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    從消毒前后肉雞場空舍期細(xì)菌群落組成探討不同籠養(yǎng)模式的優(yōu)缺點(diǎn)

    2020-08-14 06:23:44孫秋艷林婷婷杜燕李叢叢夏慶祥李舫
    畜牧與獸醫(yī) 2020年8期
    關(guān)鍵詞:雞場雞舍群落

    孫秋艷,林婷婷,杜燕,李叢叢,夏慶祥,李舫*

    (1. 山東畜牧獸醫(yī)職業(yè)學(xué)院,山東省畜禽抗菌藥物使用減量化工程技術(shù)研究中心,山東 濰坊 261061;2. 青島農(nóng)業(yè)大學(xué)動(dòng)物科技學(xué)院,山東 青島 266109)

    家禽養(yǎng)殖業(yè)中,養(yǎng)殖場內(nèi)環(huán)境的控制是最重要的環(huán)節(jié),細(xì)菌可形成微生物氣溶膠。許多病原微生物可通過微生物氣溶膠進(jìn)行傳播[1-2],因此控制微生物氣溶膠傳播的常用方法就是消毒[3-4]。但是不同的消毒模式對(duì)消毒效果影響較大,理想的消毒模式具有較好的殺死病原微生物的能力,能有效保持雞場的環(huán)境衛(wèi)生。當(dāng)今我國肉雞養(yǎng)殖籠養(yǎng)模式非常多,有標(biāo)準(zhǔn)化籠養(yǎng)模式,也有地面平養(yǎng)模式和網(wǎng)上平養(yǎng)模式改成籠養(yǎng)模式的。本研究采用FA-3型氣溶膠粒度分布采樣器,對(duì)山東標(biāo)準(zhǔn)化籠養(yǎng)、網(wǎng)上平養(yǎng)和地面平養(yǎng)改建籠養(yǎng)的肉雞場,其空舍期消毒前后進(jìn)行空氣細(xì)菌采樣。應(yīng)用Illumina HiSeq PE250雙末端測序法[5-6],對(duì)細(xì)菌16S rDNA的V3~V4區(qū)進(jìn)行測序,使用Qiime軟件對(duì)細(xì)菌群落組成進(jìn)行分析,探討不同籠養(yǎng)模式的優(yōu)缺點(diǎn),分析空舍期消毒劑的有效性,以形成指導(dǎo)家禽生產(chǎn)的籠養(yǎng)模式的生物安全技術(shù)規(guī)程。

    1 材料與方法

    1.1 材料和設(shè)備

    FA-3型(是型號(hào))氣溶膠粒度分布采樣器、玻璃纖維濾膜為遼陽市康潔儀器研究所產(chǎn)品。

    1.2 雞舍情況

    分別在山東濰坊諸城(Z)、安丘(A)、昌邑(X)各選取一個(gè)籠養(yǎng)肉雞場進(jìn)行采樣,養(yǎng)殖模式均為3層立體籠養(yǎng),其中雞場X是標(biāo)準(zhǔn)化籠養(yǎng)雞場, Z雞場是地面平養(yǎng)改建,A雞場是地面網(wǎng)養(yǎng)改建。采樣時(shí)室外溫度均為24~29 ℃,濕度均為55%~70%。

    1.3 消毒模式

    第1次消毒:清水沖洗后,1∶500戊二醛癸甲溴銨消毒液噴灑消毒雞舍。

    第2次消毒:固體甲醛2 g/ m3舍熏蒸消毒12 h,然后再密閉12 h;第3次消毒:0.5%戊二醛噴灑消毒。

    1.4 樣品采集

    樣品采集用3點(diǎn)采樣法。采樣位置分別為舍內(nèi)對(duì)角線中心中點(diǎn)、離對(duì)角線中心中點(diǎn)12 m 等距的2 個(gè)點(diǎn)(見圖1)。在距地面1.2 m處,用FA-3型氣溶膠粒度分布采樣器(氣流速度28.3 L/min,驅(qū)動(dòng)時(shí)間1 h),采集空舍期消毒前和消毒后的樣品,雞糞清理沖洗完作為消毒前樣品數(shù)據(jù),消毒后72 h采樣作為消毒后樣品數(shù)據(jù)。因此諸城(Z)雞場消毒前為Z1,消毒后為Z2;安丘(A)雞場消毒前為A1,消毒后為A2;昌邑(X)雞場消毒前為X1,消毒后為X2。樣品采集時(shí),采樣人員與雞場工作人員均遠(yuǎn)離采樣器。將3個(gè)采樣點(diǎn)的8層吸附有樣品的玻璃纖維濾膜混在一起裝入無菌封口聚乙烯袋中,做好標(biāo)記,0 ℃帶回實(shí)驗(yàn)室,冷凍備用。

