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    原核表達(dá)家蠅抗菌肽Phormicin A,B蛋白對(duì)大腸桿菌標(biāo)準(zhǔn)株的影響

    2019-12-30 05:01:24王代琴韋鵬威吳建偉
    生物加工過程 2019年6期
    關(guān)鍵詞:家蠅原核抗菌肽

    王 兵,杜 兵,王代琴,覃 海,韋鵬威,姚 楊,萬 珊,王 濤,吳建偉

    (1.貴州醫(yī)科大學(xué) 生物與工程學(xué)院 生物技術(shù)教研室,貴州 貴陽 550025;2.貴州醫(yī)科大學(xué) 醫(yī)藥生物技術(shù)工程研究中心,貴州 貴陽 550025;3.貴州醫(yī)科大學(xué)第一附屬醫(yī)院 微生物免疫科,貴州 貴陽 550025;4.貴州醫(yī)科大學(xué) 基礎(chǔ)醫(yī)學(xué)院 微生物學(xué)教研室,貴州 貴陽 550025;5.貴州醫(yī)科大學(xué) 基礎(chǔ)醫(yī)學(xué)院 病原生物學(xué)教研室,貴州 貴陽 550025)

    超級(jí)耐藥菌的出現(xiàn),使人們愈發(fā)意識(shí)到病原菌抗生素耐藥問題的嚴(yán)重性,傳統(tǒng)抗生素現(xiàn)已不能滿足耐藥病原菌臨床治療的需求[1-4]??咕氖墙陙硇屡d的新型抗菌劑,關(guān)于其對(duì)病原菌的研究也有諸多報(bào)道[5-7]。Li等[8]發(fā)現(xiàn)眼鏡王蛇蛇毒抗菌肽OH-CATH30對(duì)臨床耐藥銅綠假單胞菌引起的角膜炎具有很好的治療效果。Wei等[9]發(fā)現(xiàn)了一種既具有強(qiáng)抗菌能力又可抑制炎癥反應(yīng)的新型抗菌肽Cathelicidin-P Y。 Chromek等[10]發(fā)現(xiàn)cathelicidin型抗菌肽LL37可以保護(hù)尿路防止被大腸桿菌侵入感染??咕挠捎诳蛇M(jìn)行多靶點(diǎn)作用,不易產(chǎn)生耐藥性,因而已成為新型抗菌劑藥物候選者和研究的熱點(diǎn)[7,11-12]。

    家蠅(housefly,Muscadomestica)又名蒼蠅,能夠在臟而復(fù)雜的環(huán)境中生存,很大程度上是依賴其強(qiáng)大的免疫系統(tǒng)[13-15]。而抗菌肽則是其免疫系統(tǒng)中非常重要的一類物質(zhì),在其天然免疫系統(tǒng)中發(fā)揮著重要的作用。防御素則是抗菌肽中被研究的較多的一種[12,16]。Phormicin 是早在1989年于綠蠅(Phormiaterranovae)中被首先發(fā)現(xiàn)的,被稱為綠蠅防御素的抗菌肽,同時(shí)還發(fā)現(xiàn)了2個(gè)成員Phormicin A、B,但二者只相差一個(gè)氨基酸,且只對(duì)革蘭氏陽性菌有抑制效果[17-18]。大腸桿菌是在臨床造成尿路感染的一種常見菌[10]。

    筆者及所在課題組已經(jīng)克隆了家蠅防御素家族Phormicin A、B基因,將去掉信號(hào)肽的部分分別構(gòu)建于原核表達(dá)載體pET28a上,之后采用原核表達(dá)法獲得了二者蛋白。本研究以家蠅防御素家族PhormicinA、B抗菌肽為研究對(duì)象,探究其原核表達(dá)蛋白對(duì)大腸桿菌的作用效果,并繪制了時(shí)間抑菌曲線,以期為抗臨床大腸桿菌抗感染藥物的研發(fā)提供一定的參考。

    1 材料與方法

    1.1 材料

    1.1.1 菌株與質(zhì)粒

    菌株E.coliDH5α克隆菌株、E.coliBL21(DE3)表達(dá)菌株,北京索萊寶有限公司;E.coli標(biāo)準(zhǔn)株(ATCC25922),由貴州醫(yī)科大學(xué)微生物教研室王濤老師提供;質(zhì)粒pET-28a(+),北京安諾倫生物科技有限公司;質(zhì)粒pMD19-T,北京寶日醫(yī)生物技術(shù)有限公司。

