耿嘉鈺,程煥,2,張惠玲*
1(寧夏大學(xué) 農(nóng)學(xué)院,寧夏食品微生物應(yīng)用技術(shù)與安全控制重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室,寧夏 銀川,750021)2(浙江大學(xué) 生物系統(tǒng)工程與食品科學(xué)學(xué)院,智能食品加工技術(shù)與裝備國家地方聯(lián)合工程實(shí)驗(yàn)室,浙江省農(nóng)產(chǎn)品加工技術(shù)研究重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室,浙江省健康食品制造與品質(zhì)控制國際合作基地,浙江大學(xué)馥莉食品研究院,浙江 杭州,310058)
枸杞(LyciumbarbarumL.)作為傳統(tǒng)藥食兩用植物,已逐漸成為健康食品并被國內(nèi)外市場接受[1]。研究顯示,枸杞除多糖、甜菜堿和維生素外,還富含多酚類物質(zhì),因此具有較強(qiáng)的抗氧化、降低膽固醇的能力[2]。枸杞中多酚類物質(zhì)主要包括酚酸、花青素[3]、酚酸與多胺形成的酚酸酰胺等植物次生代謝物及其復(fù)合物[4-5]。枸杞酒作為枸杞深加工中發(fā)展最迅速的產(chǎn)品之一,逐漸被更多消費(fèi)者接受[6]。枸杞發(fā)酵酒酒精含量低,在保留枸杞原有的營養(yǎng)成分基礎(chǔ)上,還具有典型性香氣特征,十分適合貧血、睡眠質(zhì)量不佳的人群飲用[7]。酚酸在微生物的作用下轉(zhuǎn)化為酒的重要香氣成分,其中的芳香族化合物通過酵母菌發(fā)酵從兒茶素、綠原酸、阿魏酸和對羥基苯甲酸等物質(zhì)中轉(zhuǎn)化而來[8]。MATHEW等[9]研究顯示,阿魏酸可以被酵母菌、霉菌和細(xì)菌轉(zhuǎn)化為具有特殊香氣的4-乙烯基苯酚和香蘭素。
目前對枸杞中酚酸物質(zhì)的研究多集中于酚酸物質(zhì)的提取、鑒定和抗氧化能力等方面。呂海洋等[10]在寧夏枸杞中鑒定出28種多酚類物質(zhì),并首次鑒定出7種香豆酸糖苷衍生物;INBARAJ等[11]研究發(fā)現(xiàn),寧夏枸杞含有槲皮素、酚酰胺及香豆酸化合物,其種類和含量都很豐富;而FORINO等[12]首次在枸杞中發(fā)現(xiàn)阿魏酸與酪胺形成的二聚體,并認(rèn)為是枸杞中含量最高的酚類物質(zhì);ISABEL等[13]用四級桿串聯(lián)飛行時(shí)間譜從寧夏枸杞中鑒定出包括綠原酸、對香豆酸、槲皮素及其衍生物等31種多酚類化合物;RODRIGUES等[14]測定了枸杞干果和枸杞膠囊中多酚的組成,發(fā)現(xiàn)共有8種具有生物活性的酚酸和2種黃酮類化合物,含量分別為55.5~83.7 mg/kg和172.3~2 982.4 mg/kg。目前,人們對酚酸單體物質(zhì)在枸杞酒發(fā)酵過程中的變化研究較少,因此本實(shí)驗(yàn)通過研究不同預(yù)處理及發(fā)酵過程中酚酸的降解情況,探究枸杞酒釀造過程中酚酸含量的變化及其相應(yīng)降解產(chǎn)物。
1.1.1 實(shí)驗(yàn)材料
枸杞,寧夏百瑞源枸杞股份有限公司;果膠酶(酶活力≥60 000 U/g),浙江博丹衡食品配料有限公司;偏重亞硫酸鈉,食品級,河南千志商貿(mào)有限公司;白砂糖,食品級,當(dāng)?shù)爻?;法國釀酒干酵母,法國Lamothe-Abiet公司。
