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    復(fù)方牦牛骨粉對(duì)骨質(zhì)疏松大鼠的影響

    2021-08-23 03:31:10郜靚梁丹妮楊紅霞肖遠(yuǎn)燦魏立新杜玉枝
    中成藥 2021年8期
    關(guān)鍵詞:維甲酸骨粉牦牛

    郜靚 梁丹妮 楊紅霞肖遠(yuǎn)燦魏立新杜玉枝*

    (1.中國(guó)科學(xué)院西北高原生物研究所,青海省藏藥藥理學(xué)與安全性評(píng)價(jià)研究重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室,青海 西寧810008; 2.中國(guó)科學(xué)院藏藥重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室,青海 西寧810008; 3.中國(guó)科學(xué)院大學(xué),北京100049)

    骨質(zhì)疏松癥是由于雌激素不足、增齡衰老、內(nèi)分泌功能紊亂等多種病因?qū)е碌囊怨橇縼G失、結(jié)構(gòu)改變、生物力學(xué)性能減退、易發(fā)生骨折為特點(diǎn)的全身性骨代謝疾病,影響了全世界大多數(shù)老年人的生活。近幾年流行病學(xué)調(diào)查結(jié)果顯示,我國(guó)約有老齡人口1.3 億,而骨質(zhì)疏松癥患者就達(dá)8 400 萬(wàn),預(yù)計(jì)到2050年老齡人口將達(dá)到2.5 億,其中25%~70%可能患有該疾病[1]。全球每年因骨質(zhì)疏松引起的骨折約有900 萬(wàn)例[2],目前已被世界衛(wèi)生組織(WHO)列為十大最嚴(yán)重疾病之一[3]。本實(shí)驗(yàn)采用維甲酸制備骨質(zhì)疏松癥模型,它是繼發(fā)性骨質(zhì)疏松癥最常見(jiàn)的病因之一[4],模型大鼠在發(fā)病癥狀、組織學(xué)表現(xiàn)、對(duì)雌激素的反應(yīng)方面與人類(lèi)有較高的相似性[5]。

    牦牛主要分布于喜馬拉雅山脈和青藏高原,藏醫(yī)常用其骨、髓入藥,《四部醫(yī)典》 中有用骨汁藥浴和三味骨精湯治療各種骨質(zhì)增生、骨質(zhì)疏松、骨性關(guān)節(jié)病等骨疾病的記載[6]。已有研究表明,牦牛骨粉不僅可顯著增加骨密度,而且與相應(yīng)劑量的碳酸鈣比較具有較高的鈣表觀吸收率[7?8],并且含有大量K、Na、Ca、Mg、Mn、Fe、Zn 等人體必需元素[9],鈣磷比例為2∶1,可作為良好的補(bǔ)鈣劑[10]。因此,本實(shí)驗(yàn)考察復(fù)方牦牛骨粉對(duì)維甲酸誘導(dǎo)骨質(zhì)疏松癥的影響。

    1 材料與方法

    1.1 動(dòng)物 8~10 周齡的SPF 級(jí)SD 大鼠72 只,體質(zhì)量(200±20)g,購(gòu)自甘肅中醫(yī)藥大學(xué)科研實(shí)驗(yàn)中心,實(shí)驗(yàn)動(dòng)物生產(chǎn)許可證號(hào)SCXK(甘)2015?0002。動(dòng)物實(shí)驗(yàn)操作過(guò)程依照中國(guó)科學(xué)院西北高原生物研究所動(dòng)物實(shí)驗(yàn)倫理委員會(huì)的要求執(zhí)行。

    1.2 試劑與藥物 維甲酸(上海阿拉丁生化科技股份有限公司);水合氯醛(天津市大茂化學(xué)試劑廠)。朗迪碳酸鈣D3片(Ⅱ)(北京振東康遠(yuǎn)制藥有限公司,批號(hào)20181074);復(fù)方牦牛骨粉(牦牛骨粉、脫脂牦牛骨髓、牦牛皮膠、牦牛奶粉按12∶1∶4∶3 比例混合均勻,添加50 mL 純水,水浴37 ℃ 加熱攪拌至完全溶解,專(zhuān)利號(hào)ZL201610061603.1)。Co60輻照鈣缺乏繁殖型純化鼠飼料(北京華博德億生物技術(shù)有限公司)。大鼠BGP、TRAP 酶聯(lián)免疫檢測(cè)試劑盒,血清ALP、Ca2+、P 生化檢測(cè)試劑盒(江萊生物科技有限公司)。

