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    LPA對子宮頸癌干細胞生物學特性的影響及對RhoA/Rock2通路調(diào)控作用

    2021-02-27 01:25:34羅保平
    河北醫(yī)學 2021年2期
    關(guān)鍵詞:信號

    周 用, 羅保平, 許 海

    (1.湖北省中醫(yī)院腫瘤科, 湖北 武漢 430060 2.湖北中醫(yī)藥大學黃家湖醫(yī)院婦科, 湖北 武漢 430060)

    腫瘤干細胞(cancerstem cell,CSC)是腫瘤發(fā)生轉(zhuǎn)移、耐藥和復(fù)發(fā)的根源,占總腫瘤細胞數(shù)的2%左右,對其進行靶向清除可能是根治腫瘤的一種方法[1]。近年來,人們著眼于癌細胞的生長、增殖、侵襲、轉(zhuǎn)移等相關(guān)的分子信號通路來探求宮頸癌的發(fā)生機制,尋找治療方法,取得了一系列的成果[2]。溶血磷酸酯(lysophosphatidic acid ,LPA)是與腫瘤的發(fā)生發(fā)展密切相關(guān)的細胞間信號分子,可增加腫瘤惡性程度,亦能通過刺激 Akt磷酸化、激活 NF-κB等來抑制腫瘤細胞的凋亡,與子宮頸癌的生物學表達密切相關(guān)[3]。同時可以促進腫瘤干細胞的遷移,與癌癥的轉(zhuǎn)移和復(fù)發(fā)相關(guān)[4],RhoA作為在許多腫瘤中高表達的癌基因,在子宮頸癌中表達尤高[5],并與其惡性表型相關(guān),RhoA/Rock2信號通路在腫瘤細胞干性中發(fā)揮重要作用。已有研究證實,LPA激活RhoA/ROCK2信號通路對乳腺癌細胞的增殖有顯著促進作用,而LPA是否經(jīng)由RhoA/ROCK2信號通路來完成子宮頸癌干細胞的惡性生物學特性表達以及沉默RhoA基因能否抑制子宮頸癌細胞的生物學特性目前尚無定論[6]。本研究旨在探討LPA與RhoA/ROCK2信號通路之間的關(guān)系及二者在子宮頸癌干細胞中的調(diào)控作用及機制。

    1 材料與方法

    1.1主要材料及儀器:Siha細胞株:購于中國科學院上海生命科學研究院細胞庫;DMEM培養(yǎng)液、小牛血清、干細胞培養(yǎng)添加劑:購于美國Gibco公司,F(xiàn)ITC-anti-CD34、PE-cy5-anti-CD44、PE-anti-CD105:購于eBioscience公司,鼠抗人RhoA、ROCK2單克隆抗體:購于臺灣Abnova公司,ROCK特異性抑制劑Y-27632:購于杭州聯(lián)科生物技術(shù)有限公司,反轉(zhuǎn)錄酶:購自Promega公司,Taq酶購自Fermentas公司,所有引物由上海生工生物工程技術(shù)服務(wù)有限公司合成,熒光活化細胞分類儀:Beckman公司產(chǎn)品。

    1.2子宮頸癌干細胞的培養(yǎng)與鑒定:將Siha細胞接種于腫瘤細胞球培養(yǎng)(DMEM培養(yǎng)液中加入堿性成纖維細胞生長因子、表皮生長因子、胰島素、谷氨酰胺、B27以及青、鏈霉素)中進行培養(yǎng),收集懸浮的細胞球用0.25%胰蛋白酶進行消化形成單細胞懸液,以流式細胞術(shù)對培養(yǎng)的宮頸癌細胞進行鑒定:收取培養(yǎng)后細胞離心10min,(1000rpm),棄上清后重懸,分管,調(diào)適后每管細胞1×106,各管分別加入PE CD44+、PE CK17+、FITC CD34-,F(xiàn)ITC CD105-,4℃下避光孵育避光35min,繼以3mL PBS 洗滌2次,350u L PBS 重懸處理后的內(nèi)皮細胞,上流式細胞儀檢測。

    1.3LPA對子宮頸癌干細胞增殖能力的影響:將子宮頸癌干細胞接種于含小牛血清、青霉素與鏈霉素培養(yǎng)液中,培養(yǎng)箱調(diào)節(jié)為37℃、5% CO2,細胞置于培養(yǎng)箱中培養(yǎng),胰蛋白酶消化傳代,再培養(yǎng),將細胞接種于96孔板中,調(diào)節(jié)細胞個數(shù)為1×105個/孔,37℃、5%CO2培養(yǎng)箱中繼續(xù)培養(yǎng)。取對數(shù)生長期的細胞制成單細胞懸液,接種于24孔板,PBS溶液沖洗后,分加加入不同濃度的LPA(1、5、10、15、20umol/L)取對數(shù)生長期的細胞制成單細胞懸液接種于24孔培養(yǎng)板中,抑制劑組以最佳促增殖濃度的LPA細胞組為基礎(chǔ),加入Rho激酶抑制劑Y-27632,在24h、48h、72h、96h時對細胞計數(shù),繪制細胞生長曲線圖。

