吳爭,夏芝璐,雷達
(江西省疾病預(yù)防控制中心,江西 南昌 330029)
大豆油是日常飲食中一種常見的烹調(diào)用油,在提供人體能量和必需脂肪酸方面起著重要作用。 由于轉(zhuǎn)基因大豆成本低出油率高,轉(zhuǎn)基因大豆油已經(jīng)占據(jù)國內(nèi)主要食用油市場,轉(zhuǎn)基因大豆油也成為我國消費者最易獲取的轉(zhuǎn)基因食品,對其進行安全性的評估顯得尤為重要。 我國和亞洲大多數(shù)國家一樣,國民都選擇以碳水化合物(谷類、豆類)為主食[1],雖然隨著經(jīng)濟和科技的發(fā)展,國民的膳食營養(yǎng)結(jié)構(gòu)得到持續(xù)不斷的改善,但低收入人群的日常飲食中仍然存在以素食為主、 碳水化合物比例高[2]、缺乏優(yōu)質(zhì)的動物性蛋白等營養(yǎng)不均衡的問題[3],飲食結(jié)構(gòu)不合理是造成機體患重大疾病的風險因素[4]。 由于低收入人群通常在選擇食用油時更傾向選擇價格低廉的轉(zhuǎn)基因大豆油,為了解轉(zhuǎn)基因大豆油是否會進一步增加這一類人群健康風險,本次研究通過建立動物模型模擬特殊人群的健康狀況,并觀察了轉(zhuǎn)基因大豆油對動物模型免疫功能的影響,報告如下。
1.1 受試物 本次實驗所用轉(zhuǎn)基因大豆油、非轉(zhuǎn)基因大豆油均從大型超市購得。
1.2 實驗動物 本實驗室選用的SPF 級ICR 小鼠。由湖南斯萊克景達實驗動物有限公司提供, 并由該公司提供全價標準小鼠生長飼料和造模用低營養(yǎng)小鼠飼料(蛋白質(zhì)含量9%、粗脂肪含量3%)。 實驗動物生產(chǎn)許可證號:SCXK(湘)2011-0003;
1.3 儀器和試劑 顯微鏡、生物安全柜、冷凍離心機、電子天平、721 分光光度計、酶標儀、CO2培養(yǎng)箱、DNFB(二硝基氟苯)、1640 完全培養(yǎng)基、刀豆蛋白A(ConA)、無菌脫纖維綿羊紅細胞、無菌脫纖維雞紅細胞、印度墨汁。
試驗方法參照 《保健食品檢驗與評價技術(shù)規(guī)范2003 年版》中功能學評價部分[5]進行。
2.1 動物模型和劑量分組 取體重范圍18~20g 的ICR 雌性小鼠,使用低營養(yǎng)小鼠飼料喂養(yǎng)建立模型,7 天后,按體重隨機分組。 將模型動物分為五個實驗大組, 每實驗大組設(shè)置轉(zhuǎn)基因大豆油低、 中、高三個劑量組,按人群可能日攝入量[6]的 5、10、20 倍即 3.6、7.2、14.4g/kgBW,給予轉(zhuǎn)基因大豆油;設(shè)置一個非轉(zhuǎn)基因大豆油組按14.4g /kgBW 給予非轉(zhuǎn)基因大豆油;設(shè)置一個模型對照組,給予蒸餾水;模型動物分組后繼續(xù)使用低營養(yǎng)飼料喂養(yǎng);另選用同批次購買的使用全價標準飼料喂養(yǎng)的小鼠設(shè)置一個正常對照組,給予蒸餾水;各劑量組動物數(shù)均為10 只。 小鼠連續(xù)灌胃30 天后開始試驗。 免疫實驗一組進行遲發(fā)型變態(tài)反應(yīng)實驗; 免疫實驗二組進行碳廓清實驗; 免疫實驗三組進行淋巴器官/體重比值測定和ConA 誘導的小鼠淋巴細胞轉(zhuǎn)化實驗、NK 細胞活性測定; 免疫實驗四組進行血清溶血素的測定和抗體生成細胞檢測;免疫實驗五組進行小鼠腹腔巨噬細胞吞噬雞紅細胞實驗。
2.2 實驗步驟
2.2.1 臟器/體重比值測定[5]試驗 處死動物,取小鼠胸腺、 脾臟, 稱量后計算臟器/體重比即臟器指數(shù),計算公式如下:
2.2.2 遲發(fā)變態(tài)反應(yīng)試驗[5]DNFB 致敏,攻擊,誘導小鼠DTH,測定鼠耳腫脹程度。
