李文玲 陳伯華 徐新 王靜 吉順莉 高捷 殷曉芹 孟相營(yíng)
(南通大學(xué) 1附屬醫(yī)院藥劑科,江蘇 南通 226001;2附屬瑞慈醫(yī)院藥劑科)
阿爾茨海默病(AD)是一種以進(jìn)行性記憶喪失和認(rèn)知功能障礙為特征的慢性神經(jīng)退行性疾病,約占所有癡呆病例的60%〔1〕。AD的病理學(xué)改變包括淀粉樣病變、細(xì)胞內(nèi)神經(jīng)纖維纏結(jié)、小膠質(zhì)細(xì)胞活化和大量神經(jīng)元死亡〔2〕。據(jù)統(tǒng)計(jì),2015年全球約3 500萬(wàn)人患有AD,已造成嚴(yán)重的社會(huì)和經(jīng)濟(jì)負(fù)擔(dān)〔3〕。但AD發(fā)病機(jī)制尚不明確,且至今也未發(fā)現(xiàn)有效的AD治療藥物和策略。長(zhǎng)鏈非編碼(Lnc)RNA是一類(lèi)新型的非編碼RNA,具有廣泛的生物學(xué)調(diào)控和修飾功能〔4〕。近年來(lái),LncRNA在AD中的作用逐漸被揭示。LncRNA早期B細(xì)胞因子3反義RNA(EBF3-AS)在AD患者的腦組織中表達(dá)異常,具有促進(jìn)AD模型細(xì)胞凋亡的作用〔5〕;LncRNA核富集轉(zhuǎn)錄本(NEAT)1通過(guò)靶向miR-107可加劇β淀粉樣蛋白對(duì)AD神經(jīng)元的損傷〔6〕。李蒙蒙〔7〕采用基因芯片技術(shù)篩選AD差異表達(dá)LncRNA發(fā)現(xiàn),lncRNA鋅指蛋白ZBTB20反義RNA1(ZBTB20-AS1)在AD細(xì)胞模型中表達(dá)上調(diào),但ZBTB20-AS1在AD進(jìn)展中的作用尚未可知。β淀粉樣蛋白(Aβ)25~35可引起神經(jīng)毒性和氧化應(yīng)激,其誘導(dǎo)的神經(jīng)細(xì)胞損傷是研究AD的常用模型〔8〕。本研究旨在闡明ZBTB20-AS1在AD進(jìn)展中的作用和分子機(jī)制。
1.1實(shí)驗(yàn)材料 人神經(jīng)母細(xì)胞瘤細(xì)胞SH-SY5Y購(gòu)于美國(guó)ATCC;DMEM培養(yǎng)液和胎牛血清購(gòu)于美國(guó)Hyclone公司;青鏈霉素溶液、噻唑藍(lán)(MTT)試劑盒及膜聯(lián)蛋白V-異硫氰酸熒光素(Annexin V-FITC)/碘化丙啶(PI)細(xì)胞凋亡檢測(cè)試劑盒購(gòu)于北京索萊寶生物科技有限公司;Aβ25~35購(gòu)于美國(guó)Sigma公司;si-con、si-ZBTB20-AS1、miR-con、miR-132-3p mimics、si-MAPT、pcDNA-con、pcDNA-MAPT、WT-ZBTB20-AS1、MUT-ZBTB20-AS1、WT--MAPT、MUT-MAPT的設(shè)計(jì)和構(gòu)建由廣西銳博生物科技有限公司提供;TRIzol試劑購(gòu)于美國(guó)Invitrogen公司;PrimeScript反轉(zhuǎn)錄試劑盒、miRNA cDNA第一鏈合成試劑盒及有關(guān)定量PCR試劑盒購(gòu)于大連Takara生物科技有限公司;聚偏二氟乙烯(PVDF)膜和二喹啉甲酸(BCA)試劑盒購(gòu)于上海碧云天生物科技有限公司;兔源MAPT抗體、兔源細(xì)胞周期蛋白(Cyclin)D1抗體、兔源活化的半胱氨酸天冬氨酸蛋白酶(Cleaved caspase)-3抗體、鼠源β-actin抗體及辣根過(guò)氧化物酶(HRP)標(biāo)記的Ⅱ抗均購(gòu)于美國(guó)Abcam公司;增強(qiáng)型ECL化學(xué)發(fā)光檢測(cè)試劑盒購(gòu)于南京諾唯贊生物科技有限公司。
