurons in the surrounding tissues of hema?toma(scale bar=50μm);D:representative image of the surrounding tissues of hematoma.Mean±SEM.n=6.*P<0.05 vs shamgroup;#P<0.05 vs ICH group.圖3 腦出血大鼠神經(jīng)損傷情況
Western blot結(jié)果顯示,與sham組比較,ICH大鼠腦組織中caspase-1、pro-caspase-1、caspase-1/pro-cas?pase-1、GSDMD-N、GSDMD和GSDMD-N/GSDMD均顯著升高(P<0.05),而抑制caspase-1顯著降低了上述蛋白的表達(dá)及激活水平(P<0.05),見圖4。
免疫熒光雙標(biāo)結(jié)果顯示,與sham組比較,ICH大鼠血腫周圍腦組織中GSDMD陽(yáng)性表達(dá)小膠質(zhì)細(xì)胞的數(shù)量顯著增加(P<0.01),而抑制caspase-1顯著減少了GSDMD陽(yáng)性表達(dá)小膠質(zhì)細(xì)胞的數(shù)量(P<0.01),見圖5A。免疫熒光與TUNEL共染色結(jié)果顯示,與sham組比較,ICH大鼠血腫周圍腦組織中TUNEL陽(yáng)性小膠質(zhì)細(xì)胞的數(shù)量顯著增加(P<0.01),而抑制caspase-1顯著減少了TUNEL陽(yáng)性小膠質(zhì)細(xì)胞的數(shù)量(P<0.05),見圖5B。免疫熒光雙標(biāo)結(jié)果顯示,ICH組大鼠血腫周圍腦組織中GSDMD陽(yáng)性表達(dá)神經(jīng)元數(shù)量與sham組比較無(wú)顯著差異,見圖5C。
Western blot結(jié)果顯示,與sham組比較,ICH大鼠腦組織中IL-1β和IL-18蛋白表達(dá)顯著升高(P<0.05),而抑制caspase-1顯著降低了IL-1β和IL-18的表達(dá)(P<0.05),見圖6。
Figure 4.Western blot results showed that Ac-YVAD-CMK inhibited the activation and protein expression of caspase-1(A)and GSDMD(B).Mean±SEM.n=6.*P<0.05 vs shamgroup;#P<0.05 vs ICH group.圖4 Ac-YVAD-CMK抑制caspase-1和GSDMD的激活及蛋白表達(dá)
細(xì)胞焦亡是一種炎癥程序性細(xì)胞死亡方式,兼具凋亡和壞死的特征[13]。焦亡細(xì)胞病理表現(xiàn)為核固縮,DNA斷裂,TUNEL染色為陽(yáng)性,但胞體增大,胞膜完整性被破壞,胞膜上形成1~2 nm的膜孔[5]。GSDMD是細(xì)胞焦亡的效應(yīng)蛋白,屬于gasdermin家族。GSDMD被激活的caspase剪切,釋放N末端與細(xì)胞膜的脂質(zhì)融合,形成膜孔,改變細(xì)胞的滲透壓,破壞細(xì)胞膜的功能,使得細(xì)胞膜破裂,導(dǎo)致細(xì)胞焦亡[14]。
焦亡途徑包括caspase-11或caspase-4/5介導(dǎo)的非經(jīng)典焦亡途徑和caspase-1介導(dǎo)的經(jīng)典焦亡途徑。在刺激信號(hào)作用下,pro-caspase-1被招募到炎癥小體后二聚體化,激活其自身的蛋白酶活性,自剪切形成具有催化活性的caspase-1,caspase-1切割pro-IL-1β和pro-IL-18,使其活化成為有活性的IL-1β和IL-18,活化后的炎癥因子通過GSDMD形成的膜孔釋放至細(xì)胞外,募集更多的炎癥細(xì)胞聚集,擴(kuò)大炎癥反應(yīng)[15-16]。研究結(jié)果顯示,ICH大鼠患側(cè)紋狀體中cas?pase-1和GSDMD的表達(dá)及活化在72 h內(nèi)逐漸升高,表明ICH大鼠腦組織中出現(xiàn)了細(xì)胞焦亡。
Ac-YVAD-CMK是一種caspase-1選擇性抑制劑,有研究顯示其可以改善膠原酶誘導(dǎo)的ICH小鼠或大鼠的神經(jīng)功能障礙和caspase-1介導(dǎo)的炎癥反應(yīng)[11,17]。為了進(jìn)一步證實(shí)caspase-1介導(dǎo)的細(xì)胞焦亡對(duì)ICH后神經(jīng)損傷的影響,我們?cè)谥苽銲CH模型前,將Ac-YVAD-CMK注入側(cè)腦室,觀察其對(duì)大鼠神經(jīng)損傷和神經(jīng)功能的作用。結(jié)果顯示,Ac-YVAD-CMK顯著改善了大鼠的神經(jīng)功能障礙、組織病理學(xué)變化和腦組織水腫,減少了退行性神經(jīng)元的數(shù)量,說明抑制caspase-1顯著地改善了ICH大鼠的神經(jīng)功能障礙和神經(jīng)損傷,與其他學(xué)者的研究結(jié)果一致。同時(shí),Ac-YVAD-CMK顯著降低了ICH大鼠患側(cè)紋狀體內(nèi)caspase-1和GSDMD的表達(dá)及激活水平,降低了IL-1β和IL-18的表達(dá)水平,說明抑制caspase-1顯著抑制了ICH大鼠腦組織中的細(xì)胞焦亡。這些結(jié)果表明,caspase-1介導(dǎo)的細(xì)胞焦亡在ICH大鼠的神經(jīng)損傷和神經(jīng)功能障礙中發(fā)揮重要作用。
