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    舒洛地特通過抑制NOX4/NLRP3通路減輕高糖誘導(dǎo)的視網(wǎng)膜血管損傷*

    2020-05-26 08:56:42何學(xué)敏彭榮東李靜仁付夏楠石國軍陳燕銘
    中國病理生理雜志 2020年4期
    關(guān)鍵詞:小鼠糖尿病

    李 婷,何學(xué)敏,彭榮東,李靜仁,付夏楠,周 麗,石國軍△,陳燕銘△

    (1中山大學(xué)附屬第三醫(yī)院內(nèi)分泌與代謝性疾病科,廣東省糖尿病防治重點實驗室,廣東廣州510630;2中山大學(xué)附屬第三醫(yī)院臨床免疫中心,廣東廣州510630)

    糖尿病視網(wǎng)膜病變(diabetic retinopathy,DR)是糖尿?。╠iabetes mellitus,DM)常見的微血管并發(fā)癥,是成年人最常見的致盲性眼病[1],由于其缺乏特異性的治療方法,重點在于早期篩查早期防治,研究其發(fā)病機制及防治方法具有重大現(xiàn)實意義。內(nèi)皮細胞是視網(wǎng)膜微血管的重要組成部分,對維持視網(wǎng)膜微血管的結(jié)構(gòu)和功能完整性起重要作用。炎癥與DR的發(fā)生發(fā)展密切相關(guān),DR患者[2]的房水和血清中都發(fā)現(xiàn)了白細胞介素1β(interleukin-1β,IL-1β)和IL-6等炎癥相關(guān)因子的增加。因此,抑制促炎癥分子,保護內(nèi)皮細胞,減輕DR的血管滲漏[3],是目前研究的熱點。

    IL-1β是核苷酸結(jié)合寡聚域樣受體蛋白3(nucleotide-binding oligomerization domain-like receptor protein 3,NLRP3)炎癥小體(inflammasome)激活后產(chǎn)生的促炎介質(zhì)之一,敲除IL-1β受體基因緩解了小鼠DR的進展[4]。NLRP3炎癥小體是一個分子復(fù)合體,由3個部分組成:感受蛋白為NLRP3,銜接蛋白為含胱天蛋白酶募集結(jié)構(gòu)域的凋亡相關(guān)斑點樣蛋白(apoptosis-associated speck-like protein containing a caspase recruitment domain,ASC),效應(yīng)蛋白為前體胱天蛋白酶1(procaspase-1,Pro Casp-1)。NLRP3在DR中被激活[5]。抑制NLRP3炎癥小體可保護糖尿病誘導(dǎo)的內(nèi)皮細胞間緊密連接蛋白1(zonula occludens-1,ZO-1)和VE-鈣黏著蛋白(VE-cadherin,VE-Cad)[6],這是減輕血管滲漏重要的一環(huán)。

    活性氧簇(reactive oxygen species,ROS)對內(nèi)皮細胞有損傷作用[7]。NADPH 氧化酶(NADPH oxidase,NOX)是脈管系統(tǒng)ROS主要的來源之一[8]。高糖刺激下,內(nèi)皮細胞中NOX4/ROS激活并誘導(dǎo)NLRP3炎癥小體活化[9];ROS還可通過降解細胞間黏附蛋白損傷內(nèi)皮細胞[10]。另外,研究表明DR患者中ROS升高[11]。這些研究表明,NOX4是誘導(dǎo)DR氧化應(yīng)激和血視網(wǎng)膜屏障分解的關(guān)鍵分子。

    舒洛地特(sulodexide,SDX)由80%的低分子肝素和20%的硫酸皮膚素構(gòu)成,屬于葡糖胺聚糖(glycosaminoglycans,GAGs)[12]。臨床研究顯示,SDX 干預(yù)的糖尿病患者視網(wǎng)膜的滲漏減少[13],提示SDX具備治療DR的潛能。在體外實驗中,SDX在內(nèi)皮細胞中抑制高糖誘導(dǎo)的ROS生成和炎癥因子分泌[14],提示SDX可能具有抑制NOX等酶活性的作用。

