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    穗花杉雙黃酮對(duì)過(guò)氧化氫誘導(dǎo)血管內(nèi)皮細(xì)胞氧化應(yīng)激損傷的影響

    2021-07-28 05:57:02何鋒榮操龍斌張琳鄭介婷邱欣邱峰南方醫(yī)科大學(xué)南海醫(yī)院醫(yī)學(xué)檢驗(yàn)科廣東5844南方醫(yī)科大學(xué)中醫(yī)藥學(xué)院廣州5055
    關(guān)鍵詞:孔板內(nèi)皮細(xì)胞線粒體

    何鋒榮 操龍斌 張琳 鄭介婷 邱欣 邱峰南方醫(yī)科大學(xué)南海醫(yī)院醫(yī)學(xué)檢驗(yàn)科,廣東 5844;南方醫(yī)科大學(xué)中醫(yī)藥學(xué)院,廣州 5055

    動(dòng)脈粥樣硬化(atherosclerosis,AS)是由環(huán)境和遺傳等多種因素共同作用所導(dǎo)致的一類長(zhǎng)期且復(fù)雜的血管病變,是冠心病、腦血管病和血栓栓塞性疾病等缺血性心腦血管病的主要病理基礎(chǔ)[1-2]。血管內(nèi)皮細(xì)胞是直接暴露于循環(huán)系統(tǒng)中代謝產(chǎn)物等相關(guān)內(nèi)源性危險(xiǎn)因子的細(xì)胞,氧化應(yīng)激誘導(dǎo)血管內(nèi)皮細(xì)胞損傷對(duì)AS形成和發(fā)展中的諸多病理學(xué)環(huán)節(jié)均具有重要作用[3]。因此,尋找能夠?qū)够钚匝跻鸬难趸瘧?yīng)激損傷對(duì)治療動(dòng)脈粥樣硬化具有重要臨床意義。我們前期研究發(fā)現(xiàn),穗花杉雙黃酮(AF)可有效保護(hù)羥基自由基(?OH)氧化誘導(dǎo)的細(xì)胞損傷,但具體機(jī)制不明,既往也沒(méi)有研究。本研究用過(guò)氧化氫(H2O2)處理血管內(nèi)皮細(xì)胞,構(gòu)建氧化應(yīng)激損傷的血管內(nèi)皮細(xì)胞模型,采用不同濃度的AF干預(yù)。觀察AF對(duì)內(nèi)皮細(xì)胞活力、凋亡等指標(biāo)的影響,檢測(cè)相關(guān)細(xì)胞因子、基因、蛋白表達(dá)情況。旨在初步探索穗花杉雙黃酮對(duì)巨噬細(xì)胞極化的分子調(diào)控作用,為動(dòng)脈粥樣硬化提供新的治療靶點(diǎn)和理論依據(jù)。

    1 材料與方法

    1.1 實(shí)驗(yàn)材料、試劑 人臍靜脈內(nèi)皮細(xì)胞系(HUVECs)購(gòu)自美國(guó)ATCC,RPMI1640培養(yǎng)基、雙抗(青霉素-鏈霉素)、胰蛋白酶(Hyclone)、胎牛血清(FBS)購(gòu)自賽默飛世爾生物化學(xué)制品(北京)有限公司,AF、二甲基亞砜(DMSO)、3%H2O2購(gòu)自美國(guó)Sigma公司,細(xì)胞計(jì)數(shù)試劑盒8(cell counting kit-8,CCK-8)檢測(cè)試劑購(gòu)自東仁化學(xué)科技上海有限公司,乳酸脫氫酶(LDH)和超氧化物歧化酶(SOD)檢測(cè)試劑盒購(gòu)自南京建成生物工程研究所,Hoechst 33258染色液及Annexin V-FITC細(xì)胞凋亡檢測(cè)試劑盒購(gòu)自上海碧云天生物技術(shù)有限公司,抗體Bcl-2、Bax、Bcl-x、Cleaved-caspase3、GAPDH 購(gòu)自美國(guó) Cell Signaling Technology(CST)公司。