小膠質(zhì)細(xì)胞是中樞神經(jīng)系統(tǒng)內(nèi)特有的固有免疫細(xì)胞,約占腦內(nèi)所有細(xì)胞總數(shù)的5%~10%[18]。當(dāng)中樞神經(jīng)系統(tǒng)受到損害時(shí),小膠質(zhì)細(xì)胞數(shù)分鐘即被激活,并遷移到損傷部位[19-20]。激活后的小膠質(zhì)細(xì)胞存在M1和M2兩種狀態(tài):M1狀態(tài)下的小膠質(zhì)細(xì)胞主要作用為釋放多種促炎因子來(lái)加強(qiáng)炎癥反應(yīng),例如IL-1β、IL-18和MCP-1等[21],M2狀態(tài)下的小膠質(zhì)細(xì)胞主要作用則為抑制炎癥反應(yīng)[22-23]。當(dāng)小膠質(zhì)細(xì)胞被過度活化,其釋放大量的促炎細(xì)胞因子、趨化因子和氧化代謝物等會(huì)加劇神經(jīng)損傷[24]。有研究顯示,ICH發(fā)生后數(shù)分鐘內(nèi)小膠質(zhì)細(xì)胞即被激活,且主要表現(xiàn)為M1型,產(chǎn)生IL-6和TNF-α等細(xì)胞因子,促進(jìn)炎癥反應(yīng),加重腦組織損傷[25]。雖然我們的研究結(jié)果顯示,ICH大鼠腦組織中發(fā)生caspase-1介導(dǎo)的炎癥反應(yīng)和細(xì)胞焦亡,但焦亡發(fā)生在小膠質(zhì)細(xì)胞內(nèi)還是神經(jīng)元內(nèi)仍不清楚。為了進(jìn)一步進(jìn)行驗(yàn)證,我們采用免疫熒光雙標(biāo)和免疫熒光與TUNEL共染色的方法進(jìn)行觀察。結(jié)果顯示,ICH大鼠血腫周圍腦組織中GSDMD和TUNEL陽(yáng)性小膠質(zhì)細(xì)胞數(shù)量顯著增加,Ac-YVAD-CMK可以顯著減少GSDMD和TUNEL陽(yáng)性小膠質(zhì)細(xì)胞的數(shù)量。然而,對(duì)照組與ICH組大鼠血腫周圍腦組織中GSDMD陽(yáng)性神經(jīng)元的數(shù)量無(wú)顯著差異。這些結(jié)果說明ICH大鼠腦組織中caspase-1介導(dǎo)的細(xì)胞焦亡主要發(fā)生在小膠質(zhì)細(xì)胞內(nèi)。
Figure 5.The results of double immunofluorescence labeling and co-staining of immunofluorescence and TUNEL.A:representative microphotographs and quantitative analysis of GSDMD-positive microglia in the surrounding tissues of hematoma;B:repre?sentative microphotographs and quantitative analysis of TUNEL-positive microglia in the surrounding tissues of hematoma;C:representative microphotographs and quantitative analysis of GSDMD-positive neurons in the surrounding tissues of he?matoma.The scale bar=50μm.Mean±SEM.n=6.**P<0.01 vs sham group;#P<0.05,##P<0.01 vs ICH group.圖5 免疫熒光雙標(biāo)和免疫熒光與TUNEL共染色結(jié)果
Figure 6.Western blot results showed that Ac-YVAD-CMK in?hibited the expression of IL-1β(A)and IL-18(B).Mean±SEM.n=6.*P<0.05,**P<0.01 vs sham group;#P<0.05 vs ICH group.圖6 Ac-YVAD-CMK抑制IL-1β和IL-18蛋白表達(dá)
綜上所述,大鼠ICH發(fā)生后,小膠質(zhì)細(xì)胞被激活,發(fā)生caspase-1介導(dǎo)的炎癥反應(yīng)和細(xì)胞焦亡,釋放大量炎癥因子,造成周圍神經(jīng)元退化,導(dǎo)致神經(jīng)損傷和神經(jīng)功能障礙。然而,造成小膠質(zhì)細(xì)胞激活和神經(jīng)元退化的機(jī)制仍有待進(jìn)一步研究。