    本研究旨在探索SDX對糖尿病視網(wǎng)膜尤其是視網(wǎng)膜微血管內(nèi)皮細胞的影響及其潛在機制。本課題組前期研究提示SDX干預(yù)減輕了DR小鼠的視網(wǎng)膜滲漏,NLRP3炎癥小體也同時減少[15]。因此,本研究重點關(guān)注SDX抑制NLRP3炎癥小體活化的機制。

    材料和方法

    1 動物與細胞

    6周齡的C57BL/6小鼠購自廣東省醫(yī)學(xué)實驗動物中心,生產(chǎn)許可證號為SCXK(粵)2013-0002,飼養(yǎng)于廣東省動物監(jiān)測所。人視網(wǎng)膜微血管內(nèi)皮細胞(human retinal microvascular endothelial cells,HRMECs;cap-0010)購于Angio-Proteomie。

    2 主要試劑

    小鼠抗人和小鼠NLRP3多克隆抗體(1∶1 000,AG-20B-0014-C100)購自Adipogen;兔抗人NOX4單克隆抗體(1∶1 000,ab133303)、兔抗人Pro Casp-1+p10+p12多克隆抗體(1∶1 000,ab179515)、兔抗人VE-Cad多克隆抗體(1∶1 000,ab333168)及兔抗人和小鼠ZO-1多克隆抗體(1∶1 000,ab59720)購自Ab-cam;Alexa Fluor?488偶聯(lián)的同工凝集素(isolectin)GS-IB4(1∶5 000,I21411)購自Invitrogen。

    3 主要方法

    3.1 實驗動物模型建立 6周齡的C57BL/6小鼠分為對照(control,Con)組和DM組,分別接受10%脂肪飼料或60%高脂飼料。4周后DM組和Con組小鼠分別用40 mg/kg鏈脲佐菌素(streptozocin,STZ)和等體積檸檬酸-檸檬酸鈉緩沖液腹腔注射,連續(xù)注射5 d后隨機血糖高于16.7 mmol/L者為糖尿病模型造模成功。

    3.2 舒洛地特治療 造模成功后隨即進行為期3個月的藥物干預(yù),用隨機數(shù)法將小鼠分為DM+SDX組、DM+生理鹽水(normal saline,NS)組、Con+SDX組及Con+NS組。DM+SDX組和Con+SDX組腹腔注射SDX(10 mg/kg),而DM+NS和Con+NS組腹腔注射等體積生理鹽水,每2 d一次,持續(xù)12周。

    3.3 伊文思藍尾靜脈注射 通過尾靜脈給小鼠注射30 mg/kg的伊文思藍,隨后將小鼠靜置于37℃熱毯上2 h。直接摘取小鼠右側(cè)眼球在4%多聚甲醛中固定15 min后進行鋪片,觀察視網(wǎng)膜血管滲漏情況(激發(fā)波長620 nm,發(fā)射波長740 nm)。用37℃的PBS進行心臟灌注后剝離左側(cè)視網(wǎng)膜于甲酰胺中,在冰上超聲裂解后于70℃水浴18 h,500 000×g離心45 min,取上清液于620 nm波長檢測吸光度(A)。

    3.4 HRMECs處理 用125、250、500和1 000 LSU/L(LSU即lipasemic unit,脂酶單位)4個濃度的SDX處理HRMECs 24 h。陰性對照siRNA(si-NC)和沉默NOX4的siRNA(si-NOX4)用于轉(zhuǎn)染HRMECs。對照腺病毒(ad-GFP)和過表達NOX4的腺病毒(ad-NOX4)以MOI=20感染細胞。

    3.5 Western blot 上樣量30 μg,轉(zhuǎn)膜后用7%的脫脂牛奶室溫封閉1 h,TBST洗膜后用I抗孵育8~16 h(I抗稀釋比例見“2 主要試劑”),其后用II抗于4℃孵育3 h,洗膜后用ECL法顯影,用ImageJ軟件分析條帶灰度。

    3.6 免疫熒光技術(shù) 用4%多聚甲醛室溫固定切片或細胞10 min,PBST浸洗后用溶于1%BSA的0.2%Triton X-100在室溫下固定破膜1 h,再用PBST浸洗;加入I抗,濕盒中4℃孵育過夜;其后用PBST浸洗,加入Alexa Fluor?555偶聯(lián)或Alexa Fluor?647偶聯(lián)的熒光II抗室溫孵育1 h,浸洗后封片拍攝。

