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    CRISPR/Cas9構(gòu)建srtA基因敲除的金黃色葡萄球菌

    2020-12-21 10:11:50蔣成輝曾巧英王萌潘陽(yáng)陽(yáng)劉旭明尚天甜
    生物技術(shù)通報(bào) 2020年9期
    關(guān)鍵詞:金黃色葡萄球菌菌落

    蔣成輝 曾巧英 王萌 潘陽(yáng)陽(yáng) 劉旭明 尚天甜

    (甘肅農(nóng)業(yè)大學(xué)動(dòng)物醫(yī)學(xué)院,蘭州 730070)

    金黃色葡萄球菌(Staphylococcus aureus)是一種重要的病原菌,可引起人和動(dòng)物化膿感染、肺炎、腸炎、心內(nèi)膜炎、敗血癥及膿毒癥等[1-2]。近年來(lái)由于抗生素的濫用,導(dǎo)致金黃色葡萄球菌耐藥性產(chǎn)生,以耐甲氧西林金黃色葡萄球菌(MRSA)最為常見(jiàn),由此導(dǎo)致的疾病逐漸增多,治療效果越來(lái)越不顯著。因此,迫切需要尋找新的抗金黃色葡萄球菌的藥物靶點(diǎn)和策略來(lái)控制病原菌的感染。表面蛋白是革蘭氏陽(yáng)性菌的一種重要毒力因子,在細(xì)胞粘附、生物被膜形成、抵抗吞噬及入侵宿主細(xì)胞等方面發(fā)揮著重要的作用[3]。分選酶(srt)廣泛的存在于革蘭氏陽(yáng)性菌中,它可將攜帶有LPXTG基序分選信號(hào)的表面蛋白錨定到細(xì)菌細(xì)胞壁肽聚糖上。金黃色葡萄球菌分選酶A(srtA)是細(xì)菌將表面致病性蛋白錨定到細(xì)胞壁上的關(guān)鍵酶[4]。研究表明通過(guò)抑制金黃色葡萄球菌Newman菌株srtA基因可降低金黃色葡萄球菌對(duì)機(jī)體的感染能力[5]。因此srtA是一個(gè)有潛在應(yīng)用價(jià)值的藥物治療靶標(biāo)[6]。

    CRISPR/Cas9(Clustered regulatory interspaced short palindromic repeats/CRISPR-associated protein 9)是一種編輯效率較高的新型基因組靶向修飾技術(shù)。該技術(shù)僅通過(guò)一段sgRNA來(lái)識(shí)別靶位點(diǎn),利用Cas9蛋白進(jìn)行切割,產(chǎn)生雙鏈DNA斷裂(Double-strand breaks,DSBs),真核生物可通過(guò)非同源末端連接(Non-homologous end joining,NHEJ)修復(fù)方式和同源重組方式(Homology-directed repair,HDR)進(jìn)行自我修復(fù)從而達(dá)到高效的基因編輯效果,目前應(yīng)用已趨于成熟。原核生物除變形菌門(mén)、厚壁菌門(mén)、放線菌門(mén)等少數(shù)菌外,大多數(shù)細(xì)菌中并沒(méi)有非同源重組修復(fù)機(jī)制,因此,CRISPR/Cas9系統(tǒng)在原核生物中運(yùn)用并不廣泛[7-10]。但隨著研究者不斷地優(yōu)化,該系統(tǒng)在原核生物中也取得一定的進(jìn)步。目前,已經(jīng)在大腸桿菌[11],枯草芽孢桿菌[12]、恥垢分枝桿菌[13]、肺炎雙球菌[14]、乳酸菌[15]、巴斯德梭菌[16]及放線菌[17]等細(xì)菌中成功的進(jìn)行了基因編輯,可實(shí)現(xiàn)特定位點(diǎn)的突變、剪切、刪除、插入、替換及多個(gè)基因同時(shí)編輯等一系列編輯方式[18]。

    本研究利用CRISPR/Cas9技術(shù)構(gòu)建了耐甲氧西林金黃色葡萄球菌USA300srtA基因缺失株,為srtA的深入研究和抗金黃色葡萄球菌新藥物研發(fā)提供了理論基礎(chǔ)和數(shù)據(jù)支撐,為CRISPR/Cas9基因編輯技術(shù)在原核生物基因敲除和篩選等方面提供技術(shù)參考。

    1 材料與方法

    1.1 材料

    1.1.1 實(shí)驗(yàn)動(dòng)物、菌株與質(zhì)粒 實(shí)驗(yàn)動(dòng)物:昆明小鼠(20±2g)購(gòu)于中國(guó)農(nóng)業(yè)科學(xué)院蘭州獸醫(yī)研究所動(dòng)物實(shí)驗(yàn)中心。

    菌株:金黃色葡萄球菌USA300-TCH1516菌株由甘肅農(nóng)業(yè)大學(xué)微生物與免疫學(xué)實(shí)驗(yàn)室保存。大腸桿菌感受態(tài)細(xì)胞Top10、大腸桿菌感受態(tài)細(xì)胞DH5α購(gòu)自北京全式金生物有限公司。金黃色葡萄球菌RN4220菌株(金黃色葡萄球菌RN4220菌株為NCTC8325菌株經(jīng)紫外線和化學(xué)等方法誘導(dǎo)產(chǎn)生的限制性內(nèi)切酶缺陷型菌株,其基因型為mec、rsbU、agr陰性。RN4220菌株能夠接受來(lái)源于外部的其他物種的DNA質(zhì)粒,同時(shí),可以將外源質(zhì)粒DNA進(jìn)行修飾,修飾后的質(zhì)粒可以被野生型金黃色葡萄球菌接受而不被降解)由中國(guó)科學(xué)技術(shù)大學(xué)孫寶林老師饋贈(zèng)。