    1.3 儀器 直接數(shù)字化雙能X 線(xiàn)骨密度檢測(cè)儀(美國(guó)GE Healthcare 公司);多排定量小型動(dòng)物CT、多功能酶標(biāo)儀(美國(guó)PerkinElmer 公司);臺(tái)式高速冷凍離心機(jī)(德國(guó)Sigma 公司)。

    1.4 方法

    1.4.1 造模及分組 72 只大鼠按體質(zhì)量隨機(jī)分為6組,即空白組、模型組、陽(yáng)性對(duì)照組(碳酸鈣D3片)及復(fù)方牦牛骨粉低、中、高劑量組,除空白組外,其余各組大鼠連續(xù)灌胃給予維甲酸(70 mg/kg)14 d[11]。模型成立后,空白組、模型組大鼠以純水灌胃(0.1 mL/10 g),其余各組大鼠分別灌胃給予陽(yáng)性藥碳酸鈣D3片(74.74 mg/kg,臨床等效劑量)[12]、低劑量復(fù)方牦牛骨粉(4.67 mg/kg,臨床等效劑量的1/16)、中劑量復(fù)方牦牛骨粉(18.69 mg/kg,臨床等效劑量的1/4)、高劑量復(fù)方牦牛骨粉(37.37 mg/kg,臨床等效劑量的1/2),每天1 次,連續(xù)4 周。

    1.4.2 體質(zhì)量測(cè)定 每周稱(chēng)定大鼠體質(zhì)量,并根據(jù)體其變化調(diào)整給藥量。于造模前后及給藥4 周后3個(gè)時(shí)間點(diǎn),對(duì)大鼠體質(zhì)量進(jìn)行增長(zhǎng)率比較。

    1.4.3 骨密度(BMD)測(cè)定 給藥4 周后,10%水合氯醛腹腔注射麻醉大鼠,采用雙能X 射線(xiàn)骨密度儀進(jìn)行全身掃描,檢測(cè)股骨、脊椎、全身骨密度。

    1.4.4 血液指標(biāo)檢測(cè) 于造模前后及給藥4 周后大鼠眼球采血,采用試劑盒對(duì)血清鈣(Ca2+)、磷(P)、骨鈣素(BGP)水平及堿性磷酸酶(ALP)、抗酒石酸性磷酸酶(TRAP)活性,分析其變化趨勢(shì)。

    1.4.5 Micro?CT 掃描 給藥4 周后,取大鼠右側(cè)股骨及腰椎L1?L4段,除去筋膜,4% 多聚甲醛固定,將大鼠股骨及腰椎標(biāo)本固定在Micro?CT 動(dòng)物床上,上下掃描200 層,掃描電壓90 kV,電流88 μA,視野36 mm。采用Caliper Analyze 軟件,對(duì)大鼠股骨及腰椎組織體積(TV)、骨體積分?jǐn)?shù)(BV/TV)、骨表面積組織體積比(BS/TV)、骨小梁數(shù)量(Tb.N)、骨小梁分離度(Tb.Sp)、骨小梁厚度(Tb.Th)進(jìn)行分析。

    1.5 統(tǒng)計(jì)學(xué)分析 通過(guò)SPSS 20.0 軟件進(jìn)行處理,數(shù)據(jù)以()表示,多組間比較采用單因素方差分析或非參數(shù)檢驗(yàn),組間兩兩比較采用LSD?t檢驗(yàn)。P<0.05 表示差異具有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。

    2 結(jié)果

    2.1 體質(zhì)量增長(zhǎng)率 與造模前比較,空白對(duì)照組大鼠體質(zhì)量增長(zhǎng)幅度最顯著,其余各組基本相同;給藥4 周后,模型組大鼠體質(zhì)量增長(zhǎng)幅度最小,而各給藥組均有所增加,其中復(fù)方牦牛骨粉組其漲幅與給藥劑量成正比。見(jiàn)圖1。

    圖1 各組大鼠體質(zhì)量變化Fig.1 Weight changes of rats in various groups

    2.2 BMD 與空白組比較,模型組大鼠股骨、脊椎及全身BMD 降低(P<0.01);與模型組比較,陽(yáng)性對(duì)照組和各給藥組大鼠股骨、脊椎及全身BMD 升高,而且除復(fù)方牦牛骨粉低劑量組外,其余各組均升高(P<0.05,P<0.01),見(jiàn)表1。

