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    液相色譜-串聯(lián)質(zhì)譜法測(cè)定山銀花中有機(jī)酸和黃酮類化合物的含量

    2021-03-27 03:33:52史穎珠侯建波謝文錢艷黃超群張雅琴劉翠平張輝
    現(xiàn)代食品科技 2021年3期
    關(guān)鍵詞:銀花萃取柱木犀

    史穎珠,侯建波,謝文,錢艷,黃超群,張雅琴,劉翠平,張輝

    (1.浙江大學(xué)生物系統(tǒng)工程與食品科學(xué)學(xué)院,浙江杭州 310058)

    (2.杭州海關(guān)技術(shù)中心,浙江杭州 310016)(3.浙江省檢驗(yàn)檢疫科學(xué)技術(shù)研究院,浙江杭州 310016)

    山銀花是從忍冬科植物灰氈毛忍冬Lonicera macranthoidesHand.-Mazz.,紅腺忍冬Lonicera hypoglaucaMiq.,華南忍冬Lonicera confusaDC.或黃褐毛忍冬Lonicera fulvotomentosaHsu et S.C. Cheng 的干燥花蕾或帶初開的花,并在夏初花開放前采收獲得,自《中國(guó)藥典》2005 年版起,與金銀花進(jìn)行區(qū)分。具有清熱解毒,疏散風(fēng)熱的功效,可用于治療癰腫疔瘡、喉痹、丹毒、熱毒血痢、風(fēng)熱感冒、溫病發(fā)熱[1]。也具有抗菌、抗病毒、抗氧化和抗動(dòng)脈粥樣硬化等作用[2-5]。因此,2014 年正式被國(guó)家衛(wèi)生計(jì)生委批準(zhǔn)為“按照傳統(tǒng)既是食品又是中藥材物質(zhì)”[6,7]。

    圖1 有機(jī)酸和黃酮類化合物結(jié)構(gòu)式Fig.1 The chemical structures of investigated organic acids and flavonoids

    研究發(fā)現(xiàn)山銀花的有效成分除綠原酸,灰氈毛忍冬皂苷乙和川續(xù)斷皂苷乙外,還有黃酮類化合物、揮發(fā)油類化合物、有機(jī)酸類和三萜類化合物[8-12],研究人員通過HPLC,LC-MS/MS、高分辨質(zhì)譜法和波譜學(xué)等方法來測(cè)定和鑒別山銀花中各成分的結(jié)構(gòu)和含量[13-15],以及開展指紋圖譜、產(chǎn)品和品種的鑒別研究[16-20]。目前已發(fā)表的分析方法中除高分辨質(zhì)譜儀檢測(cè)可一次性篩查出山銀花中較多的有效成分外,其他檢測(cè)均較難獲得很多有效成分信息。但高分辨質(zhì)譜儀價(jià)格昂貴,影響了它的應(yīng)用范圍。本文通過文獻(xiàn)調(diào)研篩選出山銀花中4 種主要有機(jī)酸和14 種黃酮類化合物,采用酸性甲醇溶液超聲提取,HLB 固相萃取柱凈化,液相色譜-串聯(lián)質(zhì)譜法測(cè)定,建立了如圖1 所示的山銀花中綠原酸、咖啡酸、異綠原酸A、異綠原酸C、槲皮素、蘆丁、木犀草素、木犀草苷、山奈酚、紫云英苷、芹菜素、野漆樹苷、黃芩素、黃芩苷、槲皮素-3-甲基醚、香葉木素、白楊素和山奈素含量測(cè)定的方法,實(shí)現(xiàn)了山銀花中主要的4種有機(jī)酸和14種黃酮類化合物含量的同時(shí)測(cè)定。

    1 材料與方法

    1.1 儀器與試劑

    1.1.1 主要儀器設(shè)備

    API 4000 型三重四極桿串聯(lián)質(zhì)譜儀(配電噴霧離子源ESI,AB 公司,美國(guó));1100 型液相色譜儀(Agilent公司,美國(guó));Milli-Q Synergy 185 超純水器(Millipore公司,美國(guó));IKA MS3 Basic 型渦旋器(IKA 公司,德國(guó));24 孔固相萃取裝置(Supelco 公司,美國(guó));Heraeus Multifuge X1R 型臺(tái)式離心機(jī)(Thermo 公司,美國(guó));P 300 H 型超聲波清洗機(jī)(Elma 公司,德國(guó));G&G JJ500 型電子天平(雙杰公司產(chǎn)品,中國(guó));Mettler AE260 型電子天平(Mettler Toledo 公司產(chǎn)品,瑞士)。