    1.1.2 酶與主要試劑

    限制性內(nèi)切酶、T4 DNA連接酶、DNA聚合酶,美國(guó)NEB公司;質(zhì)粒小抽試劑盒、DNA回收試劑盒, 杭州AXYGEN愛思進(jìn)生物技術(shù)有限公司;Ni-NTA His.Bind蛋白純化試劑盒、其他相關(guān)耗材,德國(guó)Merck公司;Tricine-SDS-PAGE小分子蛋白電泳試劑盒,北京索萊寶有限公司。

    1.2 實(shí)驗(yàn)方法

    1.2.1 基因片段的擴(kuò)增及質(zhì)粒構(gòu)建

    以家蠅cDNA為模板,采用PCR法擴(kuò)增,利用分子生物學(xué)方法,并將不含信號(hào)肽的部分片段插入到pET28a載體上構(gòu)建原核表達(dá)質(zhì)粒,所用引物有Phormicin A 28 F:C ̄T ̄A ̄G ̄C ̄T ̄A ̄G ̄C ̄T ̄C ̄T ̄C ̄C ̄T ̄G ̄C ̄C ̄C ̄C ̄C ̄A ̄A ̄A ̄G ̄A ̄G ̄G ̄A ̄A ̄G; Phormicin A 28 R:C ̄C ̄G ̄C ̄T ̄C ̄G ̄A ̄G ̄G ̄T ̄T ̄A ̄C ̄G ̄G ̄C ̄A ̄A ̄A ̄C ̄A ̄C ̄A ̄A ̄A ̄C ̄A ̄C ̄C ̄C; Phormicin B 28 F:C ̄T ̄A ̄G ̄C ̄T ̄A ̄G ̄C ̄T ̄T ̄G ̄C ̄C ̄C ̄G ̄C ̄A ̄G ̄A ̄G ̄G ̄A ̄A ̄G ̄C ̄C ̄A ̄A ̄C; Phormicin B 28 R:C ̄C ̄G ̄C ̄T ̄C ̄G ̄A ̄G ̄A ̄T ̄T ̄A ̄C ̄G ̄G ̄C ̄A ̄A ̄A ̄C ̄A ̄C ̄A ̄T ̄A ̄C ̄A ̄G ̄C ̄C ̄C ̄T ̄G ̄C。

    1.2.2 目的蛋白的原核表達(dá)及檢測(cè)

    將構(gòu)建好的原核表達(dá)質(zhì)粒轉(zhuǎn)化入大腸桿菌BL21(DE3)中,挑取單克隆37 ℃搖菌并保種。將菌種接入無菌LB培養(yǎng)基中,放入37 ℃、200 r/min 恒溫?fù)u床培養(yǎng)2.5 h,酶標(biāo)儀測(cè)OD600。當(dāng)OD600介于0.3~0.5時(shí),取出菌液并冷卻到4 ℃后實(shí)驗(yàn)組加入誘導(dǎo)劑IPTG,使誘導(dǎo)劑的最終0.4~0.6 mmol/L。加好IPTG后,繼續(xù)放入22 ℃、160 r/min恒溫?fù)u床繼續(xù)培養(yǎng)6~12 h。棄上清后離心(本文中如無特殊說明,離心均采用12 000 r/min)收集菌體,高壓均質(zhì)儀破碎后PBS緩沖液重懸備用。根據(jù)實(shí)驗(yàn)需要,再次離心,分為上清和沉淀。若目的蛋白在沉淀中,則加入8 mol/L尿素促溶解后放入透析袋。梯度透析法對(duì)目的蛋白進(jìn)行透析和重折疊[19-20]。將折疊后目的蛋白粗懸液用濾膜過濾除雜。通過Ni-NTA His.Bind蛋白純化試劑盒純化制備目的蛋白。分別加入蛋白上樣緩沖液后煮沸制備蛋白電泳樣品。Tricine-SDS-PAGE小分子蛋白電泳試劑盒制備小分子膠(16.5%分離膠,10%夾層膠,4%濃縮膠)后,上樣、電泳,考馬斯亮藍(lán)染色,冰醋酸脫色后,檢測(cè)目的蛋白表達(dá)及純化情況。為進(jìn)一步確定蛋白濃度,可用Nanodrop 2000設(shè)備和BCA試劑盒共同測(cè)定蛋白樣品濃度。