1.2細(xì)胞培養(yǎng)和處理 采用胎牛血清含量為10%、青霉素含量為100 U/ml和鏈霉素含量為100 μg/ml的DMEM培養(yǎng)基,在37℃、CO2體積分?jǐn)?shù)為5%的濕化細(xì)胞培養(yǎng)箱培養(yǎng)SH-SY5Y細(xì)胞。采用20 μmol/L的Aβ25~35處理SK-N-SH細(xì)胞構(gòu)建AD細(xì)胞模型〔7〕。采用脂質(zhì)體轉(zhuǎn)染法進(jìn)行細(xì)胞轉(zhuǎn)染。將生長(zhǎng)狀態(tài)良好的SH-SY5Y細(xì)胞按照每孔2×105個(gè)細(xì)胞的密度接種于6孔板,利用LipofectamineTM2000將si-con、si-ZBTB20-AS1、miR-con、miR-132-3p mimics、si-MAPT分別轉(zhuǎn)染至生長(zhǎng)匯合度為50%的SH-SY5Y細(xì)胞,轉(zhuǎn)染48 h檢測(cè)轉(zhuǎn)染效果,進(jìn)行細(xì)胞活力和凋亡情況檢測(cè)。為進(jìn)一步證實(shí)ZBTB20-AS1調(diào)控miR-132-3p/MAPT軸參與對(duì)Aβ25~35誘導(dǎo)的SK-N-SH細(xì)胞活力和凋亡的調(diào)控,將si-ZBTB20-AS1分別與anti-miR-132-3p、anti-miR-con、pcDNA-MAPT或pcDNA-con分別共轉(zhuǎn)染至SK-N-SH細(xì)胞,經(jīng)Aβ25~35處理后,檢測(cè)SK-N-SH細(xì)胞活力和凋亡情況。
1.3實(shí)驗(yàn)分組 實(shí)驗(yàn)分為以下幾組:NC組、Aβ25~35組、Aβ25~35+si-con組、Aβ25~35+si-ZBTB20-AS1組、Aβ25~35+miR-con組、Aβ25~35+miR-132-3p組、Aβ25~35+si-con組、Aβ25~35+si-MAPT組、Aβ25~35+si-ZBTB20-AS1+anti-miR-con組、Aβ25~35+si-ZBTB20-AS1+anti-miR-132-3p組、Aβ25~35+si-ZBTB20-AS1+pcDNA-con組和Aβ25~35+si-ZBTB20-AS1+pcDNA-MAPT組。NC組為正常培養(yǎng)的SK-N-SH細(xì)胞。
1.4RT-qPCR檢測(cè) 采用TRIzol試劑提取各組細(xì)胞總RNA,測(cè)定其濃度和純度。為檢測(cè)ZBTB20-AS1和MAPT的表達(dá)水平,利用PrimeScript反轉(zhuǎn)錄試劑盒將RNA逆轉(zhuǎn)錄為cDNA;為檢測(cè)miR-132-3p,使用miRNA cDNA第一鏈合成試劑盒進(jìn)行逆轉(zhuǎn)錄;采用TB Green Fast qPCR Mix在ABI7900進(jìn)行熒光定量PCR擴(kuò)增。用2-ΔΔCt法計(jì)算基因的相對(duì)表達(dá)水平。ZBTB20-AS1和MAPT的檢測(cè)以β-actin為內(nèi)參,miR-132-3p的檢測(cè)以U6為內(nèi)參。