    1.1.2 主要耗材和試劑

    甲醇(色譜純),Tedia 公司;甲酸(質(zhì)譜級(jí)),Scharlau 公司;乙腈(色譜純),Scharlau 公司;鹽酸(優(yōu)級(jí)醇),永華化學(xué)科技(江蘇)有限公司;叔丁基對(duì)苯二酚(tert-Butylhydroquinone,簡(jiǎn)稱:TBHQ,分析純),Aladdin 公司;L-(+)-抗壞血酸(L(+)-Ascorbic acid,分析純),廣東光華科技股份有限公司;CNW C18固相萃取柱(6 mL,500 mg),Anpel 公司;Waters HLB 固相萃取柱(6 mL,200 mg),Waters 公司。

    標(biāo)準(zhǔn)物質(zhì):綠原酸(純度99.9%),ANPEL 公司;咖啡酸(純度98.1%),ANPEL 公司;異綠原酸A(純度98.8%),ANPEL 公司;異綠原酸C(純度99.5%),ANPEL 公司;槲皮素(純度96.4%),ChromaDex公司;蘆丁(純度95.0%),TRC 公司;木犀草素(純度96.9%),ChromaDex 公司;木犀草苷(純度98.9%),ANPEL 公司;山萘酚(純度95.5%),中國(guó)食品藥品檢定研究院、紫云英苷(純度99.1%),ANPEL 公司;芹菜素(純度98.5%),Bepure 公司;野漆樹苷(純度98.9%),ANPEL 公司;黃芩素(純度99.2%),ANPEL 公司;黃芩苷(純度96.8%),ChromaDex公司;槲皮素-3-甲基醚(純度97.0%),TRC 公司;香葉木素(純度97.8%),ChromaDex 公司;白楊素(純度98.0%),TRC 公司;山奈素(純度97.8%),ChromaDex 公司。用甲醇將各化合物固體標(biāo)準(zhǔn)品溶解,稀釋并定容獲得10 mg/mL 標(biāo)準(zhǔn)儲(chǔ)備液,根據(jù)需要用甲醇將其儲(chǔ)備液稀釋至所需濃度。

    1.1.3 儀器工作條件

    色譜參數(shù):色譜柱:Mightysil RP-18,3 μm,4.6×150 mm,流動(dòng)相:甲醇(A)-0.15%甲酸溶液(B),流動(dòng)相梯度洗脫程序:0~10.0 min時(shí)40%(A)線性增加至75%;10.0~15.0 min時(shí)75%(A)線性增加至90%;15.0~22.0 min時(shí)90%(A)保持不變;22.0~23.0 min線性下降至40%(A);23.0~30.0 min 40%(A)進(jìn)行系統(tǒng)平衡;流速:0.4 mL/min;進(jìn)樣量:20 μL;柱溫25 ℃。

    質(zhì)譜參數(shù):離子源:電噴霧離子源(ESI);掃描模式:負(fù)離子掃描;監(jiān)測(cè)方式:多反應(yīng)監(jiān)測(cè)(MRM);電噴霧電壓(IS):-4500 V;霧化氣壓力(GS1):289 kPa(42 psi);氣簾氣壓力(GS2):310 kPa(45 psi);輔助氣流速(CUR):172 kPa(25 psi);離子源溫度(TEM):540 ℃,駐留時(shí)間30 ms;其它質(zhì)譜參數(shù)如表1所示。

    表1 各化合物基本信息及質(zhì)譜測(cè)定條件Table 1 Standard information and optimized mass spectrometric parameters of compounds

    1.1.4 試驗(yàn)方法

    稱取0.5 g 試樣(精確到0.01 g)置于50 mL 具塞離心管中,加0.5 g TBHQ,加入40 mL 50%的甲醇溶液,渦旋均勻,超聲40 min(100 W,37 kHz,30 ℃),靜置冷卻至室溫后,于8500 r/min 高速離心5 min,濾紙過濾上清液轉(zhuǎn)移至50 mL 容量瓶中,加水定容至50 mL,混勻,取1 mL 加8.5 mL 水和0.5 mL 濃鹽酸,渦旋混勻并轉(zhuǎn)移至HLB 固相萃取柱中(依次用5 mL甲醇和5 mL 5%甲醇溶液活化),加入5 mL 5%甲醇溶液淋洗,抽干,加10 mL 甲醇進(jìn)行洗脫,控制流速1~2 mL/min,收集全部洗脫液,定容至10 mL,搖勻,過0.22 μm 有機(jī)濾膜,取1.0 mL 定容溶液,加40%的甲醇溶液稀釋定容至25 mL,混合均勻,供液相色譜-串聯(lián)質(zhì)譜儀測(cè)定。