    質(zhì)粒:pCasSA質(zhì)粒(金黃色葡萄球菌和大腸桿菌溫度敏感性質(zhì)粒)由上??萍即髮W(xué)季泉江老師饋贈(zèng)。pLI50質(zhì)粒(金黃色葡萄球菌單拷貝整合質(zhì)粒)購(gòu)自湖南豐暉生物科技有限公司。

    1.1.2 主要試劑和培養(yǎng)基 試劑:細(xì)菌基因組DNA提取試劑盒、DL2000 Marker、DL15000 Marker、瓊脂糖、DNA純化回收試劑盒、質(zhì)粒小提試劑盒購(gòu)自天根生化科技(北京)有限公司。普通TaqDNA聚合酶、DL5000 Marker、T4DNA連接酶、PrimeSTAR HS(PREMIX)、QuickCutTMEcoR I、QuickCutTMBamH I購(gòu)自大連寶生物(TaKaRa)公司。BsaI、XhoI和XbaI限制性內(nèi)切酶購(gòu)自NEB(北京)有限公司。I型核酸染料、卡那霉素、氨芐霉素、氯霉素購(gòu)自北京索萊寶科技有限公司。溶葡球菌酶購(gòu)自上海生工生物工程有限公司。

    培養(yǎng)基:LB固體和LB液體培養(yǎng)基用于培養(yǎng)大腸桿菌,TSB液體培養(yǎng)基和TSA固體培養(yǎng)基用于培養(yǎng)金黃色葡萄球菌。

    1.2 方法

    1.2.1 引物設(shè)計(jì) 利用NCBI上公布的USA300-TCH1516基因組序列,使用在線軟件CCTop-CRISPR/Cas9 target online predictor在srtA基因的CDS區(qū)設(shè)計(jì)3對(duì)sgRNA分別為:sgRNA1,sgRNA2,sgRNA3。使用軟件primer5.0和DNASTAR分別設(shè)計(jì)srtA基因左右同源臂擴(kuò)增引物srtA-L-F和srtA-L-R,srtA-R-F和srtA-R-R;缺失回補(bǔ)基因擴(kuò)增引物HBsrtA-F和HB-srtA-R;sgRNA檢測(cè)引物(位于sgRNA兩側(cè))srtA-sgRNA-F和srtA-sgRNA-R;srtA基因缺失鑒定引物WJD-srtA-F和WJD-srtA-R,NJD-srtA-F和NJD-srtA-R。引物均由蘇州金唯智生物科技有限公司合成(表1)。

    1.2.2 金黃色葡萄球菌RN4220和USA300菌株感受態(tài)細(xì)菌的制備 參照Z(yǔ)hao等[19]金黃色葡萄球菌感受態(tài)細(xì)胞制作方法。分別挑取金黃色葡萄球菌RN4220和USA300菌株單個(gè)菌落于5 mL的LB液體培養(yǎng)基中過(guò)夜培養(yǎng),然后按照1∶1 000的比例接種到100 mL的LB培養(yǎng)基中,220 r/min搖菌培養(yǎng)至OD600值為0.6為止。無(wú)菌條件下將培養(yǎng)的細(xì)菌移至冰冷的50 mL滅菌離心管中,冰浴10 min后,4℃,5 000 r/min離心10 min。棄上清,加入50 mL的冰冷的0.5 mol/L的蔗糖溶液冰浴15 min后,4℃,5 000 r/min離心10 min。重復(fù)上述步驟,依次用1/2,1/4體積的蔗糖溶液重懸,最后棄去上清,加入5 mL冰冷的0.5 mol/L的蔗糖溶液重懸,分裝于1.5 mL冰冷的無(wú)菌離心管中,每管100 μL,-80℃冷凍保存,備用。

    1.2.3 pCasSA-sgRNA質(zhì)粒的構(gòu)建 使用在線軟件設(shè)計(jì)3對(duì)sgRNA。即選取srtA基因的CDS區(qū)中某一NGG(N為任意堿基)序列前面20個(gè)堿基的DNA片段,定義為sgRNA上游序列(sgRNA-F),將這段序列反向互補(bǔ),定義為sgRNA下游序列(sgRNA-R),并分別在sgRNA上下游序列5'端添加“AAAC”和“GAAA”即為限制性內(nèi)切酶BsaI酶切位點(diǎn)。對(duì)sgRNA上下游序列通過(guò)堿基配對(duì)原則退火形成雙鏈sgRNA序列,退火體系為:sgRNA上下游序列(100 μmol/L)各2 μL,ddH2O 21 μL。反應(yīng)程序?yàn)椋?8℃到25℃每30 s降低1℃,4℃放置8 h。

    表1 引物序列

    質(zhì)粒pCasSA為金黃色葡萄球菌和大腸桿菌溫度敏感性質(zhì)粒,用于金黃色葡萄球菌的基因編輯(圖譜見(jiàn)圖1)。該質(zhì)??梢岳肂saI位點(diǎn)插入sgRNA片段,靶向目標(biāo)基因,利用XhoI和XbaI位點(diǎn)插入目標(biāo)基因左右同源臂序列,進(jìn)行同源修復(fù),進(jìn)而達(dá)到金黃色葡萄球菌基因敲除的目的。

    圖1 pCasSA圖譜[20]

