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    女貞子提取物干預大鼠膝骨關節(jié)炎的實驗研究?

    2020-05-08 03:36:18陳春雯單樂天王春雷
    中國中醫(yī)急癥 2020年4期
    關鍵詞:模型

    陳春雯 嚴 波 單樂天 王春雷 周 莉△

    (1.浙江中醫(yī)藥大學,浙江 杭州 310053;2.浙江大學醫(yī)學院附屬杭州市第一人民醫(yī)院,浙江杭州 310000;3.浙江省腫瘤醫(yī)院,浙江 杭州 310022)

    骨關節(jié)炎(OA)是臨床常見的關節(jié)疾病,有15%~40%的60歲及以上人群受其影響[1-2]。隨著人口老齡化的加劇和肥胖率的上升,OA的患病率逐年增加[3]。女貞子是木樨科植物女貞子的干燥成熟果實,最初記錄于《神農本草經》,主要用于治療骨質疏松癥、關節(jié)炎和骨痛等年齡相關的疾?。?-5]。在中醫(yī)學中,女貞子被認為是具有補腎活血的可食用草本植物,可有效治療腰膝酸軟[6]。根據中醫(yī)的理論和臨床經驗,腎虛與骨關節(jié)疾病發(fā)病有關,補腎活血可促進骨代謝和形態(tài)的發(fā)生[7]。許多補腎活血的中藥已經臨床用于治療OA,取得了積極的效果[8-9]。有研究表明,滋陰補腎法代表方二至丸(由女貞子和墨旱蓮2味中藥組成)通過調節(jié)雌二醇(E2)和C反應蛋白(CRP)的表達,能改善軟骨細胞功能,減輕滑膜炎癥,從而改善絕經后膝骨關節(jié)炎(KOA)的癥狀,將可能開辟治療KOA的有效新途徑[10]。本研究通過動物實驗觀察女貞子提取物對KOA病變中疼痛和軟骨損傷的影響,初步對其作用機制進行探究。

    1 材料與方法

    1.1 實驗動物

    SPF級健康雄性SD大鼠32只,體質量180~220 g,上海斯萊克實驗動物有限公司提供,浙江中醫(yī)藥大學實驗動物中心提供,合格證號:SCXK(浙)2013-0016。

    1.2 藥物及試劑

    女貞子(浙江天道醫(yī)藥有限公司,批號17072201),稱取女貞子粉末100 g置于1 000 mL的圓底燒瓶中,加入10倍量的純水浸泡30 min,加熱回流提取60 min,濾過收集煎液,向殘渣加入8倍量的純水,再加熱回流提取60 min,濾過,合并2次煎液,真空減壓濃縮至1 g/mL,即得女貞子水提液,水提液以5 000 r/min離心10 min,取上清液冷凍干燥成粉末備用。戊巴比妥鈉粉劑(中國醫(yī)藥集團上?;瘜W試劑公司)。0.9%氯化鈉注射液(中國大冢制藥有限公司,批號5G70J3)、番紅O染色液(美國Sigma公司)、4%多聚甲醛溶液(中國Solarbio公司)、乙二胺四乙酸(EDTA)(中國Solarbio公司)、碘乙酸鹽(MIA)(美國Sigma公司)、Ⅱ型膠原酶(美國Worthington)、IMDM培養(yǎng)液(美國Gibco公司)、0.25%EDTA-胰蛋白酶(美國Gibco公司)、3-(4,5-二甲基噻唑-2)-2,5-二苯基四氮唑溴鹽(MTT)粉末(Sigma公司,美國)、二甲亞砜(DMSO)溶液(美國Sigma公司)、胎牛血清(FBS)(美國Gibco BRL,Grand Island,NY)、PBS(美國Phosphate Buffered Saline,Gibco公司)、檸檬酸鈉緩沖液(中國北京市中衫金橋生物技術有限公司)、中性樹膠封片劑(中國北京博奧森生物技術有限公司)、Triton X-100(美國Sigma-Aldrich公司)、SYBR熒光定量試劑盒(中國Takara公司)、反轉錄試劑盒(中國Takara公司)、山羊血清(中國Solarbio公司)、4%多聚甲醛(中國Solarbio公司)、引物(中國上海市生工生物工程股份有限公司)、抗體(美國Danvers,MA)。

    1.3 實驗儀器

    倒置YLS-3E電子壓痛測定儀(中國安合盟天津科技發(fā)展有限公司)、DK-S12型恒溫水浴鍋(上海森信實驗儀器有限公司)、SW-CJ-1F層流超凈工作臺(蘇州安泰空氣技術有限公司)、AXiovert200熒光倒置顯微鏡(BX20)(日本Olympus公司)、全自動多功能酶標儀(美國BioTek公司)、二氧化碳細胞培養(yǎng)箱(3111)(美國Thermo公司)。

