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    不同正畸力值對(duì)哺乳期大鼠正畸牙周組織中HO-1 CC類(lèi)趨化因子受體1及其配體的影響

    2020-12-25 01:17:46焉宏軍王榮強(qiáng)張?chǎng)╂?/span>
    安徽醫(yī)學(xué) 2020年11期
    關(guān)鍵詞:意義差異

    焉宏軍 王榮強(qiáng) 張?chǎng)╂?/p>

    正畸即對(duì)錯(cuò)牙合畸形進(jìn)行糾正,牙合畸形患者可通過(guò)正畸達(dá)到美容效果[1]??谷毖?、抗炎蛋白血紅素氧合酶(Heme Oxygenase-1,HO-1)是組織內(nèi)有效的抗氧化劑。HO-1可能在牙髓血流調(diào)控、牙本質(zhì)形成及牙髓細(xì)胞代謝和分化中起調(diào)控作用[2-3]。CC趨化因子受體1(CC-chemokine receptor 1,CCR1)及其相關(guān)配體表達(dá)與正畸牙移動(dòng)過(guò)程及牙周骨改建相關(guān)[4]??咕剖崴嵝粤姿崦?tartrate resistant acid phosphatase,TRAP)是破骨細(xì)胞的特征酶,其表達(dá)和分泌與破骨細(xì)胞功能密切相關(guān),TRAP陽(yáng)性細(xì)胞的位置和水平與乳牙生理性的根吸收進(jìn)程密切相關(guān)[5]。有研究[6]顯示,哺乳期患者正畸牙移動(dòng)速率較非哺乳者加快。為提高哺乳期正畸患者的正畸效果,本文制備哺乳期大鼠模型,擬探討不同正畸力值對(duì)大鼠牙周組織中HO-1、CC類(lèi)趨化因子受體1及其配體的影響,以期為臨床哺乳期正畸患者制定最佳正畸治療方案提供實(shí)驗(yàn)依據(jù)。

    1 材料與方法

    1.1 實(shí)驗(yàn)動(dòng)物 選擇3月齡Wistar大鼠126只(均購(gòu)自遼寧大連實(shí)驗(yàn)動(dòng)物公共服務(wù)平臺(tái)-實(shí)驗(yàn)動(dòng)物中心),其中雌性96只,雄性30只,SPF級(jí),平均體質(zhì)量(200±20)g,分籠飼養(yǎng),定時(shí)給予磨碎的固體飼料,飲消毒清水,每12 h間隔照明,控制室溫18~23°C、濕度在56%、室內(nèi)噪音60 dB以下,同時(shí)定期進(jìn)行紫外線消毒及通風(fēng),適應(yīng)性飼養(yǎng)一周后開(kāi)始實(shí)驗(yàn)。整個(gè)實(shí)驗(yàn)期間記錄每只大鼠的狀態(tài)。

    1.2 主要儀器及試劑 0.20 mm結(jié)扎絲(杭州晨陽(yáng)正畸材料廠),0.012 inch×9 mm鎳鈦螺旋彈簧(北京圣瑪特科技有限公司),光固化樹(shù)脂和樹(shù)脂粘結(jié)劑(美國(guó)MEDENTAL國(guó)際齒科機(jī)關(guān)),桿式測(cè)力計(jì)(杭州奧杰醫(yī)療器械有限公司),微型牙科技工打磨機(jī)(韓國(guó)世新精密株式會(huì)社),雙能X線骨測(cè)量密度儀(美國(guó)Hologic公司),高溫高壓真空消毒爐(蘇州順美口腔醫(yī)療設(shè)備有限公司),Cobas e601免疫分析儀(德國(guó)羅氏診斷公司),兔抗大鼠HO-1多克隆抗體(美國(guó)CST公司,貨號(hào):86806),F(xiàn)astPrep儀(美國(guó)MP醫(yī)療器械貿(mào)易有限公司),7500Fast實(shí)時(shí)熒光定量PCR儀(美國(guó)Life technologies公司)。

    1.3 方法

    1.3.1 哺乳期大鼠模型制備 采用陰道涂片法確定大鼠的動(dòng)情周期,將大鼠呈臥位固定后用20 μL生理鹽水對(duì)陰道進(jìn)行灌注,在反復(fù)吹打3~4次后滴至載玻片上,在40倍鏡下觀察,從而確定大鼠的動(dòng)情周期。在大鼠動(dòng)情前期,按照雌雄1∶1的比例合籠,清晨制備涂片鏡下檢查發(fā)現(xiàn)孕栓后,即確定雌鼠為妊娠狀態(tài)。之后進(jìn)行單籠飼養(yǎng),大鼠自然分娩后通過(guò)母乳喂養(yǎng)仔鼠,喂養(yǎng)4周后斷奶,此時(shí)認(rèn)定哺乳期模型鼠制備成功。共成功制備72只哺乳期模型大鼠。