    構(gòu)建pCasSA-sgRNA質(zhì)粒。使用限制性內(nèi)切酶BsaI對(duì)pCasSA質(zhì)粒上的BsaI位點(diǎn)進(jìn)行特異性酶切,酶切體系為:pCasSA 30 μL、BsaI 2 μL、10×NEBuffer 5 μL、ddH2O 13 μL。使用天根生化科技(北京)有限公司DNA純化回收試劑盒進(jìn)行酶切質(zhì)粒的純化回收。酶切回收的pCasSA質(zhì)粒與退火后的雙鏈sgRNA序列經(jīng)T4DNA連接酶16℃連接3 h。連接體系為:T4DNA Ligase 1 μL、10×T4DNA Ligase buffer 2 μL、退火后的雙鏈sgRNA序列12 μL,酶切回收后的pCasSA質(zhì)粒1 μL、ddH2O 4 μL。連接產(chǎn)物經(jīng)熱激轉(zhuǎn)化至大腸桿菌感受態(tài)細(xì)胞Top10中。用50 mg/μL的卡那霉素篩選陽(yáng)性克隆,30℃增菌后用,用sgRNA上游序列(sgRNA1-F,sgRNA2-F,sgRNA3-F)和sgRNA檢測(cè)下游引物srtA-sgRNA-R進(jìn)行PCR擴(kuò)增。將獲得的PCR產(chǎn)物用1%的瓊脂糖凝膠電泳檢測(cè),陽(yáng)性pCasSA-sgRNA質(zhì)粒(pCasSAsgRNA1,pCasSA-sgRNA2,pCasSA-sgRNA3)送公司測(cè)序。測(cè)序結(jié)果使用MegAlign軟件進(jìn)行分析比對(duì)。

    1.2.4 pCasSA-sgRNA質(zhì)粒切割效率檢測(cè) 將pCasSA-sgRNA質(zhì)粒(pCasSA-sgRNA1,pCasSAsgRNA2,pCasSA-sgRNA3)電擊轉(zhuǎn)入缺陷型金黃色葡萄球菌RN4220菌株中修飾(電擊條件:21 kV/cm,100 Ω,25 μF),提取質(zhì)粒(提前使用溶葡球菌酶進(jìn)行破壁處理)并轉(zhuǎn)入金黃色葡萄球菌USA300菌株中(電擊條件:21 kV/cm,100 Ω,25 μF),在TSA固體培養(yǎng)基上30℃倒置培養(yǎng)2 d后,觀察平板上菌落的形態(tài)及數(shù)量。

    1.2.5 pCasSA-sgRNA-srtA缺失質(zhì)粒的構(gòu)建 以金黃色葡萄球菌USA300菌株基因組為模板,用引物srtA-L-F和srtA-L-R,srtA-R-F和srtA-R-R分 別 擴(kuò) 增srtA基因左右同源臂srtA-L和srtA-R序列,反應(yīng)體系為:PrimeSTAR HS 25 μL,上下游引物各2 μL,DNA模板1 μL,ddH2O 20 μL。反應(yīng)程序?yàn)椋?8℃ 10 s,55℃ 5 s,72℃ 1 min,35個(gè)循環(huán)。使用融合PCR,將純化回收后的srtA-L和srtA-R兩段序列融合,融合體系為:PrimeSTAR HS 25 μL,srtA-L、srtA-R序列各2 μL,ddH2O 21 μL。反應(yīng)程序?yàn)椋?8℃ 10 s,55℃ 5 s,72℃ 1 min,35個(gè)循環(huán),獲得srtA-L+R序列。融合后的srtA-L+R序列濃度較低,需要將srtAL+R序列進(jìn)行再擴(kuò)增。擴(kuò)增體系為:PrimeSTAR HS 12.5 μL,srtA-L-F、srtA-R-R引物各1 μL,融合后的srtA-L+R序列25 μL,ddH2O 10.5 μL。反應(yīng)程序?yàn)椋?8℃ 10 s,55℃ 15 s,72℃ 2.2 min,35個(gè)循環(huán)。使用限制性內(nèi)切酶XhoI和XbaI將純化后srtA-L+R序列和有切割效率的pCasSA-sgRNA質(zhì)粒進(jìn)行雙酶切。純化回收,T4DNA連接酶過(guò)夜連接,連接體系為:T4DNA Ligase 1 μL、10×T4 DNA Ligase buffer 2 μL、srtA-L+R 9 μL,酶切后的pCasSA-sgRNA質(zhì)粒1 μL、ddH2O 7 μL。連接產(chǎn)物通過(guò)熱激轉(zhuǎn)化至大腸桿菌Top10中,用50 mg/μL卡那霉素篩選陽(yáng)性克隆,30℃增菌后,用引物srtA-L-F和srtA-R-R進(jìn)行PCR檢測(cè)并測(cè)序,正確的質(zhì)粒命名為pCasSA-sgRNA-srtA。