    3.7 ROS檢測 用DCFH-DA探針試劑盒檢測細胞內(nèi)產(chǎn)生的ROS。細胞種在48孔板或者96孔板里,進行相應(yīng)處理后,在黑暗中與10 μmol/L的DCFH-DA反應(yīng)30 min,然后用PBS洗滌兩次。隨后可在酶標(biāo)儀和熒光顯微鏡中檢測或觀察ROS產(chǎn)生的情況。

    4 統(tǒng)計學(xué)處理

    采用GraphPad Prism軟件進行統(tǒng)計學(xué)分析,統(tǒng)計結(jié)果以均數(shù)±標(biāo)準(zhǔn)誤(mean±SEM)表示。實驗均重復(fù)3次及以上。符合正態(tài)分布及方差齊性的兩組間均數(shù)比較采用t檢驗,多組間均數(shù)比較采用單因素方差分析(one-way ANOVA)及 Bonferroni’s post hoc test。不符合正態(tài)分布的數(shù)據(jù)使用秩和檢驗進行分析。以P<0.05為差異有統(tǒng)計學(xué)意義。

    結(jié) 果

    1 SDX減輕糖尿病小鼠視網(wǎng)膜微血管滲漏

    DM+NS組與DM+SDX組在SDX治療前后血糖無顯著差異,見圖1A。視網(wǎng)膜鋪片結(jié)果顯示,DM+NS小鼠的視網(wǎng)膜微血管滲漏較Con+NS組顯著增加,而DM+SDX組的視網(wǎng)膜滲漏較DM+NS組顯著減少(P<0.05),見圖1B、E。另外,我們發(fā)現(xiàn)DM+NS組的微血管密度較Con+NS組下降,而DM+SDX組相比于DM+NS組,微血管密度顯著上升(P<0.05),見圖1C、F。HE染色結(jié)果提示,神經(jīng)節(jié)細胞數(shù)量在DM+NS組中顯著減少,而DM+SDX組較DM+NS組增多(P<0.05),見圖1D、G。

    2 SDX減輕糖毒性引起的內(nèi)皮細胞損傷

    Western blot結(jié)果顯示,ZO-1在DM+NS組小鼠視網(wǎng)膜組織中的表達量下降,而DM+SDX組的ZO-1表達量較DM+NS組顯著上升(P<0.05),見圖2A。在HRMECs中,高糖刺激明顯降低了ZO-1和VE-Cad的表達,而在高糖刺激同時加入SDX的HRMECs中,ZO-1和VE-Cad的表達水平顯著提高(P<0.05),見圖2B。細胞免疫熒光結(jié)果提示,高糖處理的HRMECs之間VE-Cad減少,而SDX與高糖共處理的HREMCs之間VE-Cad表達部分恢復(fù)(P<0.05),見圖2C。

    3 舒洛地特在體內(nèi)抑制高糖導(dǎo)致的NLRP3炎癥小體激活

    Western blot結(jié)果提示,NLRP3、Pro Casp-1及其活化狀態(tài)的剪切體(cleaved Casp-1)在DM+NS組中升高,而在DM+SDX組比DM+NS組顯著下降(P<0.05),見圖3A。NLRP3和GS-IB4共染的視網(wǎng)膜鋪片結(jié)果顯示,NLRP3在視網(wǎng)膜上的表達與GS-IB4高度吻合,提示NLRP3主要在血管內(nèi)皮中表達;NLRP3在DM+NS組中升高,而在DM+SDX組比DM+NS組下降(P<0.05),見圖3B。

    Figure 1.Intraperitoneal injection of sulodexide(SDX)protected diabetic mouse retinas from blood-retina barrier breakdown,vascular leakage,reduction of microvascular density and loss of ganglion cells.A:blood glucose of mice(n=15~20);B and E:representative images(B;the upper scale bar=1 μm;the lower scale bar=100 μm)and quantification(E;n=3) of retinal vascular leakage(indicated by with arrows);C and F:representative images(C;scale bar=25 μm)and quantification(F:n=7~10)of microvascular density.D and G:HE staining of retinal sections at the analogous positon of eyeballs(D;scale bar=25 μm)and quantification of ganglion cell number(G;n=12~18).GCL:ganglion cell layer;INL:inner nuclear layer;ONL:outer nuclear layer;RPE:retinal pigmented epithelium.Mean±SEM.*P<0.01 vs Con+NS group;#P<0.05 vs DM+NS group.圖1 SDX治療減輕糖尿病小鼠視網(wǎng)膜微血管滲漏,提高微血管密度及神經(jīng)節(jié)細胞數(shù)

