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    Fhb1基因改良‘周麥’品種赤霉病抗性研究

    2021-03-24 07:19:44李楠楠李順成韓玉林鄒少奎杜曉宇楊光宇王麗娜呂永軍
    中國農(nóng)學通報 2021年4期
    關鍵詞:周麥株系赤霉病

    李楠楠,李順成,韓玉林,鄒少奎,杜曉宇,楊光宇,王麗娜,張 倩,呂永軍

    (周口市農(nóng)業(yè)科學院/河南省小麥種質(zhì)改良工程技術(shù)研究中心/河南省作物分子育種與生物反應器重點實驗室,河南周口466001)

    0 引言

    小麥赤霉病(fusarium head blight,F(xiàn)HB)是廣泛發(fā)生在溫暖潮濕和半潮濕地區(qū)的一種毀滅性病害,由多種鐮刀菌引起[1-2]。中國是小麥赤霉病重發(fā)區(qū),發(fā)生區(qū)域主要在長江中下游冬麥區(qū)和東北東部春麥區(qū)[3-4]。近年來隨著全球氣候變暖和小麥耕作制度的變化,病害逐漸向北蔓延至黃淮流域,黃淮麥區(qū)的赤霉病發(fā)生有越來越嚴重的趨勢。2001—2018年有9個年份小麥赤霉病的發(fā)生面積超過333萬hm2,2012年赤霉病發(fā)生更加嚴重,超過1000萬hm2,對小麥生產(chǎn)構(gòu)成嚴重的威脅。目前,全世界尚缺乏高抗赤霉病或免疫的小麥品種,因此,進行小麥品種抗性改良,培育抗性品種是減輕小麥赤霉病危害的根本途徑。抗赤霉病的QTLs的不斷發(fā)掘?qū)⒋蟠蠹涌炜剐曰蛳蜻m應性良好的栽培品種的轉(zhuǎn)移。據(jù)報道,利用分子標記輔助選擇育種技術(shù),已經(jīng)在瑞士[5]、加拿大[6]、美國[7]、巴西[8]、日本[9]等選育出抗性顯著提高的小麥新品種。分子標記輔助選擇不僅解決表型鑒定不穩(wěn)定的難題,還可提高選擇效率,縮短育種年限,具有很大的優(yōu)越性[10-11]。國內(nèi)外學者利用分子技術(shù)對小麥赤霉病抗性做了大量研究,已經(jīng)鑒定和定位了分布在小麥21條染色體上250多個與抗赤霉病相關的QTLs[12-13],目前公認的抗性最穩(wěn)定和效應最大的抗性基因是Fhb1。Waldron等[14]首先報道‘蘇麥3號’3BS上的赤霉病抗性基因Fhb1。另外,在‘望水白’、‘黃方柱’、日本品種‘NyuBai’等多個抗源中也存在Fhb1基因[15]。Anderson等[16]研究認為Fhb1能解釋41.6%和24.8%的表型變異。Cuthbert等[17]研究Sumai3*5/Thatcher群體時,將Fhb1定位在XSTS3B-80~XSTS3B-142之間,遺傳距離為1.27 cM。賈海燕等[18]采用遺傳和BAC-物理作圖的方法,通過研究來源于‘望水白’的材料,將Fhb1基因精細定位在SSR標記Xwgrb597~Xmag9404之間,遺傳距離為0.19 cM。董晶晶等[19]利用‘黃方柱’和‘Wheaton’衍生的RIL群體對Fhb1進行精細定位,將其定位在分子標記X2214~X2357之間。2016年Rawat等[20]報道了Fhb1基因克隆的結(jié)果。Fhb1編碼一種帶有凝集素結(jié)構(gòu)域以及類毒素成孔結(jié)構(gòu)域的嵌合凝集素(pore-forming toxin-like,PFT),通過突變體分析、基因過表達和沉默等試驗證實了PFT就是Fhb1編碼的基因。朱展望等[21]研究認為目前利用標記輔助選擇Fhb1的限制因素是缺乏低成本的診斷性標記,雖其連鎖標記在Xgwm493、Xgwm533、UMN10和Xsnp3BS-8等在育種中有一定應用[22-23],但均受遺傳背景影響較大[24]。Rawat等證明Fhb1為PFT基因,對PFT鄰近基因His測序發(fā)現(xiàn)His位點的多態(tài)性,進而開發(fā)出Fhb1診斷性標記His-InDel,該標記擴增穩(wěn)定、片段差異大、用瓊脂糖凝膠電泳即可檢測,成本較低,是理想的育種標記。本研究利用與抗赤霉病基因Fhb1緊密連鎖的診斷性標記His-InDel篩選‘周麥’改良抗性材料,配合田間單花滴注接種鑒定材料抗性,旨在通過分子檢測改良抗赤霉病小麥品系,加速‘周麥’的抗赤霉病育種。

