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    藜麥莖段組培快繁體系的建立

    2020-08-13 07:44:08段鵬慧李小艷王創(chuàng)云
    山西農(nóng)業(yè)科學(xué) 2020年8期
    關(guān)鍵詞:腋芽草炭外植體

    段鵬慧 ,李小艷 ,焦 茹 ,鄧 妍 ,王創(chuàng)云

    (1.山西林業(yè)職業(yè)技術(shù)學(xué)院,山西太原030009;2.山西省農(nóng)業(yè)科學(xué)院作物科學(xué)研究所,山西太原030031)

    藜麥(Chenopodium quinoaWilld)別名南美藜、奎藜、奎奴亞藜,屬1 年生藜科雙子葉植物,原產(chǎn)于南美洲,是印加人的主要糧食作物,被稱為“糧食之母”。藜麥蛋白含量高于普通谷物,尤其富含人體必需的氨基酸、礦質(zhì)營養(yǎng)、維生素E、類黃酮等生物活性物質(zhì)[1-2],營養(yǎng)豐富。目前,藜麥在美國、日本、歐洲等地開發(fā)利用前景較高[3]。

    藜麥?zhǔn)俏覈M(jìn)的新型農(nóng)作物,近年來,在我國甘肅、山西、青海、河北、吉林等地已開展了大面積的栽培生產(chǎn)[4-5],在藜麥化學(xué)組成、營養(yǎng)成分、種質(zhì)資源、栽培技術(shù)等方面也進(jìn)行了一系列基礎(chǔ)研究工作,育種工作尚處于初級(jí)階段。藜麥為異源四倍體(2n=4x=36)[6],自然異交率為 10%~17%,群體的基因組成多為雜合型,遺傳不穩(wěn)定。而植物組織培養(yǎng)技術(shù)能夠保持母本的遺傳性狀,解決藜麥優(yōu)良品種有性繁殖性狀分離的問題。俞涵譯等[7]研究了藜麥莖段愈傷組織的誘導(dǎo)及優(yōu)化體系;曹寧等[8]研究了藜麥莖段愈傷組織分化和不定芽增殖。目前,國內(nèi)有關(guān)藜麥組培快繁的研究報(bào)道相對(duì)較少。

    本試驗(yàn)以藜麥帶腋芽莖段為外植體,針對(duì)腋芽誘導(dǎo)、不定芽增殖、生根和移栽的影響因素進(jìn)行研究,以期深入探索藜麥再生組培與快繁體系的建立,為生產(chǎn)中短期內(nèi)快速繁殖優(yōu)質(zhì)藜麥種苗提供一定技術(shù)支撐。

    1 材料和方法

    1.1 試驗(yàn)材料

    供試藜麥材料為HQ1,由山西華青藜麥產(chǎn)品開發(fā)有限公司提供。以藜麥幼苗期生長健壯、無病蟲害的植株為母本,切取直徑0.3~0.7 cm 莖段作為外植體。

    1.2 試驗(yàn)方法

    1.2.1 外植體的準(zhǔn)備與消毒 將外植體材料去除葉片,用軟毛筆蘸取飽和洗衣粉水將其清洗干凈,然后流水沖洗30 min,剪成長度為1.5~2.0 cm 的帶腋芽莖段(腋芽上下至少保留0.5~1.0 cm);然后,在超凈工作臺(tái)中,用75%的酒精浸泡30 s,再用0.1%HgCl2進(jìn)行常規(guī)消毒處理 3、5、7、9、11、13 min,隨后用無菌水漂洗6 次,每次3 min;后立刻接種于MS 基本培養(yǎng)基上,每個(gè)處理接種30 瓶,每瓶1 個(gè)外植體。接種后7~10 d 統(tǒng)計(jì)外植體的污染率、成活率及死亡率,分析0.1%HgCl2不同消毒時(shí)間處理的效果。

    1.2.2 誘導(dǎo)腋芽萌發(fā) 將生長狀態(tài)良好的無菌單芽莖段接種至MS 附加有不同濃度細(xì)胞分裂素6-BA、生長素NAA 的初代誘導(dǎo)培養(yǎng)基上(表1),研究6-BA 和NAA 對(duì)藜麥腋芽萌發(fā)的影響,以篩選適宜的初代培養(yǎng)基。每處理10 瓶,每瓶2 株,重復(fù)3 次。接種7 d 后觀察腋芽萌發(fā)情況,統(tǒng)計(jì)萌芽率。

    表1 激素配方篩選試驗(yàn)設(shè)計(jì)

