NaC1脅迫對(duì)甜瓜幼苗相關(guān)生理指標(biāo)的影響

郝永勝, 劉熙, 汪季濤, 李甜竹, 胡克玲

NaC1脅迫對(duì)甜瓜幼苗相關(guān)生理指標(biāo)的影響

郝永勝1, 劉熙1, 汪季濤2, 李甜竹1, 胡克玲1

(1. 安徽農(nóng)業(yè)大學(xué) 園藝學(xué)院, 安徽 合肥, 230036; 2. 安徽中煙工業(yè)有限責(zé)任公司,安徽 合肥, 230088)

以NaC1作為鹽脅迫處理, 采用水培方式, 研究鹽脅迫對(duì)甜瓜幼苗生長(zhǎng)和相關(guān)生理特性的影響。本試驗(yàn)處理分別為T1表示對(duì)照, T2表示NaC1脅迫處理濃度為50 mmol/L、T3表示NaC1脅迫處理濃度為100 mmol/L、T4表示NaC1脅迫處理濃度為150 mmol/L、T5表示NaC1脅迫處理濃度為200 mmol/L, 分析NaC1脅迫對(duì)甜瓜幼苗生長(zhǎng)、光合速率及抗氧化酶活性等相關(guān)生理生化指標(biāo)的影響。結(jié)果顯示: 隨著NaC1脅迫濃度的增加, 抑制了甜瓜幼苗的生長(zhǎng); 降低了光合色素含量和葉片光合速率; SOD活性、CAT活性、脯氨酸含量、GSH含量和GSH/GSSG比值呈現(xiàn)先增加后降低的趨勢(shì), 但是POD活性、H2O2含量、GSSG含量和GSH+GSSG含量呈現(xiàn)逐漸增加的趨勢(shì)。結(jié)果表明, 在NaC1脅迫下, 甜瓜幼苗通過(guò)調(diào)節(jié)自身的反應(yīng)緩解NaC1脅迫的危害, 但隨著鹽脅迫濃度的增加, 甜瓜幼苗產(chǎn)生了不可逆的傷害。

甜瓜; NaC1脅迫; 生理指標(biāo)

隨著現(xiàn)代化農(nóng)業(yè)的發(fā)展, 我國(guó)的設(shè)施農(nóng)業(yè)發(fā)展非常迅速, 但我國(guó)設(shè)施栽培的可控性和栽培管理手段較落后, 作物栽培過(guò)程極易受到環(huán)境的影響, 如低溫弱光、土壤鹽漬化、干旱等, 其中鹽脅迫容易導(dǎo)致作物失水、離子失衡、營(yíng)養(yǎng)虧缺等[1], 在世界范圍內(nèi)仍舊是影響作物產(chǎn)量和質(zhì)量的主要因素之一[2–3], 容易引起作物代謝紊亂如活性氧生成與清除的失衡、光合作用下降等, 造成設(shè)施作物產(chǎn)量大幅降低和品質(zhì)下降[4–5]。

鹽脅迫影響植物的營(yíng)養(yǎng)物質(zhì)吸收, 產(chǎn)生滲透脅迫, 降低植物的光合作用, 也會(huì)產(chǎn)生氧化脅迫, 抑制植物的生長(zhǎng)[5–7]。孫超等研究發(fā)現(xiàn), 鹽脅迫導(dǎo)致黃瓜幼苗光合色素含量、凈光合速率、暗呼吸速率和蒸騰速率顯著降低[8]。此外, 鹽脅迫還會(huì)擾動(dòng)離子的動(dòng)態(tài)平衡, 使細(xì)胞膜透性增大, 隨著脅迫濃度增大和時(shí)間的延長(zhǎng), 可能會(huì)對(duì)植物產(chǎn)生不可逆的傷害[9]?；钚匝?ROS)一直被認(rèn)為是導(dǎo)致膜脂過(guò)氧化、蛋白質(zhì)變性、核酸突變等損傷細(xì)胞的有害物質(zhì), 鹽脅迫也影響了植物活性氧的代謝。研究發(fā)現(xiàn), 隨著鹽脅迫濃度的增加, 側(cè)柏幼苗葉片H2O2等含量增加[10]。為了適應(yīng)這種逆境環(huán)境, 植物體也產(chǎn)生了相應(yīng)的清除系統(tǒng), 由酶和非酶系統(tǒng)組成, 主要有SOD、POD、CAT、谷胱甘肽和脯氨酸等來(lái)維持植物的平衡狀態(tài)。

