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    三疣梭子蟹C-型凝集素CTL5基因的克隆及在病原刺激下的免疫應(yīng)答

    2020-05-07 01:13:32閻德平呂建建題興斌張文張?jiān)茷I宋柳劉萍
    關(guān)鍵詞:梭子蟹凝集素幼體

    閻德平,呂建建,題興斌,張文,張?jiān)茷I,宋柳,劉萍*

    (1.大連海洋大學(xué) 水產(chǎn)與生命學(xué)院,遼寧 大連 116023;2.青島海洋科學(xué)與技術(shù)國(guó)家實(shí)驗(yàn)室 海洋漁業(yè)科學(xué)與食物產(chǎn)出過(guò)程功能實(shí)驗(yàn)室,山東 青島 266071;3.中國(guó)水產(chǎn)科學(xué)研究院黃海水產(chǎn)研究所 農(nóng)業(yè)農(nóng)村部海洋漁業(yè)可持續(xù)發(fā)展重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室,山東 青島 266071)

    凝集素是一類(lèi)重要的免疫家族基因,廣泛分布于動(dòng)植物和微生物中,能參與蛋白和核酸、蛋白和脂質(zhì)、蛋白和蛋白間的反應(yīng)[1]。動(dòng)物凝集素最初被劃分為C-型凝集素和S-型凝集素兩類(lèi),其中C-型凝集素是最早發(fā)現(xiàn)的種類(lèi)最多的動(dòng)物凝集素,可以專(zhuān)一性地識(shí)別病原相關(guān)分子模式(PAMP),在免疫應(yīng)答反應(yīng)中發(fā)揮著多種功能,例如微生物凝集、細(xì)胞黏附、結(jié)節(jié)形成和吞噬作用等[2]。近年來(lái),有關(guān)海洋無(wú)脊椎動(dòng)物C-型凝集素的相關(guān)報(bào)道逐漸增多,包括中國(guó)對(duì)蝦Fenneropenaeuschinensis、中華絨螯蟹Eriocheirsinensis、日本對(duì)蝦Marsupenaeujaponicus等[3-5]。此外,C-型凝集素在甲殼動(dòng)物中可以參與免疫識(shí)別,如凡納濱對(duì)蝦Litopenaeusvannamei的CTL4可以參與亞硝酸鹽的免疫反應(yīng)[6];中華絨螯蟹的CTL4可以參與革蘭氏陽(yáng)性菌、革蘭氏陰性菌和真菌等微生物刺激下的免疫應(yīng)答[4]。

    三疣梭子蟹Portunustrituberculatus是中國(guó)重要的海水養(yǎng)殖經(jīng)濟(jì)蟹類(lèi),近年來(lái),隨著集約化養(yǎng)殖程度的提高和養(yǎng)殖環(huán)境的污染,細(xì)菌和病毒引起的各種疾病給三疣梭子蟹養(yǎng)殖業(yè)帶來(lái)了嚴(yán)重的經(jīng)濟(jì)損失[7-8]。而對(duì)蝦白斑綜合征病毒(White spot syndrome virus,WSSV)和副溶血弧菌是造成梭子蟹發(fā)病的主要病原之一,可作為一種免疫刺激劑來(lái)刺激梭子蟹,并通過(guò)觀察梭子蟹組織中基因的表達(dá)情況驗(yàn)證基因的免疫功能。到目前為止,三疣梭子蟹中已發(fā)現(xiàn)4種不同的C-型凝集素可以參與免疫應(yīng)答反應(yīng),包括CTL1、CTL2、CTL3和CTL4[9-12],并證明該基因家族在三疣梭子蟹免疫中具有重要功能[1]。所在課題組前期通過(guò)轉(zhuǎn)錄組測(cè)序篩選到病原脅迫前后差異表達(dá)的C-型凝集素基因,該基因與已公開(kāi)的梭子蟹凝集素基因序列差異較大,通過(guò)序列分析和功能結(jié)構(gòu)域預(yù)測(cè),明確其為三疣梭子蟹C-型凝集素家族的新成員。