    圖1 3個(gè)舍的采樣點(diǎn)位置

    1.5 DNA提取與測序

    將不同時(shí)間采集的8層玻璃纖維濾膜,用PBS作為溶解液進(jìn)行合并溶解后作為一個(gè)樣本。濃縮含有微生物的溶解液,采用十六烷基三甲基溴化銨(CTAB)法對(duì)樣本的基因組DNA 進(jìn)行提取,提取的樣本DNA送至北京諾禾致源科技有限公司,應(yīng)用Illumina HiSeq PE250雙末端測序法,對(duì)細(xì)菌16S rDNA的V3~V4區(qū)(341F~806R)進(jìn)行測序。

    1.6 數(shù)據(jù)分析處理

    對(duì)Illumina測序的序列進(jìn)行拼接、過濾、質(zhì)控、剔除嵌合體,最終得到有效數(shù)據(jù)(Effective Tags)。用Uparse軟件,對(duì)所有樣品在97%相似度下的有效數(shù)據(jù)聚類并作為分類操作單元(Operational Taxonomic Units,OTUs),用Mothur方法與SILVA的SSUrRNA數(shù)據(jù)庫進(jìn)行物種注釋,分析統(tǒng)計(jì)各樣本的群落組成。使用Qiime軟件計(jì)算樣品的Chao1指數(shù)、Shannon指數(shù)、Simpson指數(shù)、ACE指數(shù)、譜系多樣性指數(shù)(Phylogenetic diversity,PD)、指數(shù)的Alpha多樣性(Alpha Diversity)值[7],進(jìn)行Beta多樣性(Beta Diversity)組間差異分析。

    2 結(jié)果

    2.1 樣品測序結(jié)果

    對(duì)籠養(yǎng)肉雞舍空舍期空氣中細(xì)菌16S rDNA基因的V3~V4區(qū)(341F~806R)進(jìn)行測序,序列信息見表1。從OUT的個(gè)數(shù)可以看出,雞場Z、A、X 的OTUs消毒后均比消毒前有所降低。消毒效果最好的是X雞場,其次是A雞場,最后是Z雞場。

    表1 樣本的序列信息

    2.2 細(xì)菌群落的α多樣性分析

    2.2.1 取樣深度驗(yàn)證

    稀釋曲線(Rarefaction Curve)是以隨機(jī)抽取的序列數(shù)據(jù)為橫坐標(biāo),序列對(duì)應(yīng)OTUs的數(shù)目為縱坐標(biāo)構(gòu)建的曲線,可直接反映測序數(shù)據(jù)量是否合理,還可間接反映樣品中物種的豐富程度。6個(gè)樣品的稀釋曲線如圖2所示,曲線已趨向平坦,說明測序數(shù)據(jù)量漸接近合理,可以反映樣品中絕大多數(shù)的微生物信息,再增大數(shù)據(jù)量對(duì)新物種的發(fā)現(xiàn)貢獻(xiàn)很小,因此,此次測序的結(jié)果可代表樣品的真實(shí)情況。

    圖2 6個(gè)樣品的稀釋曲線

    2.2.2 細(xì)菌群落的α多樣性指數(shù)分析

    α多樣性指數(shù)分析是通過Shannon、Simpson、Chao1、ACE和PD指數(shù),對(duì)單個(gè)樣品中物種多樣性的分析。其中,Shannon指數(shù)是指綜合物種豐度和物種均勻度兩方面因素的多樣性指數(shù),其值越大表明樣品中物種的多樣性越高;Simpson指數(shù)體現(xiàn)樣品中物種豐度指數(shù),其值越大表明樣品中物種的多樣性越高;PD指數(shù)反映了物種組成的系統(tǒng)進(jìn)化特征的多樣性,其值越大則表示樣品中物種越豐富;Chao1指數(shù)和ACE指數(shù)側(cè)重于體現(xiàn)樣品中物種豐富度,其值越大則表示樣品中物種越多;取樣覆蓋率則反映了測序結(jié)果是否覆蓋了樣本物種數(shù)。由表2可以看出,Z雞場消毒后Shannon、Simpson、Chao1、ACE和PD指數(shù)均大于消毒前,說明消毒后細(xì)菌種類反而增多;A雞場和X雞場消毒后Shannon、Simpson、Chao1、ACE和PD指數(shù)均小于消毒前,但X雞場α多樣性指數(shù)降低比較大。

