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    BCG表面糖脂的分離與純化鑒定

    2020-12-20 18:29:54詹紅偉劉鑒霄張正衍王嘉琪王東鑫
    關(guān)鍵詞:凝膠電泳糖脂菌體

    詹紅偉*,劉鑒霄*,劉 昊,張正衍,姚 遠(yuǎn),張 穎,王嘉琪,王東鑫

    (1.蘭州大學(xué)第二臨床醫(yī)學(xué)院,甘肅 蘭州 730030;2.蘭州大學(xué)第一臨床醫(yī)學(xué)院,甘肅 蘭州 730000)

    1 研究方法

    1.1 制備培養(yǎng)基

    蘇通培養(yǎng)基(1000m1):硫酸鎂0.5 g;檸檬酸2 g;磷酸氫二鉀0.8 g;L-谷氨酸鈉5 g;檸檬酸鐵胺0.05 g;甘油60 mL,硫酸鋅0.01 g。加超純水溶解完全,氨水調(diào)PH至7.2~7.4,分裝至500 mL三角瓶及200 ml/瓶。

    1.2 接種BCG

    取活化后的菌種,取適量菌液分別接種到500m1及250ml的蘇通培養(yǎng)基中,衡溫培養(yǎng)至培養(yǎng)基的液面富集一定厚度的菌體層。將培養(yǎng)基中菌體進(jìn)行抽濾收集,后用PBS溶液洗滌兩次,置于試管中在4℃冰箱中進(jìn)行保存。

    1.3 BCG表面糖脂萃取

    1.3.1 搖床

    事先將所需的錐形瓶、玻璃珠以及混合液(氯仿:甲醇=2:1)進(jìn)行高壓蒸汽滅菌,將試管中所收集的菌體置于已滅菌的錐形瓶,每個(gè)250ml錐形瓶中加入4 g菌體,20g玻璃珠以及100ml的混合溶液,以上所有操作均在無菌操作臺(tái)中完成。以8種方案進(jìn)行糖脂提?。簱u床轉(zhuǎn)速:方案一:100 rpm;二:150 rpm;三:200 rpm;四:250 rpm;五:100 rpm;六:150 rpm;七:200 rpm;八:250 rpm。搖床時(shí)間一至四為5 min;五至八為2 min。離心轉(zhuǎn)速各為5000rpm。離心時(shí)間各為10 min。

    1.3.2 離心

    裝入50 mL的離心管中,并且用天平配平使試管質(zhì)量相近,后進(jìn)行以5000rpm離心10min,使菌體與糖脂分層,收集上清液。

    1.3.3 旋轉(zhuǎn)蒸發(fā)儀濃縮上清液

    將離心后的上清液以10X、15X、20X濃縮,置于10 mL試管中。將試管置于-20℃冰箱中保存。經(jīng)薄層色譜染色分析,20倍濃縮。

    1.4 BCG表面糖脂的純化

    1.4.1 過柱前薄層色譜法分析:用微量移液器量取10 uL在硅膠板上進(jìn)行點(diǎn)狀點(diǎn)樣,將硅膠板斜放入層析缸中,用氯仿:甲醇:丙酮:乙酸((90:10:6:1)展開劑展開,當(dāng)展開劑前緣距硅膠板上端1 cm處,取出硅膠板吹干。

    1.4.2 硅膠柱層析法純化

    稱取l00 g 200~300目硅膠粉末,用300 mL氯仿浸泡過夜;勻漿濕法裝柱,調(diào)整流速,并使用250 mL~500 mL的氯仿平衡硅膠柱。

    取5 mL上清液進(jìn)行上樣,以氯仿/甲醇混合液為流動(dòng)相,在不同比例氯仿/甲醇梯度洗脫條件下分離總脂,柱層析流速控制在1ml/min。以三種洗脫液進(jìn)行糖脂的洗脫:

    ①氯仿:甲醇99:1;②氯仿:甲醇9:1;③氯仿:甲醇,96:4

    1.4.3 過柱后薄層色譜法分析

    將洗脫產(chǎn)物在10xl0 cm規(guī)格硅膠板上點(diǎn)樣,點(diǎn)樣為9 cm左右線狀,待樣品干燥后,斜放入層析缸中,用氯仿:甲醇:丙酮:乙酸((90:10:6:1)展開劑展開,當(dāng)展開劑前緣距硅膠板上端1cm處,取出硅膠板吹干,進(jìn)行碘染,觀察染色效果,并于之前洗脫前染色結(jié)果進(jìn)行對(duì)比。

    2 結(jié)果與分析

    2.1 總脂萃取結(jié)果

    BCG大量培養(yǎng)后,收集菌體,并使用高速離心機(jī)分離糖脂和菌體,取上清液,將離心后的上清液置于旋轉(zhuǎn)蒸發(fā)儀中濃縮至10X,15X,20X,再經(jīng)薄層色譜染色分析,得出20X濃縮染色效果最佳。根據(jù)硅膠板上條帶數(shù)可觀察出濃縮后的上清液均有較多成分且含量不一,經(jīng)過對(duì)比發(fā)現(xiàn)方案二(150 rpm 5 min)的所取得的粗糖脂成分相對(duì)較少,可做為后期備選方案。

