周添標(biāo) 鐘紅珍 鐘志青 謝偉基 翁文娟
(汕頭大學(xué)醫(yī)學(xué)院第二附屬醫(yī)院腎內(nèi)科,廣東省汕頭市 515041,電子郵箱:zhoutb@aliyun.com)
腎間質(zhì)纖維化(renal interstitial fibrosis,RIF)是導(dǎo)致終末期腎病的共同病理變化,目前其發(fā)生機制尚未完全明確,缺乏有效的治療手段及藥物[1]。全反式維甲酸(all-trans retinoic acid,ATRA)是維生素A的衍生物之一,其在體內(nèi)通過維甲酸受體(retinoic acid receptor,RAR)發(fā)揮作用,目前發(fā)現(xiàn)RAR有3種,分別是RARα、RARβ和RARγ[2]。阻抑素是一種抗增殖蛋白,目前發(fā)現(xiàn)其具有調(diào)控細胞分化及參與細胞線粒體呼吸鏈的作用及功能[3-4]。我們在前期研究中發(fā)現(xiàn),阻抑素參與細胞外基質(zhì)的積聚和RIF的發(fā)病過程,而ATRA可以通過調(diào)控阻抑素的表達而發(fā)揮抗RIF的作用[5-6],但具體的作用機制尚不明確。本研究旨在探討ATRA是否可通過RARα調(diào)控阻抑素表達,從而發(fā)揮延緩RIF進展的作用。
1.1 實驗動物 36只無特定病原體級雄性SD大鼠,6周齡,體質(zhì)量120~150 g,購于汕頭大學(xué)醫(yī)學(xué)院實驗動物中心[SCXK(粵)2017-0017]。所有大鼠常規(guī)喂養(yǎng)。
1.2 主要試劑及儀器 EliVisionTMplus廣譜檢測試劑盒購自福建邁新生物技術(shù)公司(批號:KIT-9902);RARα、阻抑素、Ⅳ型膠原蛋白(collagen Ⅳ,ColⅣ) 和纖維連接蛋白(fibronectin,FN)抗體均購自美國Abcam公司(批號依次為ab28767、ab75766、ab236640、ab2413);TRIzolTMLS Reagent試劑盒購自Invitrogen公司(貨號:10296010);反轉(zhuǎn)錄試劑盒購自TaKaRa公司(貨號:RR047A)。Vectra成像分析系統(tǒng)購自美國PerkinElmer公司;ABI 7500型熒光定量PCR儀購自ABI公司。
1.3 RIF模型建立及干預(yù)方法 采用隨機數(shù)字表法將大鼠分為ATRA組﹑RIF模型組和假手術(shù)組,每組12只。腹腔注射濃度為30 mL/L的水合氯醛(30 mL/kg)麻醉大鼠后,RIF模型組和ATRA組,在大鼠左背側(cè)做長約3 cm左右的切口,然后暴露腎臟,使用棉簽尋找并鈍性分離左側(cè)輸尿管,在腎盞和腎下極處采用3-0絲線分別結(jié)扎輸尿管,并離斷輸尿管,術(shù)畢縫合肌肉及皮膚;假手術(shù)組大鼠經(jīng)水合氯醛麻醉后開腹只探及腎包膜。從術(shù)前第1天開始,ATRA組大鼠給予ATRA灌胃[15 mg/(kg·d)],1次/d,其余兩組大鼠采用等量生理鹽水灌胃,直至處死。分別在造模后第2周末及第4周末,每組各處死6只大鼠,摘取左側(cè)腎臟組織分成兩份,其中一份采用100 ml/L的甲醛溶液固定用于病理及免疫組化檢測,另一份于液氮中速凍后,置于-80℃冰箱中用于mRNA檢測。
1.4 腎臟組織病理檢查 采用常規(guī)石蠟包埋方法制作標(biāo)本,切片厚3 μm,行Masson染色后,顯微鏡下觀察腎臟組織的病理改變情況。隨機選擇腎間質(zhì)區(qū)域20個視野(400倍),計算RIF指數(shù)[7],RIF指數(shù)(%)=(纖維化面積/腎小管間質(zhì)總面積)×100%。
1.5 檢測腎臟組織中RARα、阻抑素、ColⅣ和FN的蛋白表達 按照EliVisionTMplus廣譜檢測試劑盒說明書,采用免疫組織化學(xué)法進行檢測[8]。