    1.4 分組與造模

    32只SD大鼠稱體質量后隨機分組、編號,分為正常組、模型組、女貞子灌胃組、女貞子注射組,每組8只。大鼠膝骨關節(jié)炎疼痛模型采用碘乙酸關節(jié)腔注射造模法。對正常組大鼠雙側后肢膝關節(jié)腔內各注射50 μL 0.9%氯化注射液,其他組大鼠均通過向雙側后肢膝關節(jié)腔內注射50 μL MIA(30 mg/mL),建立大鼠KOA疼痛模型[11]。

    1.5 干預方法

    造模成功后,女貞子灌胃組采用女貞子提取物3.5 g/kg[10]灌胃處理,女貞子注射組采用關節(jié)腔內注射給藥方式,向大鼠膝關節(jié)腔注射50 μL女貞子提取物(100 μg/mL),正常組和模型組大鼠雙側后肢膝關節(jié)腔內各注射50 μL 0.9%氯化注射液。治療持續(xù)4周,于末次給藥后1周測定行為學數(shù)據。治療結束后,大鼠麻醉處死,進行膝關節(jié)取樣。

    1.6 大鼠軟骨細胞提取

    采用膠原酶和胰蛋白酶連續(xù)消化法分離3周齡SD大鼠(n=4)膝關節(jié)軟骨細胞。將收集的軟骨片切成1 mm3小塊,用0.25%胰蛋白酶在37℃水浴鍋內消化40 min,0.2%Ⅱ型膠原酶消化4 h。收集的細胞液用細胞篩(70 μm)過濾,離心棄上清。培養(yǎng)基(IMDM內添加10%胎牛血清和1%抗生素)重懸軟骨細胞,置于37℃、5%CO2的細胞培養(yǎng)箱中培養(yǎng),每2日更換1次培養(yǎng)基。當軟骨細胞達到80%融合后傳代,備用。

    1.7 指標測定

    1.7.1 壓痛測定 應用YLS-3E電子壓痛儀測定大鼠的痛閾。將大鼠裝入固定桶內,使其處于舒適又固定的狀態(tài),用扁形頭對大鼠雙側后足背施壓,當大鼠因疼痛出現(xiàn)鳴叫或掙扎時顯示的壓力值即為此大鼠的痛閾值。實驗開始前測定基礎痛閾,于造模后的第4周測定痛閾。

    1.7.2 組織病理學分析 造模給藥4周后,將大鼠麻醉處死,切取所有大鼠的膝關節(jié),標記后在4%多聚甲醛中固定72 h,用10%EDTA脫鈣液處理。連續(xù)處理8周后,進行脫水處理,包埋于石蠟中。切片后番紅O染色,常規(guī)脫水、透明、封片,顯微鏡下觀察、拍照。根據Mankin′s評分系統(tǒng)[12],通過雙盲觀察在0~13的等級上進行評分分級。

    1.7.3 免疫組織化學染色 取膝關節(jié)組織石蠟切片,烤片2 h,切片常規(guī)脫蠟至水后,分別加常規(guī)抗原修復液和骨組織抗原修復液進行抗原修復,然后用3%H2O2室溫孵育30 min,用10%山羊血清封閉30 min,滴加TBS稀釋的一抗Col2(1∶100),4 ℃孵育過夜,次日滴加辣根過氧化物酶標記的二抗,DAB顯色,蘇木精復染,常規(guī)脫水、透明、封片,顯微鏡下觀察、拍照。

    1.7.4 女貞子提取物對大鼠原代軟骨細胞的影響 將細胞以5×103個/孔的密度接種于96孔板內,待細胞貼壁后進行給藥處理。分別加入不同質量濃度(0、5、10、15、25、50、100、200 μg/mL)女貞子提取物,于培養(yǎng)箱中分別培養(yǎng)24 h和48 h后進行MTT活性檢測。在避光環(huán)境中,向每個孔中加入10 μL MTT溶液(5.0 mg/mL)并在37℃孵育4 h。小心棄去孔內培養(yǎng)液,向每個孔中加入150 μL DMSO,置于搖床上低速振蕩10 min,使紫色結晶物充分溶解。用酶標儀在490 nm處測量光密度值(OD),計算增殖率,增殖率(PR)=(女貞子處理的OD/未處理的OD)×100%。

    1.7.5 Real-time PCR分析 將第2代大鼠原代軟骨細胞消化計數(shù)后,以5×105個/皿均勻接種于6 cm的細胞培養(yǎng)皿中,培養(yǎng)24 h后,隨機分為3組:對照組、TNF-α組、TNF-α+女貞子組。TNF-α組和TNF-α+女貞子組預先用TNF-α(10 ng/mL)處理6 h。TNF-α+女貞子組加入女貞子提取物(100 μg/mL),置于培養(yǎng)箱中培養(yǎng)24 h。提取細胞核酸后使用Nano Drop超微量分光光度計測定RNA濃度。根據TAKARA逆轉錄試劑盒將RNA逆轉錄成cDNA,采用SYBR反應體系進行Real-time PCR反應,每個樣本設3個復孔,以Actin作內參,檢測各組MMP13、Col10、Col2、Aggrecan的表達水平,目標基因序列見表1,各基因mRNA表達用2-ΔΔCt計算結果來表示。