    1.2.6 金黃色葡萄球菌USA300srtA基因缺失株的構(gòu)建及其鑒定 將pCasSA-sgRNA-srtA質(zhì)粒電擊轉(zhuǎn)入金黃色葡萄球菌RN4220菌株經(jīng)修飾后,轉(zhuǎn)入金黃色葡萄球菌USA300菌株中,用15 mg/μL氯霉素TSA固體培養(yǎng)基篩選陽(yáng)性克隆。隨機(jī)挑取10個(gè)陽(yáng)性菌落,編號(hào)為:1-10號(hào)。30℃增菌后,提取基因組,用 引 物WJD-srtA-F,WJD-srtA-R,進(jìn) 行PCR初 步篩選,擴(kuò)增體系為:PrimeSTAR HS 12.5 μL,WJDsrtA-F、WJD-srtA-R引物各1 μL,模板1 μL,ddH2O 9.5 μL。反應(yīng)程序?yàn)椋?8℃ 10 s,55℃ 15 s,72℃ 3 min,30個(gè)循環(huán)。對(duì)于疑似敲除的菌株,經(jīng)測(cè)序檢測(cè)結(jié)果。同時(shí),使用引物NJD-srtA-F,NJD-srtA-R檢測(cè)srtA基因是否存在。擴(kuò)增體系為:PrimeSTAR HS 12.5 μL,NJD-srtA-F,NJD-srtA-R引物各1 μL,模板1 μL,ddH2O 9.5 μL。反應(yīng)程序?yàn)椋?8℃ 10 s,55℃5 s,72℃ 30 s,30個(gè)循環(huán)。

    1.2.7 重組質(zhì)粒消除 為消除重組質(zhì)粒對(duì)金黃色葡萄球菌USA300的影響,需要消除質(zhì)粒pCasSAsgRNA-srtA。具體方法參照Chen等[20]質(zhì)粒消除方法。選擇一個(gè)金黃色葡萄球菌srtA基因缺失(ΔsrtAUSA300)菌落。30℃過(guò)夜培養(yǎng),然后按照1∶1 000的比例接種到5 mL的不含有抗生素TSB液體培養(yǎng)基中,42℃,220 r/min培養(yǎng),直到培養(yǎng)菌液出現(xiàn)混濁。取適量菌液劃線于TSB固體平板上,在37℃過(guò)夜培養(yǎng)。從平板上隨機(jī)挑取幾個(gè)菌落,接種于新鮮液體培養(yǎng)基中,直到培養(yǎng)菌液出現(xiàn)混濁,取適量分別涂布于含有5 mg/μL氯霉素或不含氯霉素的TSA固體培養(yǎng)基平板上。如果菌落在不含抗生素的培養(yǎng)基平板上生長(zhǎng),而在含有抗生素的培養(yǎng)基平板上不生長(zhǎng),證實(shí)重組質(zhì)粒消除。

    1.2.8 金黃色葡萄球菌USA300srtA基因缺失對(duì)細(xì)菌生長(zhǎng)的影響 將菌株接種于TSB液體培養(yǎng)基中,37℃搖床220 r/min培養(yǎng)24 h后,按1∶1 000的比例轉(zhuǎn)接到新鮮的TSB液體培養(yǎng)基中,37℃搖床220 r/min培養(yǎng),每隔0.5 h測(cè)一次OD600,測(cè)定10次,最后根據(jù)OD600值繪制出細(xì)菌的生長(zhǎng)曲線。

    1.2.9 金黃色葡萄球菌USA300srtA基因缺失對(duì)小鼠生存率的影響 挑取金黃色葡萄球菌單個(gè)菌落于新鮮的TSB液體培養(yǎng)基中,37℃,200 r/min過(guò)夜培養(yǎng)。然后按照1∶1 000的比例轉(zhuǎn)接到100 mL的TSB培養(yǎng)基中,37℃,220 r/min培養(yǎng)至OD600值為2.0。使用PBS溶液稀釋洗滌3次,調(diào)整各菌株菌量至同一水平,并稀釋至2×108CFU/mL的細(xì)菌濃度。將小鼠隨機(jī)分為3組,分別為正常對(duì)照組(生理鹽水)、野生型菌株組(WT USA300)和基因缺失菌株組(ΔsrtAUSA300),每組15只小鼠。除正常對(duì)照組小鼠尾靜脈注射生理鹽水,其余組別小鼠分別注射相應(yīng)的2×108CFU/mL濃度的菌液,接種劑量為:每20 g小鼠接種0.2 mL。分別于0-14 d每天觀察小鼠死亡情況,并繪制小鼠生存率曲線。

    1.2.10 金黃色葡萄球菌USA300srtA基因缺失對(duì)器官組織內(nèi)細(xì)菌數(shù)量的影響 使用1×108CFU/mL濃度的菌液尾靜脈注射小鼠,接種劑量為:每20 g小鼠接種0.1 mL。選用感染1 d、3 d、5 d后的小鼠眼球采血,頸椎脫臼處死小鼠,取心臟、腎臟、肝臟和脾臟,進(jìn)行臟器菌落計(jì)數(shù)。具體方法如下:無(wú)菌條件下,取出小鼠心臟、腎臟、肝臟和脾臟稱其重量;向組織樣本中加入1 mL PBS溶液后,置于高通量組織研磨儀中充分研磨成勻漿液;將勻漿液10倍梯度稀釋后,取200 μL樣品稀釋液涂布于TSB培養(yǎng)平板上,37℃倒置培養(yǎng)24 h。菌落數(shù)在30-300之間視為計(jì)數(shù)有效。計(jì)算器官組織內(nèi)的載菌量(logCFU/g),公式為:CFU/g=[3個(gè)平板的CFU的平均數(shù)×5×勻漿液體積(mL)×稀釋倍數(shù)]/組織重量(g)。

    為了鑒定感染小鼠器官組織中的細(xì)菌為金黃色葡萄球菌,需要對(duì)平板菌落進(jìn)行鑒定。具體方法如下:挑取單個(gè)菌落,增菌后,進(jìn)行革蘭氏染色,同時(shí)提取基因組,使用引物23S rRNA-F/R進(jìn)行PCR鑒定。PCR產(chǎn)物寄送公司測(cè)序,測(cè)序結(jié)果提交GenBank數(shù)據(jù)庫(kù),進(jìn)行BLAST比對(duì)分析。