1.1.2 實(shí)驗(yàn)試劑
環(huán)己醇(色譜純)、無水乙醇(色譜純)、甲醇(色譜純)、乙腈(色譜純)、正己烷(色譜純)、二氯甲烷(色譜純)、丙酮(色譜純)、甲酸(色譜純),美國Sigma-Aldrich公司;色譜級酚酸標(biāo)準(zhǔn)品包括兒茶酸、咖啡酸、香豆酸、綠原酸、丁香酸、阿魏酸和對羥基苯甲酸,阿拉丁(中國,上海)試劑公司。
1.1.3 儀器與設(shè)備
MS105DU電子天平,瑞士Mettler Toledo公司;DT35手持糖度儀,上海淋譽(yù)公司;SHJ-6AB磁力攪拌水浴鍋,常州金壇良友儀器有限公司;3K15離心機(jī),美國Sigma-Aldrich公司;RE-52旋轉(zhuǎn)蒸發(fā)儀,上海亞榮生化儀器廠;Waters e2695高效液相色譜分析儀,美國Waters公司;手動固相微萃取(SPME)裝置,美國Supelco公司;Agilent7890A-5975C氣相色譜-質(zhì)譜聯(lián)用儀,美國Agilent公司;LDZX-50KBS立式壓力蒸汽滅菌器,上海申安醫(yī)療器械廠;SPX-250B-Z 生化培養(yǎng)箱,上海博迅實(shí)業(yè)有限公司;PB-LO pH計(jì),賽多利斯科學(xué)儀器有限公司;JYK-C051九陽榨汁機(jī),中國杭州九陽小家電有限公司。
1.2.1 枸杞汁的制備
枸杞干果用蒸餾水沖洗干凈,料液比為1∶5(g∶mL),加入54 mg/L的偏重亞硫酸鈉,浸泡6 h后打漿,加入40 mg/L的果膠酶于40 ℃恒溫水浴4 h,分裝于錐形瓶中備用。
1.2.2 枸杞汁預(yù)處理?xiàng)l件設(shè)定
枸杞酒釀造前,必須對枸杞汁先進(jìn)行預(yù)處理,即酶解、滅菌、調(diào)節(jié)pH。參考趙璐[15]的方法對5個(gè)不同預(yù)處理?xiàng)l件進(jìn)行分析,實(shí)驗(yàn)均在避光以及充CO2隔氧的條件下進(jìn)行,并立即分別取10 mL樣品置于棕色瓶中封口待測。
對照組:將枸杞干果和蒸餾水按1∶5(g∶mL)的料液比放入干凈的榨汁機(jī)中,快速進(jìn)行機(jī)械破碎后立即取樣測定。
果膠酶處理組:將枸杞干果和蒸餾水按1∶5(g∶mL)的料液比放入干凈的榨汁機(jī)中,快速進(jìn)行機(jī)械破碎后,按比例加入40 mg/L果膠酶酶解2 h后取樣。在此期間保證燒杯充滿CO2。
調(diào)節(jié)pH組:將枸杞干果和蒸餾水按1∶5(g∶mL)的料液比放入干凈的榨汁機(jī)中,快速進(jìn)行機(jī)械破碎后,測得原汁的pH為4.8,用檸檬酸調(diào)整其pH為3.3后取樣。
高壓滅菌組:將枸杞干果和蒸餾水按1∶5(g∶mL)的料液比放入干凈的榨汁機(jī)中,快速進(jìn)行機(jī)械破碎后,在0.10~0.15 MPa,121~126 ℃滅菌條件下滅菌30 min后立即取樣測定。
偏重亞硫酸鈉組(SO2滅菌組):將枸杞干果和蒸餾水按1∶5(g∶mL)的料液比放入干凈的榨汁機(jī)中,快速進(jìn)行機(jī)械破碎后,加入54 mg/L偏重亞硫酸鈉,使游離SO2的質(zhì)量濃度達(dá)到60 mg/L,放置1 h后立即取樣測定。
光照處理組:將枸杞干果和蒸餾水按1∶5(g∶mL)的料液比放入干凈的榨汁機(jī)中,快速進(jìn)行機(jī)械破碎后,然后放置在自然光下分別照射1、2、3、4 h,分別取樣測定。