    1.2.3 增殖培養(yǎng) 將腋芽萌發(fā)的初代苗切成帶1~2 個(gè)葉片的莖段,接種于增殖培養(yǎng)基上。培養(yǎng)基以 MS+NAA 0.2 mg/L 為對(duì)照(CK),添加質(zhì)量濃度分別為 0.5、1.0、2.0 mg/L 的細(xì)胞分裂素 6-BA 和KT,共設(shè)6 個(gè)處理,即A.6-BA 0.5 mg/L;B.6-BA 1.0 mg/L;C. 6-BA 1.5 mg/L;D. KT 0.5 mg/L;E. KT 1.0 mg/L;F.KT1.5 mg/L,以探究不同激素不同濃度對(duì)不定芽增殖的影響。每處理10 瓶,每瓶3 株。15 d后,觀察增殖情況,并統(tǒng)計(jì)增殖系數(shù)。

    1.2.4 生根誘導(dǎo) 將高度為3~5 cm 的健壯芽苗轉(zhuǎn)接至1/2 MS 附加不同質(zhì)量濃度生長素IBA(0、0.5、1.0 mg/L)、NAA(0、0.5、1.0 mg/L)的培養(yǎng)基中進(jìn)行生根培養(yǎng)。每處理10 瓶,每瓶3 株。15 d 后觀察生根情況,并統(tǒng)計(jì)生根率。

    1.2.5 馴化移栽 選擇根長2~4 cm、株高5 cm 以上、長勢健壯、根系良好的藜麥生根組培苗,溫室中煉苗7~14 d;然后洗凈根部培養(yǎng)基,迅速移栽至已充分消毒的基質(zhì)中,基質(zhì)設(shè)置5 種處理,分別是河沙、草炭土、蛭石、蛭石+草炭土體積比為3∶1 和蛭石+草炭土體積比為2∶1。每處理10 瓶,每瓶3 株。移栽后置于通風(fēng)、散光環(huán)境中養(yǎng)護(hù),保持溫度20~23 ℃、空氣濕度80%~100%。20 d 后統(tǒng)計(jì)成活率并觀察生長狀況。

    1.2.6 培養(yǎng)條件 以上培養(yǎng)基附加蔗糖30 g/L、瓊脂 8 g/L,pH 值 5.8;培養(yǎng)溫度(20±2)℃,空氣濕度70%~80%,光照強(qiáng)度2 000 lx,光照時(shí)間13 h/d。

    1.3 數(shù)據(jù)分析

    試驗(yàn)數(shù)據(jù)采用Excel 2003 和SPSS 19 軟件進(jìn)行Duncan 檢驗(yàn)和方差分析。

    2 結(jié)果與分析

    2.1 不同消毒處理對(duì)藜麥莖段消毒的影響

    接種3 d 后,部分處理外植體材料不同程度出現(xiàn)黏液狀菌落,且隨時(shí)間的延長,污染數(shù)量逐漸增多,菌斑面積擴(kuò)大;15~25 d,污染數(shù)量不再上升;但是接種 7 d 后,9、11、13 min 消毒處理的少量外植體材料顏色由綠轉(zhuǎn)黃,繼而變?yōu)楹稚⒑谏?,最后枯死?/p>

    由表2 可知,酒精消毒時(shí)間保持不變時(shí),隨著HgCl2處理時(shí)間的增加,外植體污染率逐漸降低,其中,HgCl2處理3 min 的污染率最高,達(dá)43.3%,且與其他5 個(gè)處理間差異顯著;HgCl2處理13 min 污染率為0,但死亡率最高,為33.3%,且與其他各處理間的差異達(dá)顯著水平;HgCl2消毒處理9 min 成活率最高,為83.3%,但與HgCl2消毒處理7、11 min間差異不顯著,與另外3 個(gè)處理間差異顯著。選擇成活率最高的處理即75%酒精30 s+0.1% HgCl29 min 作為藜麥腋芽最佳的滅菌方案。

    表2 不同消毒處理對(duì)外植體的影響

    2.2 不同激素及濃度對(duì)藜麥腋芽萌發(fā)的影響

    培養(yǎng)8~10 d,各個(gè)處理腋芽開始膨大,出現(xiàn)淡綠色圓突狀芽點(diǎn);25 d 后芽點(diǎn)陸續(xù)萌發(fā)展葉,多數(shù)腋芽萌發(fā)的嫩莖長4~7 mm;30 d 后芽可長至10~23 mm,基部直徑3~5 mm。從表3 可以看出,處理7(培養(yǎng)基為 6-BA 1.5 mg/L+NAA 0.5 mg/L)的萌芽率最高,達(dá)90%,該處理下,發(fā)芽最快,芽飽滿且長勢好。