    1.2 細(xì)胞培養(yǎng)與分組 HUVECs細(xì)胞用含有10%熱滅活FBS和10 U/ml青霉素、10μg/ml鏈霉素的RPMI1640培養(yǎng)液,在37℃、5%CO2培養(yǎng)箱中靜置培養(yǎng),維持細(xì)胞數(shù)1×108/培養(yǎng)瓶左右。胰酶消化細(xì)胞稀釋成1×106/ml,接種于對(duì)應(yīng)的培養(yǎng)皿中,用于后續(xù)實(shí)驗(yàn)。細(xì)胞分組:對(duì)照組、H2O2組、H2O2+AF組。對(duì)照組為單純HUVECs培養(yǎng),H2O2組為單純HUVECs培養(yǎng)基礎(chǔ)上加入H2O2,終濃度為300μm。H2O2+AF組為含300μm H2O2+不同濃度的AF共孵育。

    1.3 CCK-8測(cè)定 細(xì)胞毒性檢測(cè):在96孔板中每孔加入HUVECs細(xì)胞(1×105/ml)100μl的細(xì)胞懸液,設(shè)置5個(gè)復(fù)孔,待細(xì)胞貼壁后,饑餓12 h,在每組中加入AF 0.0、5.0、10.0、20.0、40.0、80.0、100.0μm分別于24、48、72 h后,按照CCK-8說(shuō)明書(shū)進(jìn)行檢測(cè)確定實(shí)驗(yàn)的安全濃度。細(xì)胞增殖檢測(cè):按上述方法將細(xì)胞鋪板,待細(xì)胞貼壁后,細(xì)胞分組,300μm H2O2處理24 h加不同濃度的AF,作用規(guī)定時(shí)間后分別加入20μl CCK-8溶液,37℃避光孵育30 min,檢測(cè)450 nm吸光度,與對(duì)照組比較細(xì)胞存活率。

    1.4 ELISA法檢測(cè)細(xì)胞上清液中相關(guān)細(xì)胞因子含量將建模成功的HUVECs細(xì)胞每孔以1×106個(gè)接種于24孔板中,每孔加入不同濃度AF藥物處理24 h。按照ELISA試劑盒說(shuō)明書(shū)操作,檢測(cè)細(xì)胞上清中LDH、SOD的表達(dá)水平。

    1.5 Wound healing實(shí)驗(yàn) 培養(yǎng)板接種細(xì)胞之前先用Marker筆在24孔板背面畫(huà)橫線標(biāo)記,細(xì)胞消化后每孔接入5×104個(gè)HUVECs細(xì)胞,每組設(shè)立3個(gè)復(fù)孔,細(xì)胞鋪滿板底后,用20μl微量移液槍頭在單層細(xì)胞上呈“|”字形劃痕,制造細(xì)胞創(chuàng)傷模型,吸去細(xì)胞培養(yǎng)液,用PBS沖洗孔板3次,洗去劃痕產(chǎn)生的細(xì)胞碎片。300μm H2O2處理12 h后加入低血清濃度的MPMI1640培養(yǎng)基配制的含不同濃度AF的藥物培養(yǎng)基培養(yǎng),分別在劃痕0 h和48 h時(shí)觀察創(chuàng)傷愈合程度,并用顯微鏡在100倍視野下拍照(目鏡10×,物鏡10×)。