引物序列(5′-3′):ZBTB20-AS1上游引物TTAGCCATTGTACAGTTTGTGAAA,下游引物TCCTGAGGACTTTTGCTTGTCA;MAPT上游引物CCAAGTGTGGCTCAT TAGGCA,下游引物GCAATGTTGGACTGGACTCTGT;β-actin上游引物:GAAGTGTGACGTGGACATC-C,下游引物CCGATCCACACGGAGTACTT;miR-132-3p上游引物GCAACGTAACAGTC-TACAGCC,下游引物CCAGTGCAGGGTCCGAGGTA;U6上游引物CTCGCTTCGGCAG-CACA,下游引物AACGCTTCACGAATTTGCGT。
1.5雙熒光素酶報(bào)告基因檢測(cè) Starbase在線預(yù)測(cè)顯示,ZBTB20-AS1和MAPT的3′-UTR含有miR-132-3p的結(jié)合位點(diǎn)。猜測(cè)ZBTB20-AS1和MAPT與miR-132-3p之間存在靶向調(diào)控關(guān)系并進(jìn)行驗(yàn)證。將miR-132-3p mimics和miR-con分別與野生型熒光素酶報(bào)告基因載體WT-ZBTB20-AS1(或者WT-MAPT)和突變型熒光素酶報(bào)告基因載體MUT-ZBTB20-AS1(或者M(jìn)UT-MAPT)共轉(zhuǎn)染至轉(zhuǎn)染SH-SY5Y細(xì)胞,轉(zhuǎn)染48 h,收集各組細(xì)胞,采用雙熒光素酶報(bào)告基因檢測(cè)系統(tǒng)進(jìn)行熒光素酶活性檢測(cè)。
1.6MTT法檢測(cè)細(xì)胞活力 將SH-SY5Y細(xì)胞按照每孔2×104個(gè)細(xì)胞的密度接種于96孔板,按照1.3實(shí)驗(yàn)分組進(jìn)行干預(yù)處理后,每孔加入20 μl的MTT試劑(5 mg/ml)室溫下孵育4 h,棄去培養(yǎng)基后,每孔加入150 μl的DMSO,室溫孵育2 h,當(dāng)結(jié)晶完全溶解后,使用酶標(biāo)儀測(cè)定490 nm波長(zhǎng)處各孔的吸光度值。
1.7流式細(xì)胞術(shù)檢測(cè)細(xì)胞凋亡 收集按照1.3實(shí)驗(yàn)分組進(jìn)行干預(yù)處理的SH-SY5Y細(xì)胞,采用磷酸鹽緩沖液(PBS)漂洗細(xì)胞2次,隨后加入1倍結(jié)合緩沖液重懸細(xì)胞,調(diào)整細(xì)胞濃度。取100 μl細(xì)胞懸液(細(xì)胞數(shù)約為1×105)加入流式管內(nèi),室溫避光條件加入5 μl的Annexin V-FITC,混勻10 min,加入5 μl的PI,室溫避光孵育5 min后,補(bǔ)加1倍結(jié)合緩沖液至500 μl,混勻后,1 h內(nèi)采用流式細(xì)胞儀檢測(cè)細(xì)胞凋亡情況。
1.8Western印跡檢測(cè) 采用預(yù)冷的PBS液洗滌按照1.3實(shí)驗(yàn)分組進(jìn)行干預(yù)處理的SH-SY5Y細(xì)胞,RIPA裂解緩沖液SH-SY5Y細(xì)胞,12 000 r/min離心5 min,采用BCA試劑盒對(duì)細(xì)胞上清液中總蛋白進(jìn)行定量。取適量細(xì)胞蛋白與上樣緩沖液等體積混合,經(jīng)煮沸變性后直接上樣至凝膠加樣孔進(jìn)行十二烷基磺酸鈉(SDS)-聚丙烯酰胺凝膠電泳(PAGE)分離細(xì)胞蛋白。利用濕法轉(zhuǎn)膜轉(zhuǎn)至將細(xì)胞蛋白轉(zhuǎn)移至聚偏氟乙烯(PVDF)膜,室溫條件下用5%脫脂牛奶封閉1 h,分別加入已稀釋的MAPT抗體、CyclinD1抗體、Cleaved-caspase-3抗體、β-actin抗體4℃孵育過(guò)夜,然后與HRP標(biāo)記的Ⅱ抗室溫孵育2 h,利用增強(qiáng)型化學(xué)發(fā)光試劑盒進(jìn)行顯影,放于X光膠片暗盒內(nèi)曝光后,圖像處理軟件分析目的條帶的灰度值。
