劉紫欣 袁宏博 陳婭斐 安海龍
摘要 生物組織中的細胞處于充滿細胞外基質(zhì)(ECM)的三維環(huán)境中,ECM不僅為細胞提供物理支架,還產(chǎn)生有關(guān)腫瘤細胞生物學(xué)功能的生化或生物物理信號。在許多模擬體內(nèi)細胞—基質(zhì)相互作用的方法中,利用水凝膠進行細胞培養(yǎng)已經(jīng)揭示了一些基質(zhì)機械性質(zhì)協(xié)調(diào)細胞行為的基本現(xiàn)象。肝細胞癌(HCC)是最常見的原發(fā)性惡性腫瘤之一,其發(fā)展與組織硬度密切相關(guān):正常的肝臟組織在受到刺激損傷后發(fā)生炎癥,隨后轉(zhuǎn)化為肝纖維化,然后惡化為肝硬化,最終發(fā)展為肝細胞癌。隨著這個過程的發(fā)展,肝組織的硬度不斷增加,而增加的基質(zhì)硬度又促進肝癌細胞的增殖、遷移、上皮細胞—間充質(zhì)轉(zhuǎn)化和耐藥性,促進了HCC的發(fā)展。表明了基質(zhì)機械性質(zhì)在促進肝癌惡化進程中的重要作用。本文綜述了細胞外基質(zhì)的機械性質(zhì)對肝癌發(fā)展的影響,并展望了基于力學(xué)微環(huán)境揭示肝癌病理機理的重要意義。
關(guān) 鍵 詞 細胞外基質(zhì);肝細胞癌;硬度;水凝膠;腫瘤微環(huán)境
中圖分類號 Q6? ? ?文獻標志碼 A
Abstract Cells are living in a three-dimensional environment filled with extracellular matrix (ECM). ECM not only provides cells with a physical scaffold, but also generates biochemical and biophysical signals related to many biological processes. Among various approaches to mimic cell-matrix interactions in vivo, cell culture using hydrogels has revealed many basic phenomena that coordinate cell behavior. Hepatocellular carcinoma (HCC) is one of the most common primary malignancies, and its development is closely related to tissue stiffness: normal liver tissues become irritated after being stimulated and damaged, and then develop to fibrotic liver followed by cirrhosis, and transform into hepatocellular carcinoma eventually. The stiffness of liver tissues increases significantly with the development of HCC. As a reciprocity, the increased matrix stiffness further promotes the proliferation, migration, epithelial-mesenchymal transition and drug resistance of liver cancer cells. It shows that the mechanical property of matrix play an important role in HCC development. Here, we review the impact of the mechanical properties of extracellular matrix on the development of liver cancer, and? predict the significance of revealing the pathological mechanism of liver cancer based on the mechanical microenvironment.
Key words extracellular matrix; hepatocellular carcinoma; stiffness; hydrogels; tumor microenvironment
0 引言