2.2.3 ConA 誘導的小鼠淋巴細胞轉(zhuǎn)化試驗[5](MTT法) 處死動物,取脾臟制成脾細胞懸液,經(jīng)過增殖后,按MTT 法,在570 nm 處比色測定,比較加與不加ConA 的光密度值之差,作統(tǒng)計處理。
2.2.4 血清溶血素試驗[5]取全血分離血清,按血凝法觀察綿羊紅細胞凝集程度,計算抗體積數(shù)。
2.2.5 抗體生成細胞試驗[5]用脫纖維綿羊紅細胞免疫實驗動物4~5 天后,處死,取脾臟制成脾細胞懸液,Jerne 改良玻片法,計數(shù)溶血空斑數(shù)。
2.2.6 小鼠碳廓清試驗[5]小鼠尾靜脈注射1∶4 稀釋的印度墨汁,注入后立即計時,分別于2、10 min時從眼靜脈叢中取血20μl 并將其加入Na2CO3溶液,用分光光度計在600 nm 波長處測光密度值。以Na2CO3溶液作空白對照, 根據(jù)動物體重和脾重計算吞噬指數(shù)。
2.2.7 小鼠腹腔巨噬細胞吞噬雞紅細胞試驗[5]每鼠腹腔注射20%雞紅細胞懸液1ml,間隔30min 頸椎脫臼處死,固定于鼠板上,剪開腹壁皮膚,注射生理鹽水2mL,轉(zhuǎn)動鼠板1min,吸出腹腔洗液1ml,分滴于 2 片玻片上,37℃孵箱 30min, 用生理鹽水漂洗、晾干,以丙酮+甲醇(1+1)固定,4%Giemsa-磷酸緩沖液染色3min,再以蒸餾水漂洗晾干,用油鏡鏡檢,計算吞噬百分率和吞噬指數(shù)。
2.2.8 NK 細胞活性測定[5]取脾臟,制成細胞懸液,按乳酸脫氫酶(LDH)法,用酶標儀在490 nm 處測定光密度值A(chǔ)。
2.3 統(tǒng)計方法 數(shù)據(jù)經(jīng)Excel 建立數(shù)據(jù)庫, 計算均數(shù)和標準差(以±s 表示),用 spss 統(tǒng)計軟件進行單因素方差分析(ANOVA),以 α=0.05,P<0.05 為差異有統(tǒng)計學意義。
3.1 動物模型一般狀況 動物模型在給予低營養(yǎng)飼料造模期間,體重增長緩慢;實驗初、中、末期及總體重增長顯著低于正常對照組動物; 同時個別動物出現(xiàn)毛發(fā)枯槁、疏松、畏寒、反應(yīng)遲頓等表現(xiàn)。
3.2 轉(zhuǎn)基因大豆油對模型動物體重的影響 見表1,模型對照組各周體重及總體重增長均低于正常對照組,差異有顯著性(P<0.05)。 各劑量組動物實驗初期體重與模型對照組比較無差異(P>0.05);由圖1 和表1 可見轉(zhuǎn)基因高劑量組、非轉(zhuǎn)基因組在第三、四周的體重以及總體重增長高于模型對照組,差異有顯著性(P<0.05);其他各劑量組各周體重及總體重增長與模型對照組比較差異無統(tǒng)計學意義(P>0.05)。
表1 實驗期間各劑量組動物體重(±s,n=10)
注:△ 表示與正常對照組比較(P<0.05),差異有統(tǒng)計學意義 * 表示與模型對照組比較(P<0.05), 差異有統(tǒng)計學意義
劑量分組 初重(g) 第一周(g) 第二周(g) 第三周(g) 第四周(g) 增重(g)轉(zhuǎn)基因高劑量轉(zhuǎn)基因中劑量轉(zhuǎn)基因低劑量模型對照組非轉(zhuǎn)基因組正常對照組20.3±0.7 20.3±1.0 20.6±0.8 20.7±1.2△20.6±1.1 25.2±0.8 21.9±0.8 21.7±1.2 21.9±0.6 21.6±0.9△22.2±0.8 26.6±0.6 23.5±1.0 23.3±1.7 23.1±1.1 23.2±1.2△23.5±1.1 28.0±1.0 26.4±0.7*25.2±1.1 25.0±1.1 25.0±1.3△26.6±0.5*32.1±1.3 29.6±0.9*28.4±1.8 28.1±1.3 28.2±1.7△30.0±1.6*34.7±1.3 9.32±1.0*8.11±1.4 7.45±1.6 7.54±1.7△9.38±1.8*9.49±1.5