1.9統(tǒng)計(jì)學(xué)方法 采用SPSS18.0軟件進(jìn)行t檢驗(yàn)、單因素方差分析、SNK-q檢驗(yàn)。
2.1LncRNA ZBTB20-AS1、miR-132-3p和MAPT在AD細(xì)胞模型中的表達(dá) 表1和圖1顯示,與NC組比較,AD細(xì)胞模型(Aβ25~35組)中LncRNA ZBTB20-AS1、MAPT mRNA和MAPT蛋白的表達(dá)水平顯著升高,miR-132-3p的表達(dá)水平顯著降低(P<0.05)。
表1 AD細(xì)胞模型中LncRNA ZBTB20-AS1、MAPT和miR-132-3p表達(dá)量
2.2LncRNA ZBTB20-AS1靶向調(diào)控miR-132-3p表達(dá),miR-132-3p靶向調(diào)控MAPT表達(dá) ZBTB20-AS1的3′-UTR和miR-132-3p存在部分連續(xù)互補(bǔ)配對(duì)的核苷酸序列,MAPT的3′-UTR和miR-132-3p存在部分連續(xù)互補(bǔ)配對(duì)的核苷酸序列,見(jiàn)圖2。表2顯示,與miR-con和WT-ZBTB20-AS1共轉(zhuǎn)染組比較,miR-132-3p mimics和WT-ZBTB20-AS1共轉(zhuǎn)染組SK-N-SH細(xì)胞對(duì)的熒光素酶活性顯著降低(P<0.05);與miR-con和MUT-ZBTB20-AS1共轉(zhuǎn)染組比較,miR-132-3p mimics和MUT-ZBTB20-AS1共轉(zhuǎn)染組SK-N-SH細(xì)胞對(duì)的熒光素酶活性變化差異無(wú)統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P>0.05)。表3顯示,與miR-con和WT-MAPT共轉(zhuǎn)染組比較,miR-132-3p mimics和WT-MAPT共轉(zhuǎn)染組SK-N-SH細(xì)胞對(duì)的熒光素酶活性顯著降低(P<0.05);與miR-con和MUT-MAPT共轉(zhuǎn)染組比較,miR-132-3p mimics和MUT-MAPT共轉(zhuǎn)染組SK-N-SH細(xì)胞對(duì)的熒光素酶活性變化差異無(wú)統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P>0.05)。以上結(jié)果提示,miR-132-3p是ZBTB20-AS1的靶基因,MAPT是miR-132-3p的靶基因。
表3 雙熒光素酶報(bào)告基因?qū)嶒?yàn)驗(yàn)證miR-132-3p和MAPT的靶向關(guān)系
A:starbase對(duì)miR-132-3p和LncRNA ZBTB20-AS1結(jié)合進(jìn)行預(yù)測(cè);B:starbase對(duì)MAPT和miR-132-3p結(jié)合進(jìn)行預(yù)測(cè)圖2 LncRNA ZBTB20-AS1靶向調(diào)控miR-132-3p表達(dá),miR-132-3p靶向調(diào)控MAPT表達(dá)
表2 雙熒光素酶報(bào)告基因?qū)嶒?yàn)驗(yàn)證ZBTB20-AS1和miR-132-3p的靶向關(guān)系
