范 祺,張 明,張博華,王崇隊(duì),楊立風(fēng),孟曉峰,馬 超
(中華全國(guó)供銷合作總社濟(jì)南果品研究院,山東濟(jì)南 250014)
靈芝孢子油是從靈芝孢子中提取的脂質(zhì)活性物質(zhì),主要化學(xué)成分為不飽和脂肪酸、靈芝三萜類、靈芝酸、靈芝多糖、蛋白質(zhì)、氨基酸等,有抗腫瘤、調(diào)節(jié)免疫力、保護(hù)神經(jīng)系統(tǒng)、降血脂、防治白血病、保肝護(hù)肝等活性,具有很高的藥用價(jià)值[1-2]。雖然靈芝孢子油中不飽和脂肪酸含量高,但在自然環(huán)境下極易被氧化。受光照、溫度、氧氣等因素的影響,靈芝孢子油中的活性物質(zhì)被氧化后,會(huì)產(chǎn)生有害物質(zhì),嚴(yán)重降低靈芝孢子油的保健功效[3-4]。
乳狀液體系在包埋、保護(hù)、運(yùn)載、成本和生物相容度方面具有獨(dú)特的優(yōu)勢(shì)[5],如將不飽和脂肪酸作為油相,既能提高乳狀液的營(yíng)養(yǎng)價(jià)值,也能提高不飽和脂肪酸的抗氧化性[6]。大豆分離蛋白是一種良好的乳化劑,具有親水親油平衡特性,在溶液中可迅速分散在油水界面上,通過(guò)結(jié)構(gòu)變化重新排布,形成凝膠化界面層保持乳液穩(wěn)定[7]。大豆分離蛋白制備的乳狀液可以有效包埋DHA、魚(yú)油、肉桂精油等[8-10]。大豆異黃酮、茶多酚、抗壞血酸的抗氧化作用可應(yīng)用于肉制品加工、油脂儲(chǔ)藏及焙烤食品、乳制品、油炸食品的制作,也可用于各種飲料的配制,添加了抗氧化劑的乳狀液具有良好的穩(wěn)定性[11]。
本文利用大豆分離蛋白的乳化特性構(gòu)建水包油型乳狀液,將靈芝孢子油作為油相包埋在內(nèi)部,研究大豆分離蛋白和油濃度對(duì)乳狀液體系穩(wěn)定性的影響;同時(shí)添加大豆異黃酮、茶多酚和抗壞血酸等幾種常用的抗氧化劑,通過(guò)儲(chǔ)藏試驗(yàn),以過(guò)氧化值為指標(biāo),研究乳狀液的抗氧化穩(wěn)定性,以期獲得穩(wěn)定性強(qiáng)、抗氧化效果好的大豆分離蛋白-靈芝孢子油乳狀液體系,為靈芝孢子油在食品保健領(lǐng)域的應(yīng)用及液體口服類產(chǎn)品的開(kāi)發(fā)提供理論支持。
大豆分離蛋白(純度>90%),索萊寶試劑公司;靈芝孢子油,淺黃色液體,CO2超臨界萃取所得,購(gòu)于冠縣合作社;大豆異黃酮、兒茶素、抗壞血酸(純度均≥98%),購(gòu)于阿拉丁試劑公司;無(wú)水乙醇、十二烷基硫酸鈉、甲醇、鹽酸、氫氧化鈉等試劑,均為分析純,購(gòu)于上海生工股份有限公司。
AH 2100 型高壓均質(zhì)機(jī),美國(guó)安拓思有限公司;高速剪切乳化均質(zhì)儀,德國(guó)艾卡有限公司;UV1000 紫外-可見(jiàn)分光光度計(jì),上海天美科學(xué)儀器有限公司;NanoBrook Omni 粒徑分析儀,配備Zeta 電位測(cè)量選件,美國(guó)布魯克海文儀器公司;ME104 電子天平,梅特勒-托利多儀器有限公司;BSC-150 恒溫培養(yǎng)箱,上海博訊實(shí)業(yè)有限公司醫(yī)療設(shè)備廠。
1.3.1 乳狀液的制備
將大豆分離蛋白溶解于水中,室溫下緩慢攪拌1 h使蛋白質(zhì)充分溶解,將pH 值調(diào)至7.0,配制質(zhì)量分?jǐn)?shù)4%(g/g,下同)的大豆分離蛋白母液,放入4 ℃冰箱保存?zhèn)溆?。將大豆分離蛋白母液與靈芝孢子油按一定比例混合,并加入一定質(zhì)量的抗氧化劑(大豆異黃酮、茶多酚、抗壞血酸),使體系質(zhì)量達(dá)到100 g。通過(guò)高速剪切乳化均質(zhì)儀以10 000 r/min 的轉(zhuǎn)速剪切1 min 制成粗乳液,再用高壓均質(zhì)機(jī)在500 bar、4 ℃條件下均質(zhì)3 次制備乳狀液。