圖1 實驗期間受試物對各劑量組動物體重的影響
3.3 轉(zhuǎn)基因大豆油對模型動物淋巴器官/體重比值的影響 模型對照組脾臟、胸腺重量、胸腺/體重比值和脾臟/體重比值均低于正常對照組, 差異有顯著性(P<0.01);轉(zhuǎn)基因高劑量組、非轉(zhuǎn)基因組胸腺重量、胸腺/體重比值高于模型對照組,差異有顯著性(P<0.05)。其他各劑量組與模型對照組比較差異無統(tǒng)計學意義(P>0.05)。 見表2。
3.4 轉(zhuǎn)基因大豆油小鼠遲發(fā)型變態(tài)反應(yīng)試驗結(jié)果各劑量組對DNFB 所致小鼠耳廓遲發(fā)變態(tài)反應(yīng)的影響, 模型對照組小鼠耳廓腫脹度低于正常對照組,差異有顯著性(P<0.01);轉(zhuǎn)基因高劑量組、非轉(zhuǎn)基因組小鼠耳廓腫脹度與模型對照組比較, 有顯著增加(P<0.01);其他劑量組與模型對照組比較差異無統(tǒng)計學意義(P>0.05)。 見表3。
表3 轉(zhuǎn)基因大豆油對小鼠遲發(fā)型變態(tài)反應(yīng)試驗的影響(±s,n=10)
表3 轉(zhuǎn)基因大豆油對小鼠遲發(fā)型變態(tài)反應(yīng)試驗的影響(±s,n=10)
注:△ 表示與正常對照組比較(P<0.05),△△表示與正常對照組比較(P<0.01),差異有統(tǒng)計學意義 * 表示與模型對照組比較(P<0.05),** 表示與模型對照組比較(P<0.01) 差異有統(tǒng)計學意義
劑量分組 DNFB 誘導DTH 左右耳重量差(mg)轉(zhuǎn)基因高劑量轉(zhuǎn)基因中劑量轉(zhuǎn)基因低劑量模型對照組非轉(zhuǎn)基因組正常對照組7.70 ±1.16**4.90 ±0.99 4.60 ±1.26 4.40 ±1.07△△7.30 ±0.67**8.70 ±0.67
3.5 轉(zhuǎn)基因大豆油脾淋巴細胞轉(zhuǎn)化試驗結(jié)果 模型對照組淋巴細胞轉(zhuǎn)化能力低于正常對照組,差異有顯著性(P<0.01);轉(zhuǎn)基因高劑量組、非轉(zhuǎn)基因組淋巴細胞轉(zhuǎn)化能力與模型對照組比較, 有顯著提高(P<0.01);其他劑量組與模型對照組比較差異無統(tǒng)計學意義(P>0.05)。 見表4。
3.6 轉(zhuǎn)基因大豆油小鼠血清溶血素試驗結(jié)果 模型對照組溶血素滴度水平低于正常對照組,差異有顯著性(P<0.01);其他劑量組與模型對照組比較差異無統(tǒng)計學意義(P>0.05)。 見表5。
3.7 轉(zhuǎn)基因大豆油抗體生成細胞試驗結(jié)果 模型對照組抗體生成細胞數(shù)低于正常對照組, 差異有顯著性(P<0.01);其他劑量組與模型對照組比較差異無統(tǒng)計學意義(P>0.05)。 見表6。
表2 轉(zhuǎn)基因大豆油對模型動物淋巴器官/體重比值的影響(±s,n=10)
表2 轉(zhuǎn)基因大豆油對模型動物淋巴器官/體重比值的影響(±s,n=10)
注:△ 表示與正常對照組比較(P<0.05),△△表示與正常對照組比較(P<0.01),差異有統(tǒng)計學意義 * 表示與模型對照組比較(P<0.05),** 表示與模型對照組比較(P<0.01) 差異有統(tǒng)計學意義