2.3沉默ZBTB20-AS1對(duì)Aβ25~35誘導(dǎo)的SK-N-SH細(xì)胞增殖、凋亡及miR-132-3p和MAPT表達(dá)的影響 與NC組比較,Aβ25~35組SK-N-SH細(xì)胞ZBTB20-AS1和MAPT的表達(dá)水平顯著升高,miR-132-3p的表達(dá)水平顯著降低,Cleaved-caspase-3蛋白的表達(dá)水平顯著升高,CyclinD1蛋白的表達(dá)水平顯著降低,細(xì)胞增殖活力顯著降低,細(xì)胞凋亡率顯著升高(均P<0.05);與Aβ25~35+si-con組比較,Aβ25~35+si-ZBTB20-AS1組SK-N-SH細(xì)胞ZBTB20-AS1和MAPT的表達(dá)水平顯著降低,miR-132-3p的表達(dá)水平顯著升高,Cleaved-caspase-3蛋白的表達(dá)水平顯著降低,CyclinD1蛋白的表達(dá)水平顯著升高,細(xì)胞增殖活力顯著升高,細(xì)胞凋亡率顯著降低(P<0.05)。見(jiàn)表4、圖3。提示沉默ZBTB20-AS1可促進(jìn)miR-132-3p表達(dá),抑制MAPT表達(dá),促進(jìn)SK-N-SH細(xì)胞增殖,抑制Aβ25~35誘導(dǎo)的SK-N-SH細(xì)胞凋亡。
表4 沉默ZBTB20-AS1對(duì)Aβ25~35誘導(dǎo)的SK-N-SH細(xì)胞增殖、凋亡及相關(guān)蛋白表達(dá)的影響
1~4:NC組、Aβ25~35組、Aβ25~35+si-con組、Aβ25~35+si-ZBTB20-AS1組圖3 沉默ZBTB20-AS1對(duì)AD細(xì)胞CyclinD1、Cleaved-caspase-3和MAPT蛋白表達(dá)的影響
2.4過(guò)表達(dá)miR-132-3p對(duì)Aβ25~35誘導(dǎo)的SK-N-SH細(xì)胞增殖、凋亡及MAPT表達(dá)的影響 圖4和表5顯示,與NC組比較,Aβ25~35組SK-N-SH細(xì)胞miR-132-3p和CyclinD1的表達(dá)水平顯著降低,MAPT和Cleaved-caspase-3的表達(dá)水平顯著升高,細(xì)胞增殖活力顯著降低,細(xì)胞凋亡率顯著升高(均P<0.05);與Aβ25~35+miR-con組比較,Aβ25~35+miR-132-3p組
表5 過(guò)表達(dá)miR-132-3p對(duì)Aβ25~35誘導(dǎo)的SK-N-SH細(xì)胞增殖、凋亡及相關(guān)蛋白表達(dá)的影響
SK-N-SH細(xì)胞miR-132-3p和CyclinD1的表達(dá)水平顯著升高,MAPT和Cleaved-caspase-3的表達(dá)水平顯著降低,細(xì)胞增殖活力顯著升高,細(xì)胞凋亡率顯著降低(P<0.05)。提示,過(guò)表達(dá)miR-132-3p可抑制MAPT表達(dá),促進(jìn)SK-N-SH細(xì)胞增殖,抑制Aβ25~35誘導(dǎo)的SK-N-SH細(xì)胞凋亡。
1~4:NC組、Aβ25~35組、Aβ25~35+miR-con組Aβ25~35+miR-132-3p組圖4 過(guò)表達(dá)miR-132-3p后各組Western印跡檢測(cè)MAPT、CyclinD1、Cleaved-caspase-3蛋白的表達(dá)