    表2 樣品的α多樣性指數(shù)

    2.2.3 細(xì)菌群落多樣性的花瓣圖

    圖3直觀展示了6個(gè)樣品共有6個(gè)相同的OTUs,表明消毒劑對(duì)這6個(gè)物種作用不大,消毒后A雞場OTUs數(shù)量減少,X雞場OTUs數(shù)量顯著減少,僅剩1種,Z雞場消毒后OTUs數(shù)量反而增多,表明空舍期消毒效果較好的是X雞場,其次是A雞場。

    花瓣圖中每個(gè)花瓣代表一個(gè)樣品,不同的顏色代表不同的樣品,中間的core數(shù)字代表的是所有樣品共有的OTUs數(shù)目,花瓣上的數(shù)字代表該樣品特有的OTUs數(shù)目圖3 6個(gè)樣本的花瓣圖

    2.3 細(xì)菌群落的Beta多樣性分析

    基于非加權(quán)法(unweighted unifrac)和加權(quán)法(weighted unifrac)進(jìn)行主坐標(biāo)分析(principal co-ordinates analysis, PCoA)來研究Beta多樣性,研究結(jié)果見圖4。3個(gè)雞場消毒前和消毒后細(xì)菌群落組成差異較大,多樣性具有明顯區(qū)分,從圖4中可以看出,X雞場消毒前和消毒后細(xì)菌群落組成差異最大,其次是A雞場,最后是Z雞場。

    圖4 Beta多樣性的PCoA分析

    2.4 細(xì)菌群落結(jié)構(gòu)分析

    2.4.1 門水平細(xì)菌組成分析

    各樣品在門分類水平上細(xì)菌組成分析見圖5。6個(gè)樣品共得到16種細(xì)菌類群,變形菌門(Proteobacteria)不論是在消毒前還是在消毒后均是優(yōu)勢菌群,相對(duì)豐度87.4%~99.3%,其次是厚壁菌門(Firmicutes),相對(duì)豐度0.33%~17.9%,然后是擬桿菌門(Bacteroidetes),相對(duì)豐度0.1%~8.1%,其他門含量較低。由圖5表明,X雞場消毒后細(xì)菌門水平上種類非常少,A雞場消毒后細(xì)菌種類也相應(yīng)減少,Z雞場消毒后細(xì)菌種類反而增多。

    圖5 門水平細(xì)菌組成分析

    2.4.2 屬水平細(xì)菌組成分析

    各樣品在屬分類水平上細(xì)菌組成分析見圖6。6個(gè)樣品共得到95種細(xì)菌類群,葉桿菌屬(Phyllobacterium)除A雞場消毒前外均是優(yōu)勢菌群,其次是不動(dòng)桿菌屬(Acinetobacter)和勞爾斯菌屬(Ralstonia)。由圖6表明,A雞場消毒前優(yōu)勢菌群消毒后完全消失,X雞場消毒后細(xì)菌屬水平上種類非常少,A雞場消毒后細(xì)菌種類也相應(yīng)減少,Z雞場消毒后細(xì)菌種類反而增多。

    圖6 屬水平細(xì)菌組成分析

    2.5 細(xì)菌豐度聚類分析

    為研究消毒前和消毒后禽舍空氣中細(xì)菌群落結(jié)構(gòu)的差異,根據(jù)所有樣品在屬水平的豐度信息,選取豐度排名前35的屬,從物種和樣品兩個(gè)層面進(jìn)行聚類,繪制成熱圖,結(jié)果見圖7。3個(gè)雞舍中,消毒前相對(duì)豐度最高的菌群,在消毒劑處理后明顯降低,尤其是X雞場消毒后,熱圖中未出現(xiàn)紅色方塊,表明消毒后舍內(nèi)細(xì)菌的含量非常低。但是Z雞場消毒后出現(xiàn)大面積的紅色方塊,說明Z雞場消毒后某些細(xì)菌種類開始增多。

    縱向?yàn)闃悠沸畔ⅲ瑱M向?yàn)槲锓N注釋信息;熱圖對(duì)應(yīng)的值為每一行物種相對(duì)豐度經(jīng)過標(biāo)準(zhǔn)化處理后得到的Z值,即一個(gè)樣品在某個(gè)分類上的Z值為樣品在該分類上的相對(duì)豐度和所有樣品在該分類的平均相對(duì)豐度的差除以所有樣品在該分類上的標(biāo)準(zhǔn)差所得到的值。顏色越紅表明豐度越高圖7 微生物聚類熱圖

