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    乳汁中豬流行性腹瀉IgA抗體間接ELISA方法的建立

    2020-06-12 12:21:42潘孝成芮聰杰沈學懷趙瑞宏胡曉苗侯宏艷周學利張丹俊
    養(yǎng)豬 2020年3期
    關鍵詞:乳汁抗體陽性

    潘孝成,芮聰杰,2,沈學懷,趙瑞宏,尹 磊,戴 銀,胡曉苗,侯宏艷,周學利,張丹俊

    (1.安徽省農(nóng)業(yè)科學院畜牧獸醫(yī)研究所,安徽省畜禽疫病研究中心,畜禽產(chǎn)品安全工程安徽省重點實驗室,安徽 合肥 230031;2.伊寧市動物衛(wèi)生監(jiān)督所,新疆 伊寧 835000)

    豬流行性腹瀉(Porcine epidemic diarrhea,PED)是由豬流行性腹瀉病毒(Porcine epidemic diarrhea virus,PEDV)引起的一種以水樣腹瀉、脫水、嘔吐為主要特征的急性、高度接觸性腸道傳染病,各個品種和各個年齡階段的豬均易感,尤其對剛出生至10日齡以內(nèi)的哺乳仔豬影響最為嚴重,表現(xiàn)為高病死率,病死率可高達100%[1-3]。初生仔豬免疫系統(tǒng)不完善,通過母源抗體獲得被動免疫是預防仔豬PED的重要方法[4]。PEDV主要侵害被感染仔豬的小腸上皮細胞,腸道黏膜免疫在抗病毒感染中發(fā)揮著重要的作用,IgA抗體的水平與機體抵抗PEDV感染的能力正相關[5-9]。因此建立檢測母豬乳汁中PEDV IgA抗體的間接ELISA方法,開展母豬PEDV免疫水平和效果的有效評估,對PED的防控具有重要的臨床實踐意義。

    1 材料與方法

    1.1 試驗時間與地點

    試驗于2019年1—5月在安徽省農(nóng)業(yè)科學院畜牧獸醫(yī)研究所/安徽省畜禽疫病研究中心進行。

    1.2 主要材料

    PEDV-SD株,安徽省農(nóng)業(yè)科學院畜牧獸醫(yī)研究所獸醫(yī)研究室分離保存;Vero細胞、PEDV N蛋白重組質粒(pET-28B-N)及PEDV、豬傳染性胃腸炎病毒(TGEV)、豬口蹄疫病毒(FMDV)、豬瘟病毒(CSFV)、豬偽狂犬病病毒(PRV)、豬繁殖與呼吸綜合征病毒(PRRSV)陽性乳汁樣品和PEDV陰性乳汁樣品由安徽省農(nóng)業(yè)科學院畜牧獸醫(yī)研究所獸醫(yī)研究室制備保存;BL21(DE3)感受態(tài)細胞購自上海生工生物工程有限公司;四甲基聯(lián)苯胺(TMB)購于索萊寶生物科技有限公司;山羊抗豬IgA-HRP購于Abcam公司;BCA蛋白濃度測定試劑盒購于碧云天生物科技有限公司;Tween-20購于德國Bio froxx公司;牛血清白蛋白(BSA)購于美國Sigma公司;96孔ELISA包被板購于Corning公司。

    1.3 PEDV全病毒純化抗原的制備

    將PEDV-SD毒株接種于生長狀態(tài)良好、處于對數(shù)生長期的Vero單層細胞,當細胞病變達到80%時收獲病毒,反復凍融3次后,收集320 mL病毒液,加入32 mL的Triton X-100,室溫振蕩10 min,6 000 r/min 4℃高速離心20 min,收集上清液,于超速冷凍離心機45 000 r/min 4℃超速離心120 min,棄去上清液,沉淀用適量0.01 mol/L,pH為7.4的PBS充分溶解,即得豬流行性腹瀉病毒純化抗原,測定抗原濃度后分裝,-80℃冷凍保存。

    1.4 PEDV重組N蛋白的制備和鑒定

    將pET-28B-N重組質粒轉入BL21(DE3),接于含有卡那霉素的LB液體培養(yǎng)基中,250 r/min,37℃振蕩培養(yǎng),當培養(yǎng)至OD600nm值達到0.4~0.6時,加入0.5 mmol/L的IPTG在15℃條件下誘導表達24 h,收集菌液,超聲波裂解,10 000 g離心2 min,收集上清液過鎳柱進行純化表達的重組N蛋白,并進行SDS-PAGE分析和Western blot鑒定。收集純化蛋白,-80℃保存?zhèn)溆谩?/p>