    1 材料與方法

    1.1 試驗材料

    本研究利用本地主栽‘周麥’品種(系‘)周麥22號’、‘周麥32號’、‘周11550’等與綜合性狀良好的抗赤霉病小麥品種‘寧麥9號’‘、生選6號’‘、揚麥21’等配置一系列雜交組合,經(jīng)選擇獲得F3株系113個、F4株系188個、F5株系178個、F6株系142個,總共621個株系。

    田間接種鑒定中,將黃淮麥區(qū)的中感赤霉病品種‘淮麥20’作為對照材料,當單花滴注后‘淮麥20’發(fā)病達到3級以上,抗赤霉病鑒定視為有效[25]。

    1.2 田間試驗設計

    2011—2017年在周口市農(nóng)業(yè)科學院試驗基地進行雜交和后代單株選擇。2017年秋播同時將F3~F6后代種植于抗赤霉病鑒定圃,每個株系種植2行,寬窄行(20 cm+40 cm),行長3 m,穴播。

    1.3 抗赤霉病鑒定方法

    將河南省農(nóng)科院宋玉立研究員提供的5個赤霉菌菌 株(14F3-8、10YY1-3、14LY9-2-4、14ZK1-4 和14AY1-2)和江蘇省農(nóng)科院張旭研究員提供的3個赤霉菌菌株(HG-1、J15和F0609)分別制備為分生孢子混合液(5×105孢子/mL)。在2018年小麥開花初期(10%麥穗揚花),采用單花滴注的方法[26],將孢子懸浮液20 μL注入第5個小穗內(nèi)(方向為由上而下),并對接種穗進行剪芒標記,每份材料接種10穗。接種后套袋保濕72 h,隨后定期利用迷霧裝置(自走式平移噴灌機,艾瑞德Irritech農(nóng)業(yè)機械有限公司,中國安徽)噴霧保證田間濕度利于病害的發(fā)生。

    1.4 統(tǒng)計分析

    接種后第21天調(diào)查所有接種材料的發(fā)病情況,根據(jù)病害癥狀描述(0級,接種小穗無可見發(fā)病癥狀;1級,僅接種小穗發(fā)病,或相鄰的個別小穗發(fā)病,但病斑不擴展到穗軸;2級,穗軸發(fā)病,發(fā)病小穗占總小穗的1/4以下;3級,穗軸發(fā)病,發(fā)病小穗占總小穗的1/4~1/2;4級,穗軸發(fā)病,發(fā)病小穗占總小穗的1/2以上),逐份統(tǒng)計10個接種穗的發(fā)病情況,并依據(jù)病害輕重確定每個接種穗的嚴重度分級。分別計算河南和江蘇菌株病害嚴重度的平均值,依據(jù)平均嚴重度標準(高抗R,0<平均嚴重度<2.0;中抗MR,2.0≤平均嚴重度<3.0;中感MS,3.0≤平均嚴重度<3.5)確定材料對赤霉病的抗性水平[25]。

