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    氟哌啶醇對血清剝奪PC12細(xì)胞的保護(hù)作用及機(jī)制研究*

    2021-06-23 11:05:28白淵翰曾志文
    精神醫(yī)學(xué)雜志 2021年2期
    關(guān)鍵詞:哌啶激酶存活率

    白淵翰 楊 曦 曾志文

    目前,第一代抗精神病藥物(First Generation Antipsychotics, FGAs)由于其嚴(yán)重的椎體外系和心血管系統(tǒng)不良反應(yīng),逐漸退居為二線的治療方案。有趣的是,作為FGAs代表的氟哌啶醇,仍舊活躍在精神分裂癥和雙相障礙的治療當(dāng)中[1, 2]。除了確證的臨床療效外,多項(xiàng)基礎(chǔ)研究提示了氟哌啶醇對細(xì)胞損傷的保護(hù)性作用[3~5]。蛋白激酶B(Protein Kinase B,PKB/Akt)是促進(jìn)神經(jīng)發(fā)育及細(xì)胞存活的一種重要激酶,其編碼基因AKT也是精神分裂癥的易感基因,Akt激酶在精神分裂癥的發(fā)病和藥物治療中均發(fā)揮了重要作用[6, 7]。前期研究發(fā)現(xiàn)氟哌啶醇在體內(nèi)可以增加Akt激酶活性[7],而氟哌啶醇是否通過激活A(yù)kt激酶并促進(jìn)細(xì)胞存活并不清楚。叉頭型轉(zhuǎn)錄因子O亞型(Forkhead Box Os,F(xiàn)oxOs)家族中的FoxO1和FoxO3a是Akt激酶的下游靶標(biāo),同時(shí)也受磷酸肌醇3-激酶(Phosphatidylinositol 3-Kinase,PI3K)的調(diào)控。FoxOs作為誘導(dǎo)細(xì)胞損傷的關(guān)鍵分子[8],其在氟哌啶醇細(xì)胞保護(hù)中的作用也不明確。

    PC12細(xì)胞來源于成年大白鼠腎上腺髓質(zhì)嗜鉻細(xì)胞瘤的細(xì)胞系,目前作為細(xì)胞模型被廣泛用于神經(jīng)細(xì)胞存活和凋亡的研究中[9]。研究已證明,當(dāng)去除培養(yǎng)基中血清時(shí),PC12細(xì)胞表現(xiàn)出時(shí)間依賴性的凋亡,并且表現(xiàn)出明顯的DNA片段破碎的凋亡模式[10]。本研究擬觀察氟哌啶醇對血清剝奪PC12細(xì)胞的保護(hù)性作用,同時(shí)采用不同濃度或不同作用時(shí)間的氟哌啶醇及特異性的PI3K/Akt信號通路抑制劑預(yù)處理研究其在Akt/PI3K-FoxOs信號轉(zhuǎn)導(dǎo)通路中的作用。

    1 材料與方法

    1.1 細(xì)胞、試劑和實(shí)驗(yàn)設(shè)備 細(xì)胞:PC12細(xì)胞由加拿大Mcgill University道格拉斯研究中心Remi Quirion教授饋贈(zèng)提供。試劑:DMEM、胎牛血清(FBS)、馬血清(HS)、二聯(lián)抗生素(PSA)均購自美國GIBCO 公司。氟哌啶醇,LY294002、AktVIII,U0126 均購自美國Sellect公司。設(shè)備:雙人單面凈化超凈臺(蘇州凈化設(shè)備有限公司),賽默飛二氧化碳培養(yǎng)箱(美國Thermo公司),蔡氏倒置熒光顯微鏡,BioTek Synergy H1多功能酶標(biāo)儀。

    1.2 方法

    1.2.1 細(xì)胞培養(yǎng) PC12細(xì)胞培養(yǎng)于含有5%FBS、5%HS、1%PSA的DMEM培養(yǎng)基中,于37 ℃、5%CO2條件下培養(yǎng),待細(xì)胞長滿后,用含l%FBS、1%PSA的DMEM培養(yǎng)基接種于96孔和6孔板,16 h后對細(xì)胞進(jìn)行處理。