    1.2.11 金黃色葡萄球菌USA300srtA基因缺失對(duì)小鼠腎臟組織病理變化的影響 選用步驟1.13中感染1 d后的小鼠,眼球采血,頸椎脫臼處死小鼠,取腎臟用10%的中性甲醛溶液固定7 d,參考陳福廣[5]方法進(jìn)行石蠟切片制作與HE染色,光學(xué)顯微鏡觀察小鼠腎臟病理變化。

    1.2.12 金黃色葡萄球菌USA300菌株srtA基因缺失回補(bǔ)株的構(gòu)建 以金黃色葡萄球菌USA300菌株基因組為模板,HB-srtA-F,HB-srtA-R為引物擴(kuò)增srtA基因及其啟動(dòng)子片段(HB-srtA基因),反應(yīng)體系為:PrimeSTAR HS 25 μL,HB-srtA-F、HB-srtA-R各2 μL,DNA模板2 μL,ddH2O 19 μL。反應(yīng)程序?yàn)椋?8℃ 10 s,55℃ 5 s,72℃ 1 min,35個(gè)循環(huán)。待純化回收后,用限制性內(nèi)切酶EcoRI 和BamH I將pLI50質(zhì)粒和HB-srtA進(jìn)行雙酶切,酶切體系為:QuickCutTMEcoR I 2 μL,QuickCutTMBamH I 2 μL,QuickCut Green Buffer 5 μL,PLI50/回補(bǔ)基因srtA1 μg ddH2O補(bǔ)充至50 μL。30 min后純化回收,用T4連接酶過(guò)夜連接,熱激轉(zhuǎn)化至DH5α菌株,37℃增菌后提取質(zhì)粒,用雙酶切和測(cè)序分別檢測(cè)回補(bǔ)質(zhì)粒PLI50-srtA是否構(gòu)建成功,將構(gòu)建成功的回補(bǔ)質(zhì)粒經(jīng)修飾后轉(zhuǎn)入ΔsrtAUSA300中,構(gòu) 建ΔsrtAUSA300回 補(bǔ) 株(Δ∷srtAUSA300)?;匮a(bǔ)株構(gòu)建成功后,需進(jìn)一步進(jìn)行功能驗(yàn)證,檢測(cè)srtA基因缺失后其功能是否恢復(fù)。即觀察srtA基因回補(bǔ)后,菌株生長(zhǎng)狀況,感染后小鼠生存率、器官組織載菌量及腎臟病理組織學(xué)變化。

    1.2.13 統(tǒng)計(jì)學(xué)分析 應(yīng)用GrphPad Prism7.0數(shù)據(jù)處理軟件對(duì)數(shù)據(jù)進(jìn)行統(tǒng)計(jì)學(xué)分析,結(jié)果以Mean±SD表示。應(yīng)用SPSS17.0分析數(shù)據(jù)統(tǒng)計(jì)學(xué)差異。P<0.05視為差異性顯著,P<0.01視為差異性極顯著。

    2 結(jié)果

    2.1 pCasSA-sgRNA質(zhì)粒的構(gòu)建及鑒定

    將退火后的雙鏈sgRNA序列與酶切后的pCasSA質(zhì)粒連接后,用sgRNA上游序列(sgRNA1-F,sgRNA2-F,sgRNA3-F)和sgRNA檢 測(cè) 引 物srtAsgRNA-R進(jìn)行PCR鑒定,檢測(cè)結(jié)果如圖2-A所示。將驗(yàn)證的pCasSA-sgRNA質(zhì)粒送公司測(cè)序,如圖2-B所示,測(cè)序結(jié)果正確。證明pCasSA-sgRNA質(zhì)粒構(gòu)建成功。

    2.2 pCasSA-sgRNA質(zhì)粒切割效率檢測(cè)

    將修飾后的pCasSA-sgRNA質(zhì)粒電擊轉(zhuǎn)入金黃色葡萄球菌USA300菌株中,30℃培養(yǎng)2 d后觀察。與對(duì)照組pCasSA質(zhì)粒菌落(圖3-A)相比,存在pCasSA-sgRNA2質(zhì)粒的菌落在TSA固體平板上僅有幾個(gè)生長(zhǎng)(圖3-D),存在pCasSA-sgRNA1,pCasSAsgRNA3質(zhì)粒的菌落幾乎長(zhǎng)滿整個(gè)平板(圖3-B,3-C)。這說(shuō)明pCasSA-sgRNA2具有較高的切割效率。選用pCasSA-sgRNA2質(zhì)粒進(jìn)行下一步實(shí)驗(yàn)。

    圖2 pCasSA-sgRNA質(zhì)粒的構(gòu)建及鑒定

    圖3 pCasSA-sgRNA質(zhì)粒切割效率檢測(cè)

    2.3 pCasSA-srtA-sgRNA質(zhì)粒的構(gòu)建及鑒定

    以金黃色葡萄球菌USA300菌株基因組為模板,分別擴(kuò)增獲得大小為1 116 bp和1 178 bp的srtA基因左右同源臂srtA-L和srtA-R序列,用融合PCR將srtA-L和srtA-R序列融合后獲得2 294 bp的srtA-L+R序列,瓊脂糖凝膠電泳結(jié)果顯示與預(yù)期結(jié)果一致。(圖4-A)。將srtA-L+R序列構(gòu)建到pCasSA-sgRNA2質(zhì)粒中,經(jīng)限制性內(nèi)切酶XhoI和XbaI雙酶切驗(yàn)證,如圖4-B所 示,獲 得10 260 bp和2 294 bp的2條 特異性條帶,均與預(yù)期大小一致。對(duì)重組好的質(zhì)粒送測(cè)序鑒定,結(jié)果與原序列一致。證明pCasSA-srtAsgRNA2質(zhì)粒構(gòu)建成功。