    1.5 間接ELISA方法的建立及優(yōu)化

    采用方陣滴定法,確定間接ELISA的PEDV N蛋白及純化全病毒兩種抗原的最佳包被濃度(0.5~8 μg/mL),包被液[0.01 mol/L 的磷酸鹽緩沖液(PBS,pH 7.4),0.05 mol/L 的碳酸鹽緩沖液(CBS,pH 9.6)],抗原包被條件(37℃孵育2 h后4℃16 h、4℃ 16 h、37 ℃孵育 2 h),封閉液的選擇[1%BSA、5%BSA、5%脫脂奶粉(SMP)],待檢乳汁樣品的稀釋濃度(1∶10~1∶270),待檢乳汁樣品的反應時間(15~90 min),山羊抗豬 IgA-HRP 稀釋濃度(1∶5 000~1∶100 000),山羊抗豬IgA-HRP作用時間(15~90 min),TMB顯色時間(5~20 min)。

    1.6 臨界值的確定

    按以PEDV N蛋白及純化全病毒兩種抗原為包被抗原建立的兩種IgA抗體間接ELISA檢測方法操作,對36份PEDV IgA抗體陰性乳汁樣品進行檢測,每份樣品做兩個重復孔,計算出所檢測陰性樣品OD450nm值的平均值(X)和標準方差(SD)。樣品OD450nm值≥X+3×SD為陽性;樣品OD450nm值≤X+2×SD為陰性;介于兩者之間為可疑。

    1.7 敏感性試驗

    將PEDV抗體為陽性的乳汁樣品倍比稀釋,按已建立的兩種IgA抗體間接ELISA檢測方法操作測OD450nm,根據(jù)陰陽性臨界值,判斷其陰陽性,確定兩種方法的最低檢測稀釋度。

    1.8 特異性試驗

    按已建立的兩種IgA抗體間接ELISA檢測方法操作,對本實驗室制備的TGEV、PRV、CSFV、FMDV、PRRSV陽性乳汁樣品進行檢測,設立PEDV陽性和陰性乳汁對照,測OD450nm,根據(jù)陰陽性臨界值,判斷其陰陽性,評估兩種方法的特異性。

    1.9 重復性試驗

    選取4份陽性乳汁樣品及1份陰性乳汁樣品,每份樣品做4個重復,按已建立的兩種IgA抗體間接ELISA檢測方法操作,使用同批次PEDV N蛋白和濃縮純化的全病毒抗原,包被同一批次的酶標板,進行批內(nèi)重復試驗,另外包被不同3批次的酶標板,進行批間重復試驗。

    1.10 臨床樣品的檢測

    按已建立的兩種IgA抗體間接ELISA檢測方法操作,對采集自河南、江蘇、安徽地區(qū)的6家開展PEDV免疫的種豬場(免疫次數(shù)為2次或3次)的共計198份母豬初乳樣品進行檢測,測OD450nm,根據(jù)陰陽性臨界值,判斷其陰陽性。

    2 結果

    2.1 表達蛋白的分析和純化

    重組質粒轉入BL21(DE3),誘導表達后,菌液經(jīng)超聲波裂解,離心后,收集上清液,過親和層析柱純化獲取重組N蛋白,SDS-PAGE分析顯示(圖1A),上清液、沉淀和純化后的產(chǎn)物均出現(xiàn)一條分子量約為58 KDa的條帶,與預期大小一致,目的蛋白以可溶性表達為主。利用PEDV陽性血清進行Westernblot檢測(圖1B),在目的位置出現(xiàn)明顯的特異性條帶。

    2.2 間接ELISA方法的建立及反應條件確定

    經(jīng)測定純化后的PEDV全病毒和重組N蛋白濃度分別為3.95 mg/mL和1.23 mg/mL,以它們?yōu)榘豢乖?,分別建立檢測PEDV IgA抗體的間接ELISA檢測方法。通過方陣滴定法,確定了最佳反應條件(表1)。