    本試驗(yàn)中基于轉(zhuǎn)錄組中的序列,通過(guò)RACE技術(shù)成功克隆了三疣梭子蟹C-型凝集素CTL5基因(PtCTL5)cDNA全長(zhǎng),并分析了其在不同發(fā)育時(shí)期、不同組織,以及在副溶血弧菌Vibrioparahemolyticus和WSSV感染后主要免疫組織中的表達(dá)模式,旨在為進(jìn)一步解析C-型凝集素家族基因在三疣梭子蟹免疫中的分子機(jī)制提供參考。

    1 材料與方法

    1.1 材料

    試驗(yàn)用三疣梭子蟹來(lái)自中國(guó)水產(chǎn)科學(xué)研究院黃海水產(chǎn)研究所試驗(yàn)基地山東省濰坊市昌邑海豐水產(chǎn)有限公司。2018年8月試驗(yàn)用個(gè)體為體質(zhì)量(30±2)g的80日齡三疣梭子蟹,試驗(yàn)前先將試驗(yàn)蟹放于若干個(gè)養(yǎng)殖池(5 m×3 m×1.5 m)中暫養(yǎng)7 d。暫養(yǎng)時(shí)水溫為(22±0.5)℃,持續(xù)供氧,鹽度為33,pH為 8.3,每天8:00更換自然海水,換水量為原來(lái)水體體積的1/3,定時(shí)投放新鮮雜魚(yú),然后挑選活力、形態(tài)均較好的個(gè)體進(jìn)行試驗(yàn)。

    分別根據(jù)孫穎民等[13]和薛俊增等[14]關(guān)于三疣梭子幼體發(fā)育不同時(shí)期的鑒定方法,在三疣梭子蟹苗種繁育期間采集其幼體發(fā)育各期的樣品(取3組平行樣品),包括卵裂期(N1)、囊胚期(N2)、原腸期(N3)、眼點(diǎn)期(N4)、心跳期(N5)、溞狀幼體Ⅰ期(Z1)、溞狀幼體Ⅱ期(Z2)、溞狀幼體Ⅲ期(Z3)、溞狀幼體Ⅳ期(Z4)、大眼幼體期(M)、幼蟹Ⅰ期(C1),并將樣品置于液氮中保存?zhèn)溆谩?/p>

    1.2 方法

    1.2.1PtCTL5基因全長(zhǎng)cDNA的克隆

    (1)總RNA提取和cDNA的合成。使用RNAiso Plus試劑,根據(jù)說(shuō)明書(shū)步驟分別提取三疣梭子蟹不同發(fā)育時(shí)期總RNA,采用紫外分光光度計(jì)(NanoDrop 2000,Thermo)與10 g/L瓊脂糖凝膠電泳等方法,將提取得到的總RNA進(jìn)行質(zhì)量和完整性檢測(cè)。挑選質(zhì)量好的RNA,將其混合用于制作RACE模板。

    5′RACE和3′RACE模板的制備參照SMARTer?RACE 5′/3′Kit(TaKaRa)說(shuō)明書(shū)進(jìn)行。

    (2)引物合成。通過(guò) Primer Premier 6.0軟件設(shè)計(jì)中間片段擴(kuò)增引物,以及5′和3′所需要的特異性RACE引物,如表1所示,由北京睿博興科生物技術(shù)有限公司進(jìn)行合成。

    (3)PtCTL5 基因片段的克隆。利用引物CTLF/CTLR進(jìn)行基因中間片段擴(kuò)增,反應(yīng)程序?yàn)椋?4 ℃下預(yù)變性5 min;94 ℃下循環(huán)變性30 s,60 ℃下退火30 s,72 ℃下延伸1 min,共進(jìn)行35個(gè)循環(huán);最后在72 ℃下再延伸10 min,于4 ℃下恒溫保存。將擴(kuò)增得到的PCR產(chǎn)物送交青島擎科梓熙生物技術(shù)有限公司進(jìn)行測(cè)序,然后與轉(zhuǎn)錄組測(cè)序獲得的unigene片段進(jìn)行比對(duì),確定保守區(qū)域的正確性。

    使用TaKaRa LA Taq?試劑盒進(jìn)行PtCTL5基因的3′和5′擴(kuò)增,先進(jìn)行第一次PCR擴(kuò)增,分別使用CTL3 F/CTL5 F和UPM引物進(jìn)行擴(kuò)增;然后以第一次PCR擴(kuò)增的反應(yīng)產(chǎn)物為模板,分別使用CLT3 S/CTL5 S和NUP引物混合進(jìn)行第二次PCR擴(kuò)增。反應(yīng)程序同上。