生物組織中的細胞處于充滿細胞外基質(zhì)(ECM)的三維環(huán)境中,以ECM作為支架實現(xiàn)了細胞與細胞之間、細胞與環(huán)境之間的物質(zhì)和能量交換,通過信號轉(zhuǎn)導(dǎo)系統(tǒng)影響細胞的形態(tài)、代謝、功能、遷移、增殖和分化等行為。除生物化學(xué)因子外,ECM為細胞的生存和功能提供了適宜的機械力學(xué)環(huán)境,包括基底剛度、流體靜壓、剪切應(yīng)力、應(yīng)變、壓力和張力等物理信號。這些力學(xué)因素在調(diào)控細胞的正常生理功能、疾病的發(fā)生中同樣起著重要作用。例如,在胚胎發(fā)育階段,細胞外基質(zhì)的硬度參與了胚胎干細胞向不同類型細胞的分化過程;同一器官的健康狀態(tài)和疾病狀態(tài)之間表現(xiàn)出顯著的機械性能差異[1]。在某些癌變組織中,由于細胞的無限增殖,血管的高滲透性,淋巴引流不足以及細胞外基質(zhì)沉積的增加,導(dǎo)致實體腫瘤組織與未轉(zhuǎn)化的正常組織相比硬度顯著增加。值得注意的是,細胞機械微環(huán)境的改變又反作用于細胞本身,進一步調(diào)控細胞增殖、侵襲、凋亡、抗藥性、血管生成、代謝和促進生長的信號通路,從而導(dǎo)致腫瘤惡性化進程[2-5]。越來越多的證據(jù)表明,物理機械環(huán)境是調(diào)控腫瘤發(fā)展的關(guān)鍵因素。
肝細胞癌(HCC)是最常見的原發(fā)性惡性腫瘤之一,是一個連續(xù)的、多步驟進展的癌變病理過程,且絕大多數(shù)發(fā)生在肝纖維化和肝硬化的基礎(chǔ)上,復(fù)發(fā)頻率高且預(yù)后差。目前,通過醫(yī)學(xué)影像對肝臟硬度的檢測已經(jīng)成為診斷癌前病變與 HCC的重要手段。肝纖維化、硬化結(jié)節(jié)病變過程導(dǎo)致肝細胞生長的微環(huán)境改變,包括生化因素和生物力學(xué)因素[6],而這些改變反過來促進HCC的發(fā)展,提高了肝癌細胞的增殖活性和侵襲性。2011年Schrader 等[7]發(fā)現(xiàn)增加基質(zhì)硬度可促進肝癌細胞增殖和對化療的耐藥性,而軟基質(zhì)環(huán)境可誘導(dǎo)HCC中可逆性細胞休眠和干細胞特征。2019年Gao等[6]研究發(fā)現(xiàn)機械適應(yīng)賦予肝癌細胞運動性和對索拉非尼的耐藥性增加,且肝硬化硬度影響肌動蛋白的組織和肝癌細胞遷移,增加患者的臨床預(yù)后風(fēng)險。此外,機械力學(xué)微環(huán)境對肝細胞的癌變、形態(tài)、增殖、代謝以及遷移等細胞活性有著重要作用?;诖?,本文總結(jié)了肝硬化與肝癌的發(fā)展過程、細胞外基質(zhì)的作用及體外模擬,以及細胞外基質(zhì)硬度對肝癌發(fā)展的影響,并展望了基于力學(xué)微環(huán)境揭示肝癌病理機理的重要意義。
1 肝硬化與肝癌的發(fā)展過程
肝臟負責(zé)營養(yǎng)素的代謝、合成、儲存和再分配,并且在體內(nèi)平衡中起著核心作用。肝細胞癌形式的原發(fā)性肝癌是全球第五大常見的癌癥,是男性中第五常見的惡性腫瘤,在女性最常見的惡性腫瘤中排第九[8],并且是第二大最常見的癌癥死亡原因[9],主要治療手段是切除手術(shù)和移植手術(shù)[10]。我國是原發(fā)性肝細胞肝癌的高發(fā)國家,HCC是肝癌最主要的病理類型,占90%以上,具有侵襲性、轉(zhuǎn)移及復(fù)發(fā)率高等特點[11]。HCC是一個連續(xù)的、多步驟進展的癌變病理過程,且絕大多數(shù)發(fā)生在肝硬化的基礎(chǔ)上,如圖1[12]所示正常的肝臟組織在病毒、酒精、活性氧等刺激損傷后發(fā)生炎癥,隨后轉(zhuǎn)化為肝纖維化(Stage 1),然后惡化為肝硬化(Stage 2),最終發(fā)展為肝細胞癌(Stage 3)(HCV:丙型肝炎病毒; HBV:乙型肝炎病毒;NAFLD:非酒精性脂肪肝疾病;NASH:非酒精性脂肪性肝炎)。
1.1 正常肝到肝纖維化(Stage 1)
毒素、病毒、膽汁淤積、應(yīng)力、活性氧、自身免疫性損傷、代謝產(chǎn)物等刺激可引起慢性肝臟疾病,當這些刺激對肝臟重復(fù)損傷或長期持續(xù)時,肝再生就會失敗,這將導(dǎo)致膠原ECM(主要是I型膠原)的過度積累——稱為“肝纖維化”。這些損傷通過誘導(dǎo)細胞因子/生長因子和其他激活纖維化的下游效應(yīng)子——主要是活化的肝星狀細胞(HSC)和成肌纖維細胞(MF)以及程度較低的活化的竇狀內(nèi)皮細胞,從而驅(qū)動纖維生成(增強的ECM合成)[13-16],導(dǎo)致ECM成分如膠原的沉積增加。同時HSC/MF和各種其他細胞會增加金屬蛋白酶的組織抑制劑(TIMP-1)的合成,降低基質(zhì)金屬蛋白酶(MMP)的含量和活性。MMPs在錯誤的位置或時間發(fā)生的失活和活性降低也會促進細胞遷移和增殖,可驅(qū)動繼發(fā)性纖維化反應(yīng),最終形成肝纖維化[17]。因此,肝纖維化是所有慢性肝?。–LD)的常見結(jié)局[18]。纖維化伴隨著免疫細胞組成的改變和血管生成的改變,最終導(dǎo)致嚴重的結(jié)構(gòu)改變,損害器官功能[19]。
1.2 纖維化發(fā)展為肝硬化(Stage2)