石蠟切片放置在60℃溫箱中烘烤3 h,采用二甲苯脫蠟和梯度乙醇水化后,使用自來水沖洗,磷酸緩沖鹽溶液(0.1 mol/L)沖洗3次,3 min/次;采用檸檬酸鹽緩沖液(0.01 mol/L)對腎臟組織抗原進行高溫高壓修復(fù)10 min,室溫冷卻20 min后,磷酸緩沖鹽溶液沖洗3次,3 min/次;滴加3%過氧化氫溶液,常溫孵育10 min以封閉內(nèi)源性過氧化氫酶,磷酸緩沖鹽溶液沖洗3次,3 min/次;滴加兔抗大鼠RARα(1 ∶300)、阻抑素(1 ∶200)、ColⅣ(1 ∶100)及FN(1 ∶100)抗體,4℃孵育過夜,常溫復(fù)溫30 min,磷酸緩沖鹽溶液沖洗3次,3min/次;滴加聚合物增強劑(試劑A),室溫下孵育20 min,磷酸緩沖鹽溶液沖洗3次,3 min/次;滴加酶標(biāo)抗鼠/兔聚合物(試劑B),室溫下孵育30 min,磷酸緩沖鹽溶液沖洗3次,3 min/次;滴加新鮮配制的二氨基聯(lián)苯胺顯色劑;蘇木素復(fù)染(約15 s),0.1%鹽酸酒精分化,后使用磷酸緩沖鹽溶液返藍;自來水沖洗,梯度酒精脫水干燥,二甲苯透明,最后用中性樹膠封片。同時用磷酸緩沖鹽溶液代替一抗作為陰性對照。隨機選擇腎間質(zhì)區(qū)域20個視野(400倍),盡量避開大血管,選擇黃色區(qū)域為表達區(qū)域,采用Vectra成像分析系統(tǒng)進行半定量分析。分別統(tǒng)計3組切片陽性反應(yīng)的平均吸光度(A)值。
1.6 檢測腎臟組織中RARα和阻抑素mRNA的表達 從-80℃冰箱中取50 mg的新鮮冰凍腎臟組織,采用TRIzolTMLS Reagent試劑盒提取組織的總RNA,采用紫外分光光度計測A260、A280值及其比值,并計算RNA含量,采用1.5%瓊脂糖凝膠電泳確定總RNA的完整性和是否有降解,確定RNA完整后采用反轉(zhuǎn)錄試劑盒進行反轉(zhuǎn)錄。冰上充分溶解反轉(zhuǎn)錄試劑盒中相關(guān)試劑后行下列操作:PCR管中加入總RNA 0.3 μg,Oligo(dT)Primer 1 μL,再加無RNA酶水至12 μL,置于65℃下孵育5 min;然后在各個PCR管中加入2 μL 10 mmol/L dNTP混合物、4 μL 5×反應(yīng)緩沖液、1 μL RevertAidTMM-MuLv和1 μL核糖核酸酶抑制劑,反應(yīng)體系總體積20 μL,PCR儀上42℃ 60 min、70℃ 5 min完成返轉(zhuǎn)錄,獲得cDNA。將cDNA放置于-20℃冰箱中貯存和備用。根據(jù)TakaRa公司生產(chǎn)的PCR反應(yīng)體系(貨號:RR820A)配置反應(yīng)體系。反應(yīng)體系(20 μL):cDNA 1 μL,PCR上游引物(10 μM)0.5 μL,PCR下游引物(10 μM)0.5 μL,2.5×RealMasterMix/SYBR溶液9 μL,超純水9 μL。 PCR反應(yīng)條件:預(yù)變性時間為95℃ 10 min,變性68℃ 15 s,退火60℃ 30 s,延伸68℃ 30 s,循環(huán)數(shù)設(shè)定為40。于ABI 7500熒光定量PCR儀進行PCR反應(yīng)。采用β肌動蛋白作為內(nèi)參,引物由上海生工公司設(shè)計和合成。RARα上游引物為5′-ATGTTCCCCAAGATGCTGAT-3′,下游引物為5′-CTGTCCGCTTAGAGTGTCCAA-3′;阻抑素:上游引物為5′-AAGCAGAGAGAGCCAGATTTGT-3′,下游引物為5′-TGATAAGCAATGTCCTCAGCAG-3′;β肌動蛋白:上游引物為5′-GCCCCTGAGGAGCACCCTGT-3′,下游引物為5′-ACGCTCGGTCAGGATCTTCA-3′。采用相對定量2-△△Ct法[9]計算RARα、阻抑素mRNA的相對表達量,其中△Ct=Ct(目的基因)-Ct(內(nèi)參基因),△△Ct=△Ct(試驗組)-△Ct(對照組)。以假手術(shù)組為對照組,其各目的基因mRNA表達量為1。
1.7 統(tǒng)計學(xué)分析 采用SPSS 13.0軟件進行統(tǒng)計分析。計量資料以(x±s)表示,組間比較采用單因素方差分析或t檢驗;采用Pearson檢驗進行相關(guān)分析。以P<0.05為差異有統(tǒng)計學(xué)意義。
2.1 3組大鼠的RIF指數(shù)比較 Masson染色顯示,腎小管及腎間質(zhì)細胞胞漿、肌纖維染為紅色,細胞核為藍色,膠原纖維則染為綠色為陽性。RIF模型組腎間質(zhì)綠色陽性面積較假手術(shù)組明顯增大,說明RIF模型構(gòu)建成功。造模后的第2周末和第4周末,假手術(shù)組、ATRA組、RIF模型組的RIF指數(shù)依次升高(均P<0.05);在ATRA組、RIF模型組,第4周末的RIF指數(shù)均高于第2周末(均P<0.05)。見圖1和表1。