甜瓜(L.)是深受人們喜愛的一種園藝產(chǎn)品, 隨著設(shè)施農(nóng)業(yè)的發(fā)展, 甜瓜的設(shè)施栽培面積也在逐年擴(kuò)大, 開展鹽脅迫對(duì)甜瓜的不良影響的研究具有十分重要的意義。因此, 本試驗(yàn)以甜瓜幼苗為試材, 研究了NaC1脅迫下甜瓜幼苗形態(tài)指標(biāo)、相關(guān)抗氧化酶的活性以及光合色素含量等指標(biāo)的變化, 以期在一定程度上對(duì)甜瓜栽培提供理論指導(dǎo)。

1 材料與方法

1.1 試驗(yàn)材料與處理

本試驗(yàn)在安徽農(nóng)業(yè)大學(xué)溫室進(jìn)行, 以甜瓜“小麥酥”為試驗(yàn)材料, 種子由市場(chǎng)購(gòu)買。在人工氣候箱內(nèi)進(jìn)行催芽, 溫度保持在28 ℃, 種子露白后播種于營(yíng)養(yǎng)缽中。采用基質(zhì)育苗, 營(yíng)養(yǎng)缽內(nèi)基質(zhì)為蛭石與草炭, 按體積比控制在1﹕1。當(dāng)3葉1心時(shí), 采用水培, 先以1/2 Hoagland營(yíng)養(yǎng)液培養(yǎng)1周, 第2周用Hoagland營(yíng)養(yǎng)液培養(yǎng), 第3周進(jìn)行相關(guān)處理。

本試驗(yàn)選用NaC1作為鹽脅迫處理, 以清水處理作為對(duì)照, NaC1處理濃度分別為50、100、150、200 mmol/L。處理時(shí)按NaC1脅迫濃度從小到大依次將5組處理標(biāo)記為T1(對(duì)照)、T2、T3、T4、T5。每個(gè)處理重復(fù)3次, 處理7 d后進(jìn)行相關(guān)指標(biāo)的測(cè)定。

1.2 相關(guān)指標(biāo)測(cè)定方法

1.2.1 形態(tài)指標(biāo)測(cè)定

用直尺測(cè)量甜瓜株高; 莖粗用游標(biāo)卡尺進(jìn)行測(cè)量; 地上部鮮重用電子天平稱量。

1.2.2 光合速率測(cè)定

選取甜瓜幼苗同葉位葉片, 采用便攜式光合測(cè)定儀LCpro+(英國(guó)ADC公司), 于9: 00～11: 00進(jìn)行光合速率的測(cè)定。

1.2.3 光合色素和脯氨酸含量測(cè)定

采用ELISA法檢測(cè)血清透明質(zhì)酸含量，具體方法如下：清晨抽取患者空腹外周血4 ml，室內(nèi)靜置2小時(shí)后，采用3 000 r/min速度離心12 min，分離上清液后置于-70℃環(huán)境下保存待檢，采用美國(guó)cell signal公司生產(chǎn)的ELISA試劑盒進(jìn)行測(cè)定，操作按照試劑盒說(shuō)明進(jìn)行，采用酶標(biāo)儀MK3測(cè)量。

取0.3 g葉片, 分別放入研缽中, 用80%的丙酮研成勻漿, 再加95%乙醇10 mL, 繼續(xù)研磨至組織變白, 按照李合生的測(cè)定方法, 在波長(zhǎng)665、649、470 nm下測(cè)定吸光度[11]。

1.2.4 抗氧化酶活性測(cè)定

取0.3 g葉片, 加入2 mL的PBS緩沖液, 冰浴中勻漿, 4oC環(huán)境12 100 g離心15 min, 取上清液。超氧化物歧化酶(SOD)、過(guò)氧化物酶(POD)和過(guò)氧化氫酶(CAT)測(cè)定方法參考Hu的測(cè)定方法[12]。