肝纖維化的終末期不可逆轉(zhuǎn)的結(jié)果是大量的發(fā)病和死亡,其特征是形成被纖維化隔膜包圍并分隔的實質(zhì)的再生結(jié)節(jié)。全世界有1.7億患者患有慢性肝病,其中25%至30%會發(fā)展為明顯的纖維化并最終發(fā)展為肝硬化[18]。如果損傷因素長期不能去除,纖維化的過程長期持續(xù)就會發(fā)展成肝硬化。在慢性肝病末期觀察到的一組形態(tài)學(xué)改變,以肝實質(zhì)的血管結(jié)構(gòu)紊亂為特征,肝臟逐漸變形、變硬而被稱為“肝硬化”[20]。肝硬化肝細胞的特征在于波形蛋白和I型膠原蛋白的表達增加,表明上皮-間充質(zhì)轉(zhuǎn)化(EMT)的開始,即上皮細胞失去表型特征并獲得間充質(zhì)細胞特征的過程[21]。此外肝硬化伴隨肝細胞增殖減少,表明肝臟的再生能力用盡,并導(dǎo)致纖維組織增加和肝細胞破壞,最終可能導(dǎo)致癌性結(jié)節(jié)的發(fā)展[22]。
1.3 肝細胞癌合并肝硬化(Stage3)
肝硬化患者的5年累積肝細胞肝癌發(fā)生率為 5%~30%[23],但由于大多數(shù)肝硬化患者無癥狀,因此很難診斷出早期肝癌[24],所以有肝癥狀和肝癌的患者通常被認為已經(jīng)患有晚期肝癌。臨床數(shù)據(jù)表明,80%以上的HCC患者具有肝硬化或重度肝纖維化,幾乎所有患有肝細胞癌的患者都患有肝硬化[25-26],而且肝硬化常阻礙對 HCC的有效治療。在一些發(fā)達國家,與肝硬化相關(guān)的HCC死亡率不斷上升,而非肝硬化為并發(fā)癥的肝癌死亡率則下降或保持穩(wěn)定。研究表明,肝癌目前是代償性肝硬化患者與肝相關(guān)死亡的主要原因[23]。
2 細胞外基質(zhì)的作用及體外模擬
2.1 細胞外基質(zhì)參與調(diào)節(jié)細胞生理過程
所有組織和器官都包含細胞和非細胞成分,由細胞分泌到細胞外的大分子物質(zhì),如膠原蛋白、層黏連蛋白、蛋白聚糖等,形成了良好的組織網(wǎng)絡(luò),稱為細胞外基質(zhì)(ECM)。ECM不僅為細胞提供物理支架,還含有大量的信號分子,積極參與許多細胞過程,包括生長、遷移、分化、存活、體內(nèi)穩(wěn)態(tài)和形態(tài)變化等。ECM可為細胞提供結(jié)構(gòu)支持和錨定位點,并賦予部分組織的生物力學(xué)特性[27-28]。ECM蛋白也可以直接通過它們的受體(如整聯(lián)蛋白)或通過調(diào)節(jié)生長因子將信號轉(zhuǎn)導(dǎo)給細胞[29]。ECM引導(dǎo)信號轉(zhuǎn)導(dǎo)并調(diào)節(jié)基因轉(zhuǎn)錄,從而指導(dǎo)必要的組織形態(tài)和生理功能。ECM在生理、發(fā)育和衰老中起著關(guān)鍵作用[30]。越來越多的報道揭示ECM的機械性質(zhì)在細胞功能調(diào)節(jié)中起著至關(guān)重要的作用[31-32]。ECM的生物化學(xué)、生物力學(xué)、組織特性和保護性在不同組織之間,甚至在一個組織從一種生理狀態(tài)到另一種生理狀態(tài)(正常與癌變)之間,都可能有很大差異[33]。
2.2 基質(zhì)硬化與腫瘤發(fā)展
目前,ECM對腫瘤細胞侵襲和轉(zhuǎn)移的生化作用已有較多的文獻記載[34],但對它們的生物物理信號作用的研究相對較少。Ulrich等[35]發(fā)現(xiàn)隨著ECM硬度降低到與正常腦組織相當?shù)闹?,腫瘤細胞變得圓潤并且無法有效遷移。此外,細胞增殖受ECM硬度的調(diào)節(jié)也較為明顯,與軟的ECM相比,較硬的ECM能促進細胞的分裂。基質(zhì)硬化是實體瘤最顯著的機械和物理特征,主要是由于細胞外基質(zhì)蛋白過度沉積和交聯(lián)所致[36]。癌細胞與癌癥相關(guān)的成纖維細胞和巨噬細胞協(xié)同工作,通過一些活動調(diào)節(jié)ECM:一些沉積結(jié)構(gòu)成分的增多(如例如膠原蛋白I[37],膠原蛋白II,III,V,IX[38]);各種生長因子和細胞因子的分泌(如IGF1,EGF,TGFβ,VEGF[39],賴氨酰氧化酶[40])。在這些活動增多的情況下,癌細胞募集并轉(zhuǎn)化基質(zhì)細胞,繼而協(xié)調(diào)基質(zhì)的拓撲結(jié)構(gòu)重構(gòu),機械剛度增加。而機械剛度增加可能會破壞細胞表面力的平衡,促進整聯(lián)蛋白聚集和粘著斑形成,從而將外源基質(zhì)產(chǎn)生的力信號傳遞到細胞中,并最終影響它們的生物學(xué)表型和特性,例如細胞的形態(tài)、生長、分化,以及蛋白質(zhì)、細胞因子的合成分泌和代謝[41-42],還通過細胞骨架重塑來調(diào)節(jié)細胞遷移。癌癥轉(zhuǎn)移需要腫瘤細胞侵入基質(zhì),并使腫瘤細胞通過基質(zhì)直接向脈管系統(tǒng)和淋巴系統(tǒng)遷移,之后擴散和定殖次級器官。在原發(fā)性腫瘤組織內(nèi)形成的物理和生化梯度會促進腫瘤細胞的侵襲,并推動腫瘤細胞向血管和淋巴管的持續(xù)遷移,從而促進腫瘤細胞的擴散[43]。基質(zhì)與癌細胞之間這種復(fù)雜的相互作用形成了基于生物化學(xué)和生物物理信號作為調(diào)節(jié)因素的動態(tài)前饋/反饋回路。因此,生物物理信號逐漸成為人們研究癌癥轉(zhuǎn)移的關(guān)鍵切入點[44]。