1.2.3 枸杞酒的釀造
取1.2.1小節(jié)中制備的枸杞汁,調(diào)節(jié)糖度為25°Bx,pH為3.3,接種酵母(0.20 g/L),18 ℃發(fā)酵,每天取樣進(jìn)行糖度、pH值和酒精度的測定,數(shù)值穩(wěn)定時(shí)終止發(fā)酵。取發(fā)酵后的酒樣存于-80 ℃冰箱待測。
1.2.4 酚酸含量測定
參考馬先紅等[16]和ADOM等[17]的方法,并做適當(dāng)修改。準(zhǔn)確稱取10 mL枸杞汁或枸杞酒樣品于50 mL離心管中,加入30 mL 體積分?jǐn)?shù)為80%冰乙醇后于搖床振蕩提取15 min。提取結(jié)束后在2 500 r/min離心10 min。移出上清液,殘?jiān)偬崛?次,合并3次上清液,用0.45 μm濾膜過濾。將過濾后的上清液放置在旋轉(zhuǎn)蒸發(fā)儀中,設(shè)置45 ℃,在真空條件下蒸干,并用甲醇定容至10 mL。使用0.22 μm濾膜過濾后保存于-80 ℃,用于酚酸物質(zhì)含量的測定。
使用高效液相色譜(hight performance liguid chromatography,HPLC)系統(tǒng)測定枸杞汁或枸杞酒中酚酸含量:色譜條件參考WU等[18]的方法并作適當(dāng)修改。取酚酸提取液與混和標(biāo)準(zhǔn)品溶液分別注射10 μL于HPLC系統(tǒng)中,反相C18柱(ZORABX SB-C18,250 mm×4.6 mm)用于色譜分離。使用雙流動相梯度洗脫,包括甲醇(A相)和體積分?jǐn)?shù)為0.1%甲酸水溶液(B相),洗脫程序?yàn)椋?~8 min,15%~20% A;8~18 min,20%~60% A;18~30 min,60%~80% A;30~40 min,80% A;40~50 min,80%~15% A。流速1.0 mL/min,柱溫30 ℃,檢測波長設(shè)為288和330 nm。通過對比各標(biāo)準(zhǔn)品的保留時(shí)間和峰面積,確定樣品中酚酸的組成和含量。
1.2.5 酚酸標(biāo)準(zhǔn)曲線繪制
避光準(zhǔn)確稱取兒茶素、綠原酸、咖啡酸、丁香酸、香豆酸、阿魏酸和對羥基苯甲酸標(biāo)準(zhǔn)品各2.00 mg,分別溶于冰乙醇中,待樣品完全溶解,用甲醇定容到10 mL容量瓶中,4 ℃儲存待用。進(jìn)樣前進(jìn)行梯度稀釋,并以各物質(zhì)質(zhì)量濃度為X軸,峰面積為Y軸建立線性回歸方程,結(jié)果如表1所示。
表1 酚酸線性回歸方程Table 1 Phenolic acid linear regression equation
1.2.6 建立模擬體系
以單純的酵母菌在糖液中發(fā)酵做模擬體系,分別加入酚酸標(biāo)準(zhǔn)品進(jìn)行酵母菌發(fā)酵,測定發(fā)酵后物質(zhì)的變化與降解產(chǎn)物。參考文獻(xiàn)[19]的方法配制與枸杞酒發(fā)酵環(huán)境相似的YPD培養(yǎng)基,準(zhǔn)確稱取蛋白胨20 g/L,加入1 000 mL蒸餾水,添加適量葡萄糖將培養(yǎng)基糖度調(diào)整為糖度25°Bx,調(diào)節(jié)培養(yǎng)基pH為3.3,121 ℃高壓滅菌30 min后冷卻到18 ℃左右。在無菌條件操作下,分別加入0.50 g各個(gè)酚酸標(biāo)準(zhǔn)品,接種酵母(0.2 g/L)于YPD培養(yǎng)基中,震蕩搖勻后,于18 ℃恒溫培養(yǎng)至培養(yǎng)液糖度不再變化,終止發(fā)酵,取樣待測。