1.2.5 GSH含量測(cè)定

稱取0.3 g葉片, 加入5%TCA研磨, 獲得提取液, 2 000 g離心15 min, 取上清液進(jìn)行測(cè)定[13]。

1.2.6 H2O2含量測(cè)定

稱取0.3 g葉片, 在液氮中研磨均勻, 加入2 mL濃度為0.2 M的HClO4, 倒入10 mL離心管中再加入0.2 mL的0.2 M的HClO4, 4oC環(huán)境2 700 g離心30 min, 取上清液加入4 M KOH至上清液調(diào)pH值, 用活性炭吸附色素, 渦旋后, 4oC環(huán)境12 000 g離心5 min, 取上清液過(guò)膜待測(cè)[13]。

1.2.7 脯氨酸的測(cè)定方法

取0.3 g葉片, 放入大管中, 然后向管中加入5 mL的3％磺基水楊酸溶液, 在沸水浴中提取10 min冷卻后過(guò)濾于干凈的試管中。吸取2 mL提取液于干凈的帶玻塞試管中, 加入2 mL冰醋酸及2 mL酸性茚三酮試劑, 在沸水浴中加熱30 min, 冷卻后加入4 mL甲苯, 搖蕩30 s, 靜置片刻, 取上層液至10 mL離心管中, 在1 000 g下離心5 min, 待測(cè)[11]。

1.2.8 數(shù)據(jù)分析

作圖采用Excel, 采用SAS 8.0進(jìn)行數(shù)據(jù)顯著差異性分析。

2 結(jié)果與分析

2.1 NaCl脅迫對(duì)甜瓜幼苗生長(zhǎng)的影響

甜瓜幼苗的株高、莖粗、鮮重等指標(biāo)是反映幼苗生長(zhǎng)情況最直接的生理指標(biāo)。由表1可知, 隨著NaCl脅迫濃度的增大, 甜瓜幼苗的各項(xiàng)指標(biāo)均呈減少的趨勢(shì)。與對(duì)照相比, 50 mmol/L NaCl處理下的甜瓜幼苗各指標(biāo)差異不顯著, 但100～200 mmol/L NaCl處理下株高和莖粗達(dá)差異顯著, 鮮重在NaCl處理濃度大于150 mmol/L 時(shí)達(dá)差異顯著。100 mmol/L NaCl脅迫處理與150 mmol/L NaCl脅迫處理對(duì)比發(fā)現(xiàn), 甜瓜幼苗各指標(biāo)沒有顯著差異。說(shuō)明在本試驗(yàn)條件下當(dāng)NaCl處理濃度越高, 鹽脅迫對(duì)甜瓜幼苗生長(zhǎng)抑制程度越大。

表1 不同濃度NaCl脅迫處理對(duì)甜瓜幼苗生長(zhǎng)指標(biāo)的影響

注: 表中同列不同字母表示不同處理在5%水平上具有顯著差異; T1: 對(duì)照, T2: 50 mmol/L NaCl脅迫處理, T3: 100 mmol/L NaCl脅迫處理, T4: 150 mmol/L NaCl脅迫處理, T5: 200 mmol/L NaCl脅迫處理, 下同。

2.2 NaCl脅迫對(duì)甜瓜幼苗光和色素含量的影響

表2 不同濃度NaCl脅迫處理對(duì)甜瓜幼苗光合色素含量的影響

表2為不同濃度NaCl脅迫處理對(duì)甜瓜幼苗光合色素含量的影響, 由表2可知: 隨著NaCl脅迫處理濃度的提高, 葉綠素a、葉綠素b和葉綠素a+b、類胡蘿卜素呈現(xiàn)相似的變化規(guī)律, 均呈現(xiàn)遞減的趨勢(shì), 說(shuō)明在NaCl脅迫條件下導(dǎo)致了甜瓜幼苗葉片光合色素的降解, 其中葉綠素a和類胡蘿卜素含量在200 mmol/L NaCl脅迫處理與對(duì)照相比達(dá)差異顯著; 葉綠素b含量在50 mmol/L NaCl脅迫處理與對(duì)照相比差異不顯著, 其他處理均達(dá)到差異顯著水平; 葉綠素a+b各處理均與對(duì)照相比達(dá)差異顯著水平, 但處理之間差異不顯著; 在本試驗(yàn)條件下, 葉綠素a/b的值沒有發(fā)生變化。