    1.2.3 微量液體稀釋法測(cè)定抗菌肽原核表達(dá)蛋白的最小抑菌濃度(MIC)

    提前1 d將大腸桿菌標(biāo)準(zhǔn)株劃線于LB平板上,挑取單克隆菌體接種搖菌12 h左右。將搖好的菌液用生理鹽水稀釋至0.5的麥?zhǔn)媳葷釢舛?約為1×108個(gè)/mL,以比濁卡和比濁管來配置和稀釋。取1640RPMI無血清培養(yǎng)基或LB培養(yǎng)基100 uL于無菌96孔板中,按相應(yīng)比例計(jì)算好的樣品濃度,分別加入卡那、咪唑和目的蛋白懸液后,接入相應(yīng)的菌種,總體積200 uL。37℃、120 r/min培養(yǎng)3~6 h或根據(jù)實(shí)驗(yàn)需要培養(yǎng)到相應(yīng)的時(shí)間。酶標(biāo)儀測(cè)定96孔板每孔的OD600值,并將96孔板拍照。根據(jù)孔板顏色變化,可以計(jì)算出其MIC值。為了進(jìn)一步驗(yàn)證,避免誤檢,將相應(yīng)孔的混合物吹打均勻后涂布平板,培養(yǎng)12~16 h后,進(jìn)一步觀察是否有菌生長(zhǎng)及菌落生長(zhǎng)密度。根據(jù)二者結(jié)果,綜合測(cè)定其MIC值。

    1.2.4 原核表達(dá)蛋白對(duì)大腸桿菌標(biāo)準(zhǔn)株時(shí)間生長(zhǎng)曲線的繪制

    從接種到加藥和目的蛋白過程同上1.2.3。同時(shí)做多個(gè)平行組,到達(dá)相應(yīng)時(shí)間點(diǎn)后,酶標(biāo)儀測(cè)定0、1、2、3、4、5、6、8、12、14、16、18、20、22、24、26、28和30 h的OD600值。最后,統(tǒng)一統(tǒng)計(jì)并分析數(shù)據(jù)作圖。通過比較OD值的大小,繪制時(shí)間生長(zhǎng)曲線,來分析目的蛋白對(duì)于大腸桿菌標(biāo)準(zhǔn)株生長(zhǎng)的影響。

    2 結(jié)果與討論

    2.1 家蠅防御素家族Phormicin A、B基因原核表達(dá)載體的構(gòu)建

    參照NCBI基因庫中家蠅Phormicin A、B的序列信息(基因序列號(hào)為L(zhǎng)OC101887709-8、LOC101888043-5)來設(shè)計(jì)引物,采用PCR法從家蠅cDNA中擴(kuò)增目的片段,測(cè)得序列后,利用分子生物學(xué)方法將去掉信號(hào)肽的部分構(gòu)建于原核表達(dá)載體pET28a上。將質(zhì)粒轉(zhuǎn)化入大腸桿菌BL21(DE3)中,再次用引物篩克隆(圖1)測(cè)序后并保存菌種。

    M代表標(biāo)準(zhǔn)DNA,從上至下條帶分別為2 000、1 000、750、500、250和100 bp;1、2、3、4泳道為PCR擴(kuò)增的目的片段,約為270 bp;-代表陰性對(duì)照?qǐng)D1 PCR篩選單克隆菌種DNA電泳Fig.1 The DNA agrose map of Phormicin A and B prokaryotic expression monoclone bacteria seeds by PCR screen method

    此外,對(duì)家蠅Phormicin A、B基因編碼的氨基酸序列進(jìn)行了比對(duì)分析,并采用N-J法構(gòu)建了系統(tǒng)進(jìn)化樹(圖2)。由圖1和2可知:家蠅Phormicin 屬于防御素家族,因翻譯成中文是綠蠅肽,家蠅綠蠅肽,不太通順,因此選用英文原稱表述。最后構(gòu)建了二者去掉信號(hào)肽之后蛋白對(duì)應(yīng)序列的原核表達(dá)載體,為下一步原核表達(dá)實(shí)驗(yàn)提供了基礎(chǔ)。