    1.2.2 細(xì)胞活力測試 血清剝奪實(shí)驗(yàn):將96孔板培養(yǎng)液換成無血清DMEM,孵育1 h后進(jìn)行處理。7組細(xì)胞分別給予含1%FBS的DMEM和不同劑量(0 μm、0.1 μm、0.3 μm、1 μm、3 μm、10 μm)的氟哌啶醇。抑制劑預(yù)處理實(shí)驗(yàn):血清剝奪PC12細(xì)胞分為6組,其中3組分別給予不處理,1%FBS,1 μm的氟哌啶醇,另外3組分別給予10 μm的LY294002、5 μm的AktVIII、5 μm的U0126處理30 min后,加入濃度為1 μm的氟哌啶醇。MTT法檢測細(xì)胞活力:上述兩個(gè)實(shí)驗(yàn)中每組細(xì)胞設(shè)6個(gè)復(fù)孔,于培養(yǎng)箱中培養(yǎng)24 h后,每孔加入10 μm MTT(10 mg/ml),再培養(yǎng)3 h,吸去培養(yǎng)液,加DMSO 200 μl/孔,待甲躦結(jié)晶完全溶解后,用酶聯(lián)免疫儀在波長570 nm處讀取每孔吸光度(A)。取6孔A值的均數(shù)按公式計(jì)算細(xì)胞存活率=(試驗(yàn)孔A均值/對照孔A均值)× 100%,重復(fù)3次。

    1.2.3 蛋白提取與Western blot檢測 PC12細(xì)胞傳代并接種于6孔板,于細(xì)胞培養(yǎng)箱中培養(yǎng)16 h后,剝奪血清1 h,隨后6組細(xì)胞加入不同劑量(0 μm、0.1 μm、0.3 μm、1 μm、3 μm、10 μm)的氟哌啶醇處理,30 min后收獲蛋白。將同樣處理的另外6組血清剝奪PC12細(xì)胞中加入1 μm氟哌啶醇,處理不同時(shí)間(0 min、8 min、15 min、30 min、60 min、120 min)后收獲蛋白。另分5組同樣處理的血清剝奪PC12細(xì)胞分別給予不處理、氟哌啶醇1 μm、10 μm的LY294002、5 μm的AktVIII、5 μm的U0126。加入抑制劑30 min后3組細(xì)胞均接受氟哌啶醇1 μm處理,30 min后收取蛋白。上述三個(gè)實(shí)驗(yàn)中每組細(xì)胞設(shè)6個(gè)復(fù)孔。Western blot實(shí)驗(yàn):向不同實(shí)驗(yàn)因素處理的細(xì)胞中加入2×Sample Buffer,在冰上搖震裂解細(xì)胞約30 min,吸出裂解液,沸水加熱8 min使蛋白充分變性,離心冷卻后可進(jìn)行Western免疫印跡。采用SDS-PAGE電泳,每孔加50 μg蛋白樣品,90 V電泳分離蛋白,溴酚藍(lán)電泳至分離膠底部時(shí)取出分離膠,將其與PVDF膜相貼并排除氣泡,兩側(cè)夾以濾紙和海綿墊,插入電轉(zhuǎn)槽中60 mA過夜。取出PVDF膜,TBST洗滌,置入含5%脫脂牛奶的TBST中,室溫封閉90 min從牛奶中取出,TBST洗膜5 min×3次,加入適當(dāng)比例稀釋的第1抗體4 ℃孵育過夜,次日取出,TBST洗膜5 min×3次,含5%脫脂牛奶的TBST稀釋二抗,室溫孵育1.5 h,TBST洗膜5 min×3次;配制發(fā)光液,在暗房內(nèi)將發(fā)光液均勻滴加到膜上,靜置約2 min,出現(xiàn)熒光,根據(jù)熒光強(qiáng)度在壓片夾中曝光1~30 min不等,顯影、定影沖洗出膠片,目的蛋白顯示為黑色條帶;采用600 dpi分辨率掃描膠片,保存圖像數(shù)據(jù)。

    1.2.4 統(tǒng)計(jì)學(xué)方法 采用SPSS 20.0統(tǒng)計(jì)軟件進(jìn)行分析。采用單因素方差分析(ANOVA)分析組間差異,若差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義時(shí),進(jìn)一步組間比較采用LSD-t檢驗(yàn)。檢驗(yàn)水準(zhǔn)α= 0.05,以P<0.05為差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。