圖1 不同濃度NaCl脅迫處理對(duì)甜瓜幼苗光合速率的影響

注: 圖中不同字母表示在5%水平上具有顯著差異; T1: 對(duì)照, T2: 50 mmol/L NaCl脅迫處理, T3: 100 mmol/L NaCl脅迫處理, T4: 150 mmol/L NaCl脅迫處理, T5: 200 mmol/L NaCl脅迫處理, 下同。

2.3 NaCl脅迫對(duì)甜瓜幼苗光合速率的影響

圖1為不同濃度NaCl脅迫處理對(duì)甜瓜幼苗光合速率的影響。由圖1可知, 隨著NaCl脅迫濃度的增加, 與對(duì)照相比, NaCl脅迫處理均達(dá)到差異顯著水平, 說(shuō)明NaCl脅迫處理下, 直接影響了甜瓜幼苗的光合作用, 但是處理之間差異不顯著。

2.4 NaCl脅迫對(duì)甜瓜脯氨酸、H2O2含量和抗氧化酶活性的影響

植物在逆境脅迫下, 能增強(qiáng)自身的防御系統(tǒng)以抵抗不良環(huán)境。從圖2可知, 與對(duì)照相比, 在本試驗(yàn)中低濃度(50 mmol/L) NaCl脅迫僅提高CAT活性, 對(duì)SOD活性、POD活性、脯氨酸和H2O2含量均沒有顯著影響; 但隨著NaCl脅迫濃度的增加, 脯氨酸含量、SOD和CAT活性呈現(xiàn)先增加后降低的趨勢(shì), 其中脯氨酸含量和CAT活性, 在NaCl脅迫濃度在100～200 mmol/L時(shí), 均與對(duì)照達(dá)差異顯著水平。在NaCl脅迫濃度大于100 mmol/L時(shí), POD活性和H2O2含量隨著處理濃度呈現(xiàn)遞增趨勢(shì)。

2.5 NaCl脅迫對(duì)甜瓜幼苗谷胱甘肽氧化還原狀態(tài)的影響

圖3為不同濃度NaCl脅迫處理對(duì)甜瓜幼苗谷胱甘肽含量的影響。由圖3可知, 隨著NaCl脅迫濃度的增加, GSH含量和GSH/GSSG呈現(xiàn)先增加后降低的趨勢(shì), 在NaCl脅迫濃度50～100 mmol/L時(shí), 比對(duì)照顯著增加; 而GSSG含量和GSH+GSSG含量呈現(xiàn)逐漸增加趨勢(shì), GSSG含量在NaCl脅迫濃度大于100 mmol/L時(shí)比對(duì)照顯著增加, GSH+GSSG含量在NaCl脅迫濃度大于50 mmol/L時(shí)比對(duì)照顯著增加。

3 討論

鹽脅迫影響了甜瓜幼苗的生長(zhǎng), 并且隨著鹽濃度的增加, 對(duì)植株生長(zhǎng)的影響呈現(xiàn)加重的趨勢(shì)(表1), 這可能是由于隨著鹽脅迫濃度的提高, Na+和Cl-抑制了植株對(duì)水分和相關(guān)營(yíng)養(yǎng)物質(zhì)的吸收[14], 影響了植株的生長(zhǎng)發(fā)育[15]。夏世龍也發(fā)現(xiàn)在鹽堿脅迫下對(duì)甜瓜的植株生長(zhǎng)具有濃度依賴性[16]。