    2.4 金黃色葡萄球USA300 srtA缺失株的構(gòu)建及鑒定

    將修飾后的pCasSA-srtA-sgRNA2質(zhì)粒轉(zhuǎn)入U(xiǎn)SA300菌株中,30℃培養(yǎng)2 d,TSA平板長(zhǎng)出菌落后,隨機(jī)挑取10個(gè)單個(gè)菌落,30℃增菌后,提取基因組,用引物WJD-srtA-F,WJD-srtA-R進(jìn)行PCR擴(kuò)增,鑒定srtA基因敲除情況,如圖5-A所示,srtA基因沒(méi)有被敲除修復(fù)的菌,PCR顯示為3 044 bp,反之出現(xiàn)2 424 bp大小的條帶。為了進(jìn)一步檢測(cè)srtA基因是否被敲除,用引物NJD-srtA-F,NJD-srtA-R進(jìn)行PCR擴(kuò)增,如圖5-B所示,srtA基因沒(méi)有被敲除的菌,PCR將會(huì)擴(kuò)增出556 bp大小的條帶,反之不能擴(kuò)增出條帶。如圖5-C所示,測(cè)序結(jié)果與PCR驗(yàn)證結(jié)果一致。證明ΔsrtAUSA300構(gòu)建成功。

    圖4 pCasSA-srtA-sgRNA質(zhì)粒構(gòu)建及鑒定

    2.5 重組質(zhì)粒消除

    pCasSA-srtA-sgRNA2質(zhì)粒經(jīng)30℃,42℃,37℃培養(yǎng)后。由于pCasSA質(zhì)粒中含有溫度敏感的repF復(fù)制子,使得該質(zhì)粒在42℃下無(wú)法復(fù)制,從而在細(xì)菌中消除。如圖6所示,在含有氯霉素的TSA平板上無(wú)菌落生長(zhǎng)(圖6-A),在不含有氯霉素的TSA平板長(zhǎng)出菌落(圖6-B),證明重組質(zhì)粒pCasSA-srtAsgRNA2被消除,可進(jìn)行下一步實(shí)驗(yàn)。

    2.6 金黃色葡萄球菌USA300菌株srtA基因缺失回補(bǔ)株的構(gòu)建

    回補(bǔ)基因HB-srtA經(jīng)PCR擴(kuò)增后獲得大小為1 080 bp的條帶(圖7-A),與質(zhì)粒pLI50(5 505 bp)連接后獲得pLI50-srtA質(zhì)粒,經(jīng)限制性內(nèi)切酶EcoRI和BamH I雙酶切驗(yàn)證獲得5 505 bp和1 080 bp大小的2條特異性條帶(圖7-B)。pLI50-srtA質(zhì)粒經(jīng)測(cè)序結(jié)果正確,證明pLI50-srtA質(zhì)粒構(gòu)建成功。將修飾后的pLI50-srtA回補(bǔ)質(zhì)粒導(dǎo)入ΔsrtAUSA300中,成功構(gòu)建了Δ∷srtAUSA300。

    圖5 ΔsrtA USA300菌株的篩選及鑒定

    圖6 質(zhì)粒消除鑒定

    2.7 金黃色葡萄球菌USA300 srtA基因缺失對(duì)細(xì)菌生長(zhǎng)的影響

    如圖8所示,srtA基因缺失后,前2 h細(xì)菌生長(zhǎng)緩慢,2 h后進(jìn)入生長(zhǎng)對(duì)數(shù)期初期。與WT USA300相比,ΔsrtAUSA300生長(zhǎng)狀態(tài)相似。srtA基因回補(bǔ)后,Δ∷srtAUSA300生長(zhǎng)與WT USA300生長(zhǎng)狀態(tài)基本一致,證明srtA基因缺失并不會(huì)影響金黃色葡萄球菌的生長(zhǎng)。說(shuō)明該突變是一種非致死性突變。

    圖7 HB-srtA基因PCR擴(kuò)增及pLI50-srtA質(zhì)粒鑒定

    2.8 金黃色葡萄球菌USA300 srtA基因缺失對(duì)小鼠生存率的影響

    圖8 WT USA300,ΔsrtA USA300和Δ∷srtA USA300生長(zhǎng)曲線

    小鼠經(jīng)尾靜脈接種2×108CFU/mL的金黃色葡萄球菌后,對(duì)小鼠的生存率進(jìn)行分析,結(jié)果如圖9所示。WT USA300顯著的引起了小鼠的死亡。srtA缺失后小鼠無(wú)死亡。srtA基因回補(bǔ)后,感染小鼠與WT USA300組的小鼠死亡情況基本一致,證明srtA基因回補(bǔ)后其功能基本恢復(fù)。