    1.4LPA對RhoA/Rock2的調(diào)控作用

    1.4.1PCR法檢測各組細胞LPA、RhoA、Rock2的mRNA水平:采用TRIzol試劑提取三組細胞的RNA,取3ugRNA逆轉(zhuǎn)錄合成cDNA,按照逆轉(zhuǎn)錄試劑盒操作說明進行擴增,采用熒光定量PCR試劑盒檢測各組細胞的LPA、RhoA、Rock2的mRNA表達量,擴增產(chǎn)物行1%瓊脂糖凝膠電泳分析。

    1.4.2Western blot法檢測各組細胞RhoA及Rock2的表達:按照《分子克隆實驗指南》的方法進行Western blot檢測:在細胞培養(yǎng)液中加入裂解液,提取總蛋白,常規(guī)進行電泳、轉(zhuǎn)印和封閉,加入RhoA單抗與Rock2多抗,稀釋比例為1∶100,4℃過夜;加入稀釋比例為1∶5000的生物素標記二抗,室溫下反應(yīng)2h,后取5μL產(chǎn)物用1.5%瓊脂糖凝膠電泳,Odyssey掃描儀攝片。

    1.5統(tǒng)計學方法:采用SPSS19.0軟件對所有的數(shù)據(jù)進行統(tǒng)計學分析,多組間計量資料比較采用F檢驗,兩兩比較采用LSD-t檢驗,以P<0.05為具有統(tǒng)計學差異。

    2 結(jié) 果

    2.1宮頸癌干細胞表面標志性分子鑒定:經(jīng)過培養(yǎng)后,細胞均可見懸浮細胞球,原代細胞經(jīng)胰蛋白酶消化傳代后,均具有克隆能力,流式細胞術(shù)所得細胞各組陽性率分別為:CD44+:91.36%,CK17+:85.16%,CD34-:78.66%,CD105-:81.55%(圖1-4)。檢測結(jié)果顯示,宮頸癌干細胞表面標志性分子為CD44+、CK17+、CD34-、CD105-,細胞黏附分子CD44和子宮頸干細胞分子標志物CK17為陽性,且CD34、CD105陰性,排除了其它細胞污染的可能性,結(jié)合觀察到的懸浮細胞球及細胞克隆,證實成功培養(yǎng)出了子宮頸癌干細胞。

    2.2LPA對子宮頸癌干細胞增殖能力的影響:在培養(yǎng)第24h,不同濃度的LPA中子宮頸癌干細胞數(shù)量無明顯差異(P>0.05),自48h起,各組不同濃度LPA中細胞數(shù)量有顯著差異(P<0.05),且濃度越高,時間越長,細胞數(shù)量越多(圖5),證明LPA對子宮頸癌干細胞的增殖有促進作用,且呈劑量時間依賴關(guān)系。

    圖1 流式細胞術(shù)所得干細胞CD44+陽性表達

    圖2 流式細胞術(shù)所得干細胞CK17+陽性表達

    圖3 流式細胞術(shù)所得干細胞CD34-陽性表達

    圖4 流式細胞術(shù)所得干細胞CD105陽性表達

    2.3RhoaA抑制劑Y-27632對子宮頸癌干細胞增殖能力的影響:將子宮頸癌干細胞,分為對照組、LPA組及抑制組,對照組正常培養(yǎng),LPA組分別加入不同濃度的LPA,抑制劑組以含20umoL/L的LPA細胞組為基礎(chǔ),加入10umoL/L的RhoA激酶抑制劑Y-27632,自48h起,抑制劑組細胞數(shù)顯著低于LPA組(P<0.05),且時間越長,差異越明顯(P<0.05),證明Y-27632對子宮頸癌干細胞增殖有顯著的抑制作用(圖6).

    圖5 不同濃度LPA下細胞生長曲線圖

    圖6 Y-27632對子宮頸癌干細胞增殖能力的影響

    2.4各組細胞LPA、RhoA、Rock2的mRNA水平:以對照組細胞的LPA、RhoA、Rock2的mRNA水平為對照組(1.0±0.00),LPA組的LPA、RhoA、Rock2的mRNA水平較對照組均顯著升高(P<0.05),抑制劑組LPA的mRNA水平與LPA組無顯著差異(P>0.05),RhoA、Rock2的mRNA水平顯著低于LPA組,具體見表1。

    表1 各組細胞LPA RhoA Rock2的mRNA水平

    2.5各組細胞RhoA及Rock2蛋白的表達:具體見表2,從結(jié)果中可以看出,LPA組的RhoA及Rock2蛋白表達量顯著高于對照組與抑制劑組(P<0.05),抑制劑組的RhoA及Rock2蛋白表達量高于對照組(P<0.05)(圖7)。