    4 SDX在HRMECs中抑制高糖導(dǎo)致的NLRP3炎癥小體激活

    Western blot結(jié)果顯示,125 LSU/L的SDX處理對HRMECs的NLRP3和Pro Casp-1表達無明顯影響,因此后續(xù)實驗選用最低有效濃度250 LSU/L處理細胞,見圖4A。細胞免疫熒光結(jié)果顯示,高糖處理下,HRMECs中的NLRP3和NOX4表達都顯著升高,而高糖與SDX同時處理的HRMECs中NLRP3和NOX4表達下降;Pearson相關(guān)系數(shù)統(tǒng)計結(jié)果都顯示,高糖處理時HRMECs中NLRP3和NOX4的共定位明顯增加,在額外添加SDX處理時顯著下降(P<0.05),見圖4B。

    5 SDX在HRMECs中減少NOX4誘導(dǎo)的NLRP3炎癥小體活化

    Figure 2.SDX inhibited high glucose(HG)-induced degradation of junction proteins in both diabetic mouse retinas and HRMECs.A:Western blot analysis and densitometry quantification of zonula occludens-1(ZO-1)in retinas;B:Western blot analysis and densitometry quantification of ZO-1 and VE-cadherin(VE-Cad)in HRMECs;C:representative images(scale bar=100 μm)and mean fluorescence density of VE-Cad in HRMECs.Mean±SEM.n=6.*P<0.01 vs Con+NS group or Man(5.5 mmol/L glucose and 24.5 mmol/L mannitol)group;#P<0.05 vs DM+NS group or HG(30 mmol/L glucose)group.圖2 SDX在糖尿病小鼠視網(wǎng)膜和HRMECs中均能抑制高糖誘導(dǎo)的連接蛋白降解

    Western blot結(jié)果顯示,高糖處理使HRMECs中NOX4和NLRP3炎癥小體組分的表達均增加,其下游分子IL-1β的表達也增加;敲減NOX4后以上蛋白在HRMECs中的表達都顯著下降(P<0.05),見圖5A。同樣,我們觀察到無論是在正常糖還是高糖狀態(tài),過表達NOX4都引起了NLRP3的表達顯著上升,而SDX處理降低了NOX4、NLRP3和cleaved Casp-1蛋白水平(P<0.05),但Pro Casp-1蛋白水平始終沒有統(tǒng)計學(xué)意義的變化,見圖5B。

    6 SDX在HRMECs中抑制NOX4介導(dǎo)的ROS生成

    ROS在高糖處理下明顯增加,而高糖與SDX共處理顯著降低了ROS的生成(P<0.05),見圖6A、D。敲減NOX4后,ROS的生成顯著降低(P<0.05),見圖6B、E。相反,過表達NOX4使HRMECs的ROS生成明顯升高,而過表達NOX4后再加入SDX處理,ROS的生成顯著下降(P<0.05),見圖6C、F。

    7 SDX在HRMECs中抑制NOX4誘導(dǎo)的連接蛋白降解

    在高糖處理下,HRMECs中NOX4表達升高,而ZO-1和VE-Cad都明顯下降,而敲減NOX4后,ZO-1和VE-Cad都顯著升高(P<0.05),見圖7A。相反,過表達NOX4無論是在正常糖還是高糖狀態(tài)使ZO-1和VE-Cad表達減少,而過表達NOX4后再用SDX處理,則部分抑制了NOX4表達的同時也部分恢復(fù)了ZO-1和VE-Cad在 HRMECs中的表達(P<0.05),見圖7B。