    1.6 細(xì)胞凋亡檢測(cè) 流式細(xì)胞術(shù)檢測(cè):取2 ml HUVECs細(xì)胞以5×105個(gè)/ml密度接種于12孔板中,待貼壁后300μm H2O2處理14 h加不同濃度的AF培養(yǎng)箱內(nèi)孵育24 h。孵育后,用不含EDTA的胰酶消化,1 000轉(zhuǎn)/min(離心半徑為10 cm),4℃離心5 min收集細(xì)胞。預(yù)冷的PBS洗滌細(xì)胞2次,每次均在1 000轉(zhuǎn)/min(離心半徑為10 cm),4℃離心5 min。收集約(1~5)×105個(gè)細(xì)胞。100μl 1×Binding Buffer重懸細(xì)胞混勻。每管加入5μl Annexin V-FITC和5μl PI,輕輕混勻后室溫避光反應(yīng)10 min。反應(yīng)結(jié)束后,每管加入400μl 1×Binding Buffer,混勻,1 h內(nèi)上流式細(xì)胞儀檢測(cè)。熒光染色:對(duì)數(shù)生長(zhǎng)期細(xì)胞接種于12孔板,待貼壁后300μm H2O2處理24 h加不同濃度的AF培養(yǎng)箱內(nèi)孵育24 h。小心吸去培養(yǎng)基,冷PBS清洗2次后每孔加入DAPI染液或Hochest 33258染液0.5 ml室溫避光反應(yīng)20~30 min。PBS清洗3次,每次5 min。熒光顯微鏡下紫外光激發(fā)觀察采像。

    1.7 Western blot法檢測(cè)蛋白表達(dá)水平 取4 ml HUVECs細(xì)胞以2.5×104個(gè)/ml密度接種于6孔板中,實(shí)驗(yàn)分組同上。規(guī)定時(shí)間后收集細(xì)胞,冰上裂解30 mim,12 000轉(zhuǎn)/min(離心半徑為10 cm)離心30 min,吸取上清液,用BCA蛋白濃度測(cè)定試劑盒(碧云天生物)檢測(cè)總蛋白濃度,將裂解液蛋白(50~100μg)進(jìn)行8%~15%SDS-PAGE,電泳轉(zhuǎn)移至聚偏二氟乙烯膜(Amersham Bioscience)上。印跡后,將膜與特異性一抗在4℃孵育過(guò)夜。與HRP連接的二抗雜交后,通過(guò)增強(qiáng)的化學(xué)發(fā)光檢測(cè)試劑[Amersham Biosciences,中國(guó)(代理)]顯可視化蛋白質(zhì)條帶。

    1.8 統(tǒng)計(jì)分析方法 實(shí)驗(yàn)數(shù)據(jù)采用SPSS 25.0統(tǒng)計(jì)軟件進(jìn)行統(tǒng)計(jì)分析,符合正態(tài)分布的計(jì)量資料以均數(shù)±標(biāo)準(zhǔn)差表示,多組比較采用單因素方差分析及雙因素方差分析,組間比較采用獨(dú)立樣本t檢驗(yàn),P<0.05認(rèn)為差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。

    2 結(jié) 果

    2.1 AF對(duì)細(xì)胞的毒性作用 CCK-8檢測(cè)結(jié)果表明,隨著AF濃度的增加和作用時(shí)間的延長(zhǎng),其抑制細(xì)胞的增殖效果增強(qiáng),且高濃度具有殺傷作用。AF對(duì)HUVECs細(xì)胞24、48、72 h的IC50值分別為(54.57±4.28)μm、(15.97±4.13)μm和(7.55±1.87)μm。根據(jù)實(shí)驗(yàn)結(jié)果,選擇5μm、10μm濃度進(jìn)行后續(xù)實(shí)驗(yàn)。

    2.2 AF對(duì)H2O2損傷的細(xì)胞增殖活力的影響 CCK-8檢測(cè)結(jié)果表明,藥物作用48 h后,H2O2組與H2O2+AF組比較,差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。兩兩比較,H2O2作用24 h能顯著抑制HUVECs的增殖,差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05);應(yīng)用AF(10μm)處理后,能顯著逆轉(zhuǎn)H2O2誘導(dǎo)的HUVECs細(xì)胞生長(zhǎng)增殖抑制,提 高 細(xì) 胞 存 活 率(P<0.01)。見(jiàn)圖1。