2.5沉默MAPT對(duì)Aβ25~35誘導(dǎo)的SK-N-SH細(xì)胞增殖和凋亡的影響 表6和圖5顯示,與NC組比較,Aβ25~35組SK-N-SH細(xì)胞MAPT和Cleaved-caspase-3的表達(dá)水平顯著升高,CyclinD1的表達(dá)水平顯著降低,細(xì)胞增殖活力顯著降低,細(xì)胞凋亡率顯著升高(P<0.05);與Aβ25~35+si-con組比較,Aβ25~35+si-MAPT組SK-N-SH細(xì)胞MAPT和Cleaved-caspase-3的表達(dá)水平顯著降低,CyclinD1的表達(dá)水平顯著升高,細(xì)胞增殖活力顯著升高,細(xì)胞凋亡率顯著降低(P<0.05)。
表6 沉默MAPT對(duì)Aβ25~35誘導(dǎo)的SK-N-SH細(xì)胞增殖和凋亡及相關(guān)蛋白表達(dá)的影響
圖5 Western印跡檢測(cè)MAPT、CyclinD1、Cleaved-caspase-3蛋白的表達(dá)
2.6抑制miR-132-3p表達(dá)可部分逆轉(zhuǎn)沉默ZBTB20-AS1對(duì)Aβ25~35誘導(dǎo)的SK-N-SH細(xì)胞的增殖和凋亡的影響 圖6和表7顯示,與Aβ25~35+si-con組比較,Aβ25~35+si-ZBTB20-AS1組SK-N-SH細(xì)胞miR-132-3p和CyclinD1的表達(dá)水平顯著升高,Cleaved-caspase-3的表達(dá)水平顯著降低,細(xì)胞增殖活力顯著升高,細(xì)胞凋亡率顯著降低(P<0.05);與Aβ25~35+si-ZBTB20-AS1+anti-miR-con組比較,Aβ25~35+si-ZBTB20-AS1+anti-miR-132-3p組SK-N-SH細(xì)胞miR-132-3p和CyclinD1的表達(dá)水平顯著降低,Cleaved-caspase-3的表達(dá)水平顯著升高,細(xì)胞增殖活力顯著降低,細(xì)胞凋亡率顯著升高(P<0.05)。提示,抑制miR-132-3p表達(dá)可部分逆轉(zhuǎn)沉默ZBTB20-AS1對(duì)Aβ25~35誘導(dǎo)的SK-N-SH細(xì)胞的增殖和凋亡的影響。
表7 抑制miR-132-3p表達(dá)可部分逆轉(zhuǎn)沉默ZBTB20-AS1對(duì)Aβ25~35誘導(dǎo)的SK-N-SH細(xì)胞的增殖和凋亡和相關(guān)蛋白表達(dá)的影響
1~4:Aβ25~35+si-con組、Aβ25~35+si-ZBTB20-AS1組、Aβ25~35+si-ZBTB20-AS1+anti-miR-con組、Aβ25~35+si-ZBTB20-AS1+anti-miR-132-3p組圖6 Western印跡檢測(cè)抑制miR-132-3p表達(dá)后各組細(xì)胞CyclinD1、Cleaved-caspase-3蛋白表達(dá)
2.7過(guò)表達(dá)MAPT可部分逆轉(zhuǎn)沉默ZBTB20-AS1對(duì)Aβ25~35誘導(dǎo)的SK-N-SH細(xì)胞的增殖和凋亡的影響 表8和圖7可見(jiàn),與Aβ25~35+si-con組比較,Aβ25~35+si-ZBTB20-AS1組SK-N-SH細(xì)胞MAPT和Cleaved-caspase-3的表達(dá)水平顯著降低,CyclinD1的表達(dá)水平顯著升高,細(xì)胞增殖活力顯著升高,細(xì)胞凋亡率顯著降低(P<0.05);與Aβ25~35+si-ZBTB20-AS1+pcDNA-con組比較,Aβ25~35+si-ZBTB20-AS1+pcDNA-MAPT組SK-N-SH細(xì)胞MAPT和Cleaved-caspase-3的表達(dá)水平顯著升高,CyclinD1的表達(dá)水平顯著降低,細(xì)胞增殖活力顯著降低,細(xì)胞凋亡率顯著升高(P<0.05)。提示,過(guò)表達(dá)MAPT可以部分逆轉(zhuǎn)沉默ZBTB20-AS1對(duì)Aβ25~35誘導(dǎo)的SK-N-SH細(xì)胞的增殖和凋亡的影響。