    討 論

    NLRP3炎癥小體的激活與DR中內(nèi)皮細胞的損傷關(guān)系密切。本研究實驗結(jié)果表明,在糖尿病小鼠視網(wǎng)膜中,NLRP3炎癥小體的成分顯著升高,確證了DR小鼠視網(wǎng)膜的炎癥反應(yīng)。視網(wǎng)膜鋪片結(jié)果顯示NLRP3和血管內(nèi)皮標(biāo)志物GS-IB4高度共定位,提示視網(wǎng)膜的NLRP3升高主要是在內(nèi)皮細胞中,這讓我們更加確信NLRP3炎癥小體的激活與DR中內(nèi)皮功能的損傷及血管滲漏有關(guān)。

    多個研究表明高糖刺激可以誘發(fā)內(nèi)皮細胞的氧化應(yīng)激和炎癥反應(yīng)[16]。ROS是激活NLRP3炎性小體的重要中間分子[17]。在糖尿病狀態(tài)下,NOX4產(chǎn)生的ROS可以引起內(nèi)皮損傷,使用抗氧化劑或NOX抑制劑抑制了糖尿病小鼠的視網(wǎng)膜滲漏[18],提示NOX/ROS對DR的血管滲漏有負面影響。我們的研究提示NOX4/ROS可以激活NLRP3炎癥小體,而抑制ROS可減輕由IL-1β引起的炎癥反應(yīng)[19]。我們認為在高糖刺激下,HRMECs的炎癥反應(yīng)至少有一部分要歸咎于NOX4/ROS/NLRP3通路的激活,同時本研究也為NLRP3及其下游、NOX4等作為DR治療的靶點提供了依據(jù)。

    Figure 4.SDX inhibited high glucose(HG)-induced NLRP3 inflammsome activation in HRMECs.A:Western blot analysis and densitometry quantification of NOX4,NLRP3,procaspase-1(Pro Casp-1)and cleaved caspase-1(cleaved Casp-1);B:representative images(scale bar=25 μm)and colocalization ratio of immunofluorescence staining of NOX4 and NLRP3.Mean±SEM.n=3.*P<0.01 vs Man group;#P<0.05 vs HG group.圖4 在HRMECs中,SDX抑制高糖誘導(dǎo)的NLRP3炎癥小體激活

    內(nèi)皮細胞是通過連接蛋白,如ZO-1和VE-Cad等相互銜接的,內(nèi)皮細胞間的連接對于維持內(nèi)皮通透性非常重要[20]。研究表明,NLRP3炎癥小體的激活會導(dǎo)致內(nèi)皮間連接蛋白的降解[21]。與報道一致,我們在糖尿病小鼠中觀察到了ZO-1的降低,在高糖處理的HRMECs中觀察到了ZO-1和VE-Cad的降低,與NLRP3的變化呈相反趨勢。有研究提示IL-1β降低了血管內(nèi)皮細胞之間ZO-1和claudin-5的黏附強度,導(dǎo)致血管通透性增加[22],因此IL-1β也許是研究NLRP3與ZO-1等內(nèi)皮細胞間連接蛋白關(guān)系的切入點。總之,NOX4/ROS/NLRP3通路的抑制對DR具有保護作用。

    Figure 5.SDX inhibited NOX4-induced NLRP3 inflammsome activation in HRMECs.Western blot analysis and densitometry quantification of NOX4,NLRP3,procaspase-1(Pro Casp-1)and cleaved caspase-1(cleaved Casp-1)were shown.A:the cells were treated with 5.5 mmol/L glucose and 24.5 mmol/L mannitol(Man)+negative control siRNA(si-NC),Man+NOX4 siRNA(si-NOX4),30 mmol/L glucose(HG)+si-NC or HG+si-NOX4;B:the cells were treated with Man+control adenovirus(Ad-GFP),Man+adenovirus carrying NOX4 gene(Ad-NOX4),Man+Ad-NOX4+SDX,HG+Ad-GFP,HG+Ad-NOX4 or HG+Ad-NOX4+SDX.Mean±SEM.n=3.*P<0.05 vs Man+si-NC group;#P<0.05 vs HG+si-NC group;△P<0.05 vs Man+Ad-GFP group;▲P<0.05 vs HG+Ad-GFF group;+P<0.05 vs HG+Ad-NOX4 group.圖5 在HRMECs中,SDX抑制NOX4誘導(dǎo)的NLRP3炎癥小體激活