    2.3 AF對(duì)H2O2誘導(dǎo)的細(xì)胞LDH含量和SOD活性水平的影響 ELISA法檢測(cè)結(jié)果顯示:與對(duì)照組相比,H2O2誘導(dǎo)后的HUVECs細(xì)胞LDH[(85.75±2.97)U/ml]升高,SOD[(11.01±0.84)U/ml]活性水平降低。與H2O2組比較,AF干預(yù)后能使SOD活性水平上調(diào),而使LDH表達(dá)水平下調(diào)。特別是10μm的AF可使LDH表達(dá)水平下調(diào)至(40.78±0.97)U/ml,SOD活性水平上調(diào)至(15.98±1.86)U/ml(P<0.05)。見(jiàn)圖2。這說(shuō)明AF能改善H2O2對(duì)細(xì)胞的氧化損傷作用。

    2.4 不同劑量AF對(duì)H2O2誘導(dǎo)的HUVECs細(xì)胞遷移能力的影響 Wound healing實(shí)驗(yàn)證明HUVECs細(xì)胞在H2O2作用下橫向遷移能力減弱,差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05);而AF能有效促進(jìn)細(xì)胞的遷移,其效果具有濃度依賴性,即與H2O2組比,各濃度H2O2+AF組HUVECs的遷移能力顯著提高,差異均有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(均P<0.05)。見(jiàn)圖3。

    圖1 AF對(duì)H2O2誘導(dǎo)的HUVECs細(xì)胞增殖的影響(n=3)

    圖2 AF對(duì)H2O2誘導(dǎo)的細(xì)胞LDH含量和SOD活性水平的影響(n=3,A為AF對(duì)H2O2誘導(dǎo)的細(xì)胞LDH含量的影響,B為AF對(duì)H2O2誘導(dǎo)的細(xì)胞SOD活性水平的影響)

    圖3 AF和H2O2對(duì)HUVECs遷移能力的影響(n=3,A為各組Wound healing實(shí)驗(yàn)圖片,B為各組劃痕面積比值)

    圖4 AF干預(yù)H2O2誘導(dǎo)的HUVECs凋亡情況(n=3,A為Hochest33258染色熒光顯微鏡圖片×200,B為流式細(xì)胞術(shù)各區(qū)比例圖片,C為實(shí)驗(yàn)組與H2O2組細(xì)胞凋亡率比值)

    2.5 不同劑量AF對(duì)H2O2誘導(dǎo)的HUVECs凋亡的影響 為了解AF是否干預(yù)H2O2誘導(dǎo)的HUVECs凋亡情況,利用Hochest33258染色熒光顯微鏡觀察法和流式細(xì)胞術(shù)分析不同濃度解AF處理后的情況。結(jié)果發(fā)現(xiàn)AF減少H2O2誘導(dǎo)的HUVECs凋亡,且有濃度依賴性。Hochest33258染色熒光顯微鏡觀察到作用48 h后,10μm AF明顯減少H2O2誘導(dǎo)的HUVECs凋亡(P<0.01)。流式細(xì)胞術(shù)統(tǒng)計(jì)到對(duì)照組、H2O2組、H2O2+AF(5μm)組、H2O2+AF(10μm)組的細(xì)胞[早期凋亡區(qū)域(Q3)和晚期凋亡區(qū)域(Q2)]凋亡率分別為(8.57±0.86)%、(20.64±0.90)%、(13.05±2.57)%、(11.23±1.74)%,10μm AF明顯減少H2O2誘導(dǎo)的HUVECs Q3和Q2的比例(P<0.01)。見(jiàn)圖4。

