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    菲對蒿柳生理生化特性的影響

    2020-07-03 08:00:38馬曉東程運河翟飛飛劉俊祥孫振元
    核農(nóng)學(xué)報 2020年8期
    關(guān)鍵詞:電導(dǎo)率可溶性根系

    李 霞 馬曉東 程運河 翟飛飛 劉俊祥 孫振元 韓 蕾

    (1中國林業(yè)科學(xué)研究院林業(yè)研究所/國家林業(yè)局林木培育重點實驗室,北京 100091;2菏澤學(xué)院農(nóng)業(yè)與生物工程學(xué)院(牡丹學(xué)院),山東 菏澤 274000;3北京市林業(yè)果樹科學(xué)研究院,北京 100093;4 河南理工大學(xué)建筑與藝術(shù)設(shè)計學(xué)院,河南 焦作 454000)

    多環(huán)芳烴(polycyclic aromatic hydrocarbons,PAHs)主要來自工業(yè)生產(chǎn)(如焦炭和煤焦油的生產(chǎn)、原油及其衍生物的精煉和分餾等)以及有機物的不完全燃燒等過程,廣泛分布于大氣、土壤和水體中[1]。 PAHs 具有誘變和致畸特性[2-3],可被植物或動物吸收,進入食物鏈威脅人類健康。 在中國東部109 個農(nóng)業(yè)土壤點收集的表層土壤樣本中,PAHs 的總濃度介于8.8~3 880 μg·kg-1之間[4]。 菲是三環(huán)的PAHs,因其在環(huán)境中濃度較高,且是美國環(huán)保局選定的16 種PAHs 優(yōu)先污染物之一,已成為植物與PAHs 互作機制研究的代表[5]。 植物可以通過直接吸收[6]、根系分泌物降解[7]及與微生物互作[8]等方式來降解PAHs。 與草本植物相比,木本植物具有生物量大、生命周期長、根系空間分布更廣等優(yōu)勢。 與生長較快的洋白蠟(Fraxinus pennsylvanica)、 楊樹(Populusdeltoides×P. nigraDN 34)相比,黑柳(Salix nigra)對土壤中PAHs 的降解率更高[9]。 而蒿柳(Salix viminalis)對土壤中PAHs 也具有較好的降解效應(yīng)。 研究表明,將蒿柳種植于PAHs 含量較高的雜酚油土中,10 周后,蒽、熒蒽、芘和苯并[a]芘的含量分別降低67%、79%、77%和43%,而未種植蒿柳土壤中,熒蒽和芘的濃度分別降低35%和19%,蒽和苯并[a]芘未降解[10]。

    植物長期種植于PAHs 污染土壤中,其生長會受到抑制,高濃度PAHs 會導(dǎo)致植物細胞壞死,從而影響植物對環(huán)境的修復(fù)效應(yīng)。 土壤中芴濃度超過一定閾值時,小麥(Triticunt aestivum)、紫花苜蓿(Medicago sativa)和向日葵(Helianthus annuus)的株高、干重和鮮重均受到抑制[11]。 Alkio 等[12]將擬南芥(Arabidopsis thaliana)移植到含菲的培養(yǎng)基上,6 h 后就檢測到死細胞,12 h 后50%的植株死亡。 因此,研究PAHs 對植物生理生化的影響機制非常重要。 光合作用是植物代謝的能量來源,光合器官的損傷會影響植物細胞的生理活動,抑制植物生長。 對番茄(Lycopersicon esculentum)葉片噴施熒蒽,30d后,氣孔導(dǎo)度( stomatal conductance,Gs)、PS Ⅱ的最大光化學(xué)效率(maximal photochemical efficiency,F(xiàn)v/Fm)、葉綠素a(chlorophyll a,Chl a)和葉綠素b(chlorophyll b,Chl b)均顯著降低[13]。 Jin 等[14]將黃瓜(Cucumis sativus)葉片浸在菲溶液中4 h,發(fā)現(xiàn)PSⅡ活性(photosystem Ⅱactivity,PSⅡactivity)和Fv/Fm顯著降低,電子傳遞速率受到抑制。 滲透調(diào)節(jié)是植物抵御逆境的重要機制之一。 而關(guān)于PAHs 對光合及滲透調(diào)節(jié)影響的研究多基于草本植物,缺乏對木本植物的研究,尤其對蒿柳的影響鮮見報道。