    2 結(jié)果

    2.1 氟哌啶醇對血清剝奪PC12細(xì)胞存活率影響 與0 μm氟哌啶醇組相比,0.3 μm、1 μm、和3 μm氟哌啶醇能提升細(xì)胞存活率(P<0.05)。見圖1。與1%FBS組相比,不處理組PC12細(xì)胞存活率下降(P<0.05)。與不處理組相比,1 μm的氟哌啶醇能提升細(xì)胞存活率(P<0.05)。與1 μm的氟哌啶醇組相比,10 μm的LY294002和5 μm的AktVIII預(yù)處理能抑制氟哌啶醇對細(xì)胞存活率的提升(P<0.05)。見圖2。

    注:與0 μm氟哌啶醇組比較,*P<0.05

    注:與1%FBS組比較,*P<0.05;與不處理組比較,△P<0.05;與1%FBS組和1 μm的氟哌啶醇組比較,#P<0.05;-代表不予相應(yīng)處理,+代表給予相應(yīng)處理

    2.2 氟哌啶醇不同濃度和不同作用時(shí)間對Akt、FoxOs、ERK蛋白磷酸化水平影響 不同濃度氟哌啶醇作用30 min后,與0 μm氟哌啶醇組相比,0.3 μm和1 μm氟哌啶醇能增加Akt、FoxO1、FoxO3a、ERK蛋白磷酸化水平(P<0.05);3 μm氟哌啶醇能增加FoxO1、FoxO3a、ERK蛋白磷酸化水平(P<0.05);10 μm氟哌啶醇能增加ERK蛋白磷酸化水平(P<0.05)。見圖3。氟哌啶醇作用15 min和30 min能增加Akt、FoxO1、FoxO3a、ERK蛋白磷酸化水平(P<0.05);氟哌啶醇作用8 min能增加Akt和ERK蛋白磷酸化水平(P<0.05);氟哌啶醇作用60 min后能增加FoxO1、FoxO3a蛋白磷酸化水平(P<0.05)。見圖4。

    注:與0 μm氟哌啶醇組比較,*P<0.05

    注:與0 min氟哌啶醇組比較,*P<0.05

    2.3 PI3K、Akt、Mek抑制劑對Akt、FoxOs、ERK蛋白磷酸化水平影響 與不處理組相比,1 μm氟哌啶醇能增加Akt、FoxO1、FoxO3a、ERK蛋白磷酸化水平(P<0.05)。與氟哌啶醇組比較,LY294002和AktVIII能減少Akt、FoxO1、FoxO3a蛋白磷酸化水平(P<0.05)。見圖5。

    注:與不處理組比較,*P<0.05;與氟哌啶醇組比較,△P<0.05;-代表不予相應(yīng)處理,+代表給予相應(yīng)處理

    3 討論

    本研究采用血清剝奪PC12細(xì)胞作為研究神經(jīng)損傷和保護(hù)的細(xì)胞模型。血清剝奪可以降低細(xì)胞的存活率,氟哌啶醇可以增加血清剝奪PC12細(xì)胞的存活率。PI3K/Akt信號通路阻斷劑可以阻斷氟哌啶醇的保護(hù)作用,而Mek通路抑制劑無此作用,這說明氟哌啶醇的保護(hù)作用可能是通過PI3K/Akt通路介導(dǎo)的。接著發(fā)現(xiàn)氟哌啶醇可增加Akt、FoxO轉(zhuǎn)錄因子和ERK激酶的磷酸化水平,這一作用在氟哌啶醇為1 μm和30 min的作用時(shí)最為明顯,提示中等濃度的氟哌啶醇可能具有較好的神經(jīng)保護(hù)作用,而這種神經(jīng)保護(hù)作用會在一定范圍內(nèi)隨時(shí)間延長而增加。本研究更進(jìn)一步發(fā)現(xiàn)氟哌啶醇誘導(dǎo)的FoxO轉(zhuǎn)錄因子的磷酸化是通過PI3K/Akt激酶介導(dǎo)的。提示氟哌啶醇可以通過磷酸化激活PI3K/Akt通路抑制凋亡因子FoxOs轉(zhuǎn)錄因子而產(chǎn)生神經(jīng)保護(hù)作用。