2.3 體外模擬細胞外基質(zhì)的常用材料
水凝膠是一種親水性的三維網(wǎng)絡(luò)高分子材料,具有良好的生物相容性,根據(jù)來源可分為天然水凝膠和合成水凝膠。常用的天然水凝膠主要有膠原蛋白、透明質(zhì)酸和海藻酸;常用的合成水凝膠主要包括聚丙烯酰胺、聚乙二醇等。通過選擇適當材料和化學(xué)成分,合理設(shè)計水凝膠的相關(guān)關(guān)鍵特性,例如機械剛度、彈性、含水量、生物活性、孔隙度和降解性[45],從而模擬天然ECM相似的生物學(xué)和物理學(xué)特性。水凝膠化學(xué)的主要目的是構(gòu)建用作3D離體組織模型的水凝膠,從而能夠通過復(fù)制組織的動態(tài)和非線性物理特性來探索細胞生物學(xué)中的基本問題。將水凝膠作為離體組織模型進行細胞3D培養(yǎng)已經(jīng)揭示了一些協(xié)調(diào)細胞行為和組織的基本現(xiàn)象[46]。水凝膠已成為體外模擬構(gòu)建生物體內(nèi)環(huán)境的一種重要材料。
3 基質(zhì)硬度對肝癌發(fā)展的影響研究現(xiàn)狀
3.1 腫瘤微環(huán)境在肝癌進展中的作用
體內(nèi)腫瘤細胞在原發(fā)腫瘤部位和遠處轉(zhuǎn)移部位均存在各種類型的微環(huán)境。了解這些微環(huán)境的各種機械特性如何在腫瘤發(fā)展過程中影響腫瘤細胞的生物學(xué)特征,對于確定癌癥治療的分子靶標至關(guān)重要[41],因此腫瘤微環(huán)境(TME)在癌癥進展中的作用正受到廣泛關(guān)注。TME具有明顯的異質(zhì)性,并參與腫瘤的生長、轉(zhuǎn)移和耐藥性。模仿這種多樣化的微環(huán)境對于理解腫瘤的生長和轉(zhuǎn)移具有重要意義[47]。細胞外基質(zhì)蛋白作為腫瘤微環(huán)境中最豐富的非細胞固態(tài)成分,不僅維持腫瘤細胞/組織的三維形態(tài)結(jié)構(gòu),而且還產(chǎn)生有關(guān)腫瘤細胞生物學(xué)功能的生化或生物物理信號[36]。肝臟中的TME在原發(fā)性和轉(zhuǎn)移性肝腫瘤的形成、生長中起著重要作用。TME的細胞和非細胞成分會顯著影響腫瘤的發(fā)展、生長、轉(zhuǎn)移、擴散、抗腫瘤免疫力以及對腫瘤治療的反應(yīng)[48]。越來越多的數(shù)據(jù)表明,腫瘤與其微環(huán)境的相互作用在HCC發(fā)病機理中起著重要作用:TME積極參與肝纖維化、肝癌發(fā)生、EMT、轉(zhuǎn)移和侵襲的調(diào)節(jié)[49]。
3.2 肝臟硬度隨肝癌發(fā)展的變化
肝臟硬度被視為與纖維化相關(guān),并且隨著纖維化程度的加深肝臟硬度增加[18]。2003年Sandrin等[50]引入基于超聲的瞬時彈性成像技術(shù)(目前在臨床上廣泛應(yīng)用于測量肝臟硬度),他們對多期肝纖維化的肝臟硬度進行了測量(如圖2[50]所示)。纖維化的等級范圍從F0到F4(F0:無纖維化,F(xiàn)1:無隔墊的門脈纖維化,F(xiàn)2:少隔,F(xiàn)3:無肝硬化的隔墊,F(xiàn)4:肝硬化),結(jié)果顯示隨著纖維化的發(fā)生,肝臟硬度從正常狀態(tài)的2.5 kPa增加為肝硬化狀態(tài)的75.5 kPa。2016年P(guān)erepelyuk等[51]為了更好地了解正常和纖維化肝臟的力學(xué)特征,使用平行平板流變儀進行了一系列研究,測量了對壓縮、拉伸和剪切應(yīng)變的響應(yīng)。研究表明,大鼠肝臟中隨著進行性纖維化的增加,剪切儲能模量[(G′)]、損失模量[(G″)]和楊氏模量顯著增加,并且隨著壓縮力的施加,剪切模量顯著增加。說明晚期纖維化肝組織與早期纖維化肝組織或正常肝相比,晚期纖維化肝組織具有較高的壓力抵抗能力。
此外,已有廣泛報道稱肝臟是粘彈性組織,具有非線性的機械性質(zhì),其彈性和粘滯性能隨時間和形變而變化[51]。肝細胞外基質(zhì)在纖維化過程中發(fā)生質(zhì)和量的變化,其中纖維狀膠原蛋白顯著增加。這些機械性質(zhì)相關(guān)的ECM蛋白和多糖變化,可能有助于并改變細胞行為,并且對組織的非線性力學(xué)具有重大影響。
3.3 基質(zhì)硬度對肝癌發(fā)展的影響
基底硬度影響肝癌細胞的細胞形態(tài)和增殖:2011年Schrader等[7]為明確基質(zhì)硬度的變化是否調(diào)節(jié)HCC細胞增殖和化療反應(yīng),在不同硬度聚丙烯酰胺(PA)凝膠表面培養(yǎng)肝癌細胞系HuH-7和HepG2。結(jié)果表明,柔軟(1 kPa)的凝膠上的肝癌細胞形態(tài)較小且呈現(xiàn)圓形,而在硬(12 kPa)凝膠上則為更加伸展且扁平形態(tài)的細胞(圖3a)[7])。此外,增加基質(zhì)硬度可促進HCC增殖,基質(zhì)硬度對G1期的細胞周期調(diào)節(jié)因子的表達具有相應(yīng)的作用;基質(zhì)硬度可調(diào)節(jié)化療后HCC細胞凋亡和克隆形成能力:順鉑治療后,在較硬的凝膠上培養(yǎng)的細胞凋亡減少,軟凝膠上的細胞克隆形成能力增強。證明機械因素能夠調(diào)節(jié)HCC細胞的形態(tài)、增殖和化學(xué)治療反應(yīng)。這對原發(fā)性HCC的治療和預(yù)防播散性腫瘤細胞生長具有重要意義。