    將第二次擴(kuò)增后的PCR產(chǎn)物經(jīng)DNA切膠回收、pMD 18-T載體連接、轉(zhuǎn)化進(jìn)入DH5α感受態(tài)細(xì)胞中,挑取單一菌落利用通用引物M13 F/M13 R(表1)進(jìn)行菌落PCR初步鑒定,篩選目的菌液送往青島擎科梓熙生物技術(shù)有限公司完成測(cè)序。

    表1 試驗(yàn)用引物及序列

    1.2.2 序列分析 使用Vecror NTI 11.0軟件去除多余的載體序列,然后將序列正確拼接,將拼接好的目的片段使用國(guó)家生物技術(shù)信息中心NCBI-BLAST(http://blast.ncbi.nlm.nih.gov/Blast.cgi)進(jìn)行比對(duì)分析。使用Bioedit和Gene Tool預(yù)測(cè)開(kāi)放閱讀框(ORF),并對(duì)編碼的氨基酸進(jìn)行翻譯。通過(guò)Pfam數(shù)據(jù)庫(kù)(http://pfam.xfam.org/search)預(yù)測(cè)蛋白的功能結(jié)構(gòu)域。通過(guò)ExPASy-ProtParam tool(https://web.expasy.org/protparam/)預(yù)測(cè)蛋白分子量、不穩(wěn)定性指數(shù)、消光系數(shù)、脂肪族指數(shù)、理論等電點(diǎn)和信號(hào)肽。使用MEGA 6.0軟件以Neighbor-Joining法構(gòu)建系統(tǒng)進(jìn)化樹(shù),對(duì)PtCTL5氨基酸序列的親緣關(guān)系進(jìn)行分析。

    1.2.3PtCTL5基因在不同發(fā)育時(shí)期的表達(dá)分析 提取三疣梭子蟹幼體不同發(fā)育時(shí)期的RNA,從中選取高質(zhì)量的RNA通過(guò)Reverse Transcriptase M-MLV(RnaseH)試劑盒合成cDNA,合成的cDNA模板用于后續(xù)實(shí)時(shí)熒光定量PCR。利用Primer 6.0軟件設(shè)計(jì)用于PtCTL5幼體發(fā)育不同時(shí)期表達(dá)分析的熒光定量引物CTL-q F/R,內(nèi)參基因使用β-actin(表1)。以三疣梭子蟹幼體發(fā)育不同時(shí)期的cDNA為模板,進(jìn)行實(shí)時(shí)熒光定量qPCR擴(kuò)增。反應(yīng)體系(10 μL)包括:2×ChamQ Universal SYBR qPCR Master Mix 5 μL,Template cDNA 1 μL,Primer F(10 μmol/L)0.4 μL、Primer R(10 μmol/L)0.4 μL,用ddH2O補(bǔ)足至10 μL。每個(gè)樣品設(shè)3個(gè)平行和1個(gè)對(duì)照,反應(yīng)程序?yàn)椋?5 ℃ 下預(yù)變性30 s;95 ℃ 循環(huán)變性5 s,60 ℃ 退火復(fù)性34 s,共進(jìn)行40個(gè)循環(huán)。

    1.2.4 不同病原刺激下的組織及健康組織中PtCTL5 mRNA的表達(dá)分析 將暫養(yǎng)7 d后體表完整活力旺的三疣梭子蟹分成生理鹽水對(duì)照組、WSSV注射組和副溶血弧菌注射組,每組各30只。然后分別于梭子蟹的游泳足第一關(guān)節(jié)基膜處注射100 μL的生理鹽水(0.1 moL/L)、WSSV(濃度為7.6×107CFU/mL)和副溶血弧菌(濃度為3.8×108CFU/mL)[15]。在人工感染后的0、3、6、12、24、48、72 h,從每組分別隨機(jī)取3只存活三疣梭子蟹的血細(xì)胞和肝胰腺樣品;另外,隨機(jī)取暫養(yǎng)7 d后健康的3只三疣梭子蟹,分別取其肝胰腺、心臟、血細(xì)胞、眼柄、肌肉、鰓、胸腺、腸、腦等組織樣品。來(lái)自3只三疣梭子蟹同組織的樣品混合成一管,試驗(yàn)同時(shí)設(shè)3個(gè)平行,所有樣品于液氮中保存待測(cè)。