    1.2 數(shù)據(jù)處理

    標(biāo)準(zhǔn)溶液和實(shí)驗(yàn)溶液通過液相色譜-串聯(lián)質(zhì)譜儀進(jìn)行測(cè)試,以標(biāo)準(zhǔn)品峰面積Y 為縱坐標(biāo),以待測(cè)物質(zhì)量濃度X(g/kg)為橫坐標(biāo)對(duì)標(biāo)準(zhǔn)溶液繪制標(biāo)準(zhǔn)工作曲線,并對(duì)實(shí)驗(yàn)溶液進(jìn)行定量計(jì)算。

    2 結(jié)果與討論

    2.1 提取條件的選擇

    本試驗(yàn)參考中國(guó)藥典的方法[1],采用超聲方式進(jìn)行提取,并考察了超聲波清洗儀參數(shù)、抗氧化劑對(duì)提取情況的影響。結(jié)果發(fā)現(xiàn),超聲頻率在37 kHz 和80 kHz,有效功率100 W,對(duì)提取結(jié)果顯示無明顯差別。比較超聲時(shí)間在10、20、30、40、50、60 min 的提取情況,在40 min 時(shí)的回收率最高,當(dāng)超聲時(shí)間大于40 min 后,山銀花本底中的綠原酸、咖啡酸、異綠原酸A 和異綠原酸C 含量,和通過外部添加方式加入的黃芩素和黃芩苷回收率下降10%~15%。對(duì)比TBHQ和抗壞血酸兩種不同抗氧化劑的保護(hù)情況,結(jié)果表明,在沒有抗氧化劑的情況下,山萘酚的回收率低于70%,在TBHQ加入后,山萘酚的回收率可以達(dá)到80%以上,山奈素回收率提高約10%。綜上情況,最終選擇超聲頻率37 kHz,有效功率100 W,超聲時(shí)間40 min,50%甲醇溶液,TBHQ 保護(hù)下開展提取實(shí)驗(yàn)。

    2.2 凈化條件的選擇

    本試驗(yàn)考察了C18和HLB 兩種類型固相萃取柱的凈化情況,以降低基質(zhì)效應(yīng)對(duì)液相色譜-串聯(lián)質(zhì)譜法定量測(cè)定的基質(zhì)干擾,提高檢測(cè)結(jié)果的準(zhǔn)確性。取1 mL 200 ng/mL 的標(biāo)準(zhǔn)溶液(50%甲醇溶液,0.5 g TBHQ),加入9 mL 水,考察鹽酸濃度分別為0%、2.5%、5%、10%、15%的凈化情況,混勻上樣后,采取5 mL 的10%、20%、30%、40%、50%甲醇溶液進(jìn)行淋洗和10 mL 甲醇進(jìn)行洗脫。結(jié)果如圖2 所示,酸性環(huán)境有助于提高固相萃取凈化時(shí)化合物的穩(wěn)定性,不加鹽酸時(shí)蘆丁、木犀草素、山奈酚、紫云英苷、芹菜素、野漆樹苷、黃芩素、槲皮素-3-甲基醚和香葉木素的凈化回收率均低于含有鹽酸的情況,對(duì)不同濃度的鹽酸考察發(fā)現(xiàn),鹽酸濃度5%時(shí)化合物回收率整體較好。淋洗實(shí)驗(yàn)發(fā)現(xiàn),在甲醇含量為20%時(shí),在C18固相萃取柱中綠原酸和咖啡酸會(huì)被洗脫,在HLB 固相萃取柱中,甲醇含量大于30%時(shí)綠原酸和咖啡酸會(huì)被洗脫,HLB固相萃取柱的凈化回收率和穩(wěn)定性好于C18固相萃取柱。因此試驗(yàn)采用HLB 固相萃取柱,甲醇溶液上樣(含有5%鹽酸),5%甲醇淋洗,甲醇洗脫的方式進(jìn)行凈化。