0.099 ±0.013 0.092 ±0.017 0.089 ±0.011 0.090 ±0.012△△0.100 ±0.015 0.169 ±0.046劑量分組 脾重(g)轉(zhuǎn)基因高劑量轉(zhuǎn)基因中劑量轉(zhuǎn)基因低劑量模型對照組非轉(zhuǎn)基因組正常對照組胸腺重(g) 脾體比%0.086 ±0.010*0.074 ±0.017 0.073 ±0.014 0.070 ±0.016△△0.088 ±0.010**0.109 ±0.013 3.32 ±0.41 3.20 ±0.41 3.15 ±0.29 3.16 ±0.29△△3.32 ±0.37 4.86 ±1.18胸體比%2.900 ±0.290*2.601 ±0.478 2.575 ±0.428 2.467 ±0.516△△2.934 ±0.256*3.140 ±0.283
表4 轉(zhuǎn)基因大豆油對ConA 誘導脾淋巴細胞增殖的影響(±s,n=10)
表4 轉(zhuǎn)基因大豆油對ConA 誘導脾淋巴細胞增殖的影響(±s,n=10)
注:△ 表示與正常對照組比較 (P<0.05),△△表示與正常對照組比較(P<0.01),差異有統(tǒng)計學意義 * 表示與模型對照組比較(P<0.05),** 表示與模型對照組比較(P<0.01) 差異有統(tǒng)計學意義
劑量分組 ConA 誘導脾淋巴細胞增殖OD 差值轉(zhuǎn)基因高劑量轉(zhuǎn)基因中劑量轉(zhuǎn)基因低劑量模型對照組非轉(zhuǎn)基因組正常對照組0.186 ±0.054**0.130 ±0.080 0.126 ±0.076 0.119 ±0.045△△0.193 ±0.066**0.277 ±0.089
表5 轉(zhuǎn)基因大豆油對小鼠溶血素滴度水平的影響(±s,n=10)
表5 轉(zhuǎn)基因大豆油對小鼠溶血素滴度水平的影響(±s,n=10)
注:△ 表示與正常對照組比較 (P<0.05),△△表示與正常對照組比較(P<0.01),差異有統(tǒng)計學意義
163.600 ±12.63 161.500 ±16.17 153.400 ±10.42 159.100 ±17.23△△165.800 ±9.68 224.700 ±24.98劑量分組 血清溶血素(抗體積數(shù))轉(zhuǎn)基因高劑量轉(zhuǎn)基因中劑量轉(zhuǎn)基因低劑量模型對照組非轉(zhuǎn)基因組正常對照組
表6 轉(zhuǎn)基因大豆油對抗體生成細胞的影響(±s,n=10)
表6 轉(zhuǎn)基因大豆油對抗體生成細胞的影響(±s,n=10)
注:△ 表示與正常對照組比較 (P<0.05),△△表示與正常對照組比較(P<0.01),差異有統(tǒng)計學意義
927.5 ±300.2 952.5 ±393.2 935.0 ±300.5 925.5 ±335.3△△983.5 ±293.1 1951.0 ±648.8劑量分組 溶血空斑數(shù)(/106 脾細胞)轉(zhuǎn)基因高劑量轉(zhuǎn)基因中劑量轉(zhuǎn)基因低劑量模型對照組非轉(zhuǎn)基因組正常對照組
3.8 轉(zhuǎn)基因大豆油小鼠腹腔巨噬細胞吞噬雞紅細胞試驗結(jié)果 模型對照組巨噬細胞吞噬雞紅細胞能力低于正常對照組,差異有顯著性(P<0.01);非轉(zhuǎn)基因組巨噬細胞吞噬雞紅細胞能力高于模型對照組,差異有顯著性(P<0.01);其他劑量組與模型對照組比較差異無統(tǒng)計學意義(P>0.05)。 見表7。
3.9 轉(zhuǎn)基因大豆油小鼠碳廓清試驗結(jié)果 模型對照組碳廓清能力低于正常對照組, 差異有顯著性(P<0.01); 非轉(zhuǎn)基因組碳廓清能力高于模型對照組,差異有顯著性(P<0.01);其他劑量組與模型對照組比較差異無統(tǒng)計學意義(P>0.05)。 見表8。
3.10 轉(zhuǎn)基因大豆油NK 細胞活性試驗結(jié)果 模型對照組NK 細胞活性低于正常對照組,差異有顯著性(P<0.01);非轉(zhuǎn)基因組NK 細胞活性高于模型對照組,差異有顯著性(P<0.01);其他劑量組與模型對照組比較差異無統(tǒng)計學意義(P>0.05)。 見表9。