基底硬度影響肝癌細胞的遷移性:2020年Liu等[52]為了研究ECM剛度對HCC細胞的遷移的作用,制備了具有3種剛度(6,25和54 kPa,匹配正常肝,肝硬化和肝癌組織的生理硬度)的聚丙烯酰胺水凝膠,通過劃痕法和transwell法測定HCC細胞的遷移能力。結(jié)果表明,HepG2和MHCC97L細胞的遷移能力均隨水凝膠剛度的增加而顯著增加(圖3b)[52]),較硬的基質(zhì)通過上調(diào)需氧糖酵解來促進HCC細胞的遷移。而YAP作為細胞微環(huán)境機械力學(xué)的傳感器,它的活性和亞細胞定位也受ECM剛度調(diào)節(jié):YAP定位在細胞核中的量隨基質(zhì)剛度的增加而增加。ECM剛度通過絲裂原活化蛋白激酶(MAPK)信號通路誘導(dǎo)YAP激活來調(diào)節(jié)HCC細胞的遷移。確定了涉及YAP的MAPK依賴性調(diào)節(jié)網(wǎng)絡(luò)。揭示了受ECM力學(xué)調(diào)節(jié)的HCC細胞遷移機制,使我們更好地了解了機械力學(xué)環(huán)境對肝癌發(fā)生發(fā)展的影響。
基底硬度調(diào)控肝癌細胞的上皮細胞-間充質(zhì)轉(zhuǎn)化:2019年Dong等[36]建立具有不同肝硬度背景的布法羅大鼠HCC模型和具有可調(diào)硬度的體外Col I涂層培養(yǎng)細胞來研究基質(zhì)硬度對上皮細胞-間充質(zhì)轉(zhuǎn)化(EMT)發(fā)生的影響及其潛在的分子機制。結(jié)果表明在較高硬度的肝臟中生長的HCC異體移植物表現(xiàn)出較差的惡性表型和較高的肺轉(zhuǎn)移率,較高的肝臟硬度會促進HCC的侵襲和轉(zhuǎn)移。體外細胞實驗表明,較高的基質(zhì)硬度能夠顯著增強惡性表型并獨立誘導(dǎo)HCC細胞中的EMT發(fā)生,并且存在于Snail表達的3個信號通路參與了剛度介導(dǎo)的EMT發(fā)生,包括整合素介導(dǎo)的S100A11膜易位,eIF4E 磷酸化和TGFβ1自分泌(圖3c)[36])。此外,剛度誘導(dǎo)的EMT所需的關(guān)鍵分子在肝硬度較高的HCC患者的腫瘤組織中高表達,并且與較少的腫瘤分化和更高的復(fù)發(fā)率相關(guān)。突出表明了生物力學(xué)信號在觸發(fā)EMT和促進HCC侵襲和轉(zhuǎn)移中的重要作用。
基底硬度參與肝癌細胞的耐藥性發(fā)展:2019年Gao等[6]的研究誘導(dǎo)了HCC細胞中的索拉非尼耐藥細胞系,觀察發(fā)現(xiàn)索拉非尼耐藥細胞的細胞形態(tài)、細胞骨架結(jié)構(gòu)和細胞剛度發(fā)生了變化,類似于生長于較硬基底上的細胞。為了研究機械因素在HCC細胞生長和耐藥性中的作用,他們使用了一種硬度可調(diào)的體外細胞培養(yǎng)系統(tǒng),模擬正常和肝硬化的肝組織,發(fā)現(xiàn)在較硬基底的肝癌細胞運動性增加,索拉非尼耐藥性增加(圖3d)[6]),還具有更大的侵襲潛力。通過小干擾RNA沉默YAP基因,消除了基質(zhì)硬度對肝癌細胞的索拉非尼耐藥性影響,證明YAP介導(dǎo)了HCC細胞中機械適應(yīng)誘導(dǎo)的索拉非尼耐藥性。因此,通過調(diào)控機械微環(huán)境及其所介導(dǎo)的YAP信號通路對克服肝癌細胞的耐藥性具有重要意義。
水凝膠調(diào)控HCC發(fā)展的研究現(xiàn)狀小結(jié):現(xiàn)在關(guān)于基質(zhì)硬度調(diào)節(jié)HCC發(fā)展的研究多使用合成水凝膠——聚丙烯酰胺凝膠[6-8,36,52-54]作為“機械可調(diào)”基質(zhì)涂層,設(shè)計不同硬度來模擬正常和纖維化肝臟中遇到的值,在凝膠表面培養(yǎng)肝癌細胞:發(fā)現(xiàn)增加基質(zhì)硬度改變HCC細胞形態(tài)[7],促進HCC增殖[7]、遷移[52]、EMT[36],增強耐藥性[6],抑制凋亡[53]。但是聚丙烯酰胺凝膠不具備生物組織常有的非線性力學(xué)性質(zhì),而且多數(shù)工作是將細胞培養(yǎng)在水凝膠表面,并未將細胞包裹在水凝膠內(nèi)部,不能充分地模擬肝癌組織的三維動態(tài)環(huán)境和非線性物理特性。這些研究結(jié)果啟發(fā)我們設(shè)計并使用更具仿生特點的水凝膠來研究三維環(huán)境對HCC發(fā)展的影響,從而更好地探索肝癌發(fā)展中的基本問題。
4 結(jié)語與展望