    1.3.2 不同正畸力值干預(yù) 將此72只大鼠按隨機(jī)數(shù)字表法分為0N組、0.29N組、0.49N組和0.98N組,每組18只。根據(jù)分組依次給予0 N、0.29 N、0.49 N及0.98 N正畸力。具體操作:分別對(duì)各組大鼠進(jìn)行全身麻醉,麻醉劑為3.3 mL/kg的水合氯醛,之后用開(kāi)口器將大鼠口腔撐開(kāi),采用尖頭的金剛砂車(chē)針在右上第一磨牙近牙頸部頰舌面進(jìn)行打磨,直至磨出0.5 mm槽溝,再穿一根結(jié)扎絲經(jīng)過(guò)第一、二磨牙臨近點(diǎn)的下降,結(jié)扎、固定第一磨牙,一端連接鎳鈦螺旋彈簧,在大鼠的切牙亞冠頰舌面、遠(yuǎn)中面磨出一0.5 mm槽溝,之后將結(jié)扎絲嵌入溝內(nèi),連接2個(gè)中切牙為一個(gè)整體,連接螺旋彈簧的另一端,之后清潔、隔濕中切牙,牙面涂抹上釉質(zhì)酸蝕劑,之后停留30 s再?zèng)_洗吹干,再涂抹樹(shù)脂粘結(jié)劑,光固化樹(shù)脂封閉、固定切牙牙頸部,以防結(jié)扎絲松動(dòng)、脫落,增強(qiáng)支抗。采用測(cè)力計(jì)測(cè)量NiTi彈簧拉伸的力量,確保各組大鼠符合所設(shè)定的正畸力值。每日檢查一次加力裝置是否完整,如有脫落、損壞情況,及時(shí)修理、安裝。

    1.4 觀察指標(biāo) 比較給予不同正畸力值的4組大鼠在干預(yù)前1天及干預(yù)第1、3、7天后的CCR1及其配體(CCL3、CCL5)mRNA相對(duì)表達(dá)量,HO-1水平及TRAP破骨細(xì)胞染色水平。

    1.4.1 CCR1及CCL3、CCL5 mRNA檢測(cè) 每個(gè)組選取6只大鼠麻醉后用Rnase-free溶液對(duì)心臟進(jìn)行灌注,之后將第一磨牙拔除,取下牙周膜及牙槽骨,將其置入1.5 mL Rnase-free離心管中,再加入1 mL Trizol試劑,分別用FastPrep儀將組織磨碎、勻漿后用Fastprep程序?qū)俁NA進(jìn)行提取。采用7500 Fast實(shí)時(shí)熒光定量PCR儀行逆轉(zhuǎn)錄,合成cDNA,由上海立菲生物技術(shù)有限公司合成引物,之后每個(gè)基因做3個(gè)復(fù)管,對(duì)目的基因及β-actin用SYBR綠色熒光定量系統(tǒng)性實(shí)時(shí)熒光定量PCT擴(kuò)增,條件為95°C下2 min,之后以95°C下10 s、60°C下30 s、70°C下30 s各行40個(gè)循環(huán)。計(jì)算各指標(biāo)相對(duì)表達(dá)量。

    1.4.2 牙周組織中HO-1水平的檢測(cè) 在每組剩余的12只大鼠中選取6只,采用SP法檢測(cè)HO-1水平:牙周組織處理方法同上,兔抗大鼠多克隆HO-1抗體稀釋濃度為1∶100,生物素山羊抗兔IgG(美國(guó)CST公司,貨號(hào):7054)作為二抗(稀釋度1∶100),之后行組織切片,常規(guī)脫蠟入水后用微波加熱法對(duì)抗原進(jìn)行修復(fù),DAB進(jìn)行顯色,蘇木素復(fù)染,之后進(jìn)行封片,陰性對(duì)照用磷酸緩沖鹽代替一抗,其他條件相同,陽(yáng)性表達(dá)為細(xì)胞胞漿呈棕黃色顆粒狀改變。每張取5個(gè)400×高倍視野,表達(dá)強(qiáng)度呈色用平均吸光度(optical density,OD)表示。

    1.4.3 TRAP破骨細(xì)胞染色 將各組剩余的6只大鼠,靜脈采血,離心取血清,使用人骨純化的破骨細(xì)胞兔抗大鼠TRAP/CD40單克隆抗體(美國(guó)CST公司,貨號(hào):15094),通過(guò)抗酒石酸酸性磷酸酶檢測(cè)試劑盒(上海碧云天生物技術(shù)有限公司,貨號(hào):P0332)測(cè)定TRAP表達(dá),具體步驟按照說(shuō)明書(shū)進(jìn)行操作。取大鼠第一磨牙壓力側(cè)牙牙周膜的近牙骨質(zhì)側(cè)牙周組織,在光鏡下觀察壓力側(cè)牙周組織的形態(tài)學(xué)變化,,并在400倍物鏡下通過(guò)OBI200高清晰度彩色病理分析系定量分析TRAP陽(yáng)性破骨細(xì)胞陽(yáng)性面積。