    本研究以蒿柳為試驗材料,通過水培的方式,研究不同濃度菲處理對蒿柳株高及生理的影響,在此基礎(chǔ)上選用對植物生長具有顯著抑制的最低濃度進行16 d的菲處理,從氣體交換參數(shù)、光合色素、Rubisco 活性、葉綠素熒光參數(shù)及滲透調(diào)節(jié)物質(zhì)的變化分析菲對蒿柳光合特性和滲透調(diào)節(jié)物質(zhì)的影響機制,旨在為探究PAHs 對植物的毒害機制及加強植物的修復(fù)提供理論依據(jù)。

    1 材料與方法

    1.1 供試材料

    于2019年3月中旬剪取種植于中國林業(yè)科學(xué)院試驗基地蒿柳(引種于中科院沈陽生態(tài)所植物園)同一無性系的一年生枝條,直徑1.0±0.2 cm,在水中剪成10 cm 長插條,扦插在灰色塑料箱(容量20 L)內(nèi),用PVC 板支撐并用海綿固定。 用自來水培養(yǎng)2 周后保留一個枝芽,改為用1/2 Hoagland′s 營養(yǎng)液培養(yǎng),每3 d 換一次營養(yǎng)液,繼續(xù)培養(yǎng)8 周后,用于后續(xù)試驗。供試有機污染物為菲(純度>97%),25℃純水中溶解度為7.3 μmol·L-1。

    1.2 試驗設(shè)計

    將長勢一致的蒿柳移入玻璃容器中適應(yīng)1 周后再進行后續(xù)處理。 先用甲醇溶解菲,再與蒸餾水配制的改良1/2 Hoagland′s 營養(yǎng)液混合,制成菲濃度分別為0.2、0.5、1.0、1.2 mg·L-1的處理液,以未加菲的蒸餾水配制的改良1/2 Hoagland′s 營養(yǎng)液為對照(CK),pH 值6.0。 營養(yǎng)液(CK 與處理)中甲醇濃度為0.05%,甲醇濃度小于0.1%的營養(yǎng)液對植物根系生長無影響[15]。 容器外壁用錫箔紙包裹,保持根系和溶液避光且防止菲的光降解。 每2 d 更換一次處理液,每4 d 隨機交換容器在溫室中的位置,自然光照,對培養(yǎng)液全程通氧。 于試驗第0 和第8 天測定蒿柳的株高,第8 天測定根系活力以及根系和葉片的電導(dǎo)率。

    根據(jù)前期試驗結(jié)果,選擇對植物生長有顯著抑制的最低濃度,處理方法同上。 于試驗第0、第4、第8、第12 和第16 天測定光合色素、脯氨酸、可溶性糖和可溶性蛋白質(zhì)含量以及Rubisco 活性;第5、第10 和第15 天測定植株氣體交換參數(shù)和葉綠素熒光參數(shù)。

    1.3 測定項目與方法

    1.3.1 株高、電導(dǎo)率和根系活力的測定 隨機選取4組植株作為4 個重復(fù),每組3 株,用直尺測量植株基部至頂梢的長度。 葉片電導(dǎo)率取植株中上部葉片,根系電導(dǎo)率取中下部分,采用高俊鳳[16]的方法測定。 根系活力取根系中下部分,采用TTC 法測定(根系活力試劑盒,北京雷根生物公司生產(chǎn))。

    1.3.2 氣體交換參數(shù)的測定 CK 與處理各設(shè)置4 個重復(fù)。 選取蒿柳上部第5 片完全展開葉,采用Li-Cor 6400 便攜式光合測定儀(LI-COR,USA)進行氣體交換參數(shù)測定,包括凈光合速率(net photosynthetic rate,Pn)、胞間CO2濃度(inter cellular CO2concentration,Ci)、Gs 和蒸騰速率(transpiration rate,Tr)。 測定前,植株先在光下活化30 min,測定時控制葉室CO2濃度為400 μmol·mol-1,紅藍光源光強為1 200 μmol·m-2·s-1,溫度25℃,葉室內(nèi)葉片長度為3 cm,葉室兩頭及中間葉寬用直尺測定,葉片面積按2 個梯形計算。 然后將實際葉片面積輸入Li-Cor 6400 的輸出文件,自動重新計算各參數(shù)。