腫瘤生物物理學(xué)為理解癌癥和發(fā)現(xiàn)新療法提供了新的思路。通過對基質(zhì)力學(xué)性質(zhì)與癌癥發(fā)生、發(fā)展關(guān)系的不斷深入研究,調(diào)控細胞外基質(zhì)的機械性質(zhì)可成為癌癥治療和預(yù)后的新靶標。ECM的硬度對肝癌細胞行為有相當大的影響,并且在癌細胞轉(zhuǎn)移過程中起著非常重要的作用。肝硬度的增加在驅(qū)動HCC惡化和進展中起有害作用,并表現(xiàn)出高風(fēng)險的不良后果,已成為肝癌的一個重要的臨床病理參數(shù)并表示肝癌的病理分級[55]。隨著正常肝向肝纖維化、肝硬化、肝癌的發(fā)展,肝臟組織的硬度不斷增加,而增加的肝臟硬度又促進肝癌細胞生長、增殖、遷移、侵襲、EMT和耐藥性,促進了HCC惡化和發(fā)展。肝基質(zhì)硬度可能充當改變腫瘤行為和進展的關(guān)鍵調(diào)節(jié)劑。
開發(fā)在離體仿生3D平臺研究細胞—基質(zhì)相互作用可以幫助我們更好地了解物理因素如何影響化學(xué)信號,從而影響肝癌的發(fā)展惡化。目前大多數(shù)工作是基于天然水凝膠或合成水凝膠來模擬肝癌發(fā)展中ECM的不同硬度。但生物組織的機械性質(zhì)除硬度不同外,還具有粘彈性、可塑性、應(yīng)力剛化等非線性力學(xué)性質(zhì)。然而,大部分合成水凝膠不具有天然ECM的非線性力學(xué)特點,不能夠很好的模擬天然ECM。因此,很少有適合的材料能夠用來研究基質(zhì)非線性機械性質(zhì)對細胞功能的調(diào)控。2013年,Rowan&Kouwer課題組設(shè)計、開發(fā)了一種具有機械響應(yīng)性能的仿生水凝膠——螺旋聚異腈多肽(Polyisocyanopeptide,PIC[56])。PIC水凝膠在生物的硬度范圍內(nèi)展示出超強的力學(xué)響應(yīng)能力,即應(yīng)力剛化的性質(zhì),隨著外界應(yīng)力的增加PIC水凝膠的強度增強。該性質(zhì)一般主要存在于膠原蛋白、中間纖維等天然生物凝膠中,在人工合成的水凝膠中很少被觀察到。基于其仿生的應(yīng)力剛化性質(zhì),PIC水凝膠已成功用于調(diào)控干細胞的誘導(dǎo)分化[57]。由于PIC高度的仿生特性,并且可以通過鏈長、濃度等參數(shù)設(shè)計調(diào)整PIC水凝膠的機械性質(zhì),從而可以很好的模擬腫瘤的硬度和其他非線性力學(xué)特性,以便研究這些特性對腫瘤侵襲性和轉(zhuǎn)移潛力等的影響。因此,未來基于仿生水凝膠的非線性力學(xué)性質(zhì)研究其對肝癌細胞的功能調(diào)控,對進一步理解肝癌微環(huán)境如何通過復(fù)雜機械信號調(diào)控肝癌的發(fā)展具有重要意義。
參考文獻:
[1]? ? CHEN X,WANGGOU S Y,BODALIA A,et al. A feedforward mechanism mediated by mechanosensitive ion channel PIEZO1 and tissue mechanics promotes glioma aggression[J]. Neuron,2018,100(4):799-815.
[2]? ? KAI F,LAKLAI H,WEAVER V M. Force matters: biomechanical regulation of cell invasion and migration in disease[J]. Trends in Cell Biology,2016,26(7):486-497.
[3]? ? NORTHEY J J,PRZYBYLA L,WEAVER V M. Tissue force programs cell fate and tumor aggression[J]. Cancer Discovery,2017,7(11):1224-1237.
[4]? ? OUDIN M J,WEAVER V M.Physical and chemical gradients in the tumor microenvironment regulate tumor cell invasion,migration,and metastasis[J].Cold Spring Harbor Symposia on Quantitative Biology,2016,81:189-205.
[5]? ? PRZYBYLA L,MUNCIE J M,WEAVER V M. Mechanical control of epithelial-to-mesenchymal transitions in development and cancer[J]. Annual Review of Cell and Developmental Biology,2016,32:527-554.
[6]? ? GAO J,RONG Y,HUANG Y,et al. Cirrhotic stiffness affects the migration of hepatocellular carcinoma cells and induces sorafenib resistance through YAP[J]. Journal of Cellular Physiology,2019,234(3):2639-2648.