    圖2 家蠅Phormicin A、B氨基酸序列比對(duì)及進(jìn)化樹Fig.2 The multisequence alignment map and phylogenetic tree of housefly Phormicin A and B

    2.2 家蠅Phormicin A、B蛋白的原核表達(dá)及親和純化

    采用IPTG誘導(dǎo)法,表達(dá)并純化了家蠅Phormicin A、B的原核表達(dá)蛋白。然后通過Tricine-SDS-PAGE小分子蛋白電泳,檢測(cè)目的蛋白的表達(dá)情況。由圖3可知:家蠅Phormicin A蛋白在上清和沉淀中都有表達(dá),而B蛋白則在上清中表達(dá)稍多,沉淀中也有少量表達(dá)。二者在去掉信號(hào)肽后剩余70和69個(gè)氨基酸,但構(gòu)建到原核表達(dá)載體pET28a中時(shí),在片段的N段和C端都帶上了His標(biāo)簽,還有載體上部分表達(dá)的氨基酸,綜合來說約有90個(gè)氨基酸,因此根據(jù)估算,蛋白大小約為(9~10)×103。IPTG小規(guī)模誘導(dǎo)后進(jìn)行小分子蛋白電泳實(shí)驗(yàn)。由圖3還可知:成功誘導(dǎo)了家蠅Phormicin A、B蛋白的原核表達(dá)。另外,在構(gòu)建表達(dá)載體時(shí)用的是大腸桿菌DH5α克隆菌株,原核表達(dá)用的是大腸桿菌BL21(DE3)表達(dá)菌株,還有后面實(shí)驗(yàn)用的大腸桿菌標(biāo)準(zhǔn)株,三者為大腸桿菌不同的株系,因?yàn)榘l(fā)揮作用及用途不同而分別命名。此3株大腸桿菌為分子生物學(xué)實(shí)驗(yàn)中比較常用的菌株。

    C代表control 未誘導(dǎo)對(duì)照組;S代表上清樣品;P代表沉淀樣品;M代表Mark圖3 Tricine-SDS-PAGE檢測(cè) Phormicin A、B原核表達(dá)蛋白Fig.3 The Tricine-SDS-PAGE map of prokaryotic expression Phormicin A and B protein

    在成功進(jìn)行二者目的蛋白的原核表達(dá)后,采用Ni-NTA His.Bind蛋白純化試劑盒純化制備目的蛋白。大規(guī)模誘導(dǎo)后,發(fā)現(xiàn)家蠅Phormicin A、B蛋白在沉淀中遠(yuǎn)遠(yuǎn)多于在上清中的表達(dá),這可能暗示著其對(duì)宿主大腸桿菌的生長(zhǎng)可能有影響,而大部分都以包涵體的形式被包裹起來。于是采用尿素溶解,透析袋梯度透析復(fù)性法,制備二者的蛋白懸液[19-21]。

    接下來采用Ni-NTA His.Bind蛋白純化試劑盒純化制備目的蛋白。在純化上柱子前,先用過濾器將雜質(zhì)進(jìn)行初步排除,否則親和純化柱容易被堵。純化的基本原理是通過活化的親和樹脂柱將帶有His標(biāo)簽的目的蛋白吸附到樹脂上,然后用洗脫緩沖液進(jìn)行沖洗,將非特異結(jié)合的多余雜蛋白洗脫下來。最后用合適濃度和體積的咪唑?qū)⒛康牡鞍紫疵撓聛恚占饋?。因?yàn)镠is組蛋白含有咪唑基團(tuán),咪唑洗脫時(shí),是與樹脂發(fā)生親和置換反應(yīng),此方法也是在蛋白表達(dá)純化中,用的較多的一種。除此之前,還有谷胱甘肽疏基轉(zhuǎn)移酶GST標(biāo)簽,麥芽糖蛋白標(biāo)簽等的標(biāo)簽和蛋白純化方法。但是,GST標(biāo)簽等大概約27×103相對(duì)較大,如果要做后續(xù)的活性功能實(shí)驗(yàn),還需要用特定的酶將標(biāo)簽切除,然后通過超濾離心等方法再收集目的蛋白。這樣目的蛋白相對(duì)損失較多,得率不高,程序復(fù)雜一些,成本相對(duì)高一些,但大部分都是可溶性表達(dá),有利于活性檢測(cè)。如果不切除標(biāo)簽,可能對(duì)目的蛋白活性有干擾,而Phormicin A、B蛋白相對(duì)又較小,因此,綜合考慮用His標(biāo)簽,用Ni-NTA His.Bind法純化目的蛋白。