1.3.2 大豆分離蛋白濃度、油濃度對(duì)乳狀液性質(zhì)的影響
油濃度為0.5%,大豆分離蛋白濃度設(shè)置為0.1%、0.2%、0.5%、1.0%、2.0%,測(cè)定乳狀液的粒徑分布、ζ-電位、離心穩(wěn)定性,考察蛋白濃度對(duì)乳狀液的影響。
大豆分離蛋白濃度為0.5%,油濃度設(shè)置為0.1%、0.2%、0.5%、1.0%、2.0%,測(cè)定乳狀液的粒徑分布、ζ-電位、離心穩(wěn)定性,考察油濃度對(duì)乳狀液的影響。所有樣品均進(jìn)行3 次重復(fù)。
1.3.3 乳狀液儲(chǔ)藏過(guò)程中的穩(wěn)定性
將制備好的乳狀液(油濃度為0.5%、大豆分離蛋白濃度為0.5%)置于恒溫培養(yǎng)箱中(溫度設(shè)置為25 ℃)儲(chǔ)藏10 d,并在第1、2、5、7、10 天測(cè)定乳狀液的粒徑、ζ-電位和過(guò)氧化值變化。
1.3.4 乳狀液的抗氧化穩(wěn)定性
對(duì)照組為靈芝孢子油加入水中,與水混合,最終油濃度為0.5%。將添加了0.1%質(zhì)量濃度的抗氧化劑的乳狀液和對(duì)照組放置于恒溫培養(yǎng)箱中(溫度設(shè)置為25 ℃)儲(chǔ)藏10 d,并分別在第1、2、5、7、10 天測(cè)定過(guò)氧化值。
1.4.1 粒徑和ζ-電位的測(cè)定
采用動(dòng)態(tài)光散射法(DLS)用于大豆分離蛋白-靈芝孢子油乳狀液的表征。取20 μL 乳狀液樣品,用水溶液稀釋100 倍。在25 ℃條件下,激光衍射角為173°、折射指數(shù)為1.450,測(cè)定樣品的粒徑分布及ζ-電位。
1.4.2 離心穩(wěn)定性的測(cè)定
在2 mL 離心管中準(zhǔn)確加入2 mL 乳狀液,800 r/min離心10 min[12],在距離心管底部1 cm 處取樣30 μL,加入5 mL、0.1%十二烷基硫酸鈉溶液,混勻后在500 nm 下測(cè)定吸光度,每個(gè)樣品重復(fù)測(cè)定3 次,結(jié)果取平均值。乳狀液穩(wěn)定系數(shù)采用式(1)進(jìn)行計(jì)算。
式中,A0為離心前乳狀液的吸光度;At為離心后乳狀液的吸光度。
1.4.3 過(guò)氧化值測(cè)定
不飽和脂肪酸在空氣中易與氧氣反應(yīng)而酸敗,氧化過(guò)程中活性氧的含量(即過(guò)氧化值,用碘的毫克當(dāng)量表示,單位為mmol/kg)能夠反映油脂和脂肪酸的氧化程度[13]。按《GB 5009.227—2016 食品中過(guò)氧化值的測(cè)定》測(cè)定樣品的過(guò)氧化值[14]。
所有數(shù)據(jù)采用Origin 9.0 軟件繪圖,采用SPSS 19.0處理軟件中T-test 方法進(jìn)行顯著性分析。
2.1.1 蛋白濃度對(duì)乳狀液粒徑的影響
不同大豆分離蛋白濃度下的乳狀液粒徑分布如圖1所示。由圖可知,所有的乳狀液呈現(xiàn)雙峰分布,第一個(gè)峰代表的是乳狀液中游離蛋白的粒徑,第二個(gè)峰為乳狀液顆粒分布[15]。當(dāng)大豆分離蛋白濃度為0.1%時(shí),乳狀液的兩個(gè)峰分別在272 nm 和2 080 nm 處;當(dāng)大豆分離蛋白濃度增加時(shí),乳狀液粒徑變小,說(shuō)明乳狀液穩(wěn)定性有所改善。如大豆分離蛋白濃度為0.2%時(shí),乳狀液兩個(gè)峰分別為200 nm 和800 nm;當(dāng)大豆分離蛋白濃度為0.5%時(shí),乳狀液的粒徑達(dá)到最小值,分別為160 nm 和695 nm。繼續(xù)增大大豆分離蛋白濃度,乳狀液的粒徑變大,這可能是因?yàn)榇蠖狗蛛x蛋白在水中的溶解度有限,濃度過(guò)高,蛋白之間相互聚集,導(dǎo)致乳狀液粒徑變大。