1.2.7 酚酸降解的揮發(fā)性物質(zhì)測定
1.2.7.1 GC-MS分析[1]
色譜條件:DB-5MS色譜柱(30 m×0.25 mm,0.25 μm),進(jìn)樣口溫度為250 ℃,解吸時(shí)間5 min,用于GC-MS分析。載氣為高純氦氣(99.999%),氣體流量為1.5 mL/min,不分流。程序升溫:起始溫度35 ℃,保持3 min;以3 ℃/min的升溫速度升至40 ℃,保持1 min;再以5 ℃/min的升溫速度升至210 ℃,保持10 min。
質(zhì)譜條件:接口溫度270 ℃,離子源溫度為230 ℃,EI為電離源,電子能量為70 eV,燈絲流量為0.20 mA,檢測器電壓為350 V,掃描范圍為45~450 Amu。
1.2.7.2 定性定量分析
定性分析:分析結(jié)果運(yùn)用NIST譜庫進(jìn)行初步檢索和分析,再結(jié)合相關(guān)文獻(xiàn)進(jìn)行人工譜圖解析,進(jìn)而確認(rèn)各個(gè)待測組分的化學(xué)組成。
定量分析:采用內(nèi)標(biāo)環(huán)己酮(質(zhì)量濃度為0.285 μg/mL)進(jìn)行相對定量分析。即假設(shè)各物質(zhì)響應(yīng)頻率和內(nèi)標(biāo)物質(zhì)相同,通過待測組分與內(nèi)標(biāo)物質(zhì)峰面積之比,計(jì)算待測物質(zhì)的含量(μg·mL-1)。計(jì)算方法如公式(1):
待測物質(zhì)質(zhì)量濃度=
(1)
采用SPSS 20.0和Excel分析和處理數(shù)據(jù),單向方差分析(ANOVA)區(qū)分樣品之間的顯著差異,數(shù)據(jù)以平均值±標(biāo)準(zhǔn)差表示。
通過對照標(biāo)準(zhǔn)品與高分辨質(zhì)譜分析,從枸杞汁和枸杞酒色譜峰中共確定了7種酚類物質(zhì)單體。根據(jù)相應(yīng)化合物的標(biāo)準(zhǔn)曲線方程,計(jì)算7種酚酸單體的含量,如表2所示。
表2 枸杞酒中酚酸物質(zhì)組成及顯著性分析 單位:μg/mL
實(shí)驗(yàn)結(jié)果顯示,7種酚酸單體物質(zhì)在發(fā)酵前期(0~4 d)含量呈上升趨勢,在發(fā)酵第4~5 天達(dá)到峰值。原因是發(fā)酵前期,酵母菌大量繁殖,釋放出大量酶,使得枸杞汁中的酚酸物質(zhì)釋放出來,從而使得各單體酚酸含量上升。發(fā)酵中期(4~6 d)時(shí),因?yàn)榉铀峤Y(jié)構(gòu)不穩(wěn)定,極易受外界環(huán)境如發(fā)酵溫度、光照、氧化等影響發(fā)生降解[21],且隨著酚酸物質(zhì)不斷氧化縮合,各單體酚酸含量均出現(xiàn)下降趨勢。而在發(fā)酵后期(6~12 d),發(fā)酵體系達(dá)到穩(wěn)定狀態(tài),因此酚酸含量變化不大。
2.2.1 對酚酸含量的影響