    1.3.3 光合色素含量和Rubisco 活性測定 CK 與處理各設(shè)計3 個重復(fù)。 取蒿柳中上部葉片,去除主脈后剪成0.3 cm×0.3 cm 大小。 稱0.2 g 葉片置于試管中,用80%丙酮溶液定容至20 mL,黑暗浸提48 h 后,測定663、645 和470 nm 波長處的吸光度值,并計算Chl a、Chl b 和類胡蘿卜素(carotenoid,Car)含量[17]。取蒿柳中上部葉片剪碎混勻,放入液氮迅速冷凍,冷凍研磨后稱取0.1 g,加入1 mL 提取液(Tris-鹽酸,KCl,EDTA),冰浴勻漿后超聲破碎,然后4℃、8 000×g離心10 min,取上清,測定340 nm 波長處的吸光度值,計算Rubisco 活性[18]。

    1.3.4 葉綠素熒光參數(shù)測定 CK 與處理各設(shè)置4 個重復(fù)。 選取蒿柳上部第5 片完全展開葉,使用FluorPen FP100 手持式葉綠素熒光儀(北京澳作生態(tài)儀器有限公司),在葉片暗適應(yīng)30 min 后讀取蒿柳中上部葉片的葉綠素熒光參數(shù),包括Fv/Fm、PSⅡ潛在活性(PSⅡpotential activity,F(xiàn)v/F0)、非光化學(xué)淬滅系數(shù)(non photochemical coefficient,NPQ)和光化學(xué)淬滅系數(shù)(photochemical coefficient,qP)。

    1.3.5 滲透調(diào)節(jié)物質(zhì)的測定 CK 與處理各設(shè)置3個重復(fù),取蒿柳中上部葉片剪碎混勻,放入液氮迅速冷凍,冷凍研磨后稱量。 脯氨酸含量測定采用酸性茚三酮法[19],可溶性糖含量測定采用蒽酮比色法[20],可溶性蛋白質(zhì)含量測定采用考馬斯亮藍法[21]。

    1.4 數(shù)據(jù)分析

    生理指標數(shù)據(jù)采用Excel 2016 統(tǒng)計整理,采用GraphPad Prism Version7.0(GraphPad software,La Jolla,CA,USA)作圖,并進行單因素、雙因素方差分析和多重比較。 試驗數(shù)據(jù)均為重復(fù)測定的平均值±標準誤差。

    2 結(jié)果與分析

    2.1 不同濃度菲處理對蒿柳株高及生理的影響

    由表1 可知,與CK 相比,0.2 和0.5 mg·L-1菲處理對蒿柳的株高增長量、根系活力及電導(dǎo)率均無顯著影響;1.0 和1.2 mg·L-1菲處理株高增長量、根系活力及電導(dǎo)率均具有顯著影響。 1.0 與1.2 mg·L-1菲處理之間的根系活力和根系電導(dǎo)率差異顯著,株高增長量和葉片電導(dǎo)率無顯著差異。 表明菲濃度≥1.0 mg·L-1時,蒿柳生長受到抑制,且對生理指標具有顯著影響,后續(xù)選用1.0 mg·L-1菲濃度進行試驗。

    表1 不同濃度菲對蒿柳株高及生理的影響(第8 天)Table 1 Effects of different phenanthrene concentration on relative height and physiology of Salix viminalis (at 8th day)

    2.2 菲脅迫下蒿柳葉片光合特性的變化

    2.2.1 菲脅迫下蒿柳氣體交換參數(shù)的變化 由圖1可知,菲脅迫下,蒿柳葉片的Pn、Gs、Ci 和Tr 整體較CK 顯著或極顯著降低。 與CK 相比,Pn、Gs、Ci 和Tr在第5、第10 天的降幅較大,第5 天分別降低23.0%、33.3%、3.5%、25.7%,第10 天分別降低14.1%、47.0%、19.6%和35.5%。

    2.2.2 菲脅迫下蒿柳光合色素和Rubisco 活性的變化 由圖2 可知,菲脅迫下,蒿柳葉片的Chl a 和Chl b整體較CK 降低,且Chl a 在處理第12 天,Chl b 在處理第8 天較CK 顯著降低;Car 含量與CK 差異不顯著;Rubisco 活性在整個處理過程中均極顯著低于CK,在處理第4、第8、第12 和第16 天分別為CK 的65.7%、84.6%、85.0%和85.7%。

    2.2.3 菲脅迫下蒿柳葉綠素熒光參數(shù)的變化 由圖3 可知,與CK 相比,菲脅迫后蒿柳葉片的Fv/Fm和Fv/F0均未發(fā)生顯著變化;NPQ 僅在第5 天時較CK顯著降低,為CK 的82.2%;qP 則一直顯著或極顯著低于CK,在處理第5、第10 和第15 天分別為CK的46.4%、86.5%和80.5%。