光合色素是光能的受體, 在植物的光合作用中具有非常重要的作用, 是反映植物光合能力的一個(gè)重要指標(biāo), 但也容易受到環(huán)境因子等因素的影響[15, 17]。本試驗(yàn)結(jié)果表明, NaCl脅迫下甜瓜幼苗的葉綠素產(chǎn)生了降解, 這與王玉萍等[17]研究的結(jié)果是一致的, 可能是由于NaCl脅迫下, 對(duì)植物的葉綠體造成了傷害, 進(jìn)而使葉綠素含量降低。但陳友根等[18]研究發(fā)現(xiàn), 隨著鹽脅迫處理濃度的增加, 甜瓜葉綠素含量呈現(xiàn)先增加后降低的趨勢(shì), 這可能是由于試驗(yàn)選擇的甜瓜品種、NaCl脅迫的濃度及處理時(shí)間等不同有關(guān)[19]。類胡蘿卜素也在植物中參與光吸收, 也具有防止膜脂過(guò)氧化的作用[20]。在本試驗(yàn)中, 類胡蘿卜素含量和光合速率隨著鹽脅迫濃度增加呈現(xiàn)降低的趨勢(shì), 這個(gè)結(jié)果與鄭州元等[21]和孫超等[8]的結(jié)果一致。氣體交換參數(shù)能反映作物受逆境傷害的程度, 當(dāng)植株處在鹽脅迫時(shí)的光合速率會(huì)明顯受到抑制[22]。

鹽脅迫使作物體內(nèi)活性氧含量增加, 為了清除活性氧, 酶和非酶系統(tǒng)都展開了積極的響應(yīng)。但隨著鹽濃度的提高, 甜瓜體內(nèi)ROS不能被有效的清除, 導(dǎo)致作物受到了鹽脅迫的危害。H2O2是植物一種很重要的活性氧, 本試驗(yàn)發(fā)現(xiàn)隨著脅迫程度的加深, 導(dǎo)致了H2O2的積累, 并且積累量不斷增加, 加重了植物的膜質(zhì)過(guò)氧化。SOD和POD的活性在適宜NaCl脅迫濃度下是增加的, 也是植物對(duì)逆境的自我保護(hù)。CAT能將逆境脅迫條件下生產(chǎn)的H2O2分解為H2O和O2, 在本試驗(yàn)中, 隨著NaCl脅迫程度的加深, H2O2的含量是逐漸增加的, 但CAT的活性是呈現(xiàn)先增加后降低的趨勢(shì), 這可能是由于在200 mmol/L處理?xiàng)l件下, 對(duì)植株的傷害達(dá)到了不可逆轉(zhuǎn)的程度, 不能緩解鹽脅迫對(duì)植物帶來(lái)的傷害。在逆境脅迫下, 植物可以通過(guò)調(diào)節(jié)脯氨酸等物質(zhì)來(lái)緩解逆境的傷害, 有研究發(fā)現(xiàn)隨著NaCl 脅迫濃度的增加, 脯氨酸含量呈增加趨勢(shì)[23], 但在本試驗(yàn)條件下隨著NaCl脅迫濃度的增加, 脯氨酸含量先增加后減少的趨勢(shì), 這可能是由于品種的耐鹽性存在一定的差異導(dǎo)致的。

本試驗(yàn)研究中發(fā)現(xiàn), 低濃度的NaCl脅迫、GSH含量和GSH/GSSG升高可能是植物對(duì)脅迫的一種適應(yīng)性反應(yīng), 來(lái)清除ROS, 減輕ROS對(duì)甜瓜的傷害。隨著NaCl脅迫濃度的增加, GSH含量降低, GSSG含量升高, GSH/GSSG逐漸降低, 說(shuō)明甜瓜幼苗對(duì)鹽脅迫引起的逆境已經(jīng)失去了自我調(diào)整的能力, 也說(shuō)明了谷胱甘肽參與了植物對(duì)鹽脅迫的調(diào)控。

綜合分析得知, 隨著NaCl脅迫程度的增加, 使H2O2更多的釋放, 細(xì)胞內(nèi)物質(zhì)外滲, 造成光合色素降解, 破壞植物的光合機(jī)構(gòu), 降低了植物的光合速率, 甜瓜幼苗的酶和非酶系統(tǒng)展開抵抗, 但隨著NaCl脅迫程度繼續(xù)加強(qiáng), 給植株造成不可逆的傷害, 顯著抑制了作物的生長(zhǎng)發(fā)育。

[1] Maia J M, Costa de Macedo CE, Voigt EL, et al. Antioxidative enzymatic protection in leaves of two contrasting cowpea cultivars under salinity [J]. Biologia Plantarum, 2010, 54 (1): 159–163.