    方差分析結(jié)果表明(表 4),6-BA、NAA 及二者的交互作用對(duì)藜麥腋芽萌發(fā)均有顯著影響,F(xiàn)值由大到小依次為 261.083(6-BA)、28.583(NAA)和5.958(二者的交互作用),說明6-BA 對(duì)腋芽誘導(dǎo)的影響最大,NAA 次之,二者的交互作用最小。

    表3 不同激素誘導(dǎo)藜麥腋芽的萌發(fā)情況

    表4 不同濃度6-BA 和NAA 組合腋芽萌芽率的方差分析

    為進(jìn)一步探明不同因素各水平間的差異情況,采用新復(fù)極差法(Duncan)進(jìn)行多重比較,結(jié)果表明(表 5),6-BA 不同水平中,1.5 mg/L 的萌芽率最高,且相對(duì)于1.0、0.5 mg/L 對(duì)藜麥腋芽萌發(fā)明顯提高,并達(dá)到差異顯著水平;NAA 不同水平中,0.5 mg/L的萌芽率最高,且與1.0、0.1 mg/L 間差異達(dá)顯著水平,說明 1.5 mg/L 6-BA、0.5 mg/L NAA 對(duì)藜麥腋芽萌發(fā)作用較強(qiáng)。

    表5 6-BA、NAA 各水平的差異顯著性分析

    綜上,確定藜麥腋芽誘導(dǎo)的最佳培養(yǎng)基為MS+6-BA 1.5 mg/L+NAA 0.5 mg/L。

    2.3 不同激素及濃度對(duì)不定芽增殖的影響

    培養(yǎng)13 d 后,無菌莖段開始出現(xiàn)新芽;25 d 左右多數(shù)處理的不定芽數(shù)量逐漸增多,生長狀況不一;繼續(xù)培養(yǎng),部分不定芽陸續(xù)抽出莖、葉。

    由圖1 可知,添加激素的培養(yǎng)基中,不定芽增殖系數(shù)至少是對(duì)照(0.6)的3 倍以上,且差異均達(dá)顯著水平;同一種激素隨著濃度的增加,不定芽增殖系數(shù)呈逐漸上升趨勢,但1.0、2.0 mg/L 這2 個(gè)梯度間差異不顯著,二者較0.5 mg/L 梯度差異均顯著;6-BA 較 KT作用明顯,1.0、2.0 mg/L 6-BA 的不定芽增殖系數(shù)顯著高于同一梯度KT 的增殖系數(shù);6-BA質(zhì)量濃度上升至2.0 mg/L 時(shí),增殖系數(shù)最高,為4.9,但是芽苗纖弱、葉片小,長勢較弱。因此,MS+6-BA 1.0 mg/L+NAA 0.2 mg/L 是最適宜的增殖培養(yǎng)基。

    2.4 不同生根培養(yǎng)基對(duì)藜麥芽苗生根的影響

    培養(yǎng)15 d 左右,陸續(xù)可見從試管苗基部分化出少量白色不定根;約25 d 后,分化較早的不定根又產(chǎn)生須根,根長約2~5 cm。從表6 可以看出,生長素為0 mg/L(CK)時(shí),試管苗生根率僅為16.7%,不定根數(shù)量較少,生根慢,且與其他處理的差異達(dá)到顯著水平;同一濃度水平的IBA,單獨(dú)使用與IBA和NAA 配合使用相比,生根率差異不顯著;同一濃度水平的NAA,NAA 和IBA 配合使用的生根率顯著高于NAA 單獨(dú)使用;生根率隨著IBA 濃度增加而增加,即1.0 mg/L>0.5 mg/L>0。當(dāng)IBA為1.0 mg/L時(shí)有愈傷組織產(chǎn)生,不定根由愈傷組織發(fā)出,根易折;當(dāng) IBA 為 0.5 mg/L、NAA 為 0 時(shí),生根率為 76.7%,但不定根數(shù)量多,根較粗壯,移栽成活率較高。綜合考慮生根率、不定根數(shù)量及根長等因素,確定藜麥適宜的生根培養(yǎng)基為1/2 MS+I(xiàn)BA 0.5 mg/L。