    1.5 DNA提取

    在大田剪取各株系的新鮮嫩葉片1~2 g,裝入自封袋中并編號,放入-20℃冰箱備用。參照Saghai-Maroof等[27]報道的CTAB法提取葉片基因組DNA。

    1.6 SSR分析

    按照朱展望[21]開發(fā)引物His-InDel的PCR反應體系,總體積 20 μL,含 2× PCR Mix(0.1 U/μLTaq酶、500 μmol/L dNTPs、20 mmol/L Tri-HCl、10 mmol/L KCl、3 mmol/L MgCl2)10 μL,DNA 模板(50 ng/μL)2 μL,上下游引物(10 μmol/L)各 0.5 μL,ddH2O 7 μL。擴增程序為:95℃預變性 3 min;94℃變性30 s,65℃退火30 s,68℃延伸2.5 min,,共33個循環(huán);最后68℃延伸7 min,4℃保存。PCR反應在PCR儀(S1000,Bio-Rad,美國)上進行。PCR擴增產(chǎn)物用1.5%瓊脂糖凝膠電泳檢測。

    1.7 數(shù)據(jù)分析

    用DPS 9.5數(shù)據(jù)處理系統(tǒng)(中國)和Excel 2007軟件(美國)對數(shù)據(jù)進行統(tǒng)計分析。

    2 結(jié)果與分析

    2.1 供試材料的抗赤霉病鑒定

    來源于河南省和江蘇省的赤霉菌菌株接種供試材料,每份材料分別接種10穗。抗病性鑒定結(jié)果(表1)顯示,對河南赤霉菌表現(xiàn)高抗的材料占總數(shù)的7.9%、中抗占27.2%,比對江蘇赤霉菌表現(xiàn)高抗和中抗的材料多4和7.2個百分點;對河南赤霉菌表現(xiàn)中感和高感的材料占總數(shù)的38.6%和26.3%,比對江蘇赤霉菌表現(xiàn)抗性的材料少6.9和4.3個百分點,表明供試材料對江蘇赤霉菌的抗性比河南赤霉菌弱。

    表1 2018年供試材料田間接種抗性鑒定結(jié)果

    圖1表明,抗病親本‘寧麥9號’、‘生選6號’、‘揚麥21號’田間鑒定為中抗以上水平,而感病親本‘周麥22號’、‘周麥32號’田間鑒定為高感,‘淮麥20號’是黃淮麥區(qū)的中感對照,田間鑒定為中感,說明人工接種鑒定的發(fā)病情況比較充分。

    按世代和赤霉菌來源分別對后代材料進行赤霉病抗性對比分析。江蘇赤霉菌侵染鑒定結(jié)果顯示,鑒定為中感的材料在每個世代的比例都是最高的(F3為 50.4%,F(xiàn)4為 45.7%,F(xiàn)5為 42.7%,F(xiàn)6為 45.1%)。而河南赤霉菌田間侵染結(jié)果表明,F(xiàn)3植株表現(xiàn)最多的抗性級別為中感,有53個株系,占F3材料的46.9%;同時F4最多的是高感(42.0%),F(xiàn)5最多的是中感(39.9%),F(xiàn)6最多的是中抗(47.9%),高世代的抗性較低世代穩(wěn)定提高,表明每年通過田間鑒定選擇農(nóng)藝性狀和抗性兼?zhèn)涞牟牧线M入下一代能夠顯著提高材料的群體抗性,單花滴注接種鑒定能有效改良小麥的赤霉病抗性。

    2.2 抗赤霉病基因分子標記檢測供試材料

    利用在3BS上Fhb1基因的診斷性標記His-InDel對雜交親本‘周麥22’、‘周麥32’、‘周11550’和‘寧麥9號’、‘生選6號’、‘揚麥21號’進行分子檢測。結(jié)果表明,‘寧麥9號’、‘生選6號’、‘揚麥21號’擴增片段為1309 bp,含有Fhb1基因;‘周麥22號’、‘周麥32號’、‘周11550’等不含F(xiàn)hb1基因的擴增片段在2000 bp左右,與‘寧麥9號’等含F(xiàn)hb1的品種差異明顯(圖2)。同時,利用該標記對621個后代材料進行基因型分析,檢測出210個株系攜帶Fhb1基因,其中田間鑒定表現(xiàn)高抗的材料有48個、中抗的有119個、中感的有34個、高感的有9個,中抗以上材料占比79.5%;不攜帶Fhb1基因的株系有411個,只有1個株系表現(xiàn)高抗,中抗的50個,中感、高感的分別是206、154個,感病材料占比87.6%(表2)。圖1中GD1(+)、GD2(+)、GD3(+)為3個攜帶Fhb1基因的高代材料,田間鑒定為中抗—高抗;GD4(-)、GD5(-)、GD6(-)為3個不攜帶Fhb1基因的高代材料,田間鑒定為高感。這說明分子標記檢測與人工接種鑒定結(jié)果的趨勢一致,通過分子標記檢測Fhb1基因結(jié)合田間抗性鑒定選擇效率很高。