    表1 目標基因引物序列

    1.8 統(tǒng)計學處理

    2 結 果

    2.1 各組大鼠行為學觀察

    見表2。模型組的壓痛閾值較正常組顯著下降(P<0.01);女貞子注射組與模型組比較有顯著提高(P<0.01);女貞子灌胃組與模型組比較有所提高,但差異無統(tǒng)計學意義(P>0.05)。

    表2 各組大鼠壓痛閾值比較(g,±s)

    表2 各組大鼠壓痛閾值比較(g,±s)

    與模型組比較,?P<0.01

    正常組模型組女貞子灌胃組女貞子注射組8 8 8 8 266.60±26.99 255.00±41.01 240.50±16.39 255.30±19.69 279.13±19.29*108.88.±12.03 157.25±26.92 216.29±35.09*

    2.2 各組大鼠膝關節(jié)軟骨組織形態(tài)學觀察

    見圖1。組織病理學結果顯示,模型組的Mankin′s評分為(4.39±1.42)分,高于空白組的(1.23±1.01)(P<0.01);女貞子注射組Mankin′s評分為(1.77±0.73)分,較模型組顯著下降(P<0.01);女貞子灌胃組(3.33±1.32)分,與模型組比較有所下降,但差異無統(tǒng)計學意義(P>0.05)。女貞子注射組治療后明顯增加了軟骨表面的軟骨細胞數(shù)量,改善了軟骨細胞排列和膠原質量。

    2.3 各組大鼠膝關節(jié)軟骨組織Col2觀察

    見圖2。模型組軟骨表達的Col2量少于正常組,女貞子灌胃和注射組的Col2表達趨于正常。

    圖1 各組大鼠膝關節(jié)軟骨組織病理學觀察(SO染色,比例尺=40 μm)

    圖2 各大鼠軟骨中Col2表達的免疫組織化學觀察(200倍)

    2.4 各組大鼠膝關節(jié)軟骨細胞活性比較

    見表3。通過MTT法評估女貞子提取物對大鼠軟骨細胞的增殖作用。劑量范圍為5~200 μg/mL的女貞子提取物顯著增加了軟骨細胞的細胞活力,細胞增殖率在給藥24 h后從0.6%增加到53.1%,48 h后從40.5%增加到78.0%。

    表3 各組大鼠膝關節(jié)軟骨細胞活性比較(%,±s)

    表3 各組大鼠膝關節(jié)軟骨細胞活性比較(%,±s)

    女貞子質量濃度5 μg/mL 10 μg/mL 15 μg/mL 25 μg/mL 50 μg/mL 100 μg/mL 200 μg/mL給藥后24 h 0.58±3.31 8.51±3.16 14.76±10.74 31.82±7.17 38.50±10.17 54.23±16.98 53.09±5.11給藥后48 h 40.50±15.55 54.93±14.37 61.55±14.70 67.06±9.60 75.74±8.03 81.64±15.50 78.03±10.08

    2.5 各組軟骨細胞中OA相關基因表達水平比較

    見表4。用TNF-α預處理軟骨細胞以模擬OA病理狀態(tài)。與正常組相比,TNF-α組顯著上調Col10、MMP13的表達,下調Col2和Aggrecan的表達(P<0.05或P<0.01)。在女貞子處理24 h后,與TNF-α組相比,這些基因的異常表達向正常水平逆轉(P<0.05或P<0.01)。

    表4 各組軟骨細胞中OA相關基因表達比較(±s)

    表4 各組軟骨細胞中OA相關基因表達比較(±s)

    與正常組比較,#P<0.05,##P<0.01;與TNF-α組比較,*P<0.05,**P<0.01

    組別正常組TNF-α組TNF-α+女貞子組Col10 mRNA 1.01±0.17 1.39±0.03##1.22±0.05#*Col2 mRNA 1.00±0.02 0.79±0.03##1.07±0.05##**Aggrecan mRNA 1.00±0.02 0.70±0.02##0.80±0.07##**Mmp13 mRNA 1.00±0.02 2.33±0.21##0.82±0.05##**