    越來越多的研究證據(jù)顯示,抗精神病藥物的治療作用與Akt激酶相關(guān)的細(xì)胞內(nèi)信號相關(guān)。小鼠模型經(jīng)短期和長期氟哌啶醇處理后,腦內(nèi)Akt1的磷酸化水平明顯升高[7, 11]。Beaulieu JM等[12~14]系統(tǒng)地證明了多巴胺D2受體通過beta-arrestin-2調(diào)節(jié)了Akt的磷酸化。這些結(jié)果表明,氟哌啶醇的作用機(jī)制可能是由Akt信號通路介導(dǎo)的。同樣,精神分裂癥患者接受氟哌啶醇治療后,額葉皮層內(nèi)源性Akt1激酶的水平有所恢復(fù)[11]。

    本研究發(fā)現(xiàn)氟哌啶醇在0.3~3 μm時(shí)具有較好的促細(xì)胞存活作用,而10 μm或者更高濃度時(shí)能產(chǎn)生細(xì)胞毒性和增加細(xì)胞的凋亡。先前研究也發(fā)現(xiàn)10 μm氟哌啶醇導(dǎo)致培養(yǎng)的大鼠皮層神經(jīng)元磷酸化Akt顯著下降[15],可以抑制PC12細(xì)胞的Akt的磷酸化水平[16]。這兩項(xiàng)研究提示,氟哌啶醇對Akt的磷酸化水平的影響在體外培養(yǎng)的神經(jīng)細(xì)胞或相關(guān)細(xì)胞類型與體內(nèi)完整的大腦反應(yīng)似乎不同。培養(yǎng)細(xì)胞可能對藥物濃度比活體大腦依賴性更敏感-具有明顯的濃度依賴性[17]。與這些差異類似,其他研究也證明了體外培養(yǎng)的細(xì)胞激活D2受體,如quinpirole或溴隱亭激動(dòng)劑也可能導(dǎo)致Akt的磷酸化,這表明體外多巴胺介導(dǎo)的Akt磷酸化的確切機(jī)制是復(fù)雜的[18, 19],值得進(jìn)一步研究探討。

    FoxO蛋白家族在細(xì)胞發(fā)育、增殖、存活和代謝等生命過程中發(fā)揮著重要的作用,也是藥物研究的一個(gè)重要靶點(diǎn)[20]。大量的研究表明,作為PI3K/Akt信號通路的關(guān)鍵下游靶標(biāo),F(xiàn)oxO在PI3K/Akt信號通路調(diào)控細(xì)胞存活的過程中扮演著關(guān)鍵的角色,而且其轉(zhuǎn)錄活性直接受PI3K/Akt信號通路的調(diào)控[21]。本研究及其他課題組的研究均發(fā)現(xiàn)FoxO轉(zhuǎn)錄因子在血清剝奪模型和其他多種細(xì)胞毒性模型中激活,而鋰鹽、氯氮平及其他多種神經(jīng)營養(yǎng)因子均可以抑制FoxO轉(zhuǎn)錄因子而產(chǎn)生神經(jīng)保護(hù)作用[9, 22]。本研究發(fā)現(xiàn)氟哌啶醇可以增加FoxO1與FoxO3a轉(zhuǎn)錄因子的磷酸化,這在很大程度上可以解釋氟哌啶醇的神經(jīng)保護(hù)作用機(jī)制,而這一作用機(jī)制與PI3K/Akt-FoxOs通路而非Mek-ERK通路相關(guān)。

    綜上,血清剝奪誘導(dǎo)PC12細(xì)胞損傷是一個(gè)經(jīng)典的神經(jīng)保護(hù)藥理學(xué)研究細(xì)胞模型。本研究發(fā)現(xiàn)氟哌啶醇可以通過PI3k/Akt-FoxOs信號通路對PC12細(xì)胞產(chǎn)生神經(jīng)保護(hù)作用,而這種作用表現(xiàn)出一定的量效和時(shí)效關(guān)系。后續(xù)研究可以關(guān)注氟哌啶醇在模型動(dòng)物體內(nèi)是否可以同樣影響PI3k/Akt-FoxOs信號通路,進(jìn)一步探討該通路與其抗精神病的藥理機(jī)制之間的關(guān)系。

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