    圖7 各組細胞RhoA及Rock2蛋白的表達

    表2 各組細胞RhoA及Rock2蛋白的表達

    3 討 論

    腫瘤干細胞理論認為,腫瘤細胞是由具有成瘤能力的CSC分化而來,雖然數(shù)量不多,但卻是腫瘤發(fā)生、發(fā)展、轉(zhuǎn)移和復(fù)發(fā)等問題的根源[7]。在腫瘤的治療過程中,如果能針對CSC進行靶向完全殺傷,即使不能縮小瘤體,也可以制約腫瘤細胞的生成,使瘤體痿縮,最終達到完全治愈的目的,本研究中,我們成功培養(yǎng)和收集了子宮頸癌干細胞,為進一步的實驗打下了基礎(chǔ)。LPA是一種由血小板、成纖維細胞、脂肪細胞和某些腫瘤細胞分泌的小分子甘油磷酸脂,以多種形式存在于不同的組織/細胞中,LPA對干細胞有非常強烈的誘導(dǎo)作用,研究發(fā)現(xiàn),LPA可使干細胞向機體發(fā)生損傷的部位遷移,同時刺激干細胞旁分泌作用,促進傷口愈合[8]。而對于腫瘤干細胞上,則體現(xiàn)為促進腫瘤干細胞的增殖與遷移。很早以前就有研究發(fā)現(xiàn)癌變組織中的LPA表達顯著升高,從而提出LPA可能與癌癥的發(fā)生發(fā)展相關(guān)[9],之后的研究揭示LPA可通過各種途徑參與到腫瘤發(fā)生的病理過程,且直接影響到腫瘤惡性程度、侵襲轉(zhuǎn)移。LPA可以通過PLC的激活來增加Ca2+的流動,提高腫瘤細胞的遷移能力,同時通過刺激Akt磷酸化、激活NF-κB抑制腫瘤細胞的凋亡[10]。目前已有的研究已證實LPA與卵巢癌細胞、肝癌細胞、淋巴癌細胞、膠質(zhì)瘤細胞、胰腺癌細胞的增殖與遷移相關(guān),也有諸多體外實驗研究證實LPA可以促進子宮頸癌細胞的生長增殖,且呈濃度時間依賴性,在臨床上,LPA也可以作為多種癌癥診斷或判斷預(yù)后的一項參考指標[11]。在本研究中,我們對子宮頸癌干細胞采用了不同濃度的LPA進行干預(yù),結(jié)果發(fā)現(xiàn),干預(yù)后的癌細胞增殖能力顯著增強,且呈劑量時間依賴關(guān)系,證實了LPA對子宮頸癌干細胞增殖的促進作用。

    LPA對腫瘤細胞的促進是多方面通路共同作用的結(jié)果,其中一條重要的信號通路為RhoA/Rock2信號通路,LPA可通過藕聯(lián)特定的G蛋白,LPAR1LPAR2、LPAR4和LPAR5結(jié)合,直接激活RhoA途徑,RhoA能夠影響多種分子的表達,調(diào)節(jié)肌動蛋白骨架,激活下游的核轉(zhuǎn)錄因子kappa B(nuclearfactor kappa-B,NF-κB)等重要信號分子,影響細胞的增殖與遷移。同時研究發(fā)現(xiàn),RhoA 的的ROCK2是調(diào)節(jié)細胞增殖與遷移的主要參與者,在使用RhoA抑制劑Y-27632后,腫瘤細胞的樁蛋白的磷酸化水平也明顯減弱,研究發(fā)現(xiàn),多種癌癥都存在RhoA/Rock2信號通路的異常表達,且與腫瘤的預(yù)后密切相關(guān)[12]。韋紅衛(wèi)等人研究發(fā)現(xiàn),RhoA/ROCK2信號通路可能在宮頸癌浸潤和轉(zhuǎn)移中發(fā)揮了一定的作用。在本研究中,我們加入LPA后,發(fā)現(xiàn)可進一步促進子宮頸癌干細胞LPA的表達,宮頸癌干細胞的增殖能力增強,且RhoA、Rock2的mRNA水平增加,RhoA、Rock2的蛋白表達量增加。加入RhoA抑制劑Y-27632后,LPA的mRNA表達量不變,但細胞增殖能力、RhoA、Rock2的mRNA水平及蛋白表達量顯著下降,說明RhoA/ROCK2信號通路與子宮頸頸癌有密切關(guān)系,而LPA對RhoA/ROCK2信號通路具有調(diào)控作用。

    綜上所述,LPA可以促進子宮頸癌干細胞的增殖,其作用機制可以是通過調(diào)控RhoA/Rock2通路來實現(xiàn)的。在將來的進一步研究中,我們將構(gòu)建沉默RhoA基因的慢病毒載體轉(zhuǎn)染宮頸癌干細胞,來探索RhoA/Rock2通路對子宮頸癌干細胞的影響,為將來靶向藥物的開發(fā)提供理論依據(jù)。

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