    按照前述的方法分別提取健康三疣梭子蟹9個(gè)組織和病原脅迫后各時(shí)間點(diǎn)樣品的總RNA,逆轉(zhuǎn)錄合成cDNA。以稀釋后的cDNA為模板,進(jìn)行實(shí)時(shí)熒光定量PCR。擴(kuò)增體系和反應(yīng)程序同“1.2.3”節(jié)不同發(fā)育時(shí)期的基因表達(dá)分析。

    1.3 數(shù)據(jù)處理

    對(duì)實(shí)時(shí)熒光定量PCR試驗(yàn)結(jié)果數(shù)據(jù)采用相對(duì)標(biāo)準(zhǔn)曲線法2-ΔΔCt法進(jìn)行相對(duì)表達(dá)量的計(jì)算,計(jì)算出平均表達(dá)量和標(biāo)準(zhǔn)差,借助SPSS 19.0軟件使用獨(dú)立樣本T檢驗(yàn)和單因素方差分析對(duì)試驗(yàn)數(shù)據(jù)進(jìn)行顯著性分析,顯著性水平設(shè)為0.05。

    2 結(jié)果與分析

    2.1 PtCTL5基因序列分析

    PtCTL5基因全長(zhǎng)1026 bp,包含1個(gè)732 bp的開(kāi)放閱讀框,編碼243個(gè)氨基酸(圖1)。預(yù)測(cè)其帶有負(fù)性電荷的氨基酸殘基為20個(gè)(Asp+Glu),帶有正電荷的氨基酸殘基為15個(gè)(Lys+Arg)。

    用ExPASy-ProtParam tool 預(yù)測(cè)其編碼的蛋白相對(duì)分子質(zhì)量為26 000,等電點(diǎn)為6.09,不穩(wěn)定系數(shù)為44.42,為不穩(wěn)定蛋白,蛋白濃度為1 mg/mL時(shí)消光系數(shù)為2.352,脂肪族系數(shù)為67.74。借助Pfam數(shù)據(jù)庫(kù)預(yù)測(cè)分析PtCTL5氨基酸結(jié)構(gòu)特征,結(jié)果顯示,該氨基酸序列具有C-型凝集素家族典型特征(圖2),包括在N末端有1個(gè)16個(gè)氨基酸的信號(hào)肽,第81~229個(gè)氨基酸為C-型凝集素特有的碳水化合物識(shí)別結(jié)構(gòu)域(CRD),第103~133個(gè)氨基酸為FNI結(jié)構(gòu)域,且CRD內(nèi)含有6個(gè)半胱氨酸參與反應(yīng),分別為Cys81、Cys104、Cys119、Cys200、Cys220、Cys228。PtCTL5的CRD結(jié)構(gòu)域中決定糖結(jié)合特異性的基序是“QPD”(Gln-Pro-Asp),能夠與半乳糖和半乳糖的衍生物結(jié)合。

    2.2 PtCTL5氨基酸序列的相似性及進(jìn)化樹(shù)分析

    Blast比對(duì)結(jié)果顯示,三疣梭子蟹CTL5氨基酸序列與克氏原螯蝦ProcambarusclarkiiCTL的一致性最高,為41.84%。

    利用MEGA6.0軟件對(duì)三疣梭子蟹C-型凝集素CTL5和其他甲殼動(dòng)物CTL的氨基酸序列進(jìn)行系統(tǒng)進(jìn)化樹(shù)分析,由圖3可知,三疣梭子蟹CTL5先單獨(dú)聚為一支,隨后與日本對(duì)蝦CTL1和凡納濱對(duì)蝦CTL6聚為一支,表明其親緣關(guān)系較近,而與三疣梭子蟹的另外4種C-型凝集素CTL1、CTL2、CTL3、CTL4距離較遠(yuǎn),即親緣關(guān)系較遠(yuǎn)。