[7]? ? SCHRADER J,GORDON-WALKER T T,AUCOTT R L,et al. Matrix stiffness modulates proliferation,chemotherapeutic response,and dormancy in hepatocellular carcinoma cells[J]. Hepatology,2011,53(4):1192-1205.
[8]? ? YOU Y,ZHENG Q,DONG Y,et al. Matrix stiffness-mediated effects on stemness characteristics occurring in HCC cells[J]. Oncotarget,2016,7(22):32221-32231.
[9]? ? KANDA T,GOTO T,HIROTSU Y,et al. Molecular mechanisms driving progression of liver cirrhosis towards hepatocellular carcinoma in chronic hepatitis B and C infections: a review[J]. International Journal of Molecular Sciences,2019,20(6). DOI:10.3390/ijms20061358.
[10]? BHARDWAJ N,PERERA M T,SILVA M A. Current treatment approaches to HCC with a special consideration to transplantation[J]. J Transplant,2016,2016:7926264.
[11]? 杜葉暉. 鉀離子通道KCa3.1在肝細胞肝癌中的表達及作用機制研究[D]. 杭州:浙江大學(xué),2017.
[12]? MACEK JILKOVA Z,KURMA K,DECAENS T. Animal models of hepatocellular carcinoma: the role of immune system and tumor microenvironment[J]. Cancers,2019,11(10). DOI:10.3390/cancers11101487.
[13]? TOROK N J,DRANOFF J A,SCHUPPAN D,et al. Strategies and endpoints of antifibrotic drug trials:Summary and recommendations from the AASLD Emerging Trends Conference,Chicago,June 2014[J]. Hepatology,2015,62(2):627-634.
[14]? SCHUPPAN D,MEHAL W. Antifibrotic therapies in the liver[J]. Seminars in Liver Disease,2015,35(2):184-198.
[15]? TRAUTWEIN C,F(xiàn)RIEDMAN S L,SCHUPPAN D,et al. Hepatic fibrosis:Concept to treatment[J]. Journal of Hepatology,2015,62(1):S15-S24.
[16]? SCHUPPAN D,SURABATTULA R,WANG X Y. Determinants of fibrosis progression and regression in NASH[J]. Journal of Hepatology,2018,68(2):238-250.
[17]? SCHUPPAN D,ASHFAQ-KHAN M,YANG A T,et al. Liver fibrosis:Direct antifibrotic agents and targeted therapies[J]. Matrix Biology,2018,68/69:435-451.
[18]? SANEYASU T,AKHTAR R,SAKAI T. Molecular cues guiding matrix stiffness in liver fibrosis[J]. BioMed Research International,2016,2016:2646212.
[19]? ROCKEY D C,BELL D,HILL J A. Fibrosis:a common pathway to organ injury and failure[J]. The New England Journal of Medicine,2015,372:1138-1149.
[20]? SAFFIOTI F,PINZANI M. Development and regression of cirrhosis[J]. Digestive Diseases,2016,34(4):374-381.
[21]? NITTA T,KIM J S,MOHUCZY D,et al. Murine cirrhosis induces hepatocyte epithelial mesenchymal transition and alterations in survival signaling pathways[J]. Hepatology,2008,48(3):909-919.
[22]? SANYAL A J,YOON S K,LENCIONI R. The etiology? of? hepatocellular? carcinoma? and? consequences? for? treatment[J]. The Oncologist,2010,15(Suppl 4):14-22.
[23]? FATTOVICH G,STROFFOLINI T,ZAGNI I,et al. Hepatocellular carcinoma in cirrhosis: Incidence and risk factors[J]. Gastroenterology,2004,127(5):S35-S50.
[24]? BRUIX J,REIG M,SHERMAN M. Evidence-based diagnosis,staging,and treatment of patients with hepatocellular carcinoma[J]. Gastroenterology,2016,150(4):835-853.
[25]? ZHU X D,ZHANG W H,LI C L,et al. New serum biomarkers for detection of HBV-induced liver cirrhosis using SELDI protein chip technology[J].World J Gastroenterol,2004,10(16):2327-2329.
[26]? GAO J,XIE L,YANG W S,et al. Risk factors of hepatocellular carcinoma: current status and perspectives[J]. Asian Pacific Journal of Cancer Prevention,2012,13(3):743-752.
[27]? HYNES R O,NABA A. Overview of the matrisome: an inventory of extracellular matrix constituents and functions[J]. Cold Spring Harb Perspect Biol,2012,4(1):a004903.
[28]? MOUW J K,OU G Q,WEAVER V M. Extracellular matrix assembly:a multiscale deconstruction[J].Nature Reviews Molecular Cell Biology,2014,15(12):771-785.
[29]? HYNES R O. The extracellular matrix: not just pretty fibrils[J]. Science,2009,326(5957): 1216-1219.
[30]? BONNANS C,CHOU J,WERB Z.Remodelling the extracellular matrix in development and disease[J].Nature Reviews Molecular Cell Biology,2014,15(12):786-801.
[31]? HUMPHREY J D,DUFRESNE E R,SCHWARTZ M A.Mechanotransduction and extracellular matrix homeostasis[J].Nature Reviews Molecular Cell Biology,2014,15(12):802-812.
[32]? VINING K H,MOONEY D J.Mechanical forces direct stem cell behaviour in development and regeneration[J].Nature Reviews Molecular Cell Biology,2017,18(12):728-742.
[33]? FRANTZ C,STEWART K M,WEAVER V M.The extracellular matrix at a glance[J].Journal of Cell Science,2010,123(Pt 24):4195-4200.