表8 過(guò)表達(dá)MAPT可部分逆轉(zhuǎn)沉默ZBTB20-AS1對(duì)Aβ25~35誘導(dǎo)的SK-N-SH細(xì)胞增殖和凋亡和相關(guān)蛋白表達(dá)的影響
1~4:Aβ25~35+si-con組、Aβ25~35+si-ZBTB20-AS1組、Aβ25~35+si-ZBTB20-AS1+pcDNA-con組、Aβ25~35+si-ZBTB20-AS1+pcDNA-MAPT組圖7 Western印跡檢測(cè)MAPT、CyclinD1、Cleaved-caspase-3蛋白表達(dá)
與李蒙蒙〔7〕研究結(jié)果相一致,本研究結(jié)果提示,ZBTB20-AS1的表達(dá)異常與AD的進(jìn)展密切相關(guān),這是首次關(guān)于ZBTB20-AS1基因功能的報(bào)道。
lncRNA作為與miRNA競(jìng)爭(zhēng)性內(nèi)源RNA發(fā)揮作用是其最重要的調(diào)控機(jī)制之一。本文結(jié)果顯示miR-132-3p是ZBTB20-AS1的潛在靶基因。miR-132-3p隸屬于miR-132/-212簇,已有研究發(fā)現(xiàn),miR-132-3p參與調(diào)節(jié)突觸活性和可塑性〔9,10〕;miR-132-3p還可調(diào)節(jié)神經(jīng)元生長(zhǎng),介導(dǎo)新生神經(jīng)元在成年海馬和齒狀回中的整合〔11〕;此外,miR-132-3p與突觸結(jié)構(gòu)形成和視覺(jué)皮質(zhì)可塑性有關(guān)〔12〕。本研究顯示,在AD模型細(xì)胞中miR-132-3p的表達(dá)水平顯著降低,與前人miR-132-3p在AD患者海馬區(qū)和前額葉皮質(zhì)表達(dá)下調(diào)的結(jié)論相吻合〔13,14〕。進(jìn)一步研究發(fā)現(xiàn),過(guò)表達(dá)miR-132-3p能夠減緩Aβ25~35對(duì)SK-N-SH細(xì)胞活力和凋亡的影響,ZBTB20-AS1可靶向負(fù)調(diào)控miR-132-3p表達(dá),沉默ZBTB20-AS1通過(guò)靶向miR-132-3p可提高SK-N-SH細(xì)胞增殖活力,抑制Aβ25~35誘導(dǎo)的SK-N-SH細(xì)胞凋亡。
MAPT是神經(jīng)微管相關(guān)蛋白Tau的編碼基因,而Tau蛋白在神經(jīng)元中的堆積是AD公認(rèn)的病理標(biāo)志之一〔15〕。既往研究表明,AD患者血漿和腦脊液中Tau蛋白表達(dá)水平增加,Tau蛋白表達(dá)水平是預(yù)測(cè)AD的發(fā)生與進(jìn)展的生物學(xué)標(biāo)志〔16〕。本研究結(jié)果提示,沉默ZBTB20-AS1通過(guò)調(diào)控miR-132-3p/MAPT軸可拮抗Aβ25~35誘導(dǎo)的SK-N-SH細(xì)胞凋亡。然而,在未來(lái)研究中,ZBTB20-AS1在AD中的作用還需要進(jìn)一步的體內(nèi)研究和臨床研究來(lái)證實(shí)。