    圖2 不同鹽酸濃度在HLB 固相萃取柱中的凈化情況對(duì)比圖Fig.2 The results of different HCl concentrations in HLB solid phase extraction columns

    2.3 色譜條件的考察

    實(shí)驗(yàn)對(duì)比Mightysil RP-18,3 μm,4.6×150 mm 或Inertsil ODS-3,3 μm,4.6×150 mm 色譜柱,甲醇或乙腈為有機(jī)相,0.15%甲酸溶液或水為水相對(duì)目標(biāo)化合物進(jìn)行分離情況。結(jié)果表明,相同色譜條件下,綠原酸、咖啡酸、異綠原酸A、異綠原酸C 在Mightysil RP-18 的分離效果好于Inertsil ODS-3,黃芩苷在Mightysil RP-18 為分離柱時(shí)譜峰峰形更好,信號(hào)提升約4 倍。因此采用Mightysil RP-18 為分離柱對(duì)目標(biāo)化合物進(jìn)行分析。在相同色譜柱和流動(dòng)相梯度洗脫程序下,甲醇為有機(jī)相時(shí)大部分化合物的信號(hào)響應(yīng)和峰形好于乙腈有機(jī)相(其中野漆樹苷、蘆丁、木犀草苷在甲醇為流動(dòng)相時(shí)信號(hào)響應(yīng)提升3~5 倍),綜合考慮前處理采用甲醇進(jìn)行洗脫凈化,因此采用甲醇為有機(jī)相對(duì)目標(biāo)化合物進(jìn)行分離。對(duì)比相同色譜柱下甲醇為有機(jī)相,水和0.15%甲酸溶液為水相的分離情況,以Mightysil RP-18 色譜柱為例,在0.15%甲酸溶液中信號(hào)的峰形和響應(yīng)好于水(其中綠原酸、咖啡酸、異綠原酸A、異綠原酸C 和黃芩素在含0.15%甲酸時(shí)信號(hào)提升5 倍以上)。綜上情況,實(shí)驗(yàn)以Mightysil RP-18為分離柱,甲醇和0.15%甲酸溶液為流動(dòng)相,分析結(jié)果如圖3 所示,該條件下相近離子對(duì)的化合物如異綠原酸A 和異綠原酸C,山奈素和香葉木素可以實(shí)現(xiàn)很好的分離。

    2.4 質(zhì)譜條件的考察

    實(shí)驗(yàn)采用流動(dòng)注射的方式在負(fù)離子模式下進(jìn)行母離子全掃描獲得準(zhǔn)分子離子峰,再以準(zhǔn)分子離子峰為母離子,對(duì)其子離子進(jìn)行全掃描。按照歐盟EC/657指令和《質(zhì)譜分析方法通則》的要求,選擇兩個(gè)特征子離子對(duì)目標(biāo)化合物定量確證,以信噪比高、峰形好、干擾小的離子對(duì)作為定量離子對(duì)。多反應(yīng)監(jiān)測(cè)負(fù)離子模式下優(yōu)化的各質(zhì)譜參數(shù)和最佳質(zhì)譜條件參見表1。

    圖3 液相色譜-質(zhì)譜/質(zhì)譜法分離結(jié)果(2 ng/mL)Fig.3 The separation result of LC-MS/MS

    2.5 基質(zhì)效應(yīng)的考察

    試驗(yàn)通過計(jì)算離子抑制率的方式來考察基質(zhì)效應(yīng)情況[21]。[離子抑制率/%=(溶劑工作液中響應(yīng)強(qiáng)度-基質(zhì)加標(biāo)溶液響應(yīng)強(qiáng)度)×100%/溶劑工作液中響應(yīng)強(qiáng)度]。測(cè)試相同濃度(40 ng/mL)的溶劑工作液和基質(zhì)加標(biāo)溶液中各化合物的信號(hào)響應(yīng)強(qiáng)度,如表2 所示,各化合物離子抑制率均小于15%,即試驗(yàn)條件下獲得的基質(zhì)溶液無明顯的基質(zhì)效應(yīng),因此采用甲醇-0.15%甲酸溶液(體積比4:6)稀釋獲得線性工作曲線溶液進(jìn)行定量計(jì)算。

    2.6 方法的線性關(guān)系,定量限和回收率實(shí)驗(yàn)