    研究報道減少ROS可減輕糖尿病的癥狀[23];NOX家族也被視為治療DR的靶點之一[24]。SDX既往被報導(dǎo)具有抑制炎癥和抗氧化的作用,具體機制未闡明[25]。而我們的研究結(jié)果表明,SDX干預(yù)可抑制由高糖引起的NOX4/ROS/NLRP3通路激活,從而保護內(nèi)皮間連接蛋白;動物實驗也表明,SDX干預(yù)顯著減少糖尿病小鼠視網(wǎng)膜滲漏。此外,神經(jīng)節(jié)細胞在DR中降解也是損害視力的原因之一,我們在糖尿病小鼠中觀察到SDX抑制了由糖尿病引起的節(jié)細胞數(shù)量下降,提示SDX不僅對HRMECs有保護作用,可能還對視網(wǎng)膜中其他的細胞有保護作用。因此,SDX可以被考慮用作治療DR。但是,SDX作為糖萼保護劑是否直接作用于NOX4仍有待研究。

    Figure 6.SDX inhibited NOX4-mediated ROS generation in HRMECs.The representative images and quantification of ROS generation were shown.A and D:the cells were treated with 5.5 mmol/L glucose and 24.5 mmol/L mannitol(Man),30 mmol/L glucose(HG),HG+125 LSU/L SDX(SDX125)or HG+250 LSU/L SDX(SDX250);B and E:the cells were treated with Man+negative control siRNA(si-NC),Man+NOX4 siRNA(si-NOX4),HG+si-NC or HG+si-NOX4;C and F:the cells were treated with Man+control adenovirus(Ad-GFP),Man+adenovirus carrying NOX4 gene(Ad-NOX4),Man+Ad-NOX4+SDX,HG+Ad-GFP,HG+Ad-NOX4 or HG+Ad-NOX4+SDX.Mean±SEM.n=5.▲P<0.05 vs Man group;&P<0.05 vs HG group;*P<0.05 vs Man+si-NC group;#P<0.05 vs HG+si-NC group;$P<0.05 vs HG+Ad-GFP group;△P<0.05 vs HG+Ad-NOX4 group.圖6 在HRMECs中,SDX抑制NOX4介導(dǎo)的ROS生成

    綜上所述,本研究發(fā)現(xiàn)SDX通過抑制NOX4/ROS/NLRP3通路減輕HRMECs的氧化應(yīng)激反應(yīng)和炎癥反應(yīng),從而保護連接蛋白ZO-1和VE-Cad,以減輕DR中的微血管滲漏(圖8)。本研究為SDX應(yīng)用于DR治療提供了新的證據(jù)。

    Figure 7.SDX attenuated NOX4-induced damage of junction proteins in HRMECs.Western blot analysis and densitometry quantification of NOX4,ZO-1 and VE-Cad were shown.A:knockdown of NOX4;B:over-expression of NOX4.Mean±SEM.n=3.*P<0.05 vs Man+si-NC group;#P<0.05 vs HG+si-NC group;△P<0.05 vs Man+Ad-GFP group;▲P<0.05 vs HG+Ad-GFF group;&P<0.05 vs HG+Ad-NOX4 group.圖7 在HRMECs中,SDX通過抑制NOX4減少高糖對連接蛋白的損傷

    Figure 8.A proposed schematic diagram of how sulodexide(SDX)protects human retinal microvascular endothelial cells(HRMECs)with high glucose stimulation.NADPH oxidase 4(NOX4)-derived reactive oxygen species(ROS)facilitate the activation of nucleotide-binding oligomerization domain-like receptor protein 3(NLRP3)inflammasome and further destroy zonula occludens-1(ZO-1)and VE-cadherin(VE-Cad)after high glucose treatment.Our study indicates that SDX suppresses expression of NOX4,thus inhibiting NOX4-derived ROS and NOX4-induced NLRP3 activation.Our study also provides evidence that SDX protects ZO-1 and VE-Cad in response to glucotoxicity or NOX4 over-expression.This suggests that SDX may alleviate leakage in diabetic retinas via inhibiting NOX4/ROS/NLRP3 pathway.ASC:apoptosis-associated speck-like protein containing a caspase recruitment domain;Casp-1:caspase-1;IL-1β:interleukin-1β.圖8 SDX保護HRMECs的示意圖

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