    2.3 家蠅Phormicin A、B原核表達(dá)蛋白作用于大腸桿菌標(biāo)準(zhǔn)株的活性分析

    在制得目的蛋白懸液后,采用微量液體稀釋法,來檢測(cè)目的蛋白對(duì)大腸桿菌標(biāo)準(zhǔn)株生長(zhǎng)的影響。由圖4可知:家蠅Phormicin A、B對(duì)大腸桿菌的生長(zhǎng)具有一定的抑制效果。圖4(a)是微量液體稀釋法測(cè)得的結(jié)果,由圖4(a)可知:前面4~5孔相對(duì)清澈,表明菌體生長(zhǎng)較少或者不長(zhǎng)菌,到最后4~5孔發(fā)現(xiàn)相對(duì)渾濁,表明已經(jīng)長(zhǎng)了很多菌。從第1~10孔是按照表1表格中的濃度依次倍比稀釋過來,濃度逐漸降低。為了更進(jìn)一步測(cè)量,又用酶標(biāo)儀測(cè)量了每個(gè)孔OD600,圖4(b)。由圖4和表1可知:從第6孔往后,OD明顯增大,表明菌體明顯增多。而前面1~5孔則OD相對(duì)較小,說明加的藥物組相對(duì)自然生長(zhǎng)組是抑菌活性,但是由于是在3 h左右就測(cè)了,OD過小,不能夠很好的說明問題,存在一定的誤差。于是,又將一些孔通過平板涂布法,進(jìn)一步確定具有抑菌效果最低濃度孔??菫榈?孔,最小抑菌濃度(MIC)是4 mmol/L;咪唑?yàn)榈?孔,MIC為15.63 mmol/L; A蛋白是第3孔,MIC為20 mmol/L;B蛋白是第4孔,MIC為7.5 mmol/L。由于Phormicin A、B原核表達(dá)蛋白是用咪唑洗脫下來的,是蛋白與咪唑的混合物,從分析表格中濃度發(fā)現(xiàn):A、B蛋白中咪唑濃度12.5和6.25 mmol/L要小于咪唑本身的最小抑菌濃度15.63 mmol/L。

    圖4 Phormicin A、B、咪唑、Kna+對(duì)大腸桿菌影響的MIC檢測(cè)Fig.4 Inhibition activity analysis of Phormicin A and B,imidazole,Kna+ to E. coli by MIC method

    樣品ρ(孔)/(mmol·L-1)12345678910Kna25612864321684210.5咪唑50025012562.531.2515.637.813.911.950.98A蛋白8040201052.51.250.6250.3120.156含有咪唑502512.56.253.1251.5630.7810.3910.1950.098B蛋白6030157.53.751.8750.9380.4690.2340.117含有咪唑502512.56.253.1251.5630.7810.3910.1950.098