    3 討論

    OA屬于中醫(yī)學“骨痹”范疇,本病發(fā)病多因肝血不足、腎元虧虛、血脈瘀滯,致骨失其所養(yǎng),筋骨不堅,瘀血內阻或兼有外邪侵襲,經脈痹阻而致。中醫(yī)藥治療OA的原則是補腎活血、強筋健骨、舒筋活絡。臨床中的辨證分型主要集中在風寒濕阻、氣滯血瘀、痰瘀互結、痰濕阻絡和肝腎虧虛等證型,在治療上應采用補益肝腎、強腰健膝的中藥。女貞子性涼,味甘、苦,歸肝、腎經,具有滋補肝腎、明目烏發(fā)之功效,可用于治療眩暈耳鳴、腰膝酸軟、須發(fā)早白、目暗不明等癥?,F(xiàn)代藥理實驗表明,滋補腎陰中藥能提高血清雌二醇水平,而雌激素水平降低與骨性關節(jié)炎的發(fā)生顯著相關[10]。因此,女貞子具有被開發(fā)為抗骨關節(jié)炎藥物的潛力。

    局部關節(jié)內注射治療是KOA保守治療的代表方法。由于KOA病變僅存在于關節(jié)中,因此通過關節(jié)內注射途徑施用的局部治療是合適的策略。1951年,Hollander及其同事首次在關節(jié)炎中引入關節(jié)內注射治療[13],后來IA治療被美國食品藥品管理局(FDA)和歐洲藥品管理局(EMA)批準。與常規(guī)口服給藥相比,該技術避免了全身暴露和潛在的不良副作用。實際上,關節(jié)內注射具有許多內在特征,這可能比系統(tǒng)療法更有優(yōu)勢:增加的生物利用度和安全性,更低的藥物劑量和全身毒性,可避免的常規(guī)聯(lián)合進入障礙和積極的安慰劑益處[14]。此外,它是一種相對簡單且耐受性良好的程序,其恢復時間最短,可用作口服生物利用度低的藥物的替代方式[15-16]。臨床試驗證明,IA療法是KOA患者的一種替代和安全的治療方法,與常規(guī)治療相比,患者因不良事件而退出治療的比例較低[17-18]。關節(jié)內注射是一種創(chuàng)新方式,可能有助于提高中醫(yī)療法的有效性和安全性。

    研究發(fā)現(xiàn)關節(jié)腔注射云南白藥,能通過抑制滑膜組織中降鈣素基因相關肽(CGRP)陽性神經細胞的增生和巨噬細胞抗原(ED1)陽性炎癥細胞數(shù)量,對KOA疼痛和炎癥有明顯的治療作用[19]。研究發(fā)現(xiàn)通過膝關節(jié)關節(jié)腔注射鳳凰衣水解物降低膝骨關節(jié)炎大鼠的炎癥因子表達,提高關節(jié)軟骨中蛋白多糖和Collagen-Ⅱ含量,對改善關節(jié)液炎癥指標效果更好[20]。本實驗通過比較女貞子提取物灌胃和關節(jié)腔注射治療大鼠KOA,評估不同給藥方式對女貞子抗OA作用的影響。結果表明,女貞子關節(jié)腔注射能明顯減輕關節(jié)疼痛,而女貞子灌胃治療對OA大鼠減輕疼痛的效果不如女貞子注射組。同樣在大鼠軟骨組織病理Mankin′s評分中,女貞子灌胃組和女貞子注射組低于模型組,女貞子注射組治療效果優(yōu)于女貞子灌胃組,女貞子提取物關節(jié)腔注射有明顯的治療效果。關節(jié)腔注射女貞子提取物直入靶點,作用明確,效果顯著。

    在本研究中,免疫組織化學分析顯示女貞子的潛在機制與軟骨中Col2表達的調節(jié)相關。以100 μg/mL的女貞子提取物進行體外實驗評估,RT-PCR測定進一步闡明了女貞子不僅逆轉了Mmp13、Col2和Col10的異常表達,還恢復了TNF-α處理的軟骨細胞中Aggrecan的表達。本實驗研究結果揭示了女貞子有抗OA作用,并闡明了與抑制軟骨細胞肥大和分解代謝相關的分子機制。

    只有一種動物模型不足以完全明確女貞子的藥理學特征。因此,需要進一步的研究來驗證女貞子對其他OA模型的抗OA作用。本研究嘗試將關節(jié)內注射與中醫(yī)治療相結合,為補充傳統(tǒng)治療策略提供了另一種治療方案??诜侵嗅t(yī)治療的傳統(tǒng)途徑。目前對關節(jié)內注射與口服之間差異的認識在中醫(yī)藥領域還很有限,需要更大規(guī)模的長期研究來獲得更積極的結果,進一步證實關節(jié)內注射中藥治療的適用性。本實驗通過RT-PCR分析評估女貞子對軟骨細胞的體外作用,闡明了其與TNF-α處理的軟骨細胞中Mmp13、Col2、Col10和Aggrecan的基因表達相關的機制,并未明確其具體信號通路,仍需要進一步的研究。

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