由圖1看出,與對照組相比,調(diào)節(jié)pH時(shí),只有咖啡酸含量變化較為明顯,增長約為3.06倍;果膠酶處理組中有咖啡酸、阿魏酸、對羥基苯甲酸和丁香酸的含量變化明顯,其含量分別增長約為5.78、3.34、2.60和2.50倍;光照處理時(shí),只有咖啡酸含量變化較為明顯,增長約為2.67倍;高壓滅菌處理時(shí)咖啡酸、阿魏酸和兒茶素的含量變化明顯,其含量分別增長約為10.48、6.00和3.12倍;SO2滅菌時(shí)只有咖啡酸含量變化較為明顯,增長約為3.37倍。
圖1 不同預(yù)處理對枸杞汁中酚酸含量的影響Fig.1 Effects of different pretreatments on phenolic acid content in goji juice
2.2.2 枸杞汁中酚酸降解產(chǎn)物
由表3看出,5個(gè)不同條件下都測到了降解產(chǎn)物,其中酚酸經(jīng)過果膠酶處理后生成的降解產(chǎn)物種類最多,分別為2,5-二甲基吡嗪、苯乙酮、4-乙基愈創(chuàng)木酚、苯乙酸乙酯、2,4-二叔丁基苯酚、丙酸和異丁酸乙酯。偏重亞硫酸鈉組次之,產(chǎn)生了2,5-二甲基吡嗪苯乙酮4-乙基愈創(chuàng)木酚、2,4-二叔丁基苯酚、丙酸、異丁酸乙酯;高壓滅菌處理后的枸杞汁,檢測到的酚酸降解產(chǎn)物最少,只有2,5-二甲基吡嗪、苯乙酮和2,4-二叔丁基苯酚。說明果膠酶破壞分子鍵的化學(xué)作用和偏重亞硫酸鈉的還原作用,比高壓滅菌的物理作用強(qiáng)。
由表4看出,發(fā)酵前后,酚酸中含量變化最大的是咖啡酸,其次是丁香酸,變化最小的是兒茶素。說明雙鍵含量越多,越不穩(wěn)定。實(shí)驗(yàn)測定含量相對較多的降解物有6種,分別為2,5-二甲基吡嗪、苯乙酮、4-
表3 不同預(yù)處理?xiàng)l件下酚酸降解產(chǎn)物 單位:μg/mL
乙基愈創(chuàng)木酚、苯乙酸乙酯、2,4-二叔丁基苯酚和乙酸異戊酯。7種酚酸都在最不穩(wěn)定的雙鍵位置斷裂,同時(shí)容易在羰基被還原、羥基被氧化,產(chǎn)生了降解物和與降解相關(guān)的物質(zhì)。
表4 枸杞酒發(fā)酵中酚酸變化規(guī)律Table 4 Changes of phenolic acid in fermentation of goji wine
續(xù)表4
由表4和表5比較分析,發(fā)酵模擬體系與枸杞酒中酚酸單體降解產(chǎn)物種類相同,含量的數(shù)據(jù)基本吻合,模擬體系中酚酸降解產(chǎn)物有9種,枸杞酒發(fā)酵后的酚酸降解產(chǎn)物有8種,兩者有差異的原因可能是枸杞酒發(fā)酵前預(yù)處理或發(fā)酵環(huán)境引起的。
表5 模擬體系中酚酸降解產(chǎn)物分析Table 5 Analysis of phenolic acid degradation products in simulated systems
本研究對枸杞酒釀造過程中不同預(yù)處理?xiàng)l件和發(fā)酵過程中酚酸含量及降解產(chǎn)物的變化進(jìn)行測定,發(fā)現(xiàn)酚酸在枸杞酒釀造過程中,因其含有多不飽和雙鍵、酯鍵、羥基基團(tuán),不穩(wěn)定因素非常多,容易發(fā)生降解、氧化、還原反應(yīng),產(chǎn)生2,5-二甲基吡嗪、苯乙酮、4-乙基愈創(chuàng)木酚、丙酸、苯乙酸乙酯、2,4-二叔丁基苯酚、4-甲氧基苯乙烯和乙酸異戊酯。解析了枸杞中酚酸物質(zhì)在枸杞發(fā)酵前后的變化規(guī)律,為進(jìn)一步探究酚酸降解產(chǎn)物對枸杞酒品質(zhì)的影響提供了基礎(chǔ)。