    圖9 srtA基因缺失對(duì)小鼠生存率的影響

    2.9 金黃色葡萄球菌USA300 srtA基因缺失對(duì)器官組織內(nèi)細(xì)菌數(shù)量的影響

    分別對(duì)感染1 d、3 d、5 d后的小鼠器官組織進(jìn)行平板計(jì)數(shù),統(tǒng)計(jì)心臟、腎臟、肝臟和脾臟中的細(xì)菌數(shù)量。如圖10所示,與WT USA300組相比,ΔsrtAUSA300組在小鼠心臟中的細(xì)菌數(shù)量(圖10-A)顯著減少(P<0.05),在小鼠腎臟中的細(xì)菌數(shù)量(圖10-B)極 顯 著 減 少(P<0.01),但WT USA300組與ΔsrtAUSA300組小鼠在肝臟和脾臟內(nèi)細(xì)菌數(shù)量(圖10-C,10-D)無(wú)顯著性差異。srtA基因回補(bǔ)后,Δ∷srtAUSA300組小鼠載菌量基本恢復(fù)至野生型水平。如圖11所示,平板菌落經(jīng)革蘭氏染色,油鏡下觀察呈單個(gè)、短鏈、葡萄狀的藍(lán)紫色菌落(圖11-A)。經(jīng)過(guò)PCR擴(kuò)增,核酸瓊脂糖凝膠電泳獲得大小為1 136 bp的條帶(圖11-B),公司測(cè)序,最終鑒定感染小鼠組織中的細(xì)菌為金黃色葡萄球菌。

    圖10 srtA基因缺失對(duì)小鼠器官內(nèi)細(xì)菌數(shù)量的影響

    2.10 金黃色葡萄球菌USA300 srtA基因缺失對(duì)小鼠腎臟病理變化的影響

    圖11 細(xì)菌的分離與鑒定

    光學(xué)顯微鏡下觀察腎臟病理變化,結(jié)果如圖12所示,正常對(duì)照組(圖12-A),細(xì)胞排列規(guī)則,腎小管和腎小球結(jié)構(gòu)完整。WT USA300組(圖12-C)腎小球變性、嚴(yán)重壞死,腎小管上皮細(xì)胞腫脹,管腔變小或消失。腎間質(zhì)充血、水腫,并可見(jiàn)較大面積的彌漫性出血。ΔsrtAUSA300組(圖12-B)腎小球體積增大,腎小球毛細(xì)血管內(nèi)皮細(xì)胞增生、腫大,腎小球囊腔狹窄,并可見(jiàn)局灶性出血,整體病變明顯減輕。srtA基因回補(bǔ)后,菌株對(duì)小鼠腎臟損傷程度基本恢復(fù)至與WT USA300組同等水平(圖12-D)。

    3 討論

    隨著耐甲氧西林、耐萬(wàn)古霉素等金黃色葡萄球菌的出現(xiàn)和抗生素不良反應(yīng)的增加,使得防治金黃色葡萄球菌感染的難度加大。因此尋求新型藥物靶標(biāo)和開(kāi)發(fā)治療金黃色葡萄球菌感染的新藥物,已成為眾人近年來(lái)關(guān)注的焦點(diǎn)問(wèn)題之一。新型藥物靶標(biāo)的發(fā)現(xiàn)離不開(kāi)基因組層面功能基因的篩選以及后續(xù)基因功能的驗(yàn)證。金黃色葡萄球菌中用于功能基因篩選的技術(shù)主要為轉(zhuǎn)座子插入突變的方法。這種方法篩選過(guò)程十分繁瑣,費(fèi)時(shí)費(fèi)力,并且轉(zhuǎn)座子插入位置的隨機(jī)性,使得該技術(shù)不能應(yīng)用于特定的基因群[21]。后續(xù)基因功能的驗(yàn)證也離不開(kāi)該基因缺失株的構(gòu)建。以往金黃色葡萄球菌用于構(gòu)建基因缺失株的方法主要為基于同源重組的方法。以pBT2、pMAD、pKOR1和pIMAY質(zhì)粒最為常見(jiàn)。但大多操作繁瑣,需要正向或者反向的篩選,效率較低。張曉靜[22]使用pBT2穿梭質(zhì)粒構(gòu)建OatA基因敲除株,挑取1 440個(gè)單克隆,僅獲得3個(gè)陽(yáng)性克隆,效率不足1%。限制了高效基因功能的研究。CRISPR/Cas9系統(tǒng)作為一種新型基因編輯技術(shù),可以精確、高效的對(duì)基因組進(jìn)行敲除或者修飾,可在短時(shí)間內(nèi)獲得基因敲除突變體,從而更好地完成基因功能的研究[23]。