    在確定實(shí)驗(yàn)條件下進(jìn)行檢測(cè),方法定量限(以S/N>10 計(jì))0.005 g/kg(槲皮素、蘆丁、木犀草苷、紫云英苷、芹菜素、黃芩苷和槲皮素-3-甲基醚),0.025 g/kg(木犀草素、野漆樹苷、香葉木素和山奈素)和0.05 g/kg(綠原酸、咖啡酸、異綠原酸A、異綠原酸C、山奈酚、黃芩素和白楊素)。對(duì)濃度0.05、0.10、0.20、0.50 和1.00 g/kg 的線性工作曲線溶液進(jìn)行測(cè)試,以標(biāo)準(zhǔn)品峰面積Y 為縱坐標(biāo),以待測(cè)物質(zhì)量濃度X(g/kg)為橫坐標(biāo)繪制標(biāo)準(zhǔn)工作曲線如表3 所示,線性方程的相關(guān)系數(shù)r2大于0.993。

    表2 山銀花基質(zhì)對(duì)各化合物的基質(zhì)效應(yīng)情況Table 2 The matrix effect of Lonicerae flos on the investigated compounds (n=3)

    表3 待測(cè)化合物的線性方程及相關(guān)系數(shù)Table 3 The linear equation and correlation coefficients (r2) of compounds

    表4 山銀花中3 個(gè)水平下的加標(biāo)回收率和相對(duì)標(biāo)準(zhǔn)偏差Table 4 The results of recoveries and correlation coefficients (n=6)

    注:回收率=(測(cè)定結(jié)果-空白值)/添加濃度×100%。

    表5 山銀花中有機(jī)酸和黃銅類化合物含量測(cè)定結(jié)果Table 5 The contents of organic acid and flavonoids in Lonicerae flos

    對(duì)山銀花樣品(樣品含綠原酸21.0 g/kg,咖啡酸1.50 g/kg,異綠原酸A 11.2 g/kg,異綠原酸C 10.3 g/kg),進(jìn)行3 個(gè)濃度水平的添加回收實(shí)驗(yàn)(添加水平綠原酸10.0、20.0 和40.0 g/kg,咖啡酸1.0、2.0 和4.0 g/kg,異綠原酸A 和異綠原酸C 5.0、10.0 和20.0 g/kg,其他化合物0.05、0.10 和0.20 g/kg),每個(gè)濃度水平取6 個(gè)平行樣。測(cè)定綠原酸,咖啡酸,異綠原酸A 和異綠原酸C 時(shí),將測(cè)試溶液進(jìn)行稀釋至溶液濃度在線性范圍內(nèi)。結(jié)果如表4 所示,采用外標(biāo)法定量,方法總體回收率69.2%~116%,相對(duì)標(biāo)準(zhǔn)偏差:3.3%~12.0%。

    2.7 實(shí)際樣品測(cè)試

    應(yīng)用實(shí)驗(yàn)方法對(duì)11 個(gè)山銀花進(jìn)行檢測(cè),結(jié)果如表5 所示,山銀花中綠原酸、異綠原酸A 和異綠原酸C的含量最高,其次是木犀草苷和紫云英苷。樣品中有8 個(gè)化合物(山奈酚、野漆樹苷、黃芩素、黃芩苷、槲皮素-3-甲基醚、香葉木素、白楊素和山奈素)含量低于方法定量限。

    3 結(jié)論

    本試驗(yàn)通過甲醇溶液超聲提取,酸性溶液上樣,HLB 固相萃取柱凈化,液相色譜-串聯(lián)質(zhì)譜法檢測(cè),外標(biāo)法定量,實(shí)現(xiàn)了對(duì)山銀花中18 種主要有機(jī)酸和黃酮類化合物(綠原酸、咖啡酸、異綠原酸A、異綠原酸C、槲皮素、蘆丁、木犀草素、木犀草苷、山奈酚、紫云英苷、芹菜素、野漆樹苷、黃芩素、黃芩苷、槲皮素-3-甲基醚、香葉木素、白楊素和山奈素)含量的測(cè)定。對(duì)11 個(gè)山銀花樣品的測(cè)定結(jié)果顯示綠原酸、異綠原酸A、異綠原酸C、木犀草苷和紫云英苷是其主要成分。研究結(jié)果對(duì)后續(xù)分析各化合物含量與藥物活性關(guān)系,山銀花品質(zhì)和品種研究具有重要的輔助作用。

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