    2 結(jié)果

    2.1 不同時(shí)間點(diǎn)4組大鼠CCR1 mRNA表達(dá)量比較 不同時(shí)間點(diǎn)4組大鼠CCR1 mRNA表達(dá)量比較,差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05)。干預(yù)前1天,各組CCR1mRNA表達(dá)量差異無(wú)統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P>0.05);干預(yù)第1、3天,0.29N組、0.49N組及0.98N組CCR1 mRNA表達(dá)量較0N組均增加(P<0.05),0.49N組及0.98N組CCR1 mRNA表達(dá)量較0.29N組均增加(P<0.05),但0.49N組和0.98N組CCR1 mRNA表達(dá)量比較,差異無(wú)統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P>0.05);干預(yù)第7天,0.29N組、0.49N組及0.98N組CCR1 mRNA表達(dá)量較0N組均增加(P<0.05),但該3組之間比較,差異均無(wú)統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P>0.05)。見(jiàn)表1。

    2.2 不同時(shí)間點(diǎn)4組大鼠CCR3 mRNA表達(dá)量比較 不同時(shí)間點(diǎn)4組大鼠CCR3 mRNA表達(dá)量比較,差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05)。干預(yù)前1天,各組CCR3 mRNA表達(dá)量差異無(wú)統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P>0.05);干預(yù)第1、3天,0.29N組、0.49N組及0.98N組CCR3 mRNA表達(dá)量較0N組均增加(P<0.05);0.49N組和0.98N組的CCR3 mRNA表達(dá)量較0.29N組均增加(P<0.05),但0.49N組及0.98N組該指標(biāo)比較,差異無(wú)統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P>0.05);干預(yù)第7天,0.29N組、0.49N組及0.98N組CCR3 mRNA表達(dá)量較0N組均增加(P<0.05),與0.29N組比較,0.98N組CCR3 mRNA表達(dá)量增加(P<0.05),而0.49N組和0.98N組CCR3 mRNA表達(dá)量比較,差異無(wú)統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P>0.05)。見(jiàn)表2。

    表2 不同時(shí)間點(diǎn)4組大鼠CCR3mRNA表達(dá)量比較

    2.3 不同時(shí)間點(diǎn)4組大鼠CCL5 mRNA表達(dá)量比較 不同時(shí)間點(diǎn)4組大鼠CCL5 mRNA表達(dá)量比較,差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05)。干預(yù)前1天,各組CCL5 mRNA表達(dá)量差異無(wú)統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P>0.05);干預(yù)第1~7 天,0.29N組、0.49N組及0.98N組CCL5 mRNA表達(dá)量較0N組均增加(P<0.05);0.49N組和0.98N組CCL5 mRNA表達(dá)量較0.29N組均增加,而0.49N組和0.98N組該指標(biāo)比較,差異無(wú)統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P>0.05)。見(jiàn)表3。

    表3 不同時(shí)間點(diǎn)4組大鼠CCL5mRNA表達(dá)量比較

    2.4 不同時(shí)間點(diǎn)4組大鼠牙周組織中HO-1的OD值比較 不同時(shí)間點(diǎn)4組大鼠牙周組織中HO-1的OD值比較,差異均有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05)。干預(yù)前1天,4組大鼠牙周組織中HO-1 的OD值差異無(wú)統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P>0.05);干預(yù)第1天,0.29N組、0.49N組及0.98N組HO-1 的OD值較0N組均增加(P<0.05),0.49N組和0.98N組HO-1的OD值較0.29N組均增加(P<0.05),而0.49N組和0.98N組此指標(biāo)比較,差異無(wú)統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P>0.05)。見(jiàn)表4。

    表4 不同時(shí)間點(diǎn)4組大鼠牙周組織中HO-1 的OD值比較

    2.5 不同時(shí)間點(diǎn)4組大鼠破骨細(xì)胞染色陽(yáng)性面積比較 不同時(shí)間點(diǎn)4組大鼠破骨細(xì)胞染色陽(yáng)性面積比較,差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05)。干預(yù)前1天,4組破骨細(xì)胞染色陽(yáng)性面積差異均無(wú)統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P>0.05);干預(yù)第1、3天,0.29N組、0.49N組及0.98N組破骨細(xì)胞染色陽(yáng)性面積較0N組均增加(P<0.05),0.49N組、0.98N組破骨細(xì)胞染色陽(yáng)性面積較0.29N組均增加(P<0.05),而0.49N組和0.98N組此指標(biāo)比較,差異無(wú)統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P>0.05)。見(jiàn)表5。