    表2 2018年周麥后代材料中Fhb1的檢測結(jié)果

    圖1 單花滴注鑒定雜交親本、攜帶和不攜帶Fhb1基因的后代材料的田間抗性表現(xiàn)

    圖2 His-InDel標記對親本和部分后代的擴增結(jié)果

    2.3 田間鑒定材料在攜帶Fhb1基因和不攜帶之間的差異性分析

    用Fhb1的分子標記His-InDel在后代中共篩選出210份材料,沒有篩選出抗性條帶的材料有411份。把含有Fhb1基因和不含F(xiàn)hb1基因的材料分為2組,田間調(diào)查每份材料的平均嚴重度。利用DPS軟件統(tǒng)計這2組之間田間鑒定的差異是否顯著。F>F0.01,表明2組材料的抗性差異達極顯著水平,含有Fhb1基因的抗赤霉性明顯高于不含F(xiàn)hb1基因的材料(表3~4),表明通過Fhb1基因連鎖的分子標記輔助選擇育種提高赤霉病抗性是有效的。

    表3 含F(xiàn)hb1與不含F(xiàn)hb1材料之間平均嚴重度方差分析

    表4 攜帶Fhb1與不攜帶Fhb1的材料之間抗赤霉性的差異顯著性(LSD法)

    3 討論

    3.1 不同來源赤霉菌的抗性接種鑒定

    小麥赤霉病抗性田間接種鑒定與評價方法有很多種,抗侵染一般采用土表撒病麥粒和穗部噴孢子懸浮液進行接種鑒定,評價方法一般采用病情指數(shù)和平均嚴重度。而單花滴注接種被廣泛應用于抗擴展的鑒定,調(diào)查接種穗的平均嚴重度作為抗性分級的評價標準[25]。本研究所使用的病原菌孢子分別來源于江蘇省和河南省2類不同的生態(tài)區(qū)環(huán)境,在孢子濃度、接種套袋保濕、溫度濕度、土壤和評價標準均一致的條件下,調(diào)查不同地域環(huán)境的病原菌孢子之間的抗性差異,試驗結(jié)果誤差小,可信度較高。結(jié)果表明后代材料對來源于江蘇省的赤霉菌比來源于河南省的抗性弱,這可能與長江中下游地區(qū)長期受赤霉病菌危害,而河南省所在的黃淮麥區(qū)歷史上一直不是赤霉病的高發(fā)區(qū)域,而兩地的生態(tài)環(huán)境不同導致赤霉病菌種的致病力也不同。

    本研究以本地主栽半冬性、感赤霉病‘周麥’品種(系)‘周麥22號’、‘周麥32號’、‘周11550’為母本,長江中下游抗赤霉病品種‘寧麥9號’、‘生選6號’、‘揚麥21號’為父本配置雜交組合,通過田間單花滴注接種鑒定獲得F3~F6代材料。結(jié)果顯示,這些材料比高感親本‘周麥22號’等赤霉病抗性有顯著提升。不過,黃淮麥區(qū)不是赤霉病表型鑒定的理想環(huán)境,穩(wěn)定的表型鑒定環(huán)境一直是本地區(qū)小麥抗赤霉病育種的難題,所以完善赤霉病抗性鑒定技術(shù),是篩選抗性品種的重要研究工作。