表1 3組大鼠的RIF指數(shù)比較(x±s,%)
注:與假手術(shù)組比較,*P<0.05;與RIF模型組比較,&P<0.05。

圖1 3組大鼠腎臟組織Masson染色結(jié)果(×400)
2.2 3組大鼠腎小管間質(zhì)ColⅣ和FN蛋白表達水平比較 造模后的第2周末和第4周末,假手術(shù)組、ATRA組、RIF模型組的ColⅣ和FN蛋白相對表達水平依次升高(均P<0.05);在ATRA組、RIF模型組,第4周末的ColⅣ和FN蛋白相對表達水平均高于第2周末(均P<0.05)。見圖2~3和表2。

表2 3組大鼠腎小管間質(zhì)ColⅣ和FN蛋白的相對表達水平比較(x±s)
注:與假手術(shù)組比較,*P<0.05;與RIF模型組比較,&P<0.05。

圖2 3組大鼠腎臟組織ColⅣ蛋白表達情況(免疫組化染色,×400)

圖3 3組大鼠腎臟組織FN蛋白表達情況(免疫組化染色,×400)
2.3 3組大鼠腎臟組織RARα、阻抑素蛋白和mRNA的表達水平比較 造模后的第2周末和第4周末,假手術(shù)組、ATRA組、RIF模型組的RARα、阻抑素的mRNA及蛋白相對表達水平依次降低(均P<0.05);在ATRA組、RIF模型組,第4周末RARα、阻抑素的mRNA及蛋白相對表達水平均低于第2周末(均P<0.05)。見表3~4及圖4~5。