    2.6 不同劑量AF對(duì)H2O2誘導(dǎo)的HUVECs細(xì)胞相關(guān)蛋白表達(dá)水平影響 在上述表型實(shí)驗(yàn)的基礎(chǔ)上,我們推測(cè)AF可能對(duì)凋亡相關(guān)蛋白有影響。Western blot檢測(cè)結(jié)果顯示,H2O2誘導(dǎo)的細(xì)胞中,藥物同步處理24 h后,促凋亡蛋白Bax下調(diào),抗凋亡蛋白Bcl-2和Bcl-x上調(diào),凋亡執(zhí)行因子Cleaved-caspase-3蛋白表達(dá)下調(diào)(圖5)。

    3 討 論

    AS是由環(huán)境和遺傳等多種因素共同作用所導(dǎo)致的一類長(zhǎng)期且復(fù)雜的血管病變,是目前對(duì)人類健康影響最嚴(yán)重、最常見(jiàn)的慢性病之一,是冠心病、腦血管病和血栓栓塞性疾病等缺血性心腦血管病的主要病理基礎(chǔ)[4]。目前,AS發(fā)病的炎癥機(jī)制學(xué)說(shuō)得到諸多研究的證實(shí),炎性細(xì)胞與血管內(nèi)皮細(xì)胞、平滑肌細(xì)胞、細(xì)胞外基質(zhì)之間相互作用調(diào)控著AS的發(fā)生、發(fā)展及消退。AS病理過(guò)程中的多種危險(xiǎn)因子例如高糖、氧化型低密度脂蛋白、膽固醇晶體、活性氧自由基、高同型半胱氨酸等均參與AS發(fā)生發(fā)展[5],但是這些物質(zhì)參與AS的發(fā)生發(fā)展的機(jī)制未明。AS的抗炎治療也得到國(guó)際醫(yī)學(xué)界認(rèn)可,中醫(yī)藥可通過(guò)調(diào)控巨噬細(xì)胞極化改善動(dòng)脈粥樣硬化斑塊穩(wěn)定性,在防治AS易損斑塊中展現(xiàn)良好的應(yīng)用前景[6-7]。他汀治療率低、依從性差,患者使用他汀后的不良反應(yīng)(肌病或肝酶升高)嚴(yán)重,依哲麥布降低低密度脂蛋白膽固醇的幅度有限,只能輔助治療且對(duì)肝臟有損傷[8-10]。因此,尋找安全、有效的抗AS新藥勢(shì)在必行。AF是一種黃酮類中藥單體,既往的研究顯示它有抗炎、抗氧化等作用[11]。AF可有效保護(hù)?OH氧化誘導(dǎo)的細(xì)胞損傷,但具體機(jī)制不明,既往少有文獻(xiàn)報(bào)道。

    圖5 AF對(duì)H2O2誘導(dǎo)的細(xì)胞中凋亡相關(guān)蛋白影響

    活性氧自由基(reactive oxidative species,ROS)包括H2O2、氧自由基(O-)、超氧自由基(O2-)、?OH等,其中H2O2、是細(xì)胞內(nèi)最主要、最早期的兩類ROS[12]。ROS是通過(guò)外源環(huán)境和細(xì)胞自身或作為其他生物學(xué)反應(yīng)的副產(chǎn)物而生成,它可引起血管內(nèi)皮細(xì)胞凋亡,但機(jī)制尚未明確。細(xì)胞內(nèi)大多數(shù)的ROS都來(lái)源于細(xì)胞內(nèi)線粒體中的呼吸鏈反應(yīng),并隨之產(chǎn)生具有毒性的代謝副產(chǎn)物[13];在線粒體氧化磷酸化電子傳遞過(guò)程中,2%~4%的氧氣沒(méi)有被還原產(chǎn)生水而是轉(zhuǎn)變?yōu)镽OS[14]。線粒體被認(rèn)為是細(xì)胞內(nèi)ROS來(lái)源的主要亞細(xì)胞結(jié)構(gòu),線粒體膜上的許多氧化還原酶也會(huì)產(chǎn)生ROS,線粒體至少擁有10個(gè)能夠產(chǎn)生ROS的位點(diǎn)[12]。除了線粒體外,過(guò)氧化物酶體、內(nèi)質(zhì)網(wǎng)、質(zhì)膜、溶酶體等也都能產(chǎn)生ROS[12]。ROS這種復(fù)雜的角色使其在生物代謝過(guò)程中必須受到嚴(yán)格的控制,任何細(xì)胞內(nèi)ROS水平的改變,則很可能導(dǎo)致細(xì)胞內(nèi)部活性的變化。