    圖12 srtA基因缺失對(duì)小鼠腎臟病理學(xué)變化的影響

    基于CRISPR/Cas9系統(tǒng),本研究以pCasSA為載體,人工引入srtA基因左右同源臂,構(gòu)建了耐甲氧西林金黃色葡萄球菌USA300srtA基因缺失株。具有效率高,操作簡(jiǎn)單的特點(diǎn)。挑取的10個(gè)菌株中,獲得2個(gè)基因缺失株。CRISPR/Cas9系統(tǒng)中,sgRNA可以靶向目標(biāo)基因,Cas9蛋白可以對(duì)基因組進(jìn)行特異性切割,獲得DSBs,由于非同源重組末端修復(fù)的缺乏,導(dǎo)致細(xì)菌死亡。但金黃色葡萄球菌存在逃逸機(jī)制,僅有極少數(shù)菌不被切割存活了下來(lái)[24]。因此本研究根據(jù)平板上菌落的多少,篩選獲得可能有切割效率的sgRNA。在篩選srtA基因缺失株時(shí),往往敲除質(zhì)粒中同源臂的存在可能會(huì)影響檢測(cè)結(jié)果,因此本研究設(shè)計(jì)srtA基因外部和內(nèi)部鑒定引物,外部鑒定引物WJD-srtA-F,WJD-srtA-R位于同源臂兩端,能消除質(zhì)粒對(duì)檢測(cè)結(jié)果的影響。內(nèi)部鑒定引物NJDsrtA-F,NJD-srtA-R位于srtA基因內(nèi)部,保證了檢測(cè)的準(zhǔn)確性。這樣可以直觀的通過(guò)觀察瓊脂糖凝膠電泳條帶大小達(dá)到初步篩選的效果。為避免pCasSAsrtA-sgRNA質(zhì)粒存在對(duì)金黃色葡萄球菌的影響,本研究利用pCasSA質(zhì)粒在42℃不能復(fù)制的原理,進(jìn)行質(zhì)粒的消除。最終獲得不含有質(zhì)粒的srtA基因缺失株。經(jīng)生長(zhǎng)曲線測(cè)定顯示srtA基因缺失不會(huì)影響金黃色葡萄球菌USA300菌株的生長(zhǎng)。因此,抑制srtA的活性不會(huì)對(duì)病原菌帶來(lái)生存壓力,可以有效的減少細(xì)菌耐藥性的發(fā)生,有利于金黃色葡萄球菌藥物抑制劑篩選,以彌補(bǔ)目前針對(duì)耐藥性菌株感染的抗生素治療不足[25]。

    金黃色葡球菌USA300菌株屬于MRSA,具有很強(qiáng)的毒力和致病性。據(jù)報(bào)道,MRSA菌血癥的死亡率可高達(dá)80%[26]。MRSA主要以皮膚軟組織和呼吸道感染為主,屬于多位點(diǎn)序列ST8型,通常包含SCCmecIVa型元件、arcA基因、編碼殺白細(xì)胞素(PVL)基因的噬菌體ФSA2USA,精氨酸分解代謝移動(dòng)遺傳元件(Arginine catabolic mobile Bsaed element,ACME)和SpeG基因[27]。這些基因被認(rèn)為是USA300菌株得以生存和發(fā)揮毒力作用的重要因素。srtA作為金黃色葡萄球菌最重要的轉(zhuǎn)肽酶,負(fù)責(zé)將20多種表面毒力因子蛋白錨定到細(xì)菌的細(xì)胞壁上,抑制后細(xì)菌感染小鼠的毒力顯著降低。USA300菌株強(qiáng)的致病性與毒力是否與srtA基因相關(guān),有待進(jìn)一步研究。因此,本研究構(gòu)建了耐甲氧西林金黃色葡萄球菌USA300srtA基因缺失株,尾靜脈接種金黃色葡萄球菌,建立了小鼠菌血癥模型,探究USA300菌株srtA基因缺失對(duì)小鼠致病能力的影響。結(jié)果顯示,與WT USA300相比,ΔsrtAUSA300顯著降低了小鼠的死亡率。在小鼠接種1×108CFU/mL濃度的金黃色葡萄球菌1 d、3 d、5 d后,與WT USA300組小鼠相比,感染ΔsrtAUSA300小鼠心臟中的細(xì)菌數(shù)量顯著性減少,腎臟中的細(xì)菌數(shù)量極顯著性減少,而肝臟和脾臟中的細(xì)菌量未見(jiàn)明顯降低,這與張奇文等[28]構(gòu)建單增李斯特菌srtA基因缺失株后肝臟和脾臟中載菌量顯著降低有所不同,這可能與不同種屬細(xì)菌與機(jī)體的相互作用機(jī)制不同有關(guān)。光學(xué)顯微鏡下觀察感染1 d后的小鼠腎臟組織病理變化,發(fā)現(xiàn)與WT USA300組小鼠相比,ΔsrtAUSA300組小鼠腎臟組織病變明顯減輕,表明srtA基因的缺失降低了細(xì)菌對(duì)腎臟的損傷,這可能與srtA基因的缺失后減少了某些炎性因子的含量或參與調(diào)節(jié)炎癥的某種信號(hào)通路有關(guān)。此外,MRSA對(duì)多種抗生素產(chǎn)生耐藥,有研究表明生物膜形成與耐藥性產(chǎn)生有關(guān)[29],而srtA錨定的多種表面蛋白參與細(xì)菌生物膜的黏附機(jī)制,是否srtA基因的缺失與細(xì)菌的耐藥性有直接或者間接的關(guān)系,需要進(jìn)一步探究。

    本研究結(jié)果表明,srtA基因缺失并沒(méi)有使USA300菌株完全喪失對(duì)小鼠的致病性,可見(jiàn)srtA分選的表面蛋白只部分參與了細(xì)菌的致病力。盡管srtA參與了眾多C端含有分選信號(hào)的表面毒力蛋白錨定到細(xì)胞表面的過(guò)程,可能致病菌本身還存在其他作用機(jī)制或其他毒力因子作用,或存在類似蛋白分擔(dān)srtA的作用,srtA基因缺失后激活了相似蛋白發(fā)揮補(bǔ)償作用。這方面的研究需要進(jìn)一步去探索。

    4 結(jié)論

    本研究成功構(gòu)建了耐甲氧西林金黃色葡萄球菌USA300菌株srtA基因缺失株和回補(bǔ)株,為深入研究耐甲氧西林金黃色葡萄球菌srtA基因提供實(shí)驗(yàn)菌株,為進(jìn)一步闡明金黃色葡萄球菌毒力因子的致病機(jī)制提供理論依據(jù)。

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