[2] Tarchoune I, Sgherri C, Izzo R, et al. Changes in the antioxidative systems ofL. (cv. Fine) under different sodium salts [J]. Acta Physiology Plant, 2012, 34: 1 873–1 881.

[3] 馬梅, 劉冉, 鄭春芳, 等.油菜素內(nèi)酯對(duì)鹽漬下油菜幼苗生長(zhǎng)的調(diào)控效應(yīng)及其生理機(jī)制[J]. 生態(tài)學(xué)報(bào), 2015, 35(6), 1–11.

[4] Parul P, Samiksha S, Rachana S, et al. Effect of salinity stress on plants and its tolerance strategies: a review [J]. Environ Sci Pollute Res, 2015, 22: 4 056–4 075.

[5] 趙瑩, 楊克軍, 趙長(zhǎng)江, 等. 外源糖調(diào)控玉米光合系統(tǒng)和活性氧代謝緩解鹽脅迫[J]. 中國(guó)農(nóng)業(yè)科學(xué), 2014, 47(20): 3 962–3 972.

[6] 夏世龍, 張宇, 孫爽, 等. 鹽堿脅迫對(duì)甜瓜幼苗生長(zhǎng)和物質(zhì)積累的影響[J]. 吉林農(nóng)業(yè)科學(xué), 2015, 40(5): 97–101.

[7] 王素平, 郭世榮, 胡曉輝, 等. 鹽脅迫對(duì)黃瓜幼苗葉片光合色素含量的影響[J]. 江西農(nóng)業(yè)大學(xué)學(xué)報(bào), 2006, 28(1): 32–38.

[8] 孫超, 單楠, 王慧娟, 等. 鹽脅迫對(duì)黃瓜幼苗光合作用及其關(guān)鍵酶基因表達(dá)特性的影響[J]. 2016(8): 29–34.

[9] 劉倩, 高婭妮, 柳旭, 等. 植物對(duì)鹽堿脅迫的響應(yīng)機(jī)制研究進(jìn)展[J]. 生態(tài)學(xué)報(bào), 2017, 3: 25.

[10] 姚俠妹, 紀(jì)敬, 岳劍云, 等. ABA對(duì)鹽脅迫下側(cè)柏活性氧代謝及其相關(guān)基因表達(dá)的研究[J]. 西北植物學(xué)報(bào), 2017, 37(1): 0105–0114.

[11] 李合生. 植物生理生化實(shí)驗(yàn)原理和技術(shù)[M]. 1版. 北京: 高等教育出版社, 2000.

[12] Hu K L, Zhang L, Wang J T, You Y. Influence of selenium on growth, lipid peroxidation and antioxidative enzyme activity in melon (L.) seedlings under salt stress [J]. Acta Soc Bot Pol, 2013, 82(3): 193–197.

[13] 姜玉萍. 氧化還原信號(hào)介導(dǎo)的表油菜素內(nèi)醋對(duì)黃瓜光合作用的調(diào)控[D]. 杭州: 浙江大學(xué), 2010.

[14] Tavakkoli E, Fatehi F, Coventry S, et al. Additive effects of Na+and Cl-ions on barley growth under salinity stress [J]. J Exp Bot, 2011, 62: 2 189–2 203.

[15] 王素平, 李娟, 郭世榮, 等. NaC脅迫對(duì)黃瓜幼苗植株生長(zhǎng)和光合特性的影響[J]. 西北植物學(xué)報(bào), 2006, 26(3): 455–461．

[16] 夏世龍, 張宇, 孫爽, 等. 鹽堿脅迫對(duì)甜瓜幼苗生長(zhǎng)和物質(zhì)積累的影響[J]. 吉林農(nóng)業(yè)科學(xué), 2015, 40(5): 97–101.