    2.4 家蠅Phormicin A、B蛋白作用大腸桿菌標(biāo)準(zhǔn)株的時(shí)間生長(zhǎng)曲線

    為了更進(jìn)一步追蹤家蠅Phormicin A、B蛋白對(duì)大腸桿菌標(biāo)準(zhǔn)株的影響,同時(shí)為了觀察在不同時(shí)間段內(nèi),二者對(duì)于大腸桿菌標(biāo)準(zhǔn)株生長(zhǎng)變化的作用,選取從第1 h,直到第30 h,用酶標(biāo)儀測(cè)定OD600表征大腸桿菌標(biāo)準(zhǔn)株的濃度。由圖5和6可知:在前3~4 h內(nèi),藥物組OD偏小,隨著時(shí)間的推移,OD逐漸增大,差異也更明顯。根據(jù)測(cè)得的結(jié)果繪制了大腸桿菌的時(shí)間生長(zhǎng)曲線,其中黑色方形代表自然生長(zhǎng)對(duì)照組,紅色代表卡那陽性對(duì)照組,藍(lán)色代表咪唑組,綠色代表A蛋白組,紫色代表B蛋白組。2 MIC代表殺菌濃度即MBC是最小抑菌濃度的2倍,最初基本不長(zhǎng)菌,或者只長(zhǎng)很少的菌。1 MIC即最小抑菌濃度,0.5 MIC則是最小抑菌濃度的一半,抑菌效果更差一些。

    圖5 家蠅Phormicin A、咪唑、Kna+對(duì)大腸桿菌 標(biāo)準(zhǔn)株的時(shí)間生長(zhǎng)曲線Fig.5 The time growth curve of the standard E. colistrain affect by housefly Phormicin A,imidazole and Kna+

    由圖5可知:A蛋白2倍,1倍,0.5倍MIC相對(duì)其他對(duì)照組(natural group),都具有一定的抑菌效果,在10~12 h期間更為明顯,且隨著濃度的減小,抑菌效果減小。由圖6可知:B蛋白也是如此。但相對(duì)而言,B蛋白抑菌效果要稍好于A蛋白。綜合分析,雖然二者都具有一定的抑菌效果,但距離臨床應(yīng)用其效果仍然不夠理想。目前研究報(bào)道的抗菌肽多為體外合成,受合成條件和技術(shù)的限制,合成的多為40個(gè)氨基酸以內(nèi)的小分子,最多不超過100個(gè)氨基酸,而且合成的多肽往往只具有簡(jiǎn)單的一級(jí)和二級(jí)結(jié)構(gòu),無法獲得更高級(jí)的三級(jí)或四級(jí)結(jié)構(gòu)。因此,合成的抗菌肽可能與昆蟲等生物體內(nèi)本來的構(gòu)象差別較大,很多難以達(dá)到理想的效果。根據(jù)抗菌肽研究的相關(guān)報(bào)道[22],目前想要獲得功能活性較好的抗菌肽,往往構(gòu)建基因工程載體,找到合適的表達(dá)條件,嘗試采用更好的表達(dá)方法,實(shí)現(xiàn)可溶性表達(dá),直接純化出來,可能具有更為理想的作用效果,這也是抗菌肽研究的一個(gè)難點(diǎn)。而采用原核表達(dá)方法,雖然可以獲得較大量的蛋白,但很多抗菌肽作為包涵體往往在沉淀中??赡芤欢ǔ潭壬弦灿绊懥似涔δ?,不能夠達(dá)到體內(nèi)構(gòu)象所具有的效果。如果從天然樣本中直接分離純化,則需要的樣本量又較大。采用昆蟲細(xì)胞或者酵母等表達(dá)系統(tǒng),獲得的蛋白量又相對(duì)較少,成本相對(duì)較高??傮w說來,找到一種合適的表達(dá)或生產(chǎn)抗菌肽的方法,對(duì)于精確研究其功能具有重要的意義,也是后續(xù)進(jìn)行相關(guān)研究進(jìn)一步努力的方向。

    圖6 家蠅Phormicin B、咪唑、Kna+對(duì)大腸桿菌標(biāo)準(zhǔn)株的時(shí)間生長(zhǎng)曲線Fig.6 The time growth curve of the standard E. colistrain affect by housefly Phormicin B,imidazole and Kna+

    3 結(jié)論

    采用原核表達(dá)法制備了其融合蛋白,并作用于大腸桿菌標(biāo)準(zhǔn)株。通過微量液體稀釋法測(cè)定其最小抑菌濃度分別為20 和7.5 mmol/L,并繪制了二者作用于大腸桿菌標(biāo)準(zhǔn)株的時(shí)間生長(zhǎng)曲線。發(fā)現(xiàn)二者對(duì)大腸桿菌標(biāo)準(zhǔn)株的生長(zhǎng)具有一定的抑制作用。本研究為臨床大腸桿菌感染抗菌肽類藥物的研發(fā),提供了新的思路和一定的參考。

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