    2.3 PtCTL5基因在發(fā)育各時(shí)期的表達(dá)

    三疣梭子蟹幼體不同發(fā)育階段CTL5的表達(dá)情況如圖4所示。從圖4可見(jiàn):PtCTL5在溞狀幼體Ⅲ期的相對(duì)表達(dá)量最高,大眼幼體期次之,溞狀幼體Ⅱ期再次之,且均顯著高于卵裂期(P<0.05),PtCTL5基因在溞狀幼體Ⅲ期的相對(duì)表達(dá)量是卵裂期的28.4倍;從卵裂期到幼蟹Ⅰ期,PtCTL5基因的相對(duì)表達(dá)量顯著上調(diào),雖然在眼點(diǎn)期、心跳期和溞狀幼體Ⅳ期時(shí)的表達(dá)量較前一時(shí)期有明顯的下降,但隨著三疣梭子蟹幼體的發(fā)育,PtCTL5基因的相對(duì)表達(dá)量總體呈上升的趨勢(shì)。

    2.4 PtCTL5基因在不同組織中的表達(dá)

    以β-actin為內(nèi)參基因,利用q-PCR技術(shù)對(duì)PtCTL5基因在三疣梭子蟹不同組織中的表達(dá)分布進(jìn)行檢測(cè)。從圖5可見(jiàn),PtCTL5在三疣梭子蟹9個(gè)組織中均有表達(dá),其中,PtCTL5在血細(xì)胞中的相對(duì)表達(dá)量最高,肝胰腺次之,在胸腺中相對(duì)表達(dá)量最少。

    2.5 PtCTL5基因在副溶血弧菌和WSSV感染后的表達(dá)響應(yīng)

    利用qPCR技術(shù)對(duì)病原感染后PtCTL5基因在血細(xì)胞和肝胰腺中的表達(dá)情況進(jìn)行檢測(cè)。從圖6可見(jiàn):注射副溶血弧菌感染后,PtCTL5在肝胰腺和血細(xì)胞中的相對(duì)表達(dá)量均呈一定程度的下調(diào),分別于12、24 h達(dá)到最低值,均于48 h后開(kāi)始上調(diào),72 h時(shí)達(dá)到峰值且均極顯著高于生理鹽水對(duì)照組(P<0.01),分別為對(duì)照組的20.9、5.6倍;注射WSSV感染后,PtCTL5在肝胰腺中的相對(duì)表達(dá)量在12 h達(dá)到峰值,為對(duì)照組的9.1倍,12 h后逐漸下降,72 h后達(dá)到最低值且與對(duì)照組相比無(wú)顯著性差異(P>0.05),而在血細(xì)胞中0~72 h的表達(dá)量總體呈上升趨勢(shì),72 h時(shí)達(dá)到峰值且極顯著高于對(duì)照組(P<0.01),為對(duì)照組的48.9倍。

    3 討論

    3.1 PtCTL5的序列特征

    C-型凝集素在甲殼動(dòng)物的先天免疫中發(fā)揮著重要作用[16]。C-型凝集素一般通過(guò)EPD和QPD基序參與糖基分子的結(jié)合,EPD可以識(shí)別甘露糖,而QPD可以識(shí)別半乳糖。三疣梭子蟹CTL5與許多甲殼動(dòng)物C-型凝集素的結(jié)構(gòu)相似,含有1個(gè)CRD結(jié)構(gòu)域、1個(gè)QPD基序和6個(gè)保守的半胱氨酸殘基,表明其應(yīng)為半乳糖結(jié)合型凝集素[17-19]。本研究中,對(duì)三疣梭子蟹CTL5和其他甲殼動(dòng)物C-型凝集素的糖識(shí)別結(jié)構(gòu)域(CRD)進(jìn)行了系統(tǒng)進(jìn)化樹(shù)分析,結(jié)果發(fā)現(xiàn),三疣梭子蟹CTL5與日本對(duì)蝦CTL1、凡納濱對(duì)蝦CTL6氨基酸序列在進(jìn)化上距離最近,而與三疣梭子蟹中另外4種C-型凝集素氨基酸序列在進(jìn)化上距離較遠(yuǎn),這表明,CTL5是三疣梭子蟹C-型凝集素家族的新成員。