[34]? OSKARSSON T.Extracellular matrix components in breast cancer progression and metastasis[J].The Breast,2013,22:S66-S72.
[35]? ULRICH T A,DE JUAN PARDO E M,KUMAR S.The mechanical rigidity of the extracellular matrix regulates the structure,motility,and proliferation of glioma cells[J].Cancer Research,2009,69(10):4167-4174.
[36]? DONG Y Y,ZHENG Q D,WANG Z M,et al.Higher matrix stiffness as an independent initiator triggers epithelial-mesenchymal transition and facilitates HCC metastasis[J].Journal of Hematology & Oncology,2019,12(1):1-15.
[37]? WEI B,ZHOU X,LIANG C,et al.Human colorectal cancer progression correlates with LOX-induced ECM stiffening[J].International Journal of Biological Sciences,2017,13(11):1450-1457.
[38]? HANDORF A M,ZHOU Y X,HALANSKI M A,et al.Tissue stiffness dictates development,homeostasis,and disease progression[J].Organogenesis,2015,11(1):1-15.
[39]? DE LA MARE J A,JURGENS T,EDKINS A L.Extracellular Hsp90 and TGFβ regulate adhesion,migration and anchorage independent growth in a paired colon cancer cell line model[J].BMC Cancer,2017,17(1):1-16.
[40]? WANG T H,HSIA S M,SHIEH T M.Lysyl oxidase and the tumor microenvironment[J].International Journal of Molecular Sciences,2016,18(1):62.
[41]? TILGHMAN R W,BLAIS E M,COWAN C R,et al.Matrix rigidity regulates cancer cell growth by modulating cellular metabolism and protein synthesis[J].PLoS One,2012,7(5):e37231.
[42]? KSHITIZ K,PARK J,KIM P,et al.Control of stem cell fate and function by engineering physical microenvironments[J].Integrative Biology,2012,4(9):1008-1018.
[43]? OUDIN M J,WEAVER V M.Physical and chemical gradients in the tumor microenvironment regulate tumor cell invasion,migration,and metastasis[J].Cold Spring Harbor Symposia on Quantitative Biology,2016,81:189-205.
[44]? EMON B,BAUER J,JAIN Y,et al.Biophysics of tumor microenvironment and cancer metastasis-A mini review[J].Computational and Structural Biotechnology Journal,2018,16 279-287.
[45]? YANG J Z,ZHANG Y S,YUE K,et al.Cell-laden hydrogels for osteochondral and cartilage tissue engineering[J].Acta Biomaterialia,2017,57:1-25.
[46]? FOYT D A,NORMAN M D A,YU T T L,et al.Exploiting advanced hydrogel technologies to address key challenges in regenerative medicine[J].Advanced Healthcare Materials,2018,7(8):e1700939.
[47]? CASEY J,YUE X S,NGUYEN T D,et al.3D hydrogel-based microwell arrays as a tumor microenvironment model to study breast cancer growth[J].Biomedical Materials (Bristol,England),2017,12(2):025009.
[48]? EGGERT T,GRETEN T F.Tumor regulation of the tissue environment in the liver[J].Pharmacology & Therapeutics,2017,173:47-57.
[49]? NOVIKOVA M V,KHROMOVA N V,KOPNIN P B.Components of the hepatocellular carcinoma microenvironment and their role in tumor progression[J].Biochemistry Biokhimiia,2017,82(8):861-873.
[50]? SANDRIN L,F(xiàn)OURQUET B,HASQUENOPH J M,et al.Transient elastography:a new noninvasive method for assessment of hepatic fibrosis[J].Ultrasound in Medicine & Biology,2003,29(12):1705-1713.
[51]? PEREPELYUK M,CHIN L,CAO X,et al.Normal and fibrotic rat livers demonstrate shear strain softening and compression stiffening: a model for soft tissue mechanics[J].PLoS One,2016,11(1):e0146588.
[52]? LIU Q P,LUO Q,DENG B,et al.Stiffer matrix accelerates migration of hepatocellular carcinoma cells through enhanced aerobic glycolysis via the MAPK-YAP signaling[J].Cancers,2020,12(2):490.
[53]? YAO B,NIU Y,LI Y,et al.High-matrix-stiffness induces promotion of hepatocellular carcinoma proliferation and suppression of apoptosis via miR-3682-3p-PHLDA1-FAS pathway[J].Journal of Cancer,2020,11(21):6188-6203.
[54]? GAO X Y,QIAO X N,XING X X,et al.Matrix stiffness-upregulated MicroRNA-17-5p attenuates the intervention effects of metformin on HCC invasion and metastasis by targeting the PTEN/PI3K/Akt pathway[J].Frontiers in Oncology,2020,10:1563.
[55]? PARK M S,HAN K H,KIM S U.Non-invasive prediction of development of hepatocellular carcinoma using transient elastography in patients with chronic liver disease[J].Expert Review of Gastroenterology & Hepatology,2014,8(5):501-511.
[56]? KOUWER P H,KOEPF M,LE SAGE V A,et al.Responsive biomimetic networks from polyisocyanopeptide hydrogels[J].Nature,2013,493(7434):651-655.
[57]? DAS R K,GOCHEVA V,HAMMINK R,et al.Stress-stiffening-mediated stem-cell commitment switch in soft responsive hydrogels[J].Nature Materials,2016,15(3):318-325.