    表1 各組大鼠BMD(, n=12)Tab.1 BMDs of rats in various groups(, n=12)

    表1 各組大鼠BMD(, n=12)Tab.1 BMDs of rats in various groups(, n=12)

    注:與空白組比較,#P<0.05,##P<0.01;與模型組比較,*P<0.05,**P<0.01。

    2.3 血液指標(biāo) 與空白組比較,模型組大鼠血清Ca2+、ALP、BGP、TRAP 水平升高(P<0.05,P<0.01),血清P 水平無(wú)明顯變化(P>0.05);與模型組比較,陽(yáng)性對(duì)照組、各給藥組大鼠血清ALP水平降低(P<0.01),復(fù)方牦牛骨粉中、高劑量組大鼠血清Ca2+水平降低(P<0.05,P<0.01),P、TRAP 水平升高(P<0.05,P<0.01),見(jiàn)表2、圖2。

    圖2 各組大鼠血液指標(biāo)變化(, n=12)Fig.2 Changes of blood indices in rats in various groups(, n=12)

    表2 各組大鼠血液指標(biāo)(, n=12)Tab.2 Blood indices in rats in various groups(, n=12)

    表2 各組大鼠血液指標(biāo)(, n=12)Tab.2 Blood indices in rats in various groups(, n=12)

    注:與空白組比較,#P<0.05,##P<0.01;與模型組比較,*P<0.05,**P<0.01。

    2.4 Micro?CT 與其他各組比較,模型組TV 更低,BV/TV 無(wú)明顯變化(P>0.05);BS/TV 高于空白組及復(fù)方牦牛骨粉中、高劑量組(P<0.05,P<0.01);除陽(yáng)性對(duì)照組外,模型組Tb.N 與其他各組比較無(wú)明顯變化(P>0.05);模型組Tb.Sp高于空白組及復(fù)方牦牛骨粉低劑量組(P<0.05),Tb.Th 低于空白組及復(fù)方牦牛骨粉中、高劑量組(P<0.05,P<0.01),見(jiàn)圖3、表3。

    圖3 各組大鼠股骨Micro?CT圖Fig.3 Micro?CT images for the femurs of rats in various groups

    表3 各組大鼠股骨CT 參數(shù)(, n=12)Tab.3 CT parameters of the femurs of rats in various groups(, n=12)

    表3 各組大鼠股骨CT 參數(shù)(, n=12)Tab.3 CT parameters of the femurs of rats in various groups(, n=12)

    注:與空白組比較,#P<0.05,##P<0.01;與模型組比較,*P<0.05,**P<0.01。

    除復(fù)方牦牛骨粉低劑量組外,模型組TV 與其他各組比較無(wú)明顯變化(P>0.05);模型組BV/TV 低于空白組及復(fù)方牦牛骨粉中、高劑量組(P<0.05);除復(fù)方牦牛骨粉低劑量組外,模型組BS/TV 高于其他各組(P<0.01);模型組Tb.N 小于復(fù)方牦牛骨粉低劑量組(P<0.05);各組Tb.Th、Tb.Sp 無(wú)統(tǒng)計(jì)學(xué)差異(P>0.05),見(jiàn)圖4、表4。

    圖4 各組大鼠腰椎Micro?CT圖Fig.4 Micro?CT images for the lumbar spines of rats in various groups

    表4 給藥干預(yù)后各組大鼠腰椎CT 參數(shù)(, n=12)Tab.4 CT parameters of the lumbar spine of rats in various groups after drug intervention(, n=12)

    表4 給藥干預(yù)后各組大鼠腰椎CT 參數(shù)(, n=12)Tab.4 CT parameters of the lumbar spine of rats in various groups after drug intervention(, n=12)