    3.2 PtCTL5 基因的免疫防御機(jī)制

    本研究中實(shí)時(shí)熒光定量結(jié)果顯示,PtCTL5在胚胎及幼體發(fā)育過(guò)程中均可檢測(cè)到,推測(cè)其在三疣梭子蟹的胚胎和幼體發(fā)育中發(fā)揮一定的功能。在胚胎發(fā)育階段,PtCTL5的表達(dá)量呈先上升后下降的趨勢(shì),原腸期達(dá)到峰值且顯著高于卵裂期(P<0.05)。在溞狀幼體發(fā)育階段,PtCTL5的表達(dá)量在溞狀幼體Ⅲ期達(dá)到峰值。特別指出,該基因在幼體發(fā)育不同時(shí)期的相對(duì)表達(dá)量與三疣梭子蟹人工育苗過(guò)程中幼體的死亡規(guī)律相關(guān)。如心跳期、溞狀幼體Ⅳ期死亡率較高,而該時(shí)期PtCTL5基因的表達(dá)量也相應(yīng)較低[19]。推測(cè)該基因在胚胎及幼體不同發(fā)育期,可能發(fā)揮了一定的維持正常發(fā)育或抵御外界病原感染的功能。

    本研究中,組織表達(dá)分布結(jié)果顯示,CTL5基因在三疣梭子蟹9個(gè)組織中均具有分布,其中,在血細(xì)胞中表達(dá)量最高,肝胰腺中次之,這與對(duì)其他甲殼動(dòng)物C-型凝集素基因的研究結(jié)果相似。如三疣梭子蟹CTL1和CTL4基因也在肝胰腺中表達(dá)量最高[9,12]。血細(xì)胞和肝胰腺是三疣梭子蟹重要的免疫組織,CTL5基因在這兩個(gè)免疫組織中高表達(dá),暗示其可能發(fā)揮重要的免疫功能[8,20]。

    為進(jìn)一步研究PtCTL5在先天免疫中的作用,本試驗(yàn)中利用副溶血弧菌和WSSV兩種病原對(duì)三疣梭子蟹進(jìn)行了人工感染試驗(yàn)。結(jié)果發(fā)現(xiàn),兩種病原感染后PtCTL5基因的表達(dá)模式相比對(duì)照組均呈現(xiàn)顯著的變化,其中副溶血弧菌感染組整體呈先下調(diào)后上調(diào)的表達(dá)趨勢(shì),而WSSV感染組整體呈現(xiàn)上調(diào)的表達(dá)趨勢(shì)。之前的研究結(jié)果表明,甲殼類(lèi)動(dòng)物C-型凝集素在受到不同病原感染刺激后會(huì)產(chǎn)生不同的免疫應(yīng)答。例如,日本沼蝦MacrobrachiumnipponenseCTL可以加速金黃色葡萄球菌Staphylococcusaureus和副溶血弧菌的清除;中國(guó)對(duì)蝦重組CTL對(duì)部分革蘭氏陽(yáng)性菌和革蘭氏陰性菌有鈣依賴(lài)性凝集活性[3,21]。本試驗(yàn)中,根據(jù)病原感染后PtCTL5基因的應(yīng)答情況,推斷該基因在三疣梭子蟹對(duì)細(xì)菌和病毒的免疫防御過(guò)程中也發(fā)揮了重要的作用。另外,本研究中觀察到病原感染后該基因在兩個(gè)不同的免疫組織中的表達(dá)規(guī)律不同,表明其在不同免疫組織中發(fā)揮功能的通路可能也不同,需要后續(xù)進(jìn)一步解析其潛在的分子機(jī)制。

    綜上所述,本研究中成功克隆了三疣梭子蟹CTL5 cDNA序列全長(zhǎng),發(fā)現(xiàn)該基因在三疣梭子蟹各組織和幼體發(fā)育不同階段均有表達(dá),且初步探究了該基因在三疣梭子蟹受到WSSV和副溶血弧菌感染后血細(xì)胞和肝胰腺中的表達(dá)模式,進(jìn)一步證實(shí)了該基因在三疣梭子蟹免疫應(yīng)答中發(fā)揮了一定的作用,本研究結(jié)果可為深入探究C-型凝集素在三疣梭子蟹中的免疫防御機(jī)制提供數(shù)據(jù)支持。

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