    表5 不同時(shí)間點(diǎn)4組大鼠破骨細(xì)胞染色陽(yáng)性面積比較

    3 討論

    正畸是給予牙齒一定時(shí)間、一定強(qiáng)度的機(jī)械外力,從而使得牙齒發(fā)生移動(dòng),其中包括牙周組織、包繞牙根的牙槽骨發(fā)生改建,從而使牙齒可以移動(dòng)到新位置[7-8]。機(jī)械外力作用下正畸牙移動(dòng)的生物學(xué)基礎(chǔ)是牙周組織改建,而與該過(guò)程密切相關(guān)的細(xì)胞為破骨細(xì)胞及成骨細(xì)胞,因此在牙根、牙周組織、牙髓無(wú)可逆性損傷情況下采用合適的力值促使正畸牙齒移動(dòng)是正畸治療的重點(diǎn)[9-10]。另外,患者身體狀況、年齡、加力時(shí)間、加力大小、頻率及牙槽骨密度等均會(huì)對(duì)正畸牙齒移動(dòng)速度產(chǎn)生影響[11]。有報(bào)道[12]顯示,哺乳期患者正畸牙移動(dòng)速率較非哺乳者快。本文制備哺乳期大鼠模型,擬探討不同正畸力值對(duì)哺乳期大鼠正畸牙周組織中HO-1、CC類(lèi)趨化因子受體1及其配體的影響,以期為哺乳期正畸患者治療方案的選擇,提高正畸效果提供實(shí)驗(yàn)依據(jù)。

    臨床正畸牙齒移動(dòng)的最佳力值為0.98 N,而大鼠磨牙是人磨牙的1/50,因此0.19N左右是較為合適的正畸力值[13];有研究[14]發(fā)現(xiàn),在0.39~0.59N初始力下可以觀察到大鼠牙齒移動(dòng),因此本研究選擇0N、0.29N、0.49N及0.98N的正畸力值。本組資料顯示,干預(yù)后第1、3天,0.29N組、0.49N組及0.98N組CCR1、CCR3和CCL5 mRNA表達(dá)量及破骨細(xì)胞染色陽(yáng)性面積較0N組均明顯增加(P<0.05),0.49N組及0.98N組CCR1、CCR3和CCL5 mRNA表達(dá)量、破骨細(xì)胞染色陽(yáng)性面積均較0.29N組明顯增加(P<0.05)。以上結(jié)果表明,隨著正畸力值的增加,哺乳期大鼠的HO-1、CC類(lèi)趨化因子受體1及其配體、TRAP破骨細(xì)胞染色陽(yáng)性面積均發(fā)生顯著變化,其中0.49N及0.98N時(shí)以上指標(biāo)變化幅度較大,即干預(yù)效果最顯著,分析原因:CCR1控制前體成骨與破骨細(xì)胞的分裂、分化、活化,其在成骨細(xì)胞、原始骨髓細(xì)胞、RANKL介導(dǎo)的破骨細(xì)胞、成骨細(xì)胞及破骨前體細(xì)胞中均有表達(dá)[15-16]。相關(guān)研究[2,17]證實(shí),正畸力和患者機(jī)體內(nèi)環(huán)境共同影響牙周組織的改建過(guò)程,如哺乳期患者正畸牙移動(dòng)速率較未哺乳組加快,其原因可能與哺乳期患者牙槽骨密度降低有關(guān)。因此推測(cè),CCR1可通過(guò)調(diào)控牙周組織成骨與破骨細(xì)胞分化從而參與牙周骨組織改建過(guò)程,與前人研究[4]結(jié)論相似。另外,干預(yù)后不同時(shí)間點(diǎn),0.49N組及0.98N組CCR1、CCR3和CCL5 mRNA表達(dá)量及破骨細(xì)胞染色陽(yáng)性面積比較,差異均無(wú)統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P>0.05)。即0.49N組和0.98N組正畸力值不同時(shí)間點(diǎn)干預(yù)效果變化相對(duì)不明顯。提示0.49N和0.98N正畸力值具有同樣的正畸效果。由此可想,對(duì)哺乳期大鼠干預(yù)的正畸力值并非越大越好,0.49N可能是本研究大鼠的最適正畸力。

    綜上所述,正畸干預(yù)可通過(guò)促進(jìn)哺乳期大鼠牙周組織中HO-1、CC類(lèi)趨化因子受體1及其配體的表達(dá)發(fā)揮作用,但0.49N是否是哺乳期大鼠進(jìn)行干預(yù)的最佳正畸力值有待后續(xù)研究進(jìn)一步證實(shí)。

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