    圖1 菲脅迫下蒿柳Pn、Ci、Gs 和Tr 的變化Fig.1 Changes of Pn,Ci,Gs and Tr of Salix viminalis under phenanthrene treatment

    2.3 菲脅迫下蒿柳葉片滲透調(diào)節(jié)物質(zhì)的變化

    圖3 菲脅迫下蒿柳Fv/Fm、Fv/F0、qP 和NPQ 的變化Fig.3 Changes of Fv/Fm, Fv/F0,qP and NPQ of Salix viminalis under phenanthrene treatment

    滲透調(diào)節(jié)物質(zhì)的合成,是植物抵御逆境的生理機制之一。 菲脅迫下,蒿柳葉片的脯氨酸含量在第8、第12、第16 天較CK 極顯著上升,分別為CK 的1.2、1.15和1.17 倍(圖4-A);可溶性糖含量在處理第4 和第8天極顯著上升,為CK 的1.14 和1.21 倍(圖4-B);可溶性蛋白質(zhì)含量則與CK 均無顯著差異(圖4-C)。

    圖4 菲脅迫下蒿柳滲透調(diào)節(jié)物質(zhì)的變化Fig.4 Changes of osmotic regulators of Salix viminalis under phenanthrene treatment

    3 討論

    3.1 不同濃度菲對蒿柳的影響

    在環(huán)境脅迫下,植物體生長和生理遭受傷害都有一定的濃度閾值。 土壤中芘濃度大于50 mg·kg-1時,菠菜苗期的株高、根和莖葉的鮮重顯著降低,芘濃度大于100 mg·kg-1時,收獲期的根和莖葉干重受到抑制[22]。 本研究通過分析不同濃度菲處理下蒿柳株高、根系活力、根系電導(dǎo)率和葉片電導(dǎo)率發(fā)現(xiàn),1.0 mg·L-1菲處理開始使蒿柳根系膜透性增大,根系活力受到抑制,株高增長量顯著下降,因此選用該濃度研究菲對蒿柳光合特性和滲透調(diào)節(jié)物質(zhì)的影響機理。

    3.2 菲對蒿柳光合特性的影響

    光合速率的降低是多種因素共同作用的結(jié)果,包括氣孔和非氣孔因素。 氣孔的開度對控制植物和環(huán)境之間CO2、O2和H2O 的流動至關(guān)重要。 本研究中菲脅迫使蒿柳葉片的Gs 和Ci 降低,影響其CO2吸收。 有研究發(fā)現(xiàn)紫花苜蓿吸收菲后,菲主要分布在氣孔保衛(wèi)細胞及附近的表皮細胞[23],但是否由于保衛(wèi)細胞和副衛(wèi)細胞失水、膨壓降低,造成氣孔的開閉受到影響[24],尚待進一步研究。 此外,蒿柳葉片Gs 和Tr 降低,可以減少水分散失,提高保水能力,是植物對不利環(huán)境的一種適應(yīng)性策略,但CO2輸入的減少對光合作用是不利的。

    光合作用包括光反應(yīng)和暗反應(yīng),光合色素是植物光反應(yīng)的重要部分,光合色素通常包括Chl a、Chl b 和Car。 Chl a 可將光能轉(zhuǎn)化為化學(xué)能,Chl b 則收集與傳遞光能,過量的光能會損傷光合系統(tǒng),Car 可快速淬滅激發(fā)態(tài)葉綠素,發(fā)揮光保護劑的作用。 研究表明,PAHs 可以破壞植物的光合色素,對豌豆進行1 mg·L-1的熒蒽處理,25 d 后其光合色素含量顯著降低[25]。 本研究中菲脅迫下蒿柳葉片的Chl a 和Chl b均在處理中期低于CK,說明菲對Chl a 和Chl b 具有一定的影響,導(dǎo)致植物體對光能的吸收能力有所下降。CO2同化酶Rubisco 是光合作用碳反應(yīng)的主要催化劑[26-27],卡爾文循環(huán)的第一步羧化反應(yīng)由葉綠體中Rubisco 催化完成。 Huang 等[28]研究表明,蒽抑制了浮萍(Lemna gibba)的碳固定,從而降低了光合作用。本研究結(jié)果與之類似,菲脅迫后,蒿柳葉片的Rubisco活性均顯著低于CK,導(dǎo)致CO2同化受到抑制,說明Rubisco 活性降低,從而碳固定受到影響,導(dǎo)致菲脅迫后光合速率下降。