    3 討論

    孫秋艷等[8-9]通過傳統(tǒng)的自然沉降法、FA-1型六級(jí)篩孔撞擊式空氣微生物采樣器等方法對(duì)空氣中微生物進(jìn)行培養(yǎng)時(shí),存在工作量大、自然界微生物培養(yǎng)有限等問題,導(dǎo)致只能檢測到部分微生物或特定病原微生物,在種類和數(shù)量的分析上存在很大局限性[10]。Illumina HiSeq PE250雙末端測序法成功解決了通量低、準(zhǔn)確率低、操作復(fù)雜等問題,與傳統(tǒng)分子生物學(xué)方法相比,能夠檢測到更多的微生物基因信息,更加全面、準(zhǔn)確地闡明微生物群落結(jié)構(gòu)特征[11-12]。

    X雞場是標(biāo)準(zhǔn)化籠養(yǎng)雞場,具有自動(dòng)清糞設(shè)備,自動(dòng)混合通風(fēng),具有數(shù)控裝備,隨時(shí)監(jiān)控舍內(nèi)溫度、濕度等功能,雞舍規(guī)格110 m×13.5 m×3.5 m,舍內(nèi)地面光滑;Z雞場是地面平養(yǎng)改建的,人工清糞,縱向負(fù)壓通風(fēng)(仍然是老的通風(fēng)設(shè)備),無數(shù)控裝備,雞舍規(guī)格110 m×14 m×3.5 m,舍內(nèi)地面凹凸不平;A雞場是地面網(wǎng)養(yǎng)改建,人工清糞,縱向負(fù)壓通風(fēng),無數(shù)控裝備,雞舍規(guī)格120 m×14 m×3.5 m,舍內(nèi)地面光滑。α多樣性指數(shù)和花瓣圖分析可以看出,Z雞場消毒后細(xì)菌種類反而增多,A雞場和X雞場消毒后空氣中細(xì)菌種類相對(duì)于消毒前明顯減少,可能由于Z雞場消毒后,舍內(nèi)地面凹凸不平,消毒后殘留水分較多,有利于微生物滋生,且通風(fēng)效果不好。可見,空氣中細(xì)菌種類與通風(fēng)設(shè)施、通風(fēng)時(shí)間、舍內(nèi)地面及時(shí)干燥等因素有關(guān)。細(xì)菌豐度聚類結(jié)果表明,空舍期消毒后,雞舍中相對(duì)豐度最高的菌群,在消毒后明顯降低,由此表明,籠養(yǎng)雞舍空舍期消毒具有一定效果。

    Beta多樣性是對(duì)不同樣本的微生物群落構(gòu)成進(jìn)行比較分析。細(xì)菌群落的PCoA分析結(jié)果表明,3個(gè)雞場消毒前和消毒后群落組成差異較大,多樣性具有明顯區(qū)分,表明消毒具有一定效果。

    3個(gè)雞舍均位于山東濰坊,養(yǎng)殖模式均為3層立體籠養(yǎng),采樣時(shí)間均為2018年4至5月份,采樣時(shí)室外溫度均為24~29 ℃,濕度均為55%~70%,因此,3個(gè)雞舍所處的環(huán)境條件相差不大。通過細(xì)菌群落結(jié)構(gòu)分析,在門水平上,變形菌門、厚壁菌門、擬桿菌門為三大優(yōu)勢菌群,其中變形菌門的豐度最高;在屬分類水平上,A雞場消毒前優(yōu)勢菌群在消毒后完全消失,消毒后3個(gè)雞場優(yōu)勢菌群為葉桿菌屬(Phyllobacterium),其次是不動(dòng)桿菌屬(Acinetobacter)和勞爾斯菌屬(Ralstonia),因此飼養(yǎng)模式對(duì)消毒后致病菌種類沒有影響。不論消毒前還是消毒后,不動(dòng)桿菌屬(Acinetobacter)豐度都較高,可引起動(dòng)物呼吸道感染、敗血癥、腦膜炎、心內(nèi)膜炎、傷口及皮膚感染和泌尿生殖道感染等。不動(dòng)桿菌屬在消毒前后空氣樣本中一直存在,由此說明,3個(gè)雞舍消毒后檢測到致病菌與環(huán)境沒有關(guān)系,空舍期消毒可能對(duì)其作用不大。所以,建立籠養(yǎng)肉雞場科學(xué)有效的生物安全體系就顯得尤為重要。

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