    注:與空白組比較,#P<0.05,##P<0.01;與模型組比較,*P<0.05,**P<0.01。

    3 討論

    骨質(zhì)疏松癥的定義為“以骨量減少、骨顯微結(jié)構(gòu)退化為特征,導(dǎo)致骨強(qiáng)度降低而易發(fā)生骨折的全身性骨代謝疾?。?3]?!币虼耍魏文軌蚍乐喂琴|(zhì)疏松癥的藥物必須是能阻止骨量減少,改善骨顯微結(jié)構(gòu)退化和保持骨代謝平衡的藥物。骨量、骨代謝生化標(biāo)志物和骨顯微結(jié)構(gòu)的變化因此成為檢測(cè)骨質(zhì)疏松癥治療或預(yù)防藥物的實(shí)驗(yàn)指標(biāo)。而骨密度作為診斷骨質(zhì)疏松和骨折危險(xiǎn)程度的重要指標(biāo),目前被認(rèn)為是反映骨質(zhì)疏松的黃金標(biāo)準(zhǔn)[14],也是判斷藥物是否有效的關(guān)鍵指標(biāo),其檢測(cè)結(jié)果目前已被廣泛應(yīng)用于臨床治療及動(dòng)物實(shí)驗(yàn)的研究中。

    牦牛骨含有多種人體必需元素以及多糖、氨基酸、磷蛋白、軟骨素和骨膠原等營(yíng)養(yǎng)成分,既可直接服用也可以作為補(bǔ)充鈣源的添加劑使用,而且牦牛骨中飽和脂肪酸與不飽和脂肪酸的比例接近1∶1,與膳食營(yíng)養(yǎng)素參考攝入量(DRIs)推薦人體攝入脂肪酸的組成比例相符[15],其促進(jìn)骨骼發(fā)育和骨傷愈合的成分含量遠(yuǎn)高于一般食草動(dòng)物的骨骼[16]。

    本實(shí)驗(yàn)中,血清骨代謝指標(biāo)的檢測(cè)結(jié)果顯示,維甲酸誘導(dǎo)提高了血清中ALP 的活性,增加了血清Ca2+、BGP 含量,證實(shí)維甲酸誘導(dǎo)后骨轉(zhuǎn)化增強(qiáng),與相關(guān)的研究相符[17?19],也證明本研究中大鼠高轉(zhuǎn)換型骨質(zhì)疏松模型造模成功。但給藥組TRAP 活性高于模型組,可能提示復(fù)方牦牛骨粉對(duì)維甲酸誘導(dǎo)的骨質(zhì)疏松大鼠骨吸收無(wú)明顯抑制作用[20]。在給予不同劑量的復(fù)方牦牛骨粉后血清中ALP 活性和BGP 的含量有所下降,同時(shí)隨給藥劑量的增加,血清中的Ca2+含量顯著降低,提示骨形成明顯增強(qiáng)[21?22]。

    腰椎和股骨是BMD 以及骨微結(jié)構(gòu)常用的檢測(cè)部位[23],骨小梁結(jié)構(gòu)是影響骨強(qiáng)度的關(guān)鍵因素[24]。目前有研究表明,BS/TV、BV/TV、Tb.N和Tb.Sp 可能是早期檢測(cè)骨小梁結(jié)構(gòu)改變的敏感變量,可預(yù)示骨質(zhì)疏松癥的發(fā)展[25]。也有研究報(bào)道BMD 檢測(cè)與骨微結(jié)構(gòu)檢測(cè)有一定的相關(guān)性[26]。本研究中對(duì)大鼠股骨及腰椎進(jìn)行了BMD 以及骨微結(jié)構(gòu)檢測(cè),結(jié)果顯示,維甲酸誘導(dǎo)可降低大鼠股骨、脊椎以及全身骨密度,并且會(huì)導(dǎo)致大鼠股骨及腰椎不同程度的骨量減少。使用復(fù)方牦牛骨粉干預(yù)治療后,大鼠BMD 及骨量丟失狀況有明顯的改善,并且隨劑量增高改善程度增強(qiáng)。同時(shí)骨量丟失的情況,在給藥后也有所好轉(zhuǎn)。

    綜上所述,本研究表明,復(fù)方牦牛骨粉可通過(guò)增加骨形成、改善骨代謝的途徑防治維甲酸誘導(dǎo)的高轉(zhuǎn)換型骨質(zhì)疏松癥。但是對(duì)于復(fù)方牦牛骨粉改善骨質(zhì)疏松癥的優(yōu)勢(shì)尚不明確。本實(shí)驗(yàn)以期為復(fù)方牦牛骨粉補(bǔ)鈣機(jī)制的進(jìn)一步研究和產(chǎn)品工藝及復(fù)方優(yōu)化提供參考。

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