圖1 不同蛋白濃度下乳狀液的粒徑分布Fig.1 Size distribution of emulsions with different protein concentrations
2.1.2 油濃度對(duì)乳狀液粒徑的影響
不同油濃度條件下的乳狀液粒徑分布如圖2(見(jiàn)下頁(yè))所示。由圖可知,所有的乳狀液均呈現(xiàn)雙峰分布,隨著油濃度的增加,乳狀液粒徑逐漸增大;當(dāng)油濃度為0.1%時(shí),粒徑最小,兩個(gè)峰分別為120 nm 和600 nm。油濃度為0.2%、0.5%和1.0%時(shí),乳狀液粒徑小幅增加。當(dāng)乳狀液中油濃度為2.0%時(shí),乳狀液粒徑分布明顯變大,說(shuō)明油濃度增加,大豆分離蛋白的包埋能力有限,顆粒之間容易發(fā)生絮集,導(dǎo)致粒徑變大。
圖2 不同油濃度條件下乳狀液的粒徑分布Fig.2 Size distribution of emulsions with different oil concentrations
ζ-電位是用來(lái)表征乳狀液穩(wěn)定性的重要指標(biāo)。大豆分離蛋白的等電點(diǎn)為4.5~4.6,所有乳狀液的電位在pH為7 的條件下都是負(fù)值[16]。在圖3 中,0.1%大豆分離蛋白的乳狀液電位絕對(duì)值為32.15 mV,隨著蛋白濃度的進(jìn)一步提高,電位一直增大。大豆蛋白濃度超過(guò)1.0%之后,ζ-電位絕對(duì)值下降明顯。當(dāng)?shù)鞍诐舛葹?.0%時(shí),為59.29mV。
圖3 不同蛋白濃度下乳狀液的ζ-電位Fig.3 ζ-potential of emulsions with different protein concentrations
圖4 為不同油濃度下乳狀液的ζ-電位,當(dāng)油濃度為0.1%時(shí),ζ-電位絕對(duì)值為75.15 mV。當(dāng)油濃度提高到1%時(shí),乳狀液的ζ-電位絕對(duì)值明顯變小,為48.2 mV;當(dāng)油濃度為2.0%時(shí),ζ-電位絕對(duì)值進(jìn)一步下降。當(dāng)粒子的ζ-電位絕對(duì)值大于30 mV 時(shí),通常被認(rèn)為是穩(wěn)定的[17]。在乳狀液中存在空間排阻效應(yīng),粒子的ζ-電位絕對(duì)值大于20 mV 時(shí),也可能使粒子穩(wěn)定分散于溶液中,當(dāng)油濃度過(guò)高時(shí),乳狀液乳化能力有限,不能阻止粒子之間的聚集[18]。
圖4 不同油濃度下乳狀液的ζ-電位Fig.4 ζ-potential of emulsions with different oil concentrations
2.3.1 大豆分離蛋白濃度對(duì)乳狀液離心穩(wěn)定性的影響