    Fv/Fm是指原初光化學(xué)反應(yīng)的最大量子產(chǎn)額,通常用來衡量PSⅡ利用光能的能力。Fv/F0代表植物受脅迫后PSⅡ潛在活性的變化。 NPQ 反映PSⅡ反應(yīng)中心對天線色素吸收過量光能后的熱耗散能力及光合機構(gòu)的損傷程度[29]。 Jajoo 等[30]將擬南芥種植于土壤和蛭石(1 ∶1)中,分別用25 μmol·L-1的萘、蒽、芘每天澆灌,5 周后,植物生長受到抑制,PSⅡ活性顯著降低。 本研究與其結(jié)果不同,1.0 mg·L-1菲脅迫下,雖然蒿柳生長受到抑制,但其Fv/Fm和Fv/F0均無顯著變化,說明PSⅡ原初光能轉(zhuǎn)化效率和潛在活性未受到影響,這與PAHs 的濃度以及植物的種類有關(guān),說明蒿柳在一定濃度的菲脅迫下,首先受影響的不是PSⅡ潛在活性。 NPQ 在菲脅迫第5 天較CK 顯著降低,之后與CK 相比差異均不顯著,說明蒿柳在菲脅迫初期,通過熱耗散減輕過剩光能傷害的能力降低,導(dǎo)致其容易受到高溫等逆境的傷害。 光化學(xué)淬滅反映了PSⅡ原初電子受體QA 的氧化還原狀態(tài)和PSⅡ開放中心的開放程度,其系數(shù)qP 可以反映PSⅡ的電子傳遞活性的大小[29]。 qP 在菲脅迫第5 和第15 天顯著低于CK,說明類囊體膜中光化學(xué)電子傳遞的份額有顯著變化,這與Kummerová 等[25]和Jin 等[14]的研究結(jié)果一致。Duxbury 等[31]利用14C 標記PAHs,發(fā)現(xiàn)PAHs 可在植物的類囊體膜上積累,從而影響葉綠體的有序排列,干擾電子傳遞。 此外,PAHs 轉(zhuǎn)化的產(chǎn)物,特別是醌類化合物,可能影響PSⅡ和PSI 的電子運輸[32]。 本研究中,菲抑制了PSⅡ電子傳遞活性,但其影響機制尚不清楚,應(yīng)結(jié)合菲在植物體內(nèi)的分布和代謝做進一步研究。

    3.3 菲對蒿柳滲透調(diào)節(jié)物質(zhì)的影響

    滲透調(diào)節(jié)物質(zhì)的積累是植物提高自身耐性的一個重要途徑,不同植物其滲透調(diào)節(jié)物質(zhì)的響應(yīng)機制不同。如秋茄[Kandelia candel(L.)Druce]葉片的可溶性糖含量隨著PAHs 濃度的增加而增加[33],而擬南芥葉片的可溶性糖含量則隨著蒽脅迫濃度的增加而減少[34]。Sivaram 等[35]通過代謝組學(xué)研究得出芘可誘導(dǎo)玉米葉片的脯氨酸含量顯著上升。 本研究中,菲脅迫后蒿柳葉片的可溶性蛋白質(zhì)含量與CK 相比無顯著差異,而脯氨酸和可溶性糖含量顯著增加,說明蒿柳可以通過這2 種滲透調(diào)節(jié)物質(zhì)抵御菲脅迫,增加細胞內(nèi)的溶質(zhì)濃度,調(diào)節(jié)滲透勢,增強其適應(yīng)性,其中可溶性糖主要參與對菲的早期響應(yīng)。

    4 結(jié)論

    隨著菲濃度的增加,蒿柳的生長和根系活力受到抑制,膜透性增大,表明菲對蒿柳具有毒害作用。 菲濃度為1.0 mg·L-1時,蒿柳葉片的光合能力降低。 菲脅迫使qP 顯著下降,PSⅡ的電子傳遞活性受到抑制,光反應(yīng)受到影響;同時Gs 和Ci 下降、Rubisco 活性顯著降低,CO2供應(yīng)和同化減少,暗反應(yīng)受到抑制,導(dǎo)致葉片光合作用下降。 此外,脯氨酸和可溶性糖是抵御菲脅迫的重要滲透調(diào)節(jié)物質(zhì)。 本研究為探究菲對木本植物的毒害機制奠定了基礎(chǔ),今后還需進一步研究菲抑制Rubisco 活性的原因,探究是否由于菲在植物體內(nèi)發(fā)生了代謝,改變了胞內(nèi)環(huán)境,從而影響了該酶的激活。

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