    本研究顯示,10μm的AF可使LDH表達(dá)水平下調(diào)至(40.78±0.97)U/ml,SOD活性水平上調(diào)至(15.98±1.86)U/ml(P<0.05)。HUVECs在H2O2作用下橫向遷移能力減弱,而AF能有效促進(jìn)細(xì)胞的遷移,其效果具有濃度依賴性。另外,利用Hochest33258染色熒光顯微鏡觀察法和流式細(xì)胞術(shù)分析不同濃度AF處理后,發(fā)現(xiàn)AF減少H2O2誘導(dǎo)的HUVECs凋亡,10μm AF明顯減少H2O2誘導(dǎo)的HUVECs Q3和Q2的比例(P<0.01)。這些表型實(shí)驗(yàn)說(shuō)明AF有效調(diào)節(jié)ROS水平可抑制血管內(nèi)皮細(xì)胞凋亡。

    過(guò)高的ROS可造成線粒體損傷,誘導(dǎo)線粒體內(nèi)細(xì)胞色素C釋放入胞漿進(jìn)而激活Caspase級(jí)聯(lián)反應(yīng),最終通過(guò)線粒體凋亡途徑誘發(fā)凋亡[15]。因此本實(shí)驗(yàn)對(duì)這個(gè)基因轉(zhuǎn)錄水平均進(jìn)行了檢測(cè),Western blot檢測(cè)結(jié)果顯示AF可下調(diào)H2O2誘導(dǎo)的凋亡執(zhí)行因子Cleaved-caspase 3蛋白表達(dá)。細(xì)胞凋亡過(guò)程中細(xì)胞色素C的釋放受Bcl-2家族蛋白調(diào)控,其中抗凋亡Bcl-2蛋白與促凋亡Bax蛋白常被用來(lái)評(píng)價(jià)線粒體完整性和Caspase級(jí)聯(lián)反應(yīng)激活程度,是決定細(xì)胞凋亡的關(guān)鍵[16]。為了進(jìn)一步探究AF降低細(xì)胞凋亡的機(jī)制,本實(shí)驗(yàn)重點(diǎn)觀察了Bcl-2、Bax及Bcl-x蛋白的表達(dá)情況,結(jié)果顯示,血管內(nèi)皮細(xì)胞經(jīng)H2O2誘導(dǎo)氧化損傷后,Bcl-2和Bcl-x蛋白下調(diào),Bax蛋白上調(diào);而AF處理能夠上調(diào)Bcl-2和Bcl-x蛋白,下調(diào)Bax蛋白,提示AF可能通過(guò)上調(diào)Bcl-2/Bax蛋白比值,從而減少細(xì)胞凋亡,但具體機(jī)制尚需進(jìn)一步研究。

    綜上所述,中藥單體AF能對(duì)血管內(nèi)皮細(xì)胞的氧化應(yīng)激損傷具有保護(hù)作用,其機(jī)制可能與抑制Cleaved-caspase-3級(jí)聯(lián)反應(yīng),上調(diào)Bcl-2和Bcl-x蛋白,下調(diào)Bax蛋白,減少細(xì)胞凋亡有關(guān),但對(duì)細(xì)胞更深層次機(jī)制還需進(jìn)一步研究。

    利益沖突:作者已申明文章無(wú)相關(guān)利益沖突。

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