圖5 為大豆分離蛋白濃度對(duì)乳狀液離心穩(wěn)定性的影響。由圖可以看出,隨著大豆分離蛋白濃度的升高,離心穩(wěn)定系數(shù)先增大后減少,當(dāng)?shù)鞍诐舛葹?.0%時(shí),離心穩(wěn)定系數(shù)最大,為88%,表明此時(shí)的乳狀液最穩(wěn)定。當(dāng)大豆蛋白濃度為2.0%時(shí),乳狀液的離心穩(wěn)定系數(shù)下降為76%。根據(jù)斯托克斯定律,提高分層穩(wěn)定性可以通過(guò)減小液滴粒徑、升高連續(xù)相黏度或者減小液滴和連續(xù)相之間的密度差來(lái)達(dá)到。按照這個(gè)定律分析乳狀液穩(wěn)定性的變化趨勢(shì),大豆分離蛋白濃度在0.1%~1.0%時(shí),乳狀液穩(wěn)定性逐步上升,分析原因是連續(xù)相中未吸附的粒子的存在形成了粒子和液滴之間的三維網(wǎng)絡(luò)結(jié)構(gòu),升高了連續(xù)相的黏度,減緩了液滴的遷移;另一方面大豆分離蛋白包覆在油滴表面增加了油滴的密度,減小了油滴和連續(xù)相的密度差;之后,由于大豆蛋白在界面及液相中的相互纏結(jié),促進(jìn)了液滴之間的絮凝,從而導(dǎo)致過(guò)高濃度的大豆蛋白降低了乳液的分層穩(wěn)定性[19-20]。
圖5 大豆分離蛋白濃度對(duì)乳狀液離心穩(wěn)定性的影響Fig.5 Effect of soybean protein isolate concentration on centrifugal stability of emulsions
2.3.2 油濃度對(duì)乳狀液離心穩(wěn)定性的影響
圖6 為油濃度對(duì)乳狀液離心穩(wěn)定性的影響,可以看出隨著油濃度的提升,靈芝孢子油乳狀液離心穩(wěn)定性不斷下降,由90%逐步下降為27%,這是由于油濃度過(guò)高,而大豆蛋白的乳化能力有限,不能形成足夠多的乳狀液顆粒,不能減小油滴和連續(xù)相的密度差,從而導(dǎo)致乳狀液不穩(wěn)定[21]。根據(jù)上述結(jié)果,選擇0.5%濃度的大豆分離蛋白和0.5%靈芝孢子油含量來(lái)制備乳狀液比較合適。
圖6 不同油濃度對(duì)乳狀液離心穩(wěn)定性的影響Fig.6 Effect of different oil concentrations on the centrifugal stability of emulsions
2.4.1 儲(chǔ)藏過(guò)程中乳狀液粒徑的變化
圖7 為0.5%大豆分離蛋白-0.5%靈芝孢子油乳狀液儲(chǔ)藏10 d 內(nèi)的粒徑變化圖。由圖可知,乳狀液粒徑在前2d 變化不明顯,在第2 天時(shí),乳狀液粒徑峰位于150 nm和700 nm 左右。當(dāng)儲(chǔ)藏至第5 天時(shí),粒徑出現(xiàn)明顯的增大,兩個(gè)峰分別位于190 nm 和1 400 nm 處。第7 天,乳狀液粒徑又進(jìn)一步增大。第10 天時(shí)乳狀液粒徑幾乎只剩下一個(gè)單峰,位于2 500 nm 處左右,此時(shí)乳狀液出現(xiàn)了大顆粒聚集。
圖7 乳狀液儲(chǔ)藏過(guò)程中的粒徑變化Fig.7 Size distribution of emulsions during storage
2.4.2 儲(chǔ)藏過(guò)程中乳狀液電位的變化
圖8 為0.5%大豆分離蛋白-0.5%靈芝孢子油乳狀液儲(chǔ)藏10 d 內(nèi)的ζ-電位變化圖。由圖可以看出,乳狀液在儲(chǔ)藏2d 后ζ-電位變化不明顯,第2 天絕對(duì)值為58.46 mV。儲(chǔ)藏至第5 天時(shí),乳狀液的ζ-電位絕對(duì)值明顯變小,為36.71 mV。儲(chǔ)存至第10 天時(shí),ζ-電位的絕對(duì)值最小,為10.29 mV。乳狀液的絕對(duì)值小于20 mV,說(shuō)明此時(shí)的乳狀液已經(jīng)不穩(wěn)定。