[17] 王玉萍, 王映霞, 白向利, 等. 硅對(duì)NaCl脅迫下甜瓜種子萌發(fā)及幼苗生長(zhǎng)的影響[J]. 草業(yè)學(xué)報(bào), 2015, 24(5): 108–116.

[18] 陳友根, 章敏, 王冬良, 等. 甜瓜幼苗對(duì)NaCl脅迫傷害的生理響應(yīng)[J]. 安徽農(nóng)業(yè)科學(xué), 2009, 37(8): 3 390–3 392.

[19] Megdiche W, Hessini K, Gharbi F, et al. Photosynthesis and photosystem 2 efficiency of two salt-adapted halophytic seashore Cakile maritima ecotypes [J]. Photosynthetica, 2008, 46(3): 410–419．

[20] 霍培, 季靜, 王罡, 等. 植物類胡蘿卜素生物合成及功能[J]. 中國(guó)生物工程雜志, 2011, 31(11): 107–113.

[21] 鄭州元, 林海榮, 崔輝梅. 外源硫化氫對(duì)鹽脅迫下加工番茄幼苗生理生化特性的影響[J]. 華北農(nóng)學(xué)報(bào), 2017, 32(1): 208–214.

[22] 束勝, 郭世榮, 孫錦, 等. 鹽脅迫下植物光合作用的研究進(jìn)展[J]. 中國(guó)蔬菜, 2012(18): 53–61.

[23] 張玉鑫, 康恩祥, 馬凌之, 等. NaCl 脅迫對(duì)甜瓜幼苗葉片膜脂過(guò)氧化和滲透調(diào)節(jié)物質(zhì)的影響[J]. 果樹學(xué)報(bào), 2007, 24(2): 194–198.

Effect of NaC1 stress on growth and related physiological characteristics of melon seedling

Hao Yongsheng1, Liu Xi1, Wang Jitao2, Li Tianzhu1, Hu Keling1

(1. Department of Horticulture, Anhui Agriculture University, HeFei 230036, China; 2. China Tobacco Anhui Industrial Co LTD, Hefei 230088, China)

The effects of salt stress by using NaC1 on the growth and related physiological characteristics of melon seedlings is studied by using hydroponics. T2 showed NaC1 stress treatment concentration of 50 mmol/L, T3 said NaC1 stress treatment concentration of 100 mmol/L, T4 said NaC1 stress treatment concentration of 150 mmol/L, T5 indicated NaC1 stress treatment concentration of 200 mmol/L in this experiment, the effects of NaC1 stress on the growth, photosynthetic rate and antioxidant enzymes and so on of melon seedlings were analyzed. The results showed that with the increase of NaC1 stress concentration, the growth of melon seedlings was inhibited; the photosynthetic pigment content and leaf photosynthetic rate were reduced; SOD activity, CAT activity, proline content, GSH content and GSH/GSSG ratio increased first and then decreased, but the contents of POD, H2O2, GSSG and GSH + GSSG increased gradually. The results indicated that under the NaC1 stress, melon seedlings could relieve the damage of NaC1 by regulating their reaction, but with the increase of salt stress, melon seedlings produced irreversible damage.

melon; NaC1 stress; physiological characteristics

S 501

A

1672–6146(2020)03–0059–06

10.3969/j.issn.1672–6146.2020.03.011

郝永勝, 614285156@qq.com;胡克玲, klhu@ahau.edu.cn。

2019–10–18

安徽省重點(diǎn)研究與開發(fā)計(jì)劃項(xiàng)目(201834040011); 安徽省教育廳自然科學(xué)研究重點(diǎn)項(xiàng)目(KJ2018A0154); 安徽農(nóng)業(yè)大學(xué)大學(xué)生創(chuàng)新創(chuàng)業(yè)訓(xùn)練計(jì)劃項(xiàng)目(201810364185); 安徽農(nóng)業(yè)大學(xué)教學(xué)研究項(xiàng)目(2017aujyxm098)。

(責(zé)任編校: 郭冬生)