表3 3組大鼠腎臟組織RARα及阻抑素蛋白的相對表達水平比較(x±s)
注:與假手術(shù)組比較,*P<0.05;與RIF模型組比較,&P<0.05。

表4 3組大鼠腎臟組織RARα及阻抑素mRNA的相對表達水平比較(x±s)
注:與假手術(shù)組比較,*P<0.05;與RIF模型組比較,&P<0.05。

圖4 3組大鼠腎臟組織RARα蛋白表達情況(免疫組化染色,×400)

圖5 3組大鼠腎臟組織阻抑素蛋白表達情況(免疫組化染色,×400)
2.4 相關(guān)性分析 模型組中,第2、4周末時,RARα蛋白表達水平與阻抑素蛋白表達水平均呈正相關(guān)(r=0.776,P=0.001;r=0.896,P=0.001);RAR α蛋白表達水平與RIF指數(shù)、ColⅣ蛋白和FN蛋白表達水平均呈負相關(guān)(r=-0.823、-0.845、-0.875,P=0.001、0.001、0.001;r=-0.889、-0.879、-0.816,P=0.001、0.001、0.001)。
ATRA是維生素A重要的一種衍生物,目前有不少學(xué)者發(fā)現(xiàn)其具有抗細胞外基質(zhì)積聚及抗纖維化的作用[10-12],但其抗RIF的機制尚不明確。部分研究表明ATRA可以發(fā)揮腎臟保護性作用。如Zhang等[13]通過阿霉素構(gòu)建腎小球硬化大鼠模型進行研究,發(fā)現(xiàn)ATRA可能通過抑制瞬時受體電位陽離子通道6的表達,起到延緩腎小球硬化的作用。Tamaki等[14]對糖尿病腎病小鼠模型進行研究發(fā)現(xiàn),ATRA可能通過RARα抑制骨形態(tài)發(fā)生蛋白4的表達,發(fā)揮減輕糖尿病小鼠腎小球基質(zhì)積聚的作用。Liu等[15]通過5/6腎臟組織切除方法構(gòu)建腎小球硬化大鼠模型,發(fā)現(xiàn)經(jīng)ATRA治療后腎小球硬化大鼠腎臟組織纖溶酶原激活物抑制劑-1和α平滑肌肌動蛋白表達下降,腎小球硬化延緩,腎功能得到改善。本研究進一步探討ATRA是否可通過RARα調(diào)控阻抑素的表達,起到延緩RIF的作用。
本研究結(jié)果顯示,與假手術(shù)組比較,RIF模型組大鼠腎臟組織RIF指數(shù)、ColⅣ和FN蛋白表達增加(P<0.05),且第4周末的水平均高于第2周末,說明該組大鼠的RIF在進展;而RIF模型組RARα、阻抑素的mRNA和蛋白表達水平均較假手術(shù)組下降,且第4周末的水平更低,且RAR α蛋白表達水平與RIF指數(shù)、ColⅣ蛋白和FN蛋白表達水平均呈負相關(guān),這提示RARα可能是RIF的保護性因子。采用ATRA治療后,雖然第4周末ATRA組大鼠RIF指數(shù)、ColⅣ和FN蛋白表達亦高于第2周末,但各個時間點其水平均較RIF模型組下降(P<0.05),提示ATRA可延緩大鼠RIF的進展。此外,造模后的第2周末和第4周末,ATRA組大鼠RARα、阻抑素的mRNA和蛋白表達水平均高于RIF模型組,且RIF大鼠的RARα蛋白表達與阻抑素蛋白表達水平呈正相關(guān)(均P<0.05),因此我們推測ATRA可能通過上調(diào)RARα表達,對阻抑素表達進行調(diào)控,從而發(fā)揮延緩RIF進展的作用。
綜上所述, ATRA能抑制RIF大鼠腎臟組織ColⅣ和FN的表達,同時,還可能通過上調(diào)RARα表達,以調(diào)控阻抑素的表達,從而起到延緩RIF進展的作用,但具體機制有待體外實驗進一步研究。