圖8 乳狀液儲(chǔ)藏過(guò)程中ζ-電位變化Fig.8 ζ-potential of emulsions during storage
圖9(見(jiàn)下頁(yè))為儲(chǔ)藏過(guò)程中乳狀液的氧化穩(wěn)定性,為0.5%大豆蛋白與0.5%靈芝孢子油經(jīng)均質(zhì)制備而成的乳狀液,并在其中加入了不同種類的抗氧化劑。在第1 天時(shí),所有乳狀液的過(guò)氧化值基本接近,其中對(duì)照組的過(guò)氧化值最大,為0.45 mmol/kg。儲(chǔ)藏至第2 天時(shí),對(duì)照組的過(guò)氧化值明顯增大,為2.25 mmol/kg,其次為乳狀液(0.98 mmol/kg)。而加入抗氧化劑保護(hù)的乳狀液,過(guò)氧化值變化不明顯。儲(chǔ)藏至第5 天時(shí),差距進(jìn)一步拉大,加入抗氧化劑的保護(hù)優(yōu)勢(shì)凸顯出來(lái),三者差距不大,對(duì)照組為3.76 mmol/kg,乳狀液的過(guò)氧化值之間為2.75 mmol/kg。儲(chǔ)藏至第7 天時(shí),對(duì)照組與乳狀液的差距明顯,茶多酚和抗壞血酸具有良好的保護(hù)效果,相比對(duì)照組的7.77 mmol/kg,僅為1.2 mmol/kg。儲(chǔ)藏到第10 天時(shí),過(guò)氧化值大小順序?yàn)閷?duì)照>乳狀液>大豆異黃酮>抗壞血酸>茶多酚,過(guò)氧化值分別為10.12、7.15、4.04、2.88、1.88 mmol/kg。與對(duì)照組相比,乳狀液的過(guò)氧化值降低了29.24%,加入了茶多酚的乳狀液則降低了81.42%。說(shuō)明乳狀液對(duì)靈芝孢子油具有良好的保護(hù)效果,加入抗氧化劑后,保護(hù)效果進(jìn)一步增強(qiáng),其中茶多酚的效果最好。
圖9 乳狀液儲(chǔ)藏過(guò)程中過(guò)氧化值變化Fig.9 Peroxide values of emulsions during storage
本文利用大豆分離蛋白的乳化特性構(gòu)建水包油型乳狀液,將靈芝孢子油作為油相包埋在內(nèi)部,通過(guò)研究蛋白和油濃度對(duì)乳狀液體系穩(wěn)定性的影響,構(gòu)建最佳的乳狀液包埋體系。制備的乳狀液均呈現(xiàn)雙峰分布。當(dāng)?shù)鞍诐舛葹?.1%~0.5%時(shí),隨著蛋白濃度的增加,乳狀液粒徑分布變小,說(shuō)明乳狀液穩(wěn)定性有所改善。制備的乳狀液的ζ-電位絕對(duì)值均大于20 mV。隨著大豆蛋白濃度的升高,乳狀液離心穩(wěn)定系數(shù)增大,由最低的25%提升到88%,當(dāng)?shù)鞍诐舛葹?.0%時(shí),離心穩(wěn)定系數(shù)最大,表明此時(shí)的乳狀液最穩(wěn)定。隨著油濃度的提升,靈芝孢子油乳狀液離心穩(wěn)定性在不斷下降。當(dāng)油濃度為1.0%時(shí),乳狀液離心穩(wěn)定系數(shù)很低。綜合粒徑和電位數(shù)據(jù),當(dāng)?shù)鞍诐舛葹?.5%和油濃度為0.5%時(shí),能制得穩(wěn)定性較好的乳狀液。當(dāng)儲(chǔ)藏至第5 天,粒徑出現(xiàn)明顯的增大,ζ-電位絕對(duì)值變小。儲(chǔ)藏到第10 天時(shí),過(guò)氧化值從大到小的順序分別為對(duì)照>乳狀液>大豆異黃酮>抗壞血酸>茶多酚。表明大豆分離蛋白制備的乳狀液可以有效包埋靈芝孢子油,并能有效增強(qiáng)靈芝孢子油的氧化穩(wěn)定性。本文為靈芝孢子油在食品保健領(lǐng)域的應(yīng)用以及液體口服類產(chǎn)品的開(kāi)發(fā)提供理論支持。