    表1 間接ELISA檢測方法反應條件優(yōu)化結果

    2.3 陰陽性臨界值的確定

    用本試驗建立的兩種間接ELISA方法分別檢測36份陰性乳汁樣品,結果顯示,以PEDV全病毒作為包被抗原,樣品OD450nm≥0.431時,判定為陽性;OD450nm≤0.367時,判定為陰性;介于二者之間為可疑。以重組N蛋白為包被抗原,樣品OD450nm≥0.446時,判定為陽性;OD450nm≤0.381時,判定為陰性;介于二者之間為可疑。

    2.4 特異性試驗

    用本試驗建立的兩種間接ELISA方法在相同的反應條件下,分別對TGEV、CSFV、PRV、FMDV、PRRSV陽性樣品進行檢測,并設置PEDV陰陽性乳汁樣品作為對照,結果顯示(表2),除陽性乳汁樣品外,其余樣品結果均為陰性,表明本試驗所建立的兩種間接ELISA方法均具有較好的特異性。

    表2 間接ELISA特異性檢測結果

    2.5 敏感性試驗

    對本試驗建立的兩種間接ELISA方法進行敏感性檢測,結果顯示(圖2),以PEDV全病毒作為包被抗原,當陽性乳汁樣品稀釋到1∶960時,仍可檢測為陽性(OD450nm=0.699);以PEDV重組N蛋白為包被抗原,當陽性乳汁樣品稀釋到1∶320時,仍可檢測為陽性(OD450nm=0.485)。說明建立的兩種間接ELISA方法均具有良好的敏感性。

    2.6 重復性試驗

    從表3的檢測結果可以看出,兩種間接ELISA方法的批內(nèi)變異系數(shù)和批間變異系數(shù)均在3.39%~8.87%之間,變異系數(shù)均小于10%,表明本試驗建立的兩種間接ELISA方法均具有良好的可重復性。

    表3 間接ELISA重復性試驗(n=5)

    2.7 臨床樣品的檢測

    用本試驗建立的兩種間接ELISA方法,分別檢測198份來自6家種豬場的乳汁樣品,結果顯示,以PEDV全病毒作為包被抗原,檢測樣本的陽性率為92.93%(184/198);以重組N蛋白為包被抗原,檢測樣本的陽性率為90.40%(179/198)。兩種方法的檢測符合率為97.48%。

    3 討論

    本試驗以純化的PEDV全病毒抗原和重組N蛋白作為包被抗原,分別建立了檢測母豬乳汁中IgA抗體的間接ELISA方法,其陽性樣品檢測的最低稀釋度分別是1∶960和1∶320,批內(nèi)和批間變異系數(shù)均小于 10%(3.39%~8.87%),與 TGEV、CSFV、PRV、FMDV、PRRSV陽性樣品無交叉反應,兩種方法對臨床樣品的檢測符合率為97.48%。說明本試驗建立的兩種檢測PEDV IgA抗體的間接ELISA方法均具有良好的敏感性、重復性和特異性,能夠用于檢測和評估母豬乳汁中PEDV感染和免疫產(chǎn)生的IgA抗體水平,可為PEDV的感染和免疫效果的評價提供有效的檢測方法。

    豬流行性腹瀉雖有多家商品化疫苗上市應用,但疫苗免疫對豬流行性腹瀉的控制成效并不顯著,免疫豬場的發(fā)病哺乳仔豬仍呈現(xiàn)高發(fā)病率和高病死率,豬流行性腹瀉目前在我國呈常態(tài)化,仍是嚴重危害養(yǎng)豬生產(chǎn)的重要疫病之一[10]。這種免疫效果不顯著的原因究竟是免疫程序不合理,還是疫苗毒株問題,有待進一步分析確定。PEDV主要侵害哺乳仔豬,并造成其大量死亡,特別10日齡內(nèi)仔豬,而斷奶豬和成年豬,雖然也可感染發(fā)病,但大多可康復[1-2]。大量研究表明,哺乳仔豬主要通過母豬初乳中IgA抗體而獲得PED的被動免疫保護,因此母源抗體中IgA抗體水平高低對保護初生仔豬抗PEDV感染極為關鍵[11-12]。因此,本試驗建立的乳汁中IgA抗體檢測間接ELISA方法,可用于評估PEDV疫苗免疫效果和水平以及免疫程序的合理性,將有助于更好開展PED的防控。

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