    表6 不同培養(yǎng)基對(duì)藜麥生根的影響

    2.5 基質(zhì)類型對(duì)藜麥組培苗移栽的影響

    試驗(yàn)結(jié)果表明(圖2),蛭石與草炭土混合基質(zhì)的移栽成活率、生長高度較河沙、草炭土、蛭石的效果明顯,且差異達(dá)顯著水平;蛭石+草炭土體積比為3∶1 處理的組培苗成活率為93.3%、生長高度為2.86 cm,達(dá)到最佳效果,與蛭石+草炭土體積比為2∶1 處理相比差異達(dá)顯著水平;草炭土的組培苗成活率最低,僅有58.3%;河沙的生長高度最小,為1.32 cm。因此,適合試管苗移栽的基質(zhì)為蛭石和草炭土體積比為3∶1。

    3 結(jié)論與討論

    3.1 外植體的消毒

    植物組織培養(yǎng)中,獲得無菌體系是組培成功的首要條件[9]。本研究以藜麥幼苗期帶腋芽莖段為外植體材料,采用75%酒精消毒處理30 s、0.1%的HgCl2不同時(shí)間梯度消毒,隨HgCl2消毒時(shí)間加長,污染率逐漸降低,消毒效果明顯;但過度消毒會(huì)加重外植體傷害程度,造成外植體失活死亡,腋芽啟動(dòng)受到影響。因此,綜合考慮消毒后外植體材料的成活情況,確定75%酒精消毒處理30 s、0.1%的HgCl2消毒處理9 min 是藜麥帶腋芽莖段的最佳消毒方案,該條件下,成活率達(dá)83.3%,長勢良好。

    3.2 植物生長調(diào)節(jié)物質(zhì)對(duì)藜麥組培的影響

    植物生長調(diào)節(jié)物質(zhì)的種類與濃度是芽誘導(dǎo)、增殖及生長發(fā)育的關(guān)鍵因素。細(xì)胞分裂素、生長素能明顯促進(jìn)腋芽啟動(dòng)與生長。有研究表明,6-BA 對(duì)不定芽誘導(dǎo)起主導(dǎo)作用,添加適量6-BA 有利于不定芽的形成[10-12]。生長素NAA 對(duì)不定芽誘導(dǎo)效果并不是隨NAA濃度的升高而增強(qiáng),與生長素特性有關(guān)[13]。在一定范圍內(nèi),高濃度細(xì)胞分裂素6-BA 與低濃度生長素NAA 有利于芽的形成。本研究表明,當(dāng)培養(yǎng)基中 6-BA 為 1.5 mg/L、NAA 為 0.5 mg/L 時(shí),藜麥誘導(dǎo)率最高,達(dá)90.0%,且芽萌發(fā)最快,芽體飽滿,色澤綠。

    本研究表明,高濃度6-BA、KT 與低濃度NAA的激素組合的藜麥試管苗帶芽莖段的增殖系數(shù)較高。這與洪森榮等[14]在香果樹上的試驗(yàn)結(jié)果基本一致。細(xì)胞分裂素對(duì)不定芽的增殖有促進(jìn)作用,其中,6-BA 的增殖作用較KT 好,這與孫駿威等[15]的研究結(jié)果一致。本研究表明,MS+6-BA 1.0 mg/L+NAA 0.2 mg/L 增殖培養(yǎng)基中,藜麥不定芽增殖系數(shù)最高,為4.9,芽苗健壯,長勢良好。

    大量研究表明,生長素在生根培養(yǎng)中占據(jù)主導(dǎo)地位,不同種類、不同濃度生長素的誘導(dǎo)生根能力存在明顯差異[16-17]。本試驗(yàn)中,不添加生長素時(shí),藜麥組培苗生根率僅有16.7%;單獨(dú)添加IBA、NAA及二者配合使用均能有效誘導(dǎo)藜麥組培苗產(chǎn)生不定根,但I(xiàn)BA 處理較NAA、IBA+NAA 的生根率高,生根效果好,根粗壯;IBA 為1.0 mg/L 處理的生根率較IBA 為0.5 mg/L 處理高,但不定根發(fā)自愈傷組織,根易折,移栽后植株成活率降低[18-19]。因此,確定藜麥誘導(dǎo)不定根的最佳培養(yǎng)基為1/2 MS+I(xiàn)BA 0.5 mg/L。

    3.3 馴化移栽

    馴化移栽是植物組織培養(yǎng)最為關(guān)鍵的階段,移栽基質(zhì)要求疏松、透氣、透水,有一定肥力[20]。本研究表明,藜麥組培苗在5 種不同移栽基質(zhì)中的成活率、生長情況差異明顯。蛭石∶草炭土體積比為3∶1 時(shí),移栽成活率可達(dá)93.3%、生長高度為2.86 cm,原因可能是由于草炭土營養(yǎng)豐富、保肥能力好,而蛭石透水透氣性強(qiáng),二者比例恰當(dāng),有利于藜麥幼苗生長。

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