    2.2 糖脂的分離純化結(jié)果

    硅膠經(jīng)過氯仿浸泡過夜充分溶脹后,均勻裝柱(柱長30 cm,直徑2 cm),過程中持續(xù)用玻璃棒敲打防止氣泡產(chǎn)生,調(diào)整流速1ml/min,總脂(溶劑為甲醇:氯仿=1:2)上樣5ml左右,依次用50ml氯仿:甲醇=99:1,50ml氯仿:甲醇=9:1,50ml氯仿:甲醇=96:4的有機(jī)體系進(jìn)行洗脫,收集洗脫液,將方案二的于其余薄層色譜分析圖進(jìn)行對(duì)比,其成分相對(duì)較少,并且僅有經(jīng)過洗脫液(氯仿:甲醇=9:1)過柱后顯示明顯條帶,其余方案過柱后的三種洗脫液均有不同程度的顯帶,且條帶數(shù)較多,說明其洗脫液成分相對(duì)較多,其次再根據(jù)總脂萃取結(jié)果可大致認(rèn)為方案二的BCG糖脂純化方法較優(yōu)于其他方案。

    2.4 糖脂成分分析

    為了檢測過柱后洗脫液是否存在核酸和蛋白質(zhì)等雜質(zhì),我們將硅膠柱層析所得24種洗脫液進(jìn)行核酸電泳凝膠分析和蛋白質(zhì)凝膠電泳分析。

    2.4.1 核酸凝膠電泳分析結(jié)果

    24種洗脫液經(jīng)核酸凝膠電泳分析并進(jìn)行凝膠攝影后得出,圖中熒光亮點(diǎn)即為核酸所在位置,可觀察到第1、6、8、9、15、20、21號(hào)試管中有熒光出現(xiàn),故可分析出方案一、方案三、方案五、方案七中經(jīng)過柱的洗脫液均含核酸雜質(zhì),又根據(jù)其核酸所在位置與DL 15000 DNA Ladder標(biāo)準(zhǔn)條帶位置對(duì)比,可觀察出洗脫液中核酸分子量較大,結(jié)核分歧桿菌的全基因組序列約為4.41Mb,有3942個(gè)開放閱讀框,約4000個(gè)基因;在實(shí)驗(yàn)方案中可能由于轉(zhuǎn)速過高使玻璃珠對(duì)菌體的破壞較大,使菌體破裂釋放出核酸分子,后者被EB染色,在紫外光下可發(fā)出熒光,且核酸凝膠電泳僅可分離長度為200dp至50kb的核酸分子,這可以解釋凝膠攝影所出現(xiàn)的核酸位置僅在點(diǎn)樣部位的現(xiàn)象。

    2.4.2 SDS-PAGE分析結(jié)果

    24種洗脫液經(jīng)蛋白質(zhì)凝膠電泳分析后拍攝后得出,將24種洗脫液和標(biāo)準(zhǔn)蛋白樣所跑條帶進(jìn)行對(duì)比,可發(fā)現(xiàn)24種洗脫液均無蛋白條帶出現(xiàn),因此初步確定24種洗脫液中無蛋白質(zhì)雜質(zhì)。

    3 討 論

    本實(shí)驗(yàn)通過自己創(chuàng)新性提脂方法和前人純化方法相結(jié)合,我們從BCG菌體中分離出來了部分糖脂,早期預(yù)實(shí)驗(yàn)用PBS作為提取糖脂的溶液,但運(yùn)用旋轉(zhuǎn)蒸發(fā)儀進(jìn)行上清液濃縮時(shí),在不破壞糖脂內(nèi)部結(jié)構(gòu)的情況下進(jìn)行蒸發(fā),溫度控制在了60度,但PBS緩沖溶液的沸點(diǎn)遠(yuǎn)遠(yuǎn)比其高得多,故無法將PBS進(jìn)行濃縮,于是想到了高壓冷凍濃縮儀,我們準(zhǔn)備將提取粗糖脂的溶液改為PBS溶液進(jìn)行,若分離效果明顯,可將濃縮后的上清液進(jìn)行再次濃縮至1ml,待自然揮發(fā)干燥后免疫小鼠,通過檢測小鼠血清中結(jié)核桿菌相關(guān)IgG類抗體產(chǎn)生情況來進(jìn)一步對(duì)其免疫活性進(jìn)行研究,若免疫活性較為理想,該糖脂可有望成為亞單位疫苗的新型佐劑,為亞單位疫苗的研究提供了理論和物質(zhì)基礎(chǔ)。

    4 結(jié) 論

    根據(jù)對(duì)八種實(shí)驗(yàn)方案結(jié)果進(jìn)行分析,BCG表面糖脂最優(yōu)方案為150 rpmX5 min。

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