    3.2 抗赤霉病分子標記輔助選擇及其應用前景

    分子標記輔助選擇技術(shù)具有準確、快速、實用和不受外界環(huán)境影響等特點,比表型鑒定更有優(yōu)勢。目前有許多利用這種技術(shù)實現(xiàn)抗病改良的報道。Fhb1已被證明是抗性最強且穩(wěn)定的抗赤霉病基因,周淼平等[28]研究‘蘇麥3號’與感病材料重組自交系群體中,發(fā)現(xiàn)位于3B上的抗赤霉病Fhb1基因兩側(cè)的分子標記Xgwm533和Xgwm493。此后,許多學者在不同遺傳背景下研究利用這2個標記進行抗性選擇具有較高的效率[10-11,29]。Liu等[22]開發(fā)出共顯性標記UMN-10,與Fhb1基因連鎖更加緊密,比SSR標記選擇效率更高。本研究選擇朱展望等開發(fā)的診斷性標記His-InDel,利用該標記鑒定材料穩(wěn)定準確,是理想的育種標記。結(jié)果表明,抗赤霉病親本‘寧麥9號’、‘生選6號’、‘揚麥21號’均含有Fhb1基因,而感病親本‘周麥22號’、‘周麥32號’均不含F(xiàn)hb1基因,說明Fhb1基因能有效地鑒定小麥赤霉病的抗性。后代中不含F(xiàn)hb1基因的411份材料中,也有51份中抗以上的材料,又表明除Fhb1基因外還可能攜帶其他抗赤霉病基因發(fā)揮作用。

    為進一步利用Fhb1基因提高分子標記輔助選擇效率,采用標記單體型輔助選擇和標記組輔助選擇,能夠很好地彌補單一分子標記的不足。多個SSR位點可以明顯在抗感品種中形成不同的單體型。Yu等[30]研究認為在抗赤霉病QTL區(qū)域和抗病品種‘蘇麥3號’相同的SSR標記有利等位數(shù)目,會影響抗性的強弱,在3BS上的QTL位點,1個SSR和‘蘇麥3號’等位,沒有2~3個SSR和‘蘇麥3號’等位的抗性強。說明針對‘蘇麥3號’有利等位的SSR標記組或者組成的單體型全部有利等位位點的選擇要明顯優(yōu)于針對單個SSR的選擇。Arruda等[31]利用GWAS分析,與Fhb1基因關聯(lián)的4個SNP位點中,同時存在4個SNP位點其赤霉病抗性明顯高于只有1個或者2個SNP位點,這為下一步的工作指明了研究方向。另外,最新研究表明,通過生物工程方法控制TaHRC序列來提高小麥對FHB的抗性是一條新途徑。Su等[32]認為TaHRC基因是Fhb1介導的FHB耐藥的關鍵決定因素,該基因編碼一個假定的富含組氨酸的鈣結(jié)合蛋白。證明了TaHRC編碼了一個具有FHB易感性的核蛋白,并且該基因起始密碼子的缺失導致了FHB的抗性,開發(fā)了TaHRCGSM分子標記用于診斷缺失突變。

    小麥赤霉病抗性屬于典型的多基因控制的數(shù)量性狀[33],主要有抗侵入、抗擴展、抗DON毒素積累等類型[34]。育種上要把多個抗赤霉病基因聚合在一起難度很大,‘周麥’系列抗赤霉病育種可以采取循序漸進的方法,通過分子標記輔助選擇,把主效Fhb1基因轉(zhuǎn)育到主栽品種(系)中,快速改良育成品種的赤霉病抗性水平,再進行多個抗赤霉病基因的聚合,達到進一步提高小麥赤霉病抗性的目的??梢灶A期的是,小麥大面積豐產(chǎn)性與抗赤霉病性結(jié)合的育種目標是可以實現(xiàn)的。‘周麥’是黃淮南片最重要的系列品種之一,提升‘周麥’品種整體的抗赤霉病水平對增加本地小麥的產(chǎn)量和品質(zhì)、提高社會經(jīng)濟效益具有十分重要的意義。

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