表7 轉(zhuǎn)基因大豆油對巨噬細胞吞噬雞紅細胞能力的影響(±s,n=10)
表7 轉(zhuǎn)基因大豆油對巨噬細胞吞噬雞紅細胞能力的影響(±s,n=10)
注:△表示與正常對照組比較(P<0.05),△△表示與正常對照組比較(P<0.01),差異有統(tǒng)計學意義 * 表示與模型對照組比較(P<0.05),** 表示與模型對照組比較(P<0.01) 差異有統(tǒng)計學意義
劑量分組轉(zhuǎn)基因高劑量轉(zhuǎn)基因中劑量轉(zhuǎn)基因低劑量模型對照組非轉(zhuǎn)基因組正常對照組吞噬百分率(%)28.44 ±2.16 27.43 ±2.42 28.13 ±1.60 26.93 ±2.84△△32.64 ±1.46**50.76 ±2.77吞噬指數(shù)0.14 ±0.03 0.12 ±0.03 0.14 ±0.03 0.12 ±0.02△△0.18 ±0.03**0.31 ±0.03
表8 轉(zhuǎn)基因大豆油對碳廓清的影響(±s,n=10)
表8 轉(zhuǎn)基因大豆油對碳廓清的影響(±s,n=10)
注:△ 表示與正常對照組比較 (P<0.05),△△表示與正常對照組比較(P<0.01),差異有統(tǒng)計學意義 * 表示與模型對照組比較(P<0.05),** 表示與模型對照組比較(P<0.01) 差異有統(tǒng)計學意義
5.61 ±0.56 5.23 ±0.65 5.37 ±0.41 5.29 ±0.46△△6.90 ±0.44**7.24 ±0.50劑量分組 碳廓清吞噬指數(shù)轉(zhuǎn)基因高劑量轉(zhuǎn)基因中劑量轉(zhuǎn)基因低劑量模型對照組非轉(zhuǎn)基因組正常對照組
表9 轉(zhuǎn)基因大豆油對NK 細胞活性的影響(±s,n=10)
表9 轉(zhuǎn)基因大豆油對NK 細胞活性的影響(±s,n=10)
注:△ 表示與正常對照組比較 (P<0.05),△△表示與正常對照組比較(P<0.01),差異有統(tǒng)計學意義 * 表示與模型對照組比較(P<0.05),** 表示與模型對照組比較(P<0.01) 差異有統(tǒng)計學意義
53.46 ±4.79 53.89 ±7.46 50.49 ±8.29 49.96 ±9.11△△63.51 ±9.03**73.93 ±7.07劑量分組 NK 細胞活性(%)轉(zhuǎn)基因高劑量轉(zhuǎn)基因中劑量轉(zhuǎn)基因低劑量模型對照組非轉(zhuǎn)基因組正常對照組
目前國際上對轉(zhuǎn)基因食品安全風險評估,大多采納由歐洲經(jīng)濟發(fā)展組織(OECD)提出的“實質(zhì)等同”原則,即轉(zhuǎn)基因食品成分與現(xiàn)有的傳統(tǒng)食物成分大體等同,那么它們就被視為具有等同的安全性。 而該原則從其頒布之始,就因?qū)嶒灁?shù)據(jù)不足等科學方法缺陷備受爭論[7,8]。國內(nèi)有學者指出在傳統(tǒng)毒理學方法評價轉(zhuǎn)基因食品的過程中,使用處在快速生長期的健康實驗動物,不能代表整體人群的健康狀況;喂養(yǎng)實驗動物的AIN-93 標準配方飼料,屬于高營養(yǎng)飼料,其營養(yǎng)水平(蛋白含量達20%)高于人類普遍營養(yǎng)水平; 高營養(yǎng)水平一方面促進了機體的解毒效應(yīng),另一方面使受試物營養(yǎng)缺陷等負面效應(yīng)也被掩蓋[9]。 龍偉等[10]將轉(zhuǎn)基因和非轉(zhuǎn)基因大豆油分別給予使用純玉米飼養(yǎng)的小鼠,結(jié)果顯示轉(zhuǎn)基因大豆油組小鼠免疫器官指數(shù)均低于非轉(zhuǎn)基因大豆油組,但該研究并未報道受試動物具體免疫功能的改變。
為了評估轉(zhuǎn)基因大豆油對特殊人群免疫功能的影響,本次研究使用特定的低營養(yǎng)配方飼料建立動物模型,由表1~9 可見實驗期間模型對照組體重增長明顯低于正常對照組;除了一般表現(xiàn)外,模型對照組小鼠在實驗?zāi)┢谂K器指數(shù)、細胞免疫功能、體液免疫功能、 巨噬細胞吞噬功能、NK 細胞活性均低于正常對照組(P<0.01),符合因營養(yǎng)不良[11]引起免疫力下降的特征,因此動物模型成立。
本次實驗結(jié)果顯示,轉(zhuǎn)基因大豆油高劑量組末期體重、總體重增長、胸腺指數(shù)均高于模型對照組(P<0.05),因此提示高劑量組受試對動物胸腺有營養(yǎng)支持作用。 通過遲發(fā)變態(tài)反應(yīng)試驗和淋巴細胞轉(zhuǎn)化試驗檢測了各劑量組動物的細胞免疫功能,由表3、4 可見轉(zhuǎn)基因大豆油高劑量組遲發(fā)變態(tài)反應(yīng)和淋巴細胞轉(zhuǎn)化能力均高于模型對照組 (P<0.01), 提示高劑量組受試物對細胞免疫功能有促進作用。
由于在前期預(yù)實驗中觀察到部分高劑量組受試動物出現(xiàn)大便稀溏現(xiàn)象,而中、低劑量未出現(xiàn)此情況,所以我們在正式實驗中設(shè)置了非轉(zhuǎn)基因大豆油組,灌胃容量參照轉(zhuǎn)基因大豆油高劑量組,將實驗結(jié)果和模型對照組比較,以此排除大豆油本身對試驗的不良影響;我們觀察到非轉(zhuǎn)基大豆油組同樣具有提高胸腺指數(shù)和促進細胞免疫的作用(見表1-4),同時由表7~9 可見,非轉(zhuǎn)基大豆油組巨噬細胞吞噬功能[12]和NK 細胞活性[13]均高于模型對照組,差異有顯著性(P<0.01);NK 細胞活力和單核細胞的吞噬能力是衡量機體非特異性免疫功能的重要指標,提示非轉(zhuǎn)基大豆油組動物的非特異性免疫功能也有提升。
胸腺是T 淋巴細胞增殖和分化的場所[14],胸腺微環(huán)境也是T 淋巴細胞選擇性發(fā)育的重要條件。 T淋巴細胞中的Th1、Th2 亞群都是遲發(fā)型變態(tài)反應(yīng)的效應(yīng) T 細胞, 同時 Th1 亞群還分泌 IFN-r、IL-2等細胞因子增強細胞介導的抗感染免疫,IFN-r 可增強巨噬細胞的吞噬功能,IFN-r、IL-2 可增強NK細胞的活性。 綜合以上實驗結(jié)果,我們認為轉(zhuǎn)基因大豆油和非轉(zhuǎn)基因大豆油都對受試動物胸腺有營養(yǎng)支持作用,對受試動物的細胞免疫功能都能起到一定促進作用,但非轉(zhuǎn)基因大豆油效果更好;本次研究未觀察到轉(zhuǎn)基因大豆油對受試動物其它免疫功能產(chǎn)生不良影響。
近年來我國對轉(zhuǎn)基因食品加大監(jiān)管力度[15-17],但消費者的疑慮、反對聲一直不斷[18,19],世界衛(wèi)生組織(WHO)也認為,國際上生物安全方面的評估技術(shù)尚不成熟,研究更加嚴謹科學的評價方法是消除公眾疑慮及促進轉(zhuǎn)基因事業(yè)健康發(fā)展的關(guān)鍵所在。 本次研究建立了低營養(yǎng)水平動物模型,該造模方法與傳統(tǒng)腹腔注射免疫抑制劑[20]建立動物模型相比具有:操作簡單、重復(fù)性好、減少動物機會感染等優(yōu)點,能更好地模擬現(xiàn)實生活中特殊人群的實際情況。 本次研究為評價轉(zhuǎn)基因大豆油對免疫系統(tǒng)的營養(yǎng)效應(yīng)以及指導人群合理食用提供了實驗參考數(shù)據(jù);為科研人員更安全地開發(fā)轉